免疫荧光三重标记具体方法及步骤

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免疫荧光技术实验步骤及方法

免疫荧光技术实验步骤及方法

免疫荧光技术实验步骤及方法免疫荧光是标记免疫技术发展最早的一种,它是在免疫学、生物化学和显微镜技术的基础上建立起来的一项技术,通过将抗体与一些示踪物质结合,利用抗原抗体反应进行组织或细胞内抗原物质的定位。

10个关键点免疫荧光步骤包括,细胞固定和通透,封闭,孵育一抗,二抗等。

除了这些基本步骤,以下建议可以帮助您获得更好的实验结果。

1、选择合适的细胞种板密度细胞数过多时,生长过密,细胞结构不清,易导致染色背景深,细胞数过少时,会使贴壁贴壁不佳,状态不好,一般以六孔板为例,(1-5)×100000比较适宜。

2、细胞固定和通透为达到最佳的检测效果,细胞需要经过固定和通透。

这些步骤非常关键,细胞和抗原需要保证最佳的结构,并利于抗体与抗原结合。

现在固定液选择比较多,有4%多聚甲醛、甲醇、乙醇、丙酮以及丙酮和甲醇混合液(1:1),但效果最好的应用最多的还是推荐4%多聚甲醛。

之后用0.1%皂角苷或0.02%的Triton X-100进行通透。

前者是比较温柔的处理,但是对于核内抗原可能无效,需要用到Triton。

使用皂角苷进行通透时,要注意它会引起细胞膜的可逆性通透,也就是除了在通透初期,在每个抗体孵育环节都需要进行通透。

另外,细胞可以用冰甲醇进行同时固定和通透,可以避免去垢剂的使用。

3、抗体特异性免疫荧光需要用到特异性非常强的抗体,可以避免高背景和不理想的蛋白定位结果。

在大多数情况下,纯化抗体的效果很好,但是正确的对照可以帮助精准定位抗原。

使用只有二抗染色的片子作为阴性对照,有利于减少降低背景干扰。

4、合适的抗体稀释比例通过优化抗体稀释比例来优化染色,通常情况下1ug/ml的纯化抗体或者1:100-1:1000的抗血清足够达到特异性染色的结果。

但在能保证低背景染色的前提下,可以通过增加浓度来提高信号强度。

如果是第一次使用该抗体或测定某抗原,强烈建议浓度梯度实验。

5、优化缓冲液和封闭剂尽管很多抗原在常见的Buffer如PBS中可以很好的被染色,但是对于某些目的抗原,更换一下含有不同离子的缓冲液,比如钙、镁、钾等,可以带来很大程度上的改善。

免疫荧光操作步骤及注意事项

免疫荧光操作步骤及注意事项

免疫荧光操作步骤及注意事项免疫荧光技术是一种常用的免疫学研究方法,可以用于检测和定位抗原或抗体在细胞或组织中的表达和定位。

免疫荧光操作步骤及注意事项如下:步骤1:样品制备1.收集需要检测的细胞或组织样品。

2.如有需要,固定细胞或组织样品以保持其形态和抗原性。

3.如有需要,对组织样品进行切片以便于检测。

步骤2:抗体选择和标记1.根据需要选择合适的一抗和二抗,一抗用于识别目标抗原,二抗用于与一抗结合并携带荧光标记。

2. 选择合适的荧光染料或荧光标记,常用的有荧光素色素(FITC)、罗丹明(Rhodamine)等。

3.根据供应商指南或经典实验文献中的方法,进行抗体标记。

步骤3:荧光标记试剂的制备1.根据推荐的配方或说明书,在标记试剂的缓冲液中加入合适的荧光染料或荧光标记,并进行充分混匀。

2.如有需要,可以在标记试剂中加入其他辅助试剂以增强染色强度或减少非特异性结合。

步骤4:样品孵育1.将样品均匀分布在载玻片或孵育板上,并使其附着。

2.加入一抗和二抗的混合物,并在暗处孵育一段时间,通常在室温下孵育1-2小时或在4°C下孵育过夜。

3.如果需要,可以在抗体孵育结束后进行染色或共孵育其他标记试剂。

步骤5:洗涤1.在孵育结束后,用洗涤缓冲液洗涤样品,以去除未结合的抗体和其他杂质。

2.洗涤次数根据需要,通常进行3-5次洗涤,每次洗涤时间约5分钟。

步骤6:显微镜观察和成像1.将标本置于显微镜上,并使用荧光显微镜或倒置显微镜观察荧光信号。

2.使用合适的荧光滤光片或滤片盒,选择适当的波长来显现荧光染色。

3.根据需要,使用数字相机或图像分析软件进行图像采集和分析。

注意事项:1.仪器和试剂的准备与操作一定要在无菌和干净的条件下进行,以避免外源性污染或感染的发生。

2.使用抗体和试剂前请仔细阅读供应商提供的说明书,遵守推荐的使用和储存条件。

3.一抗和二抗的选取要慎重,确保其与目标抗原或抗体具有高度特异性。

4.荧光标记试剂的制备要注意在无菌和干净的条件下进行,避免污染或降低荧光标记效果。

细胞免疫荧光的方法(自己实践记录)

细胞免疫荧光的方法(自己实践记录)

细胞免疫荧光I、步骤:一、固定:PBS 5min×3次振荡洗涤制作好的细胞爬片。

固定液覆盖细胞,RT 静置15min。

PBS 5min×3次振荡洗涤。

二、通透化:通透液覆盖细胞,RT 静置30min。

PBS 5min×3次振荡洗涤。

三、封闭:封闭液覆盖标本表面37℃孵育1h。

四、一抗孵育:一抗以合适浓度稀释PBS,覆盖标本表面。

4℃孵育过夜,第二天37℃复温1h。

PBS 5min×3次振荡洗涤。

五、二抗孵育:FITC标记二抗以合适浓度稀释于PBS,覆盖标本表面。

37℃避光孵育<60min。

PBS 5min×3次避光振荡洗涤。

六、染核:新鲜稀释Hoechst覆盖细胞表面,RT避光静置<10min。

PBS 5min×3次避光振荡洗涤。

七、封片:在干净的载玻片上滴一滴封片剂,将爬片的细胞面扣在封片剂上。

八、镜检,4℃避光保存。

II、注:1、细胞密度要合适,状态较好。

2、从孵育二抗开始要避光(关闭室内日光灯即可)。

3、完成后最好及时镜检,照相;分别用不同波长激发荧光,在Photoshop软件下合成一张图。

III、试剂配制:1、固定液:4%多聚甲醛/PBS:4g多聚甲醛,50~80mlPBS,加热至60℃,持续搅拌至完全溶解,(通常需滴加少许1n NaOH才能使溶液清亮),定容100ml,RT保存。

2、通透液:0.5 %(v/v)TritonX-100/PBS3、封闭液:正常山羊血清稀释于PBS;或商品化封闭液成品。

4、Hoechst:Hoechst33258即可。

5、封片剂:50%(v/v)甘油/PBS。

细胞免疫荧光标记实验步骤

细胞免疫荧光标记实验步骤

细胞免疫荧光标记实验步骤细胞免疫荧光标记实验是用来观察和分析细胞中的特定分子或结构的一种常用方法。

下面是一些常见的细胞免疫荧光标记实验步骤:1. 细胞培养准备:- 在无菌条件下准备所需培养基和培养器具。

- 将待标记细胞接种在培养皿中,以适当的细胞密度使其在培养基中生长。

2. 固定细胞:- 将细胞培养皿中的培养基倒掉。

- 用生理盐水或磷酸缓冲液轻轻洗涤细胞,以去除未附着的细胞和培养基残留。

- 加入适当的固定液,例如4%的乙醛,固定细胞并封存其内部结构。

3. 渗透化处理:- 使用适当的渗透剂,如0.1%的Triton X-100,以打破细胞膜,使抗体能够渗透到细胞内部。

- 进行渗透化处理的时间应根据实验要求而定。

4. 抗体标记:- 制备适当的抗体和荧光染料稀释液。

- 将抗体稀释液加入到细胞上,使其与目标分子结合。

- 按照实验要求,在适当的温度和时长下孵育细胞,促使抗体与目标分子充分结合。

5. 洗涤和染色:- 用洗涤缓冲液充分洗涤细胞,以去除未结合的抗体和荧光染料。

- 使用适当的荧光染料对细胞进行染色。

如需防褪色,可以添加适当的抑制剂。

6. 显微镜观察和图像捕获:- 用适当的显微镜观察细胞,并捕获荧光图像。

- 根据需要,使用图像处理软件对图像进行分析和量化。

注意事项:- 实验前确保实验室和设备都是清洁的,并遵守实验安全操作规范。

- 涉及有害物质时,戴好个人防护用品,如实验手套和护目镜。

- 每个实验步骤的时间和条件可能因实验要求而异,需根据具体实验方案进行调整。

这些步骤提供了一般的细胞免疫荧光标记实验的大致流程,但具体实验方法还需根据实验目的和材料的特性进行优化和调整。

参考资料:[1] Smith, C. et al. ___. Cold Spring Harb. Protoc. 7, 1052–1055 (2013).[2] Manders, E. M. M. et al. FISH: ___. Cold Spring Harb. Protoc. 2006, db.rot4111 (2006).。

细胞免疫荧光的方法(自己实践记录)

细胞免疫荧光的方法(自己实践记录)

免疫荧光染色的主要原理是利用抗原抗体之间的特异性结合来显示目的蛋白,主要包括蛋白和一抗结合,其次是带有荧光基团的二抗识别并结合一抗,荧光显微镜下即可观察到荧光,下文主要列举了三种细胞免疫荧光染色的实验步骤。

zo-1的免疫荧光,步骤如下:1、细胞在盖片上生长融合到95%-100%时,从孵箱中取出。

2、用预温的1×PBS洗3次,每次10分钟3、4%的甲醛室温固定20-30分钟4、1×PBS洗3次,每次10分钟5、0.2%Triton X-100透化2-5分钟6、1×PBS洗3次,每次10分钟7、5%BSA室温封闭30分钟8、加一抗(用1%BSA稀释)放在湿盒里,4度过夜9、1×PBS洗3次,每次10分钟10、加二抗(用1%BSA稀释)30分钟,闭光11、1×PBS洗3次,每次10分钟12、95%甘油封片注:4%甲醛,0.2%Triton,5%BSA均用1×PBS稀释从大鼠分离的T细胞能否直接做细胞免疫荧光细胞爬片的免疫荧光步骤基本一致:1.取出细胞爬片放到35mm或60mm用过的细胞培养皿里,PBS洗三遍。

注意:有的时候作的细胞爬片可能比较小,因此夹取的时候要小心,注意反正面,放在皿里洗比较方便,避免了来回夹取,另外洗的时候加PBS不要太冲,不要细胞冲下来。

洗的时候我都是多加PBS,稍晃一下就倒掉,没有等5分钟或10分钟。

2. 4%冷的多聚甲醛固定20分钟,PBS洗三遍。

3. 0.2%Triton X-100通透10分钟,PBS洗三遍。

4. 与二抗相同宿主的血清封闭30分钟,PBS洗三遍。

5. 一抗4度湿盒内过夜,也可37度2小时,感觉前者效果好,PBS洗三遍。

6.二抗室温2小时(避光),或者37度1半小时,PBS洗三遍。

7.最好用DAPI染核,然后直接照荧光片。

8.蒸馏水洗掉PBS,甘油封片,指甲油封片子的四周,因为甘油不象树脂那样会干,所以不用指甲油封的话会弄的一塌糊涂。

免疫荧光三色染色步骤

免疫荧光三色染色步骤

免疫荧光三色染色步骤免疫荧光三色染色是一种常用的免疫组化技术,用于检测和定位细胞或组织中的特定抗原。

通过使用三种不同的荧光染料,可以同时检测三种不同的抗原,从而在同一样本中获得更多的信息。

下面是免疫荧光三色染色的步骤:1. 样本处理:首先需要准备好待检测的细胞或组织样本。

可以通过固定、切片和脱脂等步骤来处理样本,以便于荧光染料的渗透和抗原的暴露。

2. 抗原修复:某些细胞或组织中的抗原可能会经历一定程度的损伤或变性,需要进行抗原修复以恢复其免疫反应性。

常用的抗原修复方法包括热处理、酶解和化学修复等。

3. 阻断非特异性结合:为了避免荧光染料的非特异性结合,需要使用适当的阻断剂来防止非特异性结合。

常用的阻断剂包括牛血清蛋白、小鼠或兔子血清等。

4. 一抗染色:选择合适的一抗,加入到样本中与目标抗原结合。

一抗可以是单克隆抗体或多克隆抗体,根据实验的需要选择合适的一抗。

5. 二抗染色:二抗是与一抗结合的抗体,通常是兔抗小鼠或小鼠抗兔的抗体。

二抗上标记有荧光染料,常见的有荧光素、荧光素同工酶和荧光素同工酶等。

6. 染色显色:将标记有荧光染料的二抗加入到样本中,与一抗所结合的抗原发生特异性反应,形成荧光染色的复合物。

7. 洗涤:染色完成后,需要进行多次洗涤以去除未结合的抗体和荧光染料,减少背景信号的干扰。

8. 封片:将处理好的样本用适当的封片剂封装在载玻片上,然后使用适当的封片胶或胶带固定样本。

通过以上步骤,可以实现免疫荧光三色染色的目的。

这种技术可以在细胞或组织中同时检测和定位多种抗原,为科研工作者提供更多的信息和数据。

需要注意的是,在进行免疫荧光三色染色时,要选择合适的一抗和二抗,以及荧光染料的激发和发射波长。

此外,还需要进行严格的实验控制,包括阴性对照和阳性对照,以确保实验结果的准确性和可靠性。

免疫荧光三色染色技术在生命科学研究中具有广泛的应用,可以用于研究细胞分子机制、疾病诊断和治疗等方面。

随着技术的不断发展和改进,相信免疫荧光三色染色技术将在未来的研究中发挥更大的作用。

培养细胞的免疫荧光标记方法

培养细胞的免疫荧光标记方法

培养细胞的免疫荧光标记方法
培养细胞用PBS分三次取代培养皿中的培液,取出盖玻片置于PBS中,在预冷的4%PFA 中4︒C固定30min,PBS洗去固定液。

1、培养细胞的免疫荧光反应:(免疫荧光反应在密闭避光的湿盒中进行,以保持抗体作用浓度、及稳定性)
经固定的培养细胞盖玻片

0.05%Triton 室温5min

PBS 5min ⨯ 2

含0.5%NS、1%BSA的PBS中室温封闭30min~1hr

一抗(稀释过)室温1~1.5hr或4︒C 过夜

PBS 10min ⨯ 3

二抗-荧光基团(稀释过)室温30min~1hr

PBS 10min ⨯ 3

DAPI(稀释过)室温5-10 min

PBS 5min ⨯ 2

荧光封固剂封片

4︒C或-20︒C避光保存
2、培养细胞的免疫荧光双标记方法:
免疫标记方法与上述方法相同,不同种属来源的两个一抗可同时加入反应液中,同样,两种相应的二抗也可同时加入反应液中。

[教材]免疫荧光操作步骤及注意事项

[教材]免疫荧光操作步骤及注意事项

免疫荧光操作步骤及注意事项一. 直接免疫荧光法测抗原基本原理将荧光素标记在相应的抗体上,直接与相应抗原反应。

其优点是方法简便、特异性高,非特异性荧光染色少,相对使用标记抗体用量偏大。

试剂与仪器磷酸盐缓冲盐水(PBS):0.01mol/L,pH7.4荧光标记的抗体溶液:以 0.01mol/L,pH7.4 的 PBS 进行稀释缓冲甘油:分析纯无荧光的甘油 9 份+ pH9.2 0.2M 碳酸盐缓冲液 1 份配制搪瓷桶三只(内有 0.01mol/L,pH7.4 的 PBS 1500ml)有盖搪瓷盒一只(内铺一层浸湿的纱布垫)荧光显微镜玻片架滤纸37℃温箱等。

实验步骤1. 滴加 0.01mol/L,pH7.4 的PBS于待检标本片上,10min后弃去,使标本保持一定湿度。

2. 滴加适当稀释的荧光标记的抗体溶液,使其完全覆盖标本,置于有盖搪瓷盒内,保温一30min定时间(参考:30min)。

3. 取出玻片,置玻片架上,先用 0.01mol/L,pH7.4 的 PBS 冲洗后,再按顺序过 0.01mol/L,pH7.4 的 PBS 三缸浸泡,每缸 3-5 min,不时振荡。

4. 取出玻片,用滤纸吸去多余水分,但不使标本干燥,加一滴缓冲甘油,以盖玻片覆盖。

5. 立即用荧光显微镜观察。

观察标本的特异性荧光强度,一般可用“+”表示:(-)无荧光;(±)极弱的可疑荧光;(+)荧光较弱,但清楚可见;(++)荧光明亮;(+++--++++)荧光闪亮。

待检标本特异性荧光染色强度达“++”以上,而各种对照显示为(±)或(-),即可判定为阳性。

注意事项1. 对荧光标记的抗体的稀释,要保证抗体的蛋白有一定的浓度,一般稀释在 1:20-100 之间,要自行摸索最佳梯度,建立最好的稀释比例,抗体浓度过低,会导致产生的荧光过弱,影响结果的观察。

2. 染色的温度和时间需要根据各种不同的标本及抗原而变化,染色时间可以从 10 min 到数小时,一般 30 min 已足够。

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免疫荧光三重标记具体方法及步骤
即利用抗原抗体特异性结合原理,在同一张切片上3个抗原进行同时标记,从而实现定位,定性,半定量的分析
1、石蜡切片脱蜡至水:依次将切片放入二甲苯Ⅰ15min-二甲苯Ⅱ15min-无水乙醇Ⅰ5min-无水乙醇Ⅱ5min-85%酒精5min-75%酒精5min-蒸馏水洗。

2、抗原修复:组织切片置于盛满EDTA抗原修复缓冲液(PH8.0)的修复盒中于微波炉内进行抗原修复。

中火8min停火8min转中低火7min,此过程中应防止缓冲液过度蒸发,切勿干片。

自然冷却后将玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。

(修复液和修复条件根据组织来确定)
3、画圈:切片稍甩干后用组化笔在组织周围画圈(防止抗体流走)
4、血清封闭:在圈内滴加BSA孵育30min。

(一抗若是山羊来源,则加兔血清)
5、加第一种一抗:轻轻甩掉封闭液,在切片上滴加PBS按一定比例配好的一抗,切片平放于湿盒内4°C孵育过夜。

(湿盒内加少量水防止抗体蒸发)
6、加对应的HRP标记的二抗:玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。

切片稍甩干后在圈内滴加与一抗相应种属的HRP标记的二抗覆盖组织,室温孵育50min。

次,每次5min。

切片稍甩干后在圈内滴加CY3荧光增强剂,避光室温孵育10min. 孵育完后,玻片置于TBST中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min
8、微波处理:组织切片置于盛满EDTA抗原修复缓冲液(PH8.0)的修复盒中于微波炉内加热处理,中火8min停火8min转中低火7min,去掉已经结合到组织上的一抗二抗,此过程中应防止缓冲液过度蒸发,切勿干片。

9、加第二种一抗:在切片上滴加PBS按一定比例配好的一抗,切片平放于湿盒内4°C孵育过夜。

(湿盒内加少量水防止抗体蒸发)
10、加对应的HRP标记的二抗:玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。

切片稍甩干后在圈内滴加与一抗相应种属的HRP标记的二抗覆盖组织,避光室温孵育50min。

11、加FITC荧光增强剂:玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。

切片稍甩干后在圈内滴加FITC荧光增强剂,避光室温孵育10min. 孵育完后,玻片置于TBST中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min
12、微波处理:组织切片置于盛满EDTA抗原修复缓冲液(PH8.0)的修复盒中于微波炉内加热处理,中火8min停火8min转中低火7min,去掉已经结合到组织上的一抗二抗,此过程中应防止缓冲液过度蒸发,切勿干片。

13、加第三种一抗:在切片上滴加PBS按一定比例配好的一抗,切片平放于湿盒内4°C孵育过夜。

(湿盒内加少量水防止抗体蒸发)
洗涤3次,每次5min。

切片稍甩干后在圈内滴加与一抗相应种属的CY5标记荧光二抗覆盖组织,避光室温孵育50min。

孵育完后,玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。

15、DAPI复染细胞核:切片稍甩干后在圈内滴加DAPI染液,避光室温孵育10min。

16、自发荧光淬灭:切片稍甩干后,在圈内加入自发荧光淬灭剂5min,流水冲洗10min。

17、封片:玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次
5min。

切片稍甩干后用抗荧光淬灭封片剂封片。

18、镜检拍照:切片置于扫描仪下采集图像。

(DAPI紫外激发波长330-380nm,发射波长420nm,发蓝光;FITC激发波长465-495nm,发射波长515-555 nm,发绿光;CY3激发波长510-560,发射波长590nm,发红光. CY5激发波长608-648nm, 发射波长672-712,,CY5原本为正红色,为了与CY3区分开,我们设定为粉色光。

DAPI染出来的细胞核在紫外的激发下为蓝色,阳性表达为相应荧光素标记的红光,粉光,绿光。

注意
样本放置于20倍样本体积的固定液中固定24h以上,常温运输送样。

切勿固定时间过长,切勿冷冻结冰。

荧光三标只能做石蜡包埋切片,不能做冰冻切片和细胞爬片。

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