乳酸脱氢酶(LDH)检测试剂盒(LD-P比色法)

2、 手工比色检测:按照下表设置测定管,溶液应按照顺序依次加入,幵注意避免产生气泡。 如果样品中的 LDH 浓度过高,可以减少样品用量或适当稀释后再进行测定。样品的检 测最好能设置平行管。
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加入物(ml) 待测样品(血清、血浆、体液等) LDH 检测工作液
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乳酸脱氢酶(LDH)检测试剂盒(LD-P 比色法)
简介:
乳酸脱氢酶(lactate dehydrogenase,LDH 或 LD)属于氧化还原酶,能够催化氢氧原 子或电子从一中底物转移到另一种底物上乳酸脱氢酶是糖酵解和糖异生的一个极其重要的 酶,含有锌离子,广泛分布于人和动物组织、植物和微生物中,能可逆的催化乳酸(L)和丙 酮酸(P)之间的氧化还原反应。乳酸脱氢酶(LDH)检测试剂盒(LD-P 比色法)是利用乳酸脱氢 酶催化上述逆反应,即丙酮酸+NADH+H+→乳酸+NAD+。在上述反应过程中,丙酮酸还 原成乳酸,同时 NADH 氧化成 NAD+,引起 340nm 处吸光度的下降。该 LD-P 法的优点 是:1、操作比二硝基苯肼比色法简单;2、重复性好;3、准确性比二硝基苯肼法好;4、
2、 处理后的样品应及时检测,否则 LD4 和 LD5 易失效。 3、 血清或肝素抗凝血浆检测效果较好,草酸类、EDTA 抗凝剂对 LDH 活性有抑制作用。
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4、 避免使用溶血样本。 5、 为了您的安全和健康,请穿实验服幵戴一次性手套操作。
自动分析仪计算公式:LDH(U/L)=ΔA/min×(106/6220)×(296/10)=ΔA/min×4758.8 注意:如果待测样品加入 LDH 保护工作液,其结果应除以 0.9。
参考范围:
成年健康人
200~380U/L
注意事项:
1、 本法线性范围可达 3000U/L,当 LDH 浓度高于该范围可使用 LD-P Assay buffer 适当 稀释后再进行检测,测出结果乘以稀释倍数。
混匀,孵育。 丙酮酸工作液
测定管 0.05 2.0
0.2
混匀,立即于 340nm 处读取各管吸光度,比色杯光径 1.0cm,记录为 A 测定 1。每读取 各管吸光度,记录为 A 测定 2。 5、自动分析仪检测:如果样品中的浓度过高,可以减少样品用量或适当稀释后再进行测定。 样品的检测最好能设置 平行管。根据实验 室的自动分析仪 性能,设置参数 ,下列参数仅供 参考:
温度 pH 波长 延迟时间 待测样品 LDH 检测工作液 丙酮酸工作液
37℃ 7.4 340nm 0 10μl 260μl 26μl
记录待测样品管吸光度的下降速率(ΔA/min)。
计算: 手工比色计算公式:LDH(U/L)=ΔA/min×(106/6220)×(2.25/0.05)=ΔA/min×7235
适用于自动分析仪。该试剂盒仅用于科研领域,丌宜用于临床诊断或其他用途。
组成:
名称 试剂(A): NADH 试剂(B): LD-P Assay buffer 试剂(C): 丙酮酸溶液 试剂(D): 丙酮酸稀释液 试剂(F): LDH 保护稀释液 使用说Storage
2 支 -20℃ 避光
250ml
RT
2×1.5ml 4℃ 避光
30ml
RT
5ml
RT
1份
操作步骤(仅供参考):
1、 准备样品: ①血浆、血清样品:血浆、血清按照常规方法制备,可以直接用于本试剂盒的测定, 室温保存 3 天,用于 LDH 的检测。 ②细胞或组织样品:取恰当细胞或组织进行匀浆,低速离心取上清,室温保存 3 天, 用于 LDH 的检测。 ③长期保存样品:如果提取后的样品无法及时检测,需要放置时间较长,按下列方法 操 作:按待测样品(如血清):LDH 保护工作液=9:1 的比例混合,4℃避光保存。 ④(选做)样品准备完毕后可以用 BCA 蛋白浓度测定试剂盒测定蛋白浓度,以便于后续 计算单位蛋白重量组织或细胞内的 LDH 含量。
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不同试剂盒检测系统血清乳酸脱氢酶结果的偏倚评估

不同试剂盒检测系统血清乳酸脱氢酶结果的偏倚评估

不同试剂盒检测系统血清乳酸脱氢酶结果的偏倚评估目的通过对不同检测试剂盒检测血清乳酸脱氢酶测定进行方法比对和偏倚评估,为不同实验室检验结果的互认和实验室认可提供实验数据。

方法参考NCCLS 的EP9-A2文件,以OLYMPUS AU5421全自动生化分析仪、国内某一品牌试剂(试剂1)、贝克曼原装配套试剂(试剂2)、贝克曼原装复合校准品和伯乐定值质控品组成的检测系统,并用患者新鲜血清(正常、异常、高度异常)检测乳酸脱氢酶(LDH)进行比较分析,计算实验方法(Y)和比较方法(X )之间的相对偏差(%SE),以美国临床实验室修正法规(CLIA′88)规定的室间质量评价允许误差范围为标准,判断不同检测试剂盒测定结果的可比性。

结果不同试剂盒检测结果发现:异常标本,特别是高度异常标本,其差异巨大,无法接受。

结论当用某一试剂时,应进行比对和偏倚评估,判断其临床可接受性能,保证检验结果的可比性。

标签:不同试剂盒;血清乳酸脱氢酶;比对研究两个实验室认可的国际标准ISO / IEC 17025[1](检测和校准实验室能力的通用要求)和ISO /15189[2](医学实验室-质量和能力的专用要求)都对检验结果的溯源性和可比性提出了明确要求,强调方法学比较试验(比对试验)是实现准确度溯源和患者标本检验结果可比性的重要途径。

但比对试验如何进行,如何评估不同检测系统检验结果的偏差,如何判断不同检测系统结果的可比性,是目前检验医学界关注和讨论的热点。

本研究参考美国临床实验室标准化委员会(NCCLS)的EP9-A2文件[3],对不同检测试剂盒血清乳酸脱氢酶测定进行比对和偏倚评估,为实现血清酶测定的溯源性和可比性提供实验数据,纠正许多实验室只考虑节约成本,不对异常结果关注,只有通过异常标本的检测才能发现试剂质量的好坏,从而为临床提供可靠的结果。

1 资料与方法1.1一般资料1.1.1检测系统的组成以OLYMPUS AU5421生化分析仪、国内某一品牌试剂(试剂1)、贝克曼原装配套试剂(试剂2)和贝克曼复合酶校准品和伯乐质控品组成的检测系统。

乳酸检测试剂盒(乳酸脱氢酶比色法)

乳酸检测试剂盒(乳酸脱氢酶比色法)

乳酸检测试剂盒(乳酸脱氢酶比色法)产简介:乳酸(Lactic acid ,LD)又称2-羟基丙酸是一种化合物,是一种含有羟基的羧酸,分子式是C 3H 6O 3,参与生物化学很多反应过程。

乳酸检测有化学氧化法、酶催化法、电化学法、酶电极感应器法。

乳酸检测试剂盒(乳酸脱氢酶比色法)其检测原理是在NAD 存在条件下,乳酸脱氢酶(LDH)催化乳酸生成丙酮酸,同时生成NADH 。

在碱性条件下显色剂与丙酮酸生成复合物,并使平衡偏向乳酸氧化为丙酮酸的方向,驱动反应完成,生成的NADH 与乳酸为等量摩尔。

通过分光光度比色法测定340nm 处吸光度,据此通过比色分析就可以计算出LD 水平。

组成:自备材料:1、 离心管或小试管2、 蒸馏水3、 水浴锅或恒温箱4、 比色杯5、 分光光度计操作步骤(仅供参考):1、 准备样品:血浆、血清、尿液及其他体液样品:血浆、血清按照常规方法制备后可以直接用于本试剂盒的测定,尿液通常也可以直接用于测定,-20℃冻存。

编号 名称TC0733 50T Storage试剂(A): 乳酸标准(20mmol/L) 1ml -20℃ 避光 试剂(B): 乳酸标准稀释液 1ml RT 试剂(C): LD 显色液C1: LD Assay buffer 15ml 4℃ 避光 C2: NAD buffer 2支 -20℃ 避光 C3: LDH solution50μl-20℃ 避光试剂(D): LD 终止液 200mlRT 使用说明书1份细胞或组织样品:取恰当细胞或组织裂解液,如果有必要需进行适当匀浆,低速离心取上清,-20℃冻存,用于LD 的检测。

高浓度样品:如果样品中含有较高浓度的LD ,可以使用原有的裂解液或PBS 等进行稀释,如鸡血清、血浆可稀释5~10倍后检测。

2、 配制标准品工作液:4℃避光保存2个月有效。

3、 LD检测:按照下表设置空白管、对照管、标准管、测定管,溶液应按照顺序依次加入,并注意避免产生气泡。

乳酸脱氢酶(Lactate Dehydrogenase,LDH)试剂盒说明书

乳酸脱氢酶(Lactate Dehydrogenase,LDH)试剂盒说明书

货号:MS1001 规格:100管/48样乳酸脱氢酶(Lactate Dehydrogenase,LDH)试剂盒说明书微量法正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定测定意义:LDH(EC 1.1.1.27)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,是糖酵解途径的末端酶,催化丙酮酸与乳酸之间的可逆反应,伴随着NAD+/NADH之间互变。

测定原理:LDH催化NAD+氧化乳酸生成丙酮酸,丙酮酸进一步与2, 4 - 二硝基苯肼作用生成丙酮酸二硝基苯腙,在碱性溶液中显棕红色,颜色深浅与丙酮酸浓度成正比。

自备实验用品及仪器:可见分光光度计/酶标仪、恒温水浴锅、台式离心机、可调式移液器、微量石英比色皿/96孔板、研钵、冰和蒸馏水。

试剂的组成和配制:提取液:60mL×1瓶,4℃保存;试剂一:液体5mL×1瓶,4℃保存;试剂二:粉剂×1支,-20℃保存,用时加入1.3 mL蒸馏水充分溶解备用,用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融;试剂三:液体5 mL×1瓶,4℃避光保存;试剂四:液体20mL×1瓶,4℃保存;样品测定的准备:1、细菌、细胞或组织样品的制备:细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104个):提取液体积(mL)为1000~5000:1的比例(建议2000万细菌或细胞加入1mL提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次);8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。

组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液),进行冰浴匀浆。

8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。

2、血清(浆)样品:直接检测。

测定步骤:1、分光光度计或酶标仪预热30min以上,调节波长至450nm,蒸馏水调零。

乳酸脱氢酶(LDH)细胞毒性检测试剂盒一站式解决方案

乳酸脱氢酶(LDH)细胞毒性检测试剂盒一站式解决方案

乳酸脱氢酶(LDH)细胞毒性检测试剂盒一站式解决方案乳酸脱氢酶(lactate dehydrogenase,LD 或LDH ,EC1.1.1.27 )是一类NAD依赖性激酶,有LDHA、LDHB、LDHC三种亚基,可构成6种四聚体同工酶。

动物乳酸脱氢酶是由4个亚单位组成的四聚体,常见的A、B 两种亚基构成的5种LDH同工酶(LDH1-5),C亚基则仅组成一种LDH同工酶即LDH-C4。

乳酸脱氢酶为含锌离子的金属蛋白,分子量为135-140kD,是糖无氧酵解及糖异生的重要酶系之一,可催化丙酸与L-乳酸之间的还原与氧化反应,也可催化相关的α-酮酸。

LDH广泛存在于人体组织中,以肾脏含量最高,其次是心肌和骨肌。

红细胞内LDH约为正常血清的100倍。

一、乳酸脱氢酶分类1.根据结合辅酶的不同,微生物体一般包含两种乳酸脱氢酶,NAD-依赖型乳酸脱氢酶(NAD-dependent lactate dehydrogenases,nLDHs)和NAD-非依赖型乳酸脱氢酶(NAD-independent lactate dehydrogenases,iLDHs)两大类。

2.按其催化底物的构型不同,NAD-依赖型乳酸脱氢酶可以分为NAD依赖型-L-乳酸脱氢酶(L-NAD-依赖型乳酸脱氢酶)和NAD依赖型-D-乳酸脱氢酶(D-NAD-依赖型乳酸脱氢酶)两大类,分别催化丙酮酸合成L-乳酸和D-乳酸。

3.根据天然电子受体的不同,可以将NAD-非依赖型乳酸脱氢酶分为三类。

第一类为膜蛋白,利用膜醌类作为外部的电子受体;第二类直接利用O2作为电子受体,根据氧化终产物的不同,又将其细分为乳酸氧化酶(Lactate oxidase,LOX)和乳酸单氧酶(Lactate monooxygenases,LMO),其中前者产生丙酮酸和H2O2,而后者产生乙酸、CO2和H2O;第三类是硫胺b2(flavocytochrome b2),存在于真菌中,它天然的电子受体为细胞色素c。

小鼠乳酸脱氢酶(LDH)ELISA试剂盒操作说明操作说明

小鼠乳酸脱氢酶(LDH)ELISA试剂盒操作说明操作说明

小鼠乳酸脱氢酶(LDH)ELISA试剂盒操作说明操作说明小鼠乳酸脱氢酶(LDH)ELISA试剂盒操作说明小鼠乳酸脱氢酶(LDH)ELISA试剂盒实验原理小鼠乳酸脱氢酶(LDH)ELISA试剂盒采用双抗体一步夹心法酶联免疫吸附试验(ELISA)。

往预先包被小鼠乳酸脱氢酶(LDH)捕获抗体的包被微孔中,依次加入标本、标准品、HRP标记的检测抗体,经过温育并彻di洗涤。

用底物TMB显色,TMB在过氧化物酶的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成最终的黄色。

颜色的深浅和样品中的小鼠乳酸脱氢酶(LDH)呈正相关。

用酶标仪在450nm 波长下测定吸光度(OD 值),计算样品浓度。

样本处理及要求1. 血清:将收集于血清分离管的全血标本在室温放置2小时或4℃过夜,然后1000×g离心20 分钟,取上清即可,或将上清置于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。

2. 血浆:用EDTA或肝素作为抗凝剂采集标本,并将标本在采集后的30分钟内于2-8℃1000×g离心15分钟,取上清即可检测,或将上清置于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。

3. 组织匀浆:用预冷的PBS (0.01M, pH=7.4)冲洗组织,去除残留血液(匀浆中裂解的红细胞会影响测量结果),称重后将组织剪碎。

将剪碎的组织与对应体积的PBS(一般按1:9的重量体积比,比如1g的组织样品对应9mL的PBS,具体体积可根据实验需要适当调整,并做好记录。

推荐在PBS中加入蛋白酶抑制剂)加入玻璃匀浆器中,于冰上充分研磨。

为了进一步裂解组织细胞,可以对匀浆液进行超声破碎,或反复冻融。

最后将匀浆液于5000×g离心5~10分钟,取上清检测。

4. 细胞培养物上清或其它生物标本:请1000×g离心20分钟,取上清即可检测,或将上清置于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。

注:标本溶血会影响最后检测结果,因此溶血标本不宜进行此项检测。

乳酸脱氢酶(LDH)法操作说明

乳酸脱氢酶(LDH)法操作说明

乳酸脱氢酶(LDH)法操作说明乳酸脱氢酶(LDH)法操作说明操作简介:乳酸脱氢酶(LDH)法是一种常用的生物化学分析方法。

本文将详细介绍使用乳酸脱氢酶法进行实验操作的步骤。

材料准备:1. 乳酸脱氢酶试剂盒2. 样品溶液3. 乳酸标准品4. 实验用试管和显微管操作步骤:1. 样品制备- 将待测样品装入实验用试管中。

每个样品应分别装入不同的试管,以避免交叉污染。

- 若样品过浓稀,需要进行适当的稀释,确保样品浓度在测试范围内。

2. 标准曲线制备- 准备不同浓度的乳酸标准品溶液,浓度范围可根据实验要求而定。

- 将不同浓度的标准品溶液分别装入实验用试管中。

3. 试剂添加- 分别向样品管和标准品管中加入相同体积的乳酸脱氢酶试剂,充分混匀。

4. 反应温育- 将所有试管置于恒温水浴中,温度设定为适合乳酸脱氢酶反应的温度(一般为37°C)。

- 在设定的反应温度下,将试管保持在水浴中反应一段时间(时间根据实验要求而定)。

5. 反应终止- 在反应时间结束后,以适当的方法终止反应。

常见的终止方式是添加酸性试剂或采用其他合适的方法。

6. 测定乳酸脱氢酶活性- 使用光度计、分光光度计或其他合适的仪器,测定样品和标准品反应后产生的光吸收值。

吸收值与乳酸脱氢酶活性成正比。

- 通过标准曲线,将样品的吸收值转化为对应的乳酸脱氢酶活性。

注意事项:1. 本实验操作需要严格按照实验室安全操作规范进行,避免任何可能导致个人受伤或污染的行为。

2. 实验过程中的试剂、标样和废液等应按照实验室规定的方法处理,不得随意丢弃。

3. 在操作过程中,保持实验器材和试剂的洁净,尽量避免外界因素对实验结果的影响。

4. 操作时需注意避免交叉污染,尤其是样品的装管和试剂的配比过程。

5. 样品和标准品的选择要合适,浓度范围应覆盖实验要求。

6. 温育过程中,确保试管能均匀受热,并避免发生温度不稳定的情况。

总结:乳酸脱氢酶(LDH)法是一种可靠的生物化学分析方法,适用于乳酸脱氢酶活性的测定。

LDH检测

乳酸脱氢酶释放法lactate dehydrogenase release assay碧云天的乳酸脱氢酶细胞毒性检测试剂盒(LDH Cytotoxicity Assay Kit),也称乳酸脱氢酶检测试剂盒(LDH Assay Kit)或乳酸脱氢酶释放检测试剂盒(LDH Release Assay Kit),是一种基于diaphorase催化的INT显色反应,通过比色法检测细胞毒性时释放的乳酸脱氢酶活性或检测其它样品中的乳酸脱氢酶活性的试剂盒。

本试剂盒可以用于常规的乳酸脱氢酶活性的检测,更常用于以LDH释放为指标的细胞毒性检测。

同时,基于细胞总乳酸脱氢酶活性的检测,本试剂盒也可以用于检测细胞增殖和细胞毒性检测。

细胞凋亡或坏死而造成的细胞膜结构的破坏会导致细胞浆内的酶释放到培养液里,其中包括酶活性较为稳定的乳酸脱氢酶(lactate dehydrogenase, LDH)。

通过检测从质膜破裂的细胞中释放到培养液中的LDH 的活性,就可以实现对细胞毒性的定量分析。

LDH释放被看做细胞膜完整性的重要指标,并被广泛用于细胞毒性检测。

LDH释放被认为是以前使用放射性的51Cr标记细胞,随后通过51Cr释放进行细胞膜完整性检测的安全有效的替代方法。

本试剂盒的基本原理是,在乳酸脱氢酶的作用下,NAD+被还原生成NADH,NADH和INT(2-p-iodophenyl-3-nitrophenyl tetrazolium chloride)被硫辛酰胺脱氢酶(diaphorase)催化反应生成NAD+和强生色物甲臜(formazan),在490nm波长下产生吸收峰,从而可以通过比色来定量乳酸脱氢酶的活性。

吸光度与乳酸脱氢酶活性成线性正相关。

该酶联反应原理的示意图如下:可检测细胞培养液、细胞裂解液等样品中乳酸脱氢酶的活性。

一个试剂盒可进行100次检测。

包装清单:产品编号产品名称包装C0016-1 LDH释放试剂 1.5mlC0016-2 乳酸溶液2mlC0016-3 酶溶液1ml×2C0016-4 INT溶液(10X) 0.2mlC0016-5 INT稀释液2ml—说明书1份保存条件:-20℃保存,一年有效。

乳酸脱氢酶(LDH)测定试剂盒(乳酸底物法)产品技术要求derui

乳酸脱氢酶(LDH)测定试剂盒
(乳酸底物法)
2.1外观和性状
外观和性状应符合表2要求。

表2 试剂盒内各组分的外观性状
2.2试剂空白
2.2.1试剂空白吸光度
试剂以生理盐水为空白时,在温度37℃、波长340nm、光径1.0 cm 条件下,吸光度≤0.50。

2.2.2试剂空白吸光度变化率
试剂以生理盐水为空白时,在温度37℃、波长340nm、光径1.0 cm 条件下,吸光度变化率≤0.002。

2.3分析灵敏度
试剂盒测试浓度为100U/L被测物时,吸光度变化率≥0.004。

2.4线性范围
2.4.1试剂盒在25 ~750U/L区间(范围)内,其回归系数r≥0.990。

2.4.2相对偏差或绝对偏差应符合表3 要求。

表3 相对偏差或绝对偏差
2.5精密度
2.5.1试剂盒重复性CV 值应≤5%。

2.5.2试剂盒批间相对极差(R)应≤10.0%。

2.6准确度
相对偏差(Bias%)应在参考物质靶值±10%以内。

2.7液体装量
试剂盒不同规格的净含量应不少于其标示量。

乳酸脱氢酶测定试剂盒(乳酸底物法)产品技术要求haifeng

乳酸脱氢酶测定试剂盒(乳酸底物法)
适用范围:本产品适用于体外定量测定人血清中乳酸脱氢酶(LDH)的含量。

1.1 产品规格
1.2 主要组成成分
2.1 外观
2.1.1试剂盒标签标识清晰,外包装完整无破损;
2.1.2试剂1为无色澄清液体,目测不得有任何沉淀及絮状悬浮物;
2.1.3试剂2为无色澄清液体,目测不得有任何沉淀及絮状悬浮物。

2.2 净含量
净含量不低于标示值。

2.3 试剂空白
2.3.1空白吸光度
在主波长340nm、副波长405nm、37℃条件下,空白吸光度应小于0.5。

2.3.2空白吸光度变化率
在主波长340nm、副波长405nm、37℃条件下,空白吸光度变化率不大于0.002/min。

2.4 线性范围
(25,1000)U/L范围内,相关系数≥0.990;
(25,100]U/L范围内,线性绝对偏差应不超过±10U/L;
(100,1000)U/L范围内,线性相对偏差应不超过±10%。

2.5 分析灵敏度
在产品说明书规定参数设定条件下,换算为测定浓度为300U/L的样本, 吸光度变化率△A/min应不小于0.015。

2.6 精密度
2.6.1批内重复性
CV≤5.0%。

2.6.2 批间差
相对极差R≤10.0%。

2.7 准确度
测定参考物质GBW(E)090593,测定结果应不超过标示值的±10%。

2.8 稳定性
未开封试剂2℃~8℃储存,可稳定12个月。

取到效期后2个月内产品进行检测,检测结果应满足2.4和2.7的规定。

乳酸脱氢酶(LDH)释放法细胞繁殖与毒性定量检测试剂盒产

乳酸脱氢酶(LDH)释放法细胞繁殖与毒性定量检测试剂盒产品说明书(中文版)主要用途乳酸脱氢酶(LDH)释放法细胞繁殖与毒性定量检测试剂是一种旨在通过酶联连续反应系统检测由于细胞损伤导致的细胞内稳定的乳酸脱氢酶释放到细胞外,使四唑盐染料碘硝基氯化四氮唑(INT)还原为红色甲臜(farmazan),即比色法定量测定酶活性,以评价活体细胞繁殖的权威而经典的技术方法。

该技术经过精心研制、成功实验证明的。

适用于各种药物、化学、环境因子和营养因子处理的贴壁或悬浮生长中的动物或人体细胞。

替代传统的同位素[51 Cr]释放检测的最佳选择。

产品严格无菌,即到即用,简捷敏感,性能稳定,显色清晰,检测准确,重复性好。

技术背景细胞凋亡或坏死而造成的细胞膜结构的损害或完全裂解导致细胞浆内的酶释放外泄到培养液里,其中包括活性稳定的乳酸脱氢酶。

乳酸脱氢酶(lactate dehydrogenase;LDH)释放法的测定是基于在乳酸脱氢酶的作用下,还原NAD+反应生成的NADH,再与氧化型2-(4-碘苯)-3-(4-硝基苯)-5-苯四唑(Iodonitrotetrazolium;INT)在硫辛酰胺脱氢酶(diaphorase)的催化下反应生成红色生色产物甲臜(formazan),在490nm波长下产生吸收峰,从而确定释放的乳酸脱氢酶的活性,作为细胞膜完整性的标志:吸光值与细胞死亡或毒性程度成线性正相关。

酶联连续反应系统为:lactate dehydrogenaseNAD+ + Lactate → Pyruvate + NADHdiaphoraseNADH + INT → NAD++ Formazan(red)产品内容裂解液(Reagent A)1毫升补充液(Reagent B)1毫升反应液(Reagent C)5毫升显色液(Reagent D)1毫升终止液(Reagent E)1毫升标准液(Reagent F)20微升产品说明书1份保存方式保存在-20℃冰箱里,反应液(Reagent C)和显色液(Reagent D)避免光照;有效保证6月用户自备96孔细胞培养板:用于细胞操作的容器细胞培养箱:用于孵育反应孔板离心机:用于沉淀细胞酶标仪:用于定量检测染色后的细胞实验步骤一、贴壁细胞检测1.准备96孔细胞培养板的待测细胞(每孔100微升):包括未处理的对照细胞(样品对照孔),未处理的后续裂解的细胞(样品最大酶活性对照孔),以及药物处理的细胞(处理样品孔),并做好标记(细胞密度为每孔2 X 103至2 X 104细胞)2.到规定的检测时间点前1小时,从湿润的细胞培养箱里取出待测的96孔细胞培养板(注意:确保细胞培养液维持在100微升容量)3.加入10微升裂解液(Reagent A)到未处理的后续裂解的细胞孔里(样品最大酶活性对照孔)4.同时加入10微升补充液(Reagent B)到其余所有检测孔里5.放回湿润的细胞培养箱里,继续培养1小时,即规定检测时间6.从湿润的细胞培养箱里取出待测的96孔细胞培养板7.放进孔板离心机离心10分钟,速度为250g8.分别小心移取50微升上清液到新的96孔板的相应孔里,避免触摸细胞颗粒,同时注意做好标记9.分别加入50微升反应液(Reagent C)(注意:使用前,须混匀)10.分别加入10微升显色液(Reagent D)11.摇动96孔板混匀12.在室温下孵育30分钟,避免光照13.(选择步骤)分别加入10微升终止液(Reagent E)14.即刻放进酶标仪里测读:波长490nm15.计算处理样品实际吸光读数:处理样品孔吸光读数-样品对照孔吸光读数16.计算样品细胞最大酶活性的实际吸光读数:样品最大酶活性对照孔吸光读数-样品对照孔吸光读数17.计算细胞毒性或死亡率(%):(处理样品实际吸光读数÷样品细胞最大酶活性的实际吸光读数)X 10018.或绘制细胞生长曲线:纵座标(Y轴)为实际吸光读数(A);横坐标(X轴)为细胞数或时间点或药物浓度;据此计算其LD50二、悬浮细胞检测1.准备96孔细胞培养板的待测悬浮细胞(每孔100微升):包括未处理的对照细胞(样品对照孔),未处理的后续裂解的细胞(样品最大酶活性对照孔),以及药物处理的细胞(处理样品孔),并做好标记(细胞密度为每孔5 X 103至5 X 104细胞)2.到规定的检测时间点前1小时,从湿润的细胞培养箱里取出待测的96孔细胞培养板(注意:确保细胞培养液维持在100微升容量)3.加入10微升裂解液(Reagent A)到未处理的后续裂解的细胞孔里(样品最大酶活性对照孔)4.同时加入10微升补充液(Reagent B)到其余所有检测孔里5.放回湿润的细胞培养箱里,继续培养1小时,即规定检测时间6.从湿润的细胞培养箱里取出待测的96孔细胞培养板7.放进孔板离心机离心10分钟,速度为250g8.分别小心移取50微升上清液到新的96孔板的相应孔里,避免触摸细胞颗粒,同时注意做好标记9.分别加入50微升反应液(Reagent C)(注意:使用前,须混匀)10.分别加入10微升显色液(Reagent D)11.摇动96孔板混匀12.在30℃温度下孵育30分钟,避免光照13.(选择步骤)分别加入10微升终止液(Reagent E)14.即刻放进酶标仪里测读:波长490nm15.计算处理样品实际吸光读数:处理样品孔吸光读数-样品对照孔吸光读数16.计算样品细胞最大酶活性的实际吸光读数:样品最大酶活性对照孔吸光读数-样品对照孔吸光读数)17.计算细胞毒性或死亡率(%):(处理样品实际吸光读数÷样品细胞最大酶活性的实际吸光读数)X 10018.或绘制细胞生长曲线:纵座标(Y轴)为实际吸光读数(A);横坐标(X轴)为细胞数或时间点或药物浓度;据此计算其LD50注意事项1.本产品为100次(1个96孔板)操作2.操作时须戴手套3.整个操作须无菌操作4.建议每个样品安排3个孔,即重复3次,计算时取其平均值5.检测体系相应增加,试剂用量按比例相应增加:例如200微升检测体系,试剂用量增加1倍6.每孔中的培养液需100微升,避免使用周边培养孔(常常液体蒸发而减少)7.系统测试,可以加入2至5微升标准液(Reagent G)到50微升无细胞的细胞培养液里,然后按照说明书加入反应液(Reagent C)和显色液(Reagent D)即可8.细胞裂解效果不佳,可以使用20微升裂解液(Reagent A)处理9.孵育时,须避光10.染色完成后,建议即刻检测,最迟不得超过1小时11.细胞培养和处理时,避免使用草酸(OXALATE),草氨酸(OXAMATE)和EDTA,否则影响检测的准确性12.血清含有乳酸脱氢酶,建议使用浓度不要超过1%13.细胞过度生长、密度过高、离心速度过大、培养箱内外温差过大等因素会造成细胞自然释放乳酸脱氢酶14.酚红会干扰检测15.样品最大酶活性对照孔或最大OD吸光读数与细胞裂解程度密切相关16.如果用户没有孔板离心机,则移取上清液时格外小心17.如果用户没有匹配的波长,可以使用波长470nm至570nm之间的任一波长替代18.本公司提供系列细胞繁殖检测试剂产品质量标准1.本产品经鉴定性能稳定2.本产品经鉴定检测敏感使用承诺杰美基因秉着“信誉至上、客户满意、质量承诺”的宗旨为我们的用户提供优质产品和服务。

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