酵母菌高密度发酵

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一种酿酒酵母高密度发酵培养的方法

一种酿酒酵母高密度发酵培养的方法

一种酿酒酵母高密度发酵培养的方法一种酿酒酵母高密度发酵培养的方法是液体培养方法。

该方法可以在较短的时间内培养大量的酿酒酵母,保证其高密度发酵效果。

下面将介绍该方法的步骤和相关参考内容。

1. 选材和接种选择优质的酿酒酵母菌株作为起始接种源。

酿酒酵母菌株应具有良好的酒精耐受性和产酒酵母所需的其它特性。

参考内容:Chen, X., & Xu, D. (2019). Efficient production of bioethanol from waste cellulosic biomass by engineered industrial Saccharomyces cerevisiae. Bioresource technology, 273, 578-585.2. 培养基配制配制适宜的液体培养基,包括碳源、氮源、矿质盐和一些必要的辅助成分。

碳源通常选择葡萄糖或麦芽糖,氮源可选择酵母膏、酵母提取物或氨基酸等。

参考内容:Swings, J., & De Ley, J. (1977). Gaffkya tetragena genetics and taxonomy. International journal of systematic bacteriology, 27(4), 297-305.3. 培养条件控制调节培养的温度、pH值和氧气供应等条件。

适宜的温度和pH 值有助于提高酵母的生长速率和代谢活性。

氧气供应通常通过搅拌或通气的方式进行控制。

参考内容:Li, H., & Shen, Y. A. (2008). Progress on the continuous production of bioethanol by immobilized yeast cell bioreactor. Renewable Energy, 33(5), 1097-1105.4. 发酵过程监测通过定期取样并测量关键参数来监测发酵过程。

马克斯克鲁维酵母高密度发酵条件的优化研究

马克斯克鲁维酵母高密度发酵条件的优化研究

马克斯克鲁维酵母高密度发酵条件的优化研究马克斯克鲁维酵母是一种重要的酿酒酵母,在啤酒、葡萄酒等酿造过程中起着至关重要的作用。

为了提高酵母的发酵能力和生产效率,研究人员一直在探索酵母的高密度发酵条件的优化方法。

本文将从酵母的特点、高密度发酵条件的影响因素及优化策略等方面展开讨论,深入探究马克斯克鲁维酵母高密度发酵条件的优化研究。

一、酵母的特点马克斯克鲁维酵母是一种产生二氧化碳和乙醇的真菌,它能够通过对葡萄糖和其他碳源的代谢来生存并繁殖。

与其他微生物相比,酵母具有以下特点:1.耐酒精性强:酵母可以在酒精浓度高达15%~20%的环境中生存,这种耐酒精性是其在酿造过程中能够承受高浓度乙醇的重要保障。

2.快速繁殖:在适宜的温度和营养条件下,酵母的繁殖速度非常快,可以在短时间内达到高浓度。

3.耐受低温:一些酵母菌株可以在低温下存活,并在一定条件下进行代谢活动,这使得酵母在冷酿啤酒和低温发酵的工艺中得以应用。

二、高密度发酵条件的影响因素高密度发酵是指将酵母细胞数量提高到较高水平,以达到提高生产效率和降低生产成本的目的。

高密度发酵条件的优化需要考虑以下因素:1.温度:发酵过程中温度的控制对酵母的生长和代谢至关重要。

过高或过低的温度都会对酵母的发酵效果产生负面影响。

2. pH值:pH值的变化会直接影响酵母细胞的酶活性和代谢产物的生成,因此在发酵过程中要注意控制pH值的稳定。

3.氧气供应:氧气对酵母的生长和代谢有着重要影响,充足的氧气供应可以提高酵母的活力和产出。

4.营养物质:酵母需要各种营养物质来维持生长和代谢,因此在高密度发酵条件下要充分供给必要的营养物质。

5.搅拌速度:适当的搅拌速度可以保证酵母细胞与培养液充分混合,有利于氧气的传递和代谢物的转移。

三、高密度发酵条件的优化策略为了提高马克斯克鲁维酵母的发酵效率和生产能力,必须对高密度发酵条件进行良好的优化。

以下是一些优化策略的建议:1.确定最佳的温度和pH值范围:通过实验确定最适宜马克斯克鲁维酵母的温度和pH值范围,以提高酵母的发酵效率。

酵母菌的高密度发酵

酵母菌的高密度发酵

3.发酵液流变学
一般发酵液视为拟均相,而在高密度发酵时, 不能忽视菌体所占的体积,表现为气液固三相。 另外,高密度发酵液的粘度也会大幅度增加, 表现为非牛顿型流体,对氧的传递和营养物的 传质都产生较大影响。
4.高密度发酵的研究进展
发酵方式 的选择 提高氧的 供应方法 防止乙醇 的产生 发酵液流 变学

4.4发酵液流变学
对气液固三相发酵液来讲,一般文献大多强 调气液传递,而忽略了液固传递的影响。而在 高密度发酵中,菌体成份不能忽视。李佐虎教 授提出的外界周期刺激强化细胞膜传质新理 论无疑对这方面的研究提供了指导意义。对 于高粘度发酵体系,气升式发酵罐较机械式搅 拌罐具有较强的优势。
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酵母菌的高密度发酵
发酵工程 课程设计第四组
1.什么是高密度发酵
指培养液中工程菌的菌体浓度在50gDCW (菌体干重)/L以上,理论上的最高值可达 200gDCW/L的发酵方式。 高密度发酵可以提高发酵罐内的菌体密度, 提高产物的细胞水平量,相应的减少了生物 反应器(发酵罐)的体积,提高单位体积设 备的生产能力,降低生物量的分离费用,缩 短生产周期,从而达到降低生产成本,提高 生产效率的作用。
3.限制酵母菌高密度发酵的因素
营学
1.营养源 高密度发酵的生物量达150g/L到200g/L,需要投入2 倍到5倍于生物量的基质,加上利用率,实际用量远高 于此值。如按葡萄糖计,酵母菌体得率在好氧条件下, 葡萄糖的理论值是菌体的2倍,而实用为4倍到10倍;在 厌氧条件下,理论值和实用值分别为9倍和60倍到80 倍。根据米氏动力学理论,当营养增加到一定量时 (10ks至20ks),生长显示饱和型动力学,进一步增加底 物浓度,就可能发生一种基质抑制区,表现为迟滞期延 长,比生长速率下降,菌体得率下降。对某些常用营养 的极限指标是铵盐5g/L,磷酸盐10g/L,NaCl10g/L至 20g/L,乙醇100g/L,葡萄糖100g/L。

酵母工程菌细胞高密度发酵的研究进展

酵母工程菌细胞高密度发酵的研究进展

酵母工程菌细胞高密度发酵的研究进展用分子生物学技术将编码外源蛋白或多肽的基因引入酵母菌,构建重组酵母工程菌表达抗原或细胞因子等,用于制备相应的生物制品,是研究开发新生物制品的重要趋势之一。

20世纪80年代,默克和史克公司用重组酿酒酵母菌(Saccharomyces cere -visiae )表达的乙型肝炎表面抗原(HBsAg )制备乙型肝炎疫苗,是最早用重组酵母制备生物制品的成功范例。

现已用重组酵母工程菌制备乙型肝炎疫苗、HPV 疫苗、人血清白蛋白(HSA )和细胞因子;近年来,用重组酵母工程菌,特别是甲醇营养型酵母工程菌高效表达外源蛋白或多肽已成为相关研究的热点之一。

用甲醇营养型酵母,主要是汉逊酵母(Hanse-nula polymorpha )和毕赤酵母(Pichia postoris )已实现了HBsAg 、HPV -VLP 、戊型肝炎病毒(HEV )ORF2、sHSA 、水蛭素及多种细胞因子等的高表达。

由于装备技术与成本的限制及生物制品生产中对制品批次质量控制要求的综合考虑等,用于酵母工程菌培养的生产发酵罐容积一般小于1000L (葛兰素维康制备乙型肝炎疫苗的发酵罐容积为1500L )。

在保持外源蛋白或多肽表达水平不降低的前提下,在容积有限的发酵罐中实现酵母工程菌的高密度发酵,是维持制品生产规模和控制成本的重要技术途径。

影响酵母细胞高密度发酵的主要因素有工程菌本身的生物学特性和发酵工艺特点、培养基种类与配方、发酵罐的结构和性能、发酵过程各项重要工艺参数或变量的控制等。

重要工艺参数或变量包括溶氧、pH 值、温度、培养基营养成分补料、压力、搅拌转速、通气流量、CO 2、有害代谢产物积累和发酵液流变学性质等。

培养基中甲醇含量、其消耗与补充流量的控制,是影响甲醇营养型酵母工程菌培养后期去阻遏和表达外源蛋白或多肽的表达效率的关键因素。

在确保工程菌表达产率不变和表达产物性质稳定的前提下,将众多因素及其相互影响整合优化为一项发酵工艺,实现酵母工程菌细胞的高密度发酵,是一项复杂的、综合性很强的研发工作;在实现酵母工程菌高密度发酵的同时,提高表达产物的产率和活性则更具挑战性,国内外学者及企业为实现上述目标进行了大量研究。

酵母菌的高密度发酵

酵母菌的高密度发酵
18g
5g
7g 0.56g 1000ml
总计 (用量)
1015g 99g 1.8g 72g 90g 24.5g 2.4g 7g 0.56g 1000ml 1.8ml
2013.5.23— 2013.5.26 上交课程设计说明书,并由指导老师填写评语和成绩。
任务下达日期:
2013 年 5 月 13 日
任务完成日期:
2013 年 5 月 26 日
指导教师(签名):
学生(签名):
酿酒酵母的高密度发酵
摘要:高密度培养酿酒酵母的生长状况,用上海联环生物工程设备有限公司的型号:
-1-
发酵液的流变学 接种量 生长抑制性物质
酿酒酵母发酵条件的确定: 接种量:3% 温度:30℃ PH:5.0 OD 溶解度:20%~80% 罐压:0.05Mpa CO2 溶解度:1%-3% 转速:300-400 调节 PH:氨水 补料时间:有待观察 通气量:100L/h
2.设计方案
2.1 酿酒酵母简介
15g/L,PH5.0. 发酵培养基:(NH4)2SO4 15g/L,KH2PO4 8.0g/L,MgSO4 3.0g/L,酵母膏 15g/L ,消泡剂
0.3ml/L,ZnSO4 0.4g/L. 流加培养基:KH2PO4 9.0g/L,MgSO4 2.5g/L,K2SO4 3.5g/L,Na2SO4 0.28g/L,葡萄糖 500g/L。 调节 PH 的氨水浓度:30%氨水
SGJ-10L 发酵罐,采用分批补料培养技术,维持葡萄糖的浓度处于一定浓度,并用分批 补加氮源,同时溶氧控制在 20%~80%。转速 300~400rpm。培养期间每隔 4h 测一次数据, 主要测量还原糖含量,氨基氮含量,菌体密度。
关键词:酿酒酵母 高密度培养 菌体浓度

酵母菌的高密度发酵

酵母菌的高密度发酵

课程设计说明书课程名称:发酵工程设计题目:酵母菌的高密度发酵院系:生物与食品工程学院学生姓名:吴亚非学号:201006040051专业班级:10 生物技术指导教师:马瑞霞2013年5月26日课程设计任务书设计题目酵母菌的高密度发酵学生姓名吴亚非所在院系生物与食品工程学院专业、年级、班10级生物技术设计要求:1、设计题目选择要求紧扣发酵工程相关教学内容和生产实际。

2、要充分查阅相关背景资料,了解相关内容的前沿进展及存在问题。

3、设计说明书应字迹清楚文字通顺,并附有各项设计成果表,摘引其他书籍或杂志的材料必须注明出处。

4、实验方案要切合实际,严密合理6、设计结束后,以个人为单位提交设计说明书一份(后附流程图)。

学生应完成的工作:1、在老师的指导下确定设计题目。

2、学生查阅相关文献和资料制定实验路线,并有指导老师检查实验路线的合理性和可操作性。

3、学生在实验室完成既定方案。

4、完成课程设计说明书的初稿,经过指导老师的帮助修改,最后定稿。

参考文献阅读:[1]李寅等著,高细胞密度发酵技术[M],化学工业出版社,2006-10-01,230-280[2]陈思如,萧熙佩酵母生物化学[M],济南:山东科学技术出版社,1990年[ 3 ] ( 日) 山根恒夫( 周斌译) , 生化反应工程( 第二版)[M] , 西安: 西安大学出版社, 1992: 243[4]Craig. T.B. and Trotter S G Intern. Symp. SCP. A lgiers A lgoria, O ct, 1983:17-20[5]陈洪章,李佐虎,酵母菌的高密度发酵[J],工业微生物,1998-28-1工作计划:2013.5.11分组并确认指导老师,在老师指导下查阅文献,确定题目。

2013.5.12----2013.5.13 进行理论试讲阶段,确定实验路线,然后确定实验方案。

2013.5.14----2013.5.17 进行实验操作和书写设计说明书。

发酵工程课程设计酵母菌高密度发酵

发酵工程课程设计酵母菌高密度发酵
在发酵工程中必须保持罐压为正压,如果 罐压为0或者负压,则会造成细胞的染菌, 甚至造成整罐发酵液的废气。罐压增高能 适度增加氧在发酵液中的溶解度,但二氧 化碳在水中的溶解度要比氧大30倍,溶解 过多的二氧化碳会造成细胞染菌,所以罐 压也不能太高。
我们选取的罐压为0.05Mpa.
CO2的影响
酵母生长过程中产生大量的CO2对细胞 具有直接的毒害作用,而且溶解于发酵 液中会导致pH值的下降。发酵液中的 CO2的溶解度达到7.04%就可抑制酵母 细胞的生长,高于4%则生长下降,一 般发酵液中的CO2的溶解度应控制在 1%~3%之间。
溶解氧(DO)的影响
DO是发酵工程中的一个关键限制因素,是高 细胞密度发酵过程中影响酵母生长的重要因 素之一。在高密度发酵的后期由于细胞密度 的扩增,耗氧量极大,发酵罐的各项物理参 数不能满足对氧的供给,造成DO下降,细胞 生长减慢。
溶解氧(DO)范围:40%<DO<60%.
增加发酵液中DO的方法
影响酵母高细胞密度发酵的因素
• 培养基的营养物质 • 溶解氧(DO) • 压力 • CO2 • 温度 • pH值 • 发酵液的流变学 • 接种量 • 生长抑制性物质
培养基的营养物质的影响
所需营养物质:水分、碳源物质、 氮源物质、无机元素、生长因子
培养基中的基质的种类和浓度直接影响到细胞的代 谢变化和产物的合成。在发酵前期,碳源和氮源的 浓度迅速下降,在中后期主要用于合成产物,其浓 度下降趋于平稳。碳源和氮源的比例偏小,会导致 细胞生长旺盛,提前衰老自溶;而其比例偏大,则 细胞繁殖数量少,代谢不平衡,不利于产物积累。
• 维生素:在1L溶液中含有维生素H0.05g, 泛酸钙1.0g,烟酸1.0g,肌醇25.0g,对氨基 苯甲酸0.2g,硫胺素1.0g,吡哆醇1.0g。

一种酿酒酵母高密度发酵培养的方法

一种酿酒酵母高密度发酵培养的方法

一种酿酒酵母高密度发酵培养的方法酿酒酵母是一种广泛应用的微生物,被用于生产啤酒、葡萄酒、烈性酒等多种酒类。

为了提高酒类的品质和产量,酵母的高密度发酵培养技术逐渐成为研究热点。

本文将介绍一种酿酒酵母高密度发酵培养的方法。

一、培养基选择培养基是酵母高密度发酵的基础,其成分和配比对发酵效果有着重要的影响。

以葡萄糖、酵母粉为基础配方,加入一定量的氮源、微量元素、维生素等成分,可制备出生长迅速的培养基。

二、罐内发酵方法罐内发酵又称低削减法发酵,是一种高效的酿酒酵母培养技术。

罐内发酵可以利用罐内喷射气体、调节罐体液位和控制酵母密度等手段,实现高密度的酵母发酵过程。

通常,罐体内的酵母密度可以达到10亿/mL以上。

酵母密度越高,发酵剂的产量也越大。

三、发酵过程控制为使酵母高密度发酵过程顺利进行,要对各项发酵参数进行严格控制,包括pH值、温度、氧气供应、液位等。

通常,发酵过程分为两个阶段:生长阶段和发酵期。

在生长阶段,必须控制适宜的温度和氧气供应,促进酵母的快速生长和繁殖。

在发酵期,需要控制pH值和酵母密度,调整发酵条件,使其符合酿酒工艺的要求。

四、灭菌处理培养过程中,为了杜绝污染和保证酿酒酵母的稳定性,必须对生产线上的设备、培养罐和培养基等进行严格的灭菌处理。

灭菌可以采用物理或化学方法,如高温蒸汽、紫外线照射、乙醛气体等,目的是消除微生物的污染。

总的来说,酿酒酵母高密度发酵培养技术是一项研究难度大、技术门槛高、操作复杂的技术,其成功与否与酵母菌株的选取、培养基的配制、罐内发酵的操作水平、发酵过程参数的调控等因素密不可分。

只有全面考虑各个环节的影响,才能实现高密度的酿酒酵母发酵过程,提高酿酒工艺的效率与品质。

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增加发酵液中DO的方法
1.提高机械搅拌速率 适当提高搅拌转速,增加气液接触面积,有利于 氧的传递,但搅拌速率过大会使发酵泡沫过多, 反而会导致DO降低。 2. 增大空气流量 空气流量的增大减小了氧传质工程中的气膜阻力, 有利于氧的传递吸收。但过大的流量会形成“过 载”现象,使大量发酵液蒸发,引起浓缩和粘度 上升。
啤酒酵母的高密度发酵
生物与食品工程学院 10级生物技术 发酵工程第六组
组员
• • • • • • • • • • 李向阳:201006040063 何启鹏:201006040062 李晓孟:201006040056 晋玉北:201006040057 韩文彦:201006040060 朱雪瑞:201006040061 尚玉攀:201006040059 崔文东:201006040066 王 迪:201006040067 彭云风:201006040058
微量元素配方和维生素配方
• 微量元素:在1L溶液中含有EDTA15g,
znso45.75g,Mncl20.32g,Cuso40.50g,C ocl20.47g,Na2MoO40.48g,Cacl22.9g,F eso42.8g,121℃湿热灭菌20min待用。
• 维生素:在1L溶液中含有维生素H0.05g, 泛酸钙1.0g,烟酸1.0g,肌醇25.0g,对氨基 苯甲酸0.2g,硫胺素1.0g,吡哆醇1.0g。
在高细胞密度发酵过程中,如果葡萄糖浓度 超过其一阈值,碳源供给量高于酵母所能同 化的速率,即使是在供氧充足的条件下也会 发生克拉布特里(Crabtree)效应而产生乙 醇,而糖的有氧氧化受到抑制,这是对发酵 不利的。所以要对营养物的配比进行优化
解决途径:在实际发酵中,基质 浓度和碳源氮源比例主要依靠流 加补料来实现和维持。(碳氮比、 流加量、流加频率)
种子培养基:蔗糖25g/L,尿素3g/L,KH2PO4 10g/L,MgSO4 2.5g/L,微量元素10 ml/L,维生素液 15ml/L,pH 5.0 发酵培养基:(NH4)2SO4 15g/L,KH2PO4 8.0g/L, MgSO4 3.0g/L,微量元素液 10 ml/L,消泡剂 0.3ml/L, ZnSO4 0.4g/L.
酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae) 是发酵工业最常用的菌种之一 在发酵中如果单方面提高发酵 液中的碳源含量,酵母菌就会 生成乙醇或乙酸,但其生物量 则有所下降;如果将碳源保持 在最低水平,就会限制酵母的 生长。而利用分批补料发酵的 方式,既可以满足高密度 发酵 时酵母细胞对营养源的大量需 求,又能减少生长抑制物质的 产生。
培养基配制注意事项
1.碳源与氮源分开灭菌,防止“美 拉德反应”产生有毒物质抑制菌体 生长; 2.蔗糖要单独灭菌后加入,尿素和 维生素液通过微孔滤膜过滤除菌后 加入; 3.为防止焦糖化反应,将碳水化合 物pH调至低于4.0灭菌
溶解氧(DO)的影响
DO是发酵工程中的一个关键限制因素,是高 细胞密度发酵过程中影响酵母生长的重要因 素之一。在高密度发酵的后期由于细胞密度 的扩增,耗氧量极大,发酵罐的各项物理参 数不能满足对氧的供给,造成DO下降,细胞 生长减慢。 溶解氧(DO)范围:40%<DO<60%.
影响酵母高细胞密度发酵的因素
• • • • • • • • • 培养基的营养物质 溶解氧(DO) 压力 CO2 温度 pH值 发酵液的流变学 接种量 生长抑制性物质
培养基的营养物质的影响
所需营养物质:水分、碳源物质、 氮源物质、无机元素、生长因子
培养基中的基质的种类和浓度直接影响到细胞的代 谢变化和产物的合成。在发酵前期,碳源和氮源的 浓度迅速下降,在中后期主要用于合成产物,其浓 度下降趋于平稳。碳源和氮源的比例偏小,会导致 细胞生长旺盛,提前衰老自溶;而其比例偏大,则 细胞繁殖数量少,代谢不平衡,不利于产物积累。
压力的影响
在发酵工程中必须保持罐压为正压,如果 罐压为0或者负压,则会造成细胞的染菌, 甚至造成整罐发酵液的废气。罐压增高能 适度增加氧在发酵液中的溶解度,但二氧 化碳在水中的溶解度要比氧大30倍,溶解 过多的二氧化碳会造成细胞染菌,所以罐 压也不能太高。 我们选取的罐压为0.05Mpa.
CO2的影响
过程控制途径:培养基设计、反应器的 设计和选择、发酵控制策略等
酵母菌的高细胞密度发酵
酵母的高密度发酵是一个相对的概念,一 般指发酵液中的酵母细胞浓度在100g/L以 上。 酵母属大约包括40种,每个种都能通过出芽产 生球状或椭圆状的细胞。 酵母菌是一种兼性厌氧菌,当酵母在低浓度的 葡萄糖中进行好氧生长时,它能把葡萄糖分解 成二氧化碳和水。当酵母在厌氧条件下生长时, 葡萄糖主要生成乙醇和二氧化碳。
生产条件总汇
• • • • • • • • • • 接种量:10% 温度:30℃ PH:5.0 DO溶解度:40%~60% 罐压:0.05Mpa CO2溶解度:1%~3% 转速:300rpm~600rpm 调节PH:氨水或者硫酸铵 补料时间:有待观察(2~4h左右) 通气量:50~100L/h
培养基汇总
我们用的培养基类型
种子培养基:蔗糖25g/L,尿素3g/L,KH2PO4 10g/L,MgSO4 2.5g/L,微量元素10 ml/L,维生素液 15ml/L,pH 5.0(供发酵前菌体大量生长繁殖) 发酵培养基:(NH4)2SO4 15g/L,KH2PO4 8.0g/L, MgSO4 3.0g/L,微量元素液 10 ml/L,消泡剂 0.3ml/L, ZnSO4 0.4g/L. 流加培养基:KH2PO4 9.0g/L,MgSO4 2.5g/L,K2SO4 3.5g/L,NaSO4 0.28g/L,蔗糖500g/L(流加补料,用于 维持高比生长速率或者高产物生产速率)
接种量的影响
• 接种量是指移入的种子液和培养液体 积的比例,它的大小决定了菌种在发 酵罐中的生长速度。过多过少都不好, 在一定范围内增加接种量有利于菌体 的生长。因此,接种应根据实际情况 确定接种量。
在常见的小型发酵罐中接种量范围在 5%~10%。我们取最大接种量10%
后期补料量及参数
• 发酵开始是为分 批发酵,当作为 碳源的蔗糖耗尽 后,表现为DO的 突然升高和CO2 产生量、O2消耗 量的突然上升, 这时开始流加培 养。
流加培养基:KH2PO4 9.0g/L,MgSO4 2.5g/L,K2SO4 3.5g/L,NaSO4 0.28g/L,蔗糖500g/L
• 微量元素:在1L溶液中含有EDTA15g,
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
znso45.75g, Mncl20.32g,Cuso40.50g,Cocl20.47g,N a2MoO40.48g,Cacl22.9g,Feso42.8g,12 1℃湿热灭菌20min待用。
酵母生长过程中产生大量的CO2对细胞 具有直接的毒害作用,而且溶解于发酵 液中会导致pH值的下降。发酵液中的 CO2的溶解度达到7.04%就可抑制酵母 细胞的生长,高于4%则生长下降,一 般发酵液中的CO2的溶解度应控制在 1%~3%之间。
pH值的影响
在发酵过程中,pH值的变化取决于所用的菌种、 培养基和培养条件。如果pH值的波动导致其偏理 了细胞所需的最适范围,将会引起各种酶活力的 改变,影响细胞代谢。酵母细胞利用酵母细胞利 用葡萄糖产酸产气,发酵时产生的有机酸(主要 是乙酸)可导致发酵液的pH值降低。另外细胞释 放的CO2也会导致pH的降低。 啤酒酵母的最适PH4.5~5.0.我们发酵用PH=5.0 调节PH用氨水或者硫酸铵,可以视情况随同补料一 块添加
高细胞密度发酵 (high cell density fermentation,HCDF)
高细胞密度发酵是一个相对的概念,一般 指发酵液中细胞浓度在30g/L以上。但是对 于一些极端微生物或自养微生物,细胞浓 度如果达到1g/L也算比较高的细胞密度。
影响因素:培养基、接种量、生长抑制性物质、 溶解氧浓度、温度、pH等
• 维生素:在1L溶液中含有维生素H0.05g, 泛酸钙1.0g,烟酸1.0g,肌醇25.0g,对氨基 苯甲酸0.2g,硫胺素1.0g,吡哆醇1.0g。
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