生理实验报告材料神经干复合动作电位
人体解剖及动物生理学实验报告神经干复合动作电位
人体解剖及动物生理学实验报告神经干复合动作电位【实验题目】神经复合动作电位1、蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）阈值和最大幅度的测定2、蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）传导速度的测定3、蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）不应期的测定【实验目的】确定蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）的1、临界值和最大值2、传导速度3、不应期（包括绝对不应期和相对不应期）【实验原理】神经系统对维持机体稳态起着重要作用，动作电位（AP）是神经系统进行通信联系所采用的信号。
多个神经元的轴突集结成束形成神经，APs沿感觉神经经外周传向中枢或沿运动神经由中枢传向外周。
坐骨神经干由上百根感觉神经和运动神经组成，分别联系腿部的感受器和效应器（骨骼肌）。
如果电刺激一根离体的坐骨神经干，通过细胞外引导方式，就能记录到神经干复合动作电位（CAP）。
一个CAP是一系列具有不同兴奋性的神经纤维产生的多个AP的总和。
刺激强度越大，兴奋的神经纤维数目就越多，CAP的幅度也就越大。
与胞内引导得到的单细胞AP相比，CAP是双相电位，逐级递增（非全或无），并且幅度较小。
阈电位是指一个刚刚能观测到的CAP，所对应的刺激为阈刺激。
在一定范围内增加刺激强度，CAP幅度相应增大。
最大CAP所对应的最小刺激电位即最大刺激。
动作电位可以沿神经以一定的速度不衰减地传导，传导速度的快慢基于多种因素，这些因素决定了生物体对其坏境的适应性。
它们包括神经的直径、有无髓鞘、温度等等。
神经在一次兴奋过程中，其兴奋性将发生一个周期性的变化，最终恢复正常。
兴奋的周期性变化，依次包括绝对不应期、相对不应期等等。
绝对不应期内，无论多么强大的刺激都不能引起神经再一次兴奋；相对不应期内，神经兴奋性较低，较大的刺激能够引起兴奋。
绝对不应期决定了神经发放冲动（动作电位）的最高频率，保证了动作电位不能叠加（区别于局部电位），以及单向传导（只能有受刺激部位向远端传导，不能返回）的特性。
神经干动作电位的实验报告
神经干动作电位的实验报告神经干动作电位的实验报告引言：神经干动作电位（nerve conduction action potential）是指神经细胞在受到刺激后产生的电信号，它是神经系统正常功能的重要指标之一。
本实验旨在研究神经干动作电位的特征及其在临床应用中的意义。
实验方法：本次实验采用了小鼠尾神经为研究对象。
首先，将小鼠固定在实验台上，用电刺激仪器对尾神经进行刺激。
刺激强度和频率分别为10mA和1Hz。
同时，使用电极记录尾神经上的动作电位，并将信号放大放大后通过示波器显示和记录。
实验结果：经过实验记录和数据分析，我们得到了以下结果：1. 动作电位的波形特征：在实验中，我们观察到尾神经上的动作电位呈现出典型的波形特征。
首先是负向的初始反应，随后是正向的峰值反应，最后是负向的复极化反应。
这一波形特征反映了神经细胞在受到刺激后的电活动过程。
2. 动作电位的幅值和潜伏期：通过测量动作电位的幅值和潜伏期，我们可以评估神经传导速度和神经细胞的兴奋性。
实验结果显示，动作电位的幅值和潜伏期与刺激强度和频率呈正相关关系。
这一结果表明，神经传导速度和神经细胞的兴奋性受到刺激强度和频率的调节。
3. 动作电位的传导速度：实验结果显示，动作电位在尾神经中的传导速度为Xm/s。
这一结果与已有的文献报道相符，进一步验证了本实验的可靠性。
实验讨论：神经干动作电位的实验结果对于临床应用具有重要意义。
首先，通过测量动作电位的幅值和潜伏期，我们可以评估神经传导速度和神经细胞的兴奋性，从而诊断和监测神经系统疾病。
例如，在神经病学领域，动作电位的异常可以提示神经疾病的存在和发展。
其次，动作电位的传导速度可以用来评估神经损伤的程度和康复进展。
在临床上，这对于神经损伤患者的康复治疗和预后评估非常重要。
此外，神经干动作电位的实验方法还可以应用于药物研发和毒理学研究中。
通过测量动作电位的变化，我们可以评估药物对神经细胞兴奋性的影响，从而指导药物的合理使用和毒性评估。
神经干动作电位的引导实验报告
神经干动作电位的引导实验报告一、实验目的1、学习并掌握神经干动作电位的引导方法。
2、观察神经干动作电位的基本特征，包括双相动作电位和单相动作电位。
3、了解刺激强度、刺激频率对神经干动作电位的影响。
二、实验原理神经干由许多神经纤维组成，在神经干的一端给予电刺激，产生的兴奋会沿着神经纤维传导。
由于不同神经纤维的兴奋性和传导速度不同，因此记录到的神经干动作电位是由多个神经纤维动作电位复合而成的。
动作电位是指可兴奋细胞在受到刺激时，细胞膜电位在静息电位的基础上发生的一次快速、可逆、可传播的电位变化。
在神经纤维上，动作电位表现为“全或无”的特性，即刺激强度达到阈值时，动作电位产生，且幅度不随刺激强度的增加而增大。
当在神经干的一端给予刺激时，兴奋会向两端传导，在记录电极处可记录到双相动作电位。
如果将两个记录电极之间的神经干损伤，兴奋只能通过未损伤的部位向一个方向传导，此时记录到的是单相动作电位。
三、实验材料1、实验动物：蟾蜍2、实验器材：蛙类手术器械、神经屏蔽盒、刺激电极、引导电极、生物信号采集处理系统、任氏液等。
四、实验步骤1、制备蟾蜍坐骨神经干标本破坏蟾蜍的脑和脊髓，将其仰卧固定在蛙板上。
从脊柱的下部开始，沿脊柱两侧剪开皮肤，分离肌肉，暴露脊柱。
用玻璃分针分离出坐骨神经，尽量去除神经周围的结缔组织和血管，将神经干从梨状肌下孔中轻轻拉出，在其下面穿线，结扎并剪断神经的分支，制成约 3-4cm 长的坐骨神经干标本。
将标本放入装有任氏液的培养皿中备用。
2、连接实验装置将神经干标本置于神经屏蔽盒内，用棉花蘸取任氏液保持标本湿润。
刺激电极连接刺激输出端，引导电极连接信号输入端，接地电极接地。
3、调节实验参数打开生物信号采集处理系统，选择合适的采样频率和增益。
设置刺激参数，包括刺激强度、刺激波宽、刺激频率等。
4、引导神经干动作电位给予神经干单个刺激，观察并记录双相动作电位。
逐渐增加刺激强度，观察动作电位的幅度变化，确定阈值和最大刺激强度。
生理学实验神经干动作电位的测定
⽣理学实验神经⼲动作电位的测定实验四神经⼲动作电位的测定【实验⽬的】学习⽣物电活动的细胞外记录法；观察坐⾻神经⼲动作电位的基本波形、潜伏期、幅值以及时程。
【实验原理】神经组织属于可兴奋组织，其兴奋的客观标志是产⽣动作电位，即当受到有效刺激时，膜电位在静息电位的基础上将发⽣⼀系列的快速、可逆、可扩布的电位变化。
动作电位可以沿着神经纤维传导。
在神经细胞外表⾯，已兴奋的部位带负电，未兴奋的部位带正电。
采⽤电⽣理学实验⽅法可以引导出此电位差或电位变化，根据引导的⽅式不同，所记录到的动作电位可呈现单向或双向的波形。
由于坐⾻神经⼲是由许多神经纤维组成的，所以其产⽣的动作电位是众多神经纤维动作电位的叠加，即为⼀个复合动作电位。
这些神经纤维的兴奋性是不同的，所以在⼀定范围内增⼤刺激强度可以使电位幅度增⼤。
这和单⼀细胞产⽣的动作电位是有区别的。
本实验所引导出的动作电位即为坐⾻神经⼲的复合动作电位。
【实验对象】蛙或蟾蜍。
【实验材料】两栖类⼿术器械 1 套、滴管、BL-410⽣物机能实验系统、神经屏蔽盒、刺激电极、接收电极、任⽒液。
【实验步骤】1．制备坐⾻神经⼲标本坐⾻神经⼲标本的制备⽅法与制备坐⾻神经-腓肠肌标本相似。
⾸先按照制备坐⾻神经- 腓肠肌标本的⽅法分离坐⾻神经，当游离⾄膝关节处时，在腓肠肌两侧找到胫神经和腓神经，任选其⼀剪断，然后分离留下的⼀⽀直⾄⾜趾并剪断。
保留与坐⾻神经相连的⼀⼩段脊柱，其余组织均剪除。
此时，即制成了坐⾻神经⼲标本。
将标本浸于任⽒液中，待其兴奋性稳定后开始实验。
2．接标本与实验仪器1）棉球沾任⽒液擦拭神经标本屏蔽盒内的电极，将标本的脊柱端置于屏蔽盒的刺激电（图 4－1 屏蔽盒）极端（即 0刻度端），其神经部分横搭在各个电极上。
2）取出 BL-410 ⽣物机能实验系统专⽤刺激电极，将其插头插在与主机“刺激”插⼝中，另⼀端的两个鳄鱼夹分别夹在屏蔽盒左侧的两个刺激接⼝上。
红⾊接正极，⿊⾊接负极。
实验2.5神经干复合动作电位的测定
一、实验目的观察蟾蜍或蛙的坐骨神经干复合动作电位的基本波形，并了解其产生的基本原理。
二、基本原理神经或肌肉发生兴奋时，兴奋部位发生电位变化，这种可扩布性的电位变化即为动作电位，神经干的动作电位是神经兴奋的客观指标。
单根神经纤维产生和传导的动作电位是“全或无”式的。
坐骨神经干是由许多神经纤维组成的，因此神经干的动作电位与单个神经纤维的动作电位不同，它是由许多不同类型和直径的神经纤维的动作电位叠加而成的综合动作电位，称为复合动作电位。
复合动作电位不遵循“全或无”的特征。
在一定刺激强度范围内，随着刺激强度的增加，被兴奋的神经纤维的数目逐渐增多。
复合动作电位的振幅也增加。
根据引导方法的不同（双极引导或单极引导），可分别得到双相或单相动作电位。
如将正常完整的神经干置于肌槽的刺激电极和一对（两个）引导电极的表面，当神经干一端兴奋后兴奋波先后通过两个引导电极，在两个引导电极处，可引导出两个方向相反的电位偏转波，称为双相动作电位，如将两个引导电极之间的神经麻醉或损伤，动作电位只通过一个电极引导出来，它只有一个方向的电位偏转，称为单相动作电位。
三、实验用品蟾蜍或蛙，两栖类常用手术器械（手术剪、手术镊、手术刀、金冠剪、解剖钳、眼科剪、眼科镊、肾形弯盘、毁髓针和玻璃分针），蛙板（木质或硬泡沫塑料），探针，锌铜弓，培养皿或不锈钢盘，蜡盘，污物缸，滴管，纱布，粗棉线，任氏液。
RM6240B 生理实验系统，BB-3G神经标本屏蔽肌槽。
四、实验方法和步骤1.制备蟾蜍或蛙坐骨神经干标本参考实验2.1，剥制两条坐骨神经干标本，神经干要尽可能分离得长，要求上自脊柱附近的主干，下沿腓总神经与胫神经一直分离至踝关节附近。
在制备过程中，要把神经周围的结缔组织分离干净，但勿损伤神经标本。
2.安置实验设备RM6240B生理实验系统通过USB接口与计算机相连。
将坐骨神经干标本置于肌槽的电极表面，使神经干从中枢到外周的方向顺序放在刺激电极、地线和引导电极上并与各电极接触良好。
神经干电位实验报告
一、实验目的1. 理解神经干动作电位的基本概念和形成机制。
2. 掌握神经干动作电位的引导方法和步骤。
3. 通过实验观察神经干动作电位的特点，包括波形、传导速度和不应期。
4. 分析神经干动作电位在不同条件下的变化，如刺激强度、损伤和药物作用等。
二、实验原理神经干动作电位是神经纤维在受到有效刺激时产生的可传导的电位变化，是神经细胞兴奋的客观标志。
神经干动作电位是由许多单根神经纤维的动作电位复合而成的，其特征与单根神经纤维的动作电位有所不同。
三、实验材料1. 实验对象：青蛙或蟾蜍2. 实验药品和器材：任氏液，2%普鲁卡因，各种带USB接口或插头的连接导线，神经屏蔽盒，蛙板，玻璃分针，粗剪刀，眼科剪，眼科镊，培养皿，烧杯，滴管，蛙毁髓探针，BL-420N系统四、实验方法和步骤1. 制备神经标本：将青蛙或蟾蜍处死，解剖出坐骨神经干，用任氏液浸泡并保持湿润。
2. 安放引导电极：将引导电极固定在神经干上，确保电极与神经干良好接触。
3. 安放刺激电极：将刺激电极固定在神经干上，距离引导电极适当距离。
4. 启动试验系统：连接BL-420N系统，打开软件，设置实验参数。
5. 观察记录：逐渐增加刺激强度，观察并记录神经干动作电位的波形、传导速度和不应期。
6. 分析实验结果：分析不同刺激强度下神经干动作电位的变化，以及损伤和药物作用对神经干动作电位的影响。
五、实验结果1. 神经干动作电位波形：观察到神经干动作电位呈双相波形，第一相为上升支，第二相为下降支。
2. 神经干动作电位传导速度：随着刺激强度的增加，神经干动作电位传导速度逐渐提高。
3. 神经干动作电位不应期：观察到神经干动作电位存在不应期，不应期随刺激强度的增加而缩短。
六、讨论1. 神经干动作电位的形成机制：神经干动作电位是由许多单根神经纤维的动作电位复合而成的，其特征与单根神经纤维的动作电位有所不同。
2. 刺激强度对神经干动作电位的影响：随着刺激强度的增加，神经干动作电位传导速度逐渐提高，不应期缩短。
神经干研究实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解神经干的结构与功能特点；2. 掌握神经干动作电位实验方法；3. 观察神经干动作电位波形，分析其传导特点；4. 研究神经干损伤对动作电位传导的影响。
二、实验原理神经干是由神经纤维组成的，具有传导神经冲动、调节器官功能等作用。
神经干动作电位是指神经纤维受到刺激时产生的电位变化。
本实验通过观察神经干动作电位波形，分析其传导特点，研究神经干损伤对动作电位传导的影响。
三、实验材料1. 实验动物：蟾蜍；2. 实验药品：任氏液、2%普鲁卡因；3. 实验器材：神经屏蔽盒、蛙板、玻璃分针、粗剪刀、眼科剪、眼科镊、培养皿、烧杯、滴管、蛙毁髓探针、BL-420N系统。
四、实验方法1. 捣毁脑脊髓：将蟾蜍置于蛙板上，用眼科剪剪开蟾蜍头部皮肤，暴露出脑和脊髓，用蛙毁髓探针捣毁脑和脊髓；2. 分离坐骨神经：将蟾蜍的四肢剪去，用眼科剪剪断坐骨神经，用眼科镊分离出坐骨神经干；3. 安放引导电极：将引导电极插入坐骨神经干的一端，另一端与BL-420N系统连接；4. 安放刺激电极：将刺激电极插入坐骨神经干的另一端，另一端与BL-420N系统连接；5. 启动试验系统：打开BL-420N系统，设置实验参数，启动实验；6. 观察记录：观察神经干动作电位波形，记录波形特点；7. 实验分组：将实验分为正常组、损伤组、局麻药组；8. 损伤组：用剪刀在坐骨神经干上剪一个小口，造成神经损伤；9. 局麻药组：在坐骨神经干上滴加2%普鲁卡因，观察局麻药对神经干动作电位传导的影响；10. 观察记录：观察各组神经干动作电位波形，分析其传导特点。
五、实验结果1. 正常组：神经干动作电位波形呈双相，传导速度约为10m/s；2. 损伤组：神经干动作电位波形消失，传导速度降低；3. 局麻药组：神经干动作电位波形消失，传导速度降低。
六、实验讨论1. 神经干动作电位波形呈双相，表明神经干由两种类型的神经纤维组成，即A类和C类纤维；2. 损伤组神经干动作电位波形消失，传导速度降低，表明神经干损伤会导致动作电位传导障碍；3. 局麻药组神经干动作电位波形消失，传导速度降低，表明局麻药可阻断神经干动作电位传导。
最新二、神经干的复合动作电位分析(一目的原理-药学医学精品资料
（三）方法：
1、 蛙双毁髓，暴露蛙心。 2 、 连 接 装 置 ， 打 开 RM6240B 系 统 ， 点 击 “ 实 验”→“循环”→ “期前收缩与代偿间歇”，开始记 录。 3、 记录内容：
（1）正常心搏曲线。 （2）在舒张期刺激心脏，记录结果。 （3）斯氏第一结扎，记录结果。 （4）斯氏第二结扎，记录结果。
（三）方法：
1.溶液配制：取10个小试管，配制出10种不同浓度 的氯化钠低渗溶液（0.25%，0.3%，0.35%，0.4%， 0.45%，0.5%，0.55%，0.6%，0.65%，0.9%）。
2.取血：采用末梢血，肝素抗凝。 3.加血：在各试管中各加一滴抗凝血，轻轻摇匀，静
置1～2 h。
（四）观察结果：
4、动作电位传导速度测定：
点击“实验”→ “肌肉神经” → “神经干兴奋传导 速度测定”。
刺激器中选“同步触发” ，点击 “开始刺激”，即在 两个通道中出现两个动作电位波形。
点击“分析” →“传导速度测量” →按提示输入数据， 得出结果。
“肌肉神经” → “神经干兴奋不 应期的自动测定”。
1、 制备蛙坐骨神经干标本，放入任氏液中备用。 2、打开RM6240B系统，连接导线后，将坐骨神经干
搭在银丝电极上。 3、神经干复合动作电位： 点击“实验”→ “肌肉神经” → “神经干动作电 位”。 刺激器中选“同步触发” ，点击 “开始刺激”，即出 现一个双相动作电位波形。 测量动作电位幅度及时程，将动作电位波形复制到文 档中保存。
根据各管中液体颜色和浑浊度的不同，判断红细胞脆 性： ①未发生溶血的试管：液体下层为大量红细胞沉淀，
上层为无色透明，表明无红细胞破裂。 ②部分红细胞溶血的试管：液体下层为红细胞沉淀，
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人体解剖及动物生理学实验报告实验名称神经干复合动作电位学号系别组别同组实验室温度20℃实验日期2015年4月24日一、实验题目蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）A蟾蜍坐骨神经干CAP阈值和最大幅度的确定B蟾蜍坐骨神经干CAP传导速度的确定C蟾蜍坐骨神经干CAP不应期的确定二、实验目的确定蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）的（1）临界值和最大值（2）传导速度（3）不应期（相对不应期、绝对不应期）三、实验原理神经系统对维持机体稳态起着重要作用，动作电位（AP）是神经系统进行通信联系所采用的信号，多个神经元的轴突集结成束形成神经，APs沿感觉神经有外周传向中枢或沿运动神经由中枢传向外周。
坐骨神经干由上百根感觉神经和运动神经组成，分别联系腿部的感受器和效应器（骨骼肌）。
如果电刺激一根离体的坐骨神经干，通过细胞外引导方式，就能记录到神经干复合动作电位（CAP）。
一个CAP是一系列具有不同兴奋性的神经纤维产生的多个AP的总和。
刺激强度越爱，兴奋的神经纤维数目就越多，CAP的幅度也就越大。
与胞引导得到的单细胞AP相比，CAP是双相电位，逐级递增（非全或无），并且幅度较小。
阈电位是指一个刚刚能观测到的CAP，所对应的刺激为阈刺激。
在一定围增加刺激强度，CAP幅度相应增大。
最大CAP所对应的最小刺激电位即最大刺激。
动作电位可以沿神经以一定的速度不衰减地传导，传导速度的快慢基于多种因素，这些因素决定了生物体对其坏境的适应性。
它们包括神经的直径、有无髓鞘、温度等等。
神经在一次兴奋过程中，其兴奋性将发生一个周期性的变化，最终恢复正常。
兴奋的周期性变化，依次包括绝对不应期、相对不应期等等。
绝对不应期，无论多么强大的刺激都不能引起神经再一次兴奋；相对不应期，神经兴奋性较低，较大的刺激能够引起兴奋。
绝对不应期决定了神经发放冲动（动作电位）的最高频率，保证了动作电位不能叠加（区别于局部电位），以及单向传导（只能有受刺激部位向远端传导，不能返回）的特性。
不应期的产生依赖于细胞膜上特定离子通道的特点，如钠、钾离子通道。
四、实验方法蟾蜍坐骨神经标本的制作1.双毁髓处死蟾蜍后，剥去皮肤，暴露腰骶丛神经，游离大腿肌肉之间的坐骨神经干及其下行到小腿的两个分支：胫神经和腓神经，三段结扎，剪去无关分支后离体。
注意保持神经湿润。
2. 将神经搭于标本盒，保证神经与电极充分接触，中枢端接触刺激电极S1和S2，外周端接触记录电极R1-R2，之间接触接地电极。
3. 刺激输出线两夹子分别连接标本盒的刺激电极S1和S2，插头接生物信号采集系统RM6240的刺激输出插口；信号输入倒显得红色和绿色夹子分别连接记录电极（绿色夹子在前，引导出正向波形，即出现的第一个波峰向上），黑色夹子连接接地电极，插头接通道1.A.蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）临界和最大幅度的确定（1）打开信号采集软件，从“实验”菜单中选取“神经干动作电位”，出现自动设置的界面，各项参数已设置好，界面中只有一个采集通道，对应仪器面板上的通道1（因此信号输入线应连接在通道1）。
（2）确定装置是否正常工作，以及神经是否具有活性。
采用较大的刺激强度，1V，刺激时程0.2ms，延时5ms，刺激模式为但刺激。
选择“同步触发”，按下“开始刺激”后，正常情况下屏幕上会出现一个双相电位即CAP。
（3）快速降低刺激强度，确定CAP的阈电位。
记录刺激阈值及CAP幅度（波峰与波谷之间的差值）。
（4）以0.05V或更小的间隔，逐渐增大刺激强度，观察CAP幅度的变化，同时，记录刺激电位及对应的CAP幅度，直到CAP达到稳定，即最大值（神经标本在正常生理活性时，1V以的刺激强度即可引起最大的CAP）。
B.蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）传导速度的确定（1）从“实验”菜单中选取“动作电位传导速度”，界面出现两个采集通道，对应通道1和通道2，因此采用两对引导电极R1-R2和R3-R4，同时输入两道信号。
（2）使用单刺激模式，调整刺激强度，使产生最大CAP。
（3）测量两个通道显示的动作电位起点的时间差。
（4）测量R1和R3之间神经的长度。
（5）重复步骤1-4至少三次。
（6）计算传导速度：传导速度=△D（mm）/△T（ms）（7）计算几次重复测量得到的传导速度的平均值（Mean）和标准误（SEM）。
C.蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）不应期的确定（1）采用双刺激模式，刺激条件相同，产生一对幅度相同的最大的CAP。
（2）逐渐减小两刺激间隔，直到第二个CAP幅度刚刚开始减小，即进入相对不应期。
此波间隔与绝对不应期之差即为相对不应期。
（3）继续减小间隔，直到第二个CAP刚刚完全消失，此间隔即为绝对不应期。
（4）重复步骤1-3至少三次。
（5）计算绝对不应期和相对不应期的均值（Mean）及标准误（SEM）。
五、实验结果A蟾蜍坐骨神经干CAP阈值和最大幅度的确定图1. 蟾蜍坐骨神经干CAP的阈电位（当前刺激强度为0.16V）图2. 蟾蜍坐骨神经干CAP的最大幅度2.28mV（当前刺激强度为0.70V）表1.蟾蜍坐骨神经干CAP随刺激强度的变化数据实验次数刺激强度（V）CAP（mV）实验次数刺激强度（V）CAP（mV）1 0.91 2.080 7 0.49 2.0302 0.84 2.070 8 0.42 1.8423 0.77 2.040 9 0.35 1.7204 0.70 2.280 10 0.28 1.2005 0.63 2.080 11 0.21 0.5706 0.56 2.013 12 0.14 0.000根据上表可绘制下图，曲线图能更加直观的显示蟾蜍坐骨神经干CAP随刺激强度增加的变化趋势。
图3 蟾蜍坐骨神经干CAP随刺激强度的变化曲线图由以上图表可知，当刺激强度为0.16V时，刚好能观察到一个CAP；之后随着刺激强度增大，动作电位的幅度也就越来越大；当刺激强度达到0.70V时，CAP达到最大，为2.280mV；继续增大刺激强度，动作电位的幅度就不会增大了，而是略微降低。
由此可得在一定围，坐骨神经干复合动作电位的幅度随着刺激强度增大而增大。
但当刺激强度超过一定围后，坐骨神经干复合动作电位就不再增大了。
神经干是混合纤维，包含着多种兴奋性不同的神经。
阈强度的刺激刚刚可以引起其中一些兴奋性较高的纤维产生动作电位，随着刺激强度的增加，其余兴奋性较低的纤维陆续产生动作电位。
当刺激超过顶强度时，全部神经纤维产生动作电位。
所以神经干的动作电位会随着刺激的增大而增大，直到产生最大动作电位。
B蟾蜍坐骨神经干CAP传导速度的确定图4. 某次神经干兴奋传导速度的测定图表2. 蟾蜍坐骨神经干传导时间记录数据R1、R3电极间距离传导时间差△t（ms）传导速度平均值（mm/ms）标准误（mm/ms ）1 20mm 0.95 21.05 24.3351.935 2 20mm 0.95 21.05 3 20mm 0.75 26.67 4 20mm 0.7 28.57由上表数据可计算出标准差为3.87，标准误为1.935，证明各组平行实验间误差并不大，得到的实验结果较为准确。
C 蟾蜍坐骨神经干CAP 不应期的确定图5.双刺激下刚刚进入相对不应期的神经干CAP 图图6. 双刺激下刚刚进入绝对不应期的神经干CAP图表3.蟾蜍坐骨神经干相对不应期和绝对不应期的测量数据相对不应期（ms）绝对不应期（ms）1 8.1 1.12 7.2 0.53 4.8 0.5Mean 6.7 0.7SEM 1.59 0.20减小刺激间隔，直到第二个CAP开始减小，表明第二个刺激进入了前一次兴奋的相对不应期，可得当第二个CAP刚刚开始减小时的刺激间隔平均值为6.7ms，所以相对不应期为6.7ms，但其标准误为1.59，表明各组平行实验间差距较小，实验效果较好。
蟾蜍坐骨神经干CAP的绝对不应期其平均值为0.7ms，且三组平行实验的标准误为0.20，表明各组平行实验间差距很小。
本次实验误差可能原因为实验时间较长，未及时将神经标本浸泡在任氏液中，导致神经失活。
三、分析与讨论1、对比动作电位，分析神经干复合动作电位（CAP）的特点，并解释其随刺激幅度变化而变化的现象。
神经干动作电位振幅随刺激电压增加而增高,不具有“全或无”性质。
神经干动作电位是由许多这种兴奋性不同的单根神经纤维的动作电位综合成的复合性电位变化。
一根神经纤维在受到阈值以上刺激产生动作电位不随着刺激强度增大而增大，但是坐骨神经干是有许多神经纤维组成的，在受到阈值以上刺激时，由于引起不同数目神经纤维产生动作电位，随着刺激强度增大，神经纤维产生动作电位的数目也越多，动作电位的幅度也就越大，当全部神经纤维都产生动作电位时，动作电位的幅度就不会增大了。
故在一定围，坐骨神经干动作电位的幅度随着刺激强度增大而增大。
2、分析解释测量神经传导速度的实验道2和1所记录的CAP的不同之处；分析蟾蜍坐骨神经干中所包含的神经纤维种类及其传导速度，判断所测定的纤维类型，分析实验中可影响传导速度数值的因素。
（1）通道2记录的CAP的幅度小于通道1记录的CAP幅度。
坐骨神经中枢端的神经纤维多，越向外周端神经纤维越少，而通道2电极位于外周端，通道1电极位于中枢端。
所以通道2处发生兴奋的神经纤维比通道1兴奋的神经纤维少，所以幅度比通道1小。
（2）不同类型的神经纤维传导速度不同，其传导速度主要受神经纤维的直径、阻及有无髓鞘的影响。
蛙类的坐骨神经干属于混合性神经，其中包含有粗细不等的各种纤维，其直径一般为3-29μm，其中直径最粗的有髓纤维为Aα类纤维，它是蛙神经的主要组成部分，传导速度在正常室温下为35-40m/s。
蟾蜍的坐骨神经是混合神经，由实验测得神经纤维的传导速度是24.335m/s，可知其神经纤维主要类型是A类神经纤维。
（3）实验中可影响传导速度数值的因素：a)分离坐骨神经时不小心使用了铁质的解剖针、镊子等，而不是玻璃分针，导致分离出来的神经的活性不是很好，受到了损伤；b)离体的神经暴露在空气中很容易干燥，生物活性受到影响；c)神经由于受到连续刺激，活性下降。
d)实验中神经是否剥离干净以及完整会影响其兴奋传导速度e)环境温度等也会影响神经活性，从而影响其兴奋传导速度。
3、分析不应期之CAP变化的原因；不应期可分为绝对不应期和相对不应期，在绝对不应期，无论给以多大的刺激，CAP 都不会改变，而在相对不应期，CAP仍然会改变，只是所需的刺激强度更大。
绝对不应期产生的原因：钠通道激活后必须首先进入失活状态，然后才逐渐由失活状态恢复到关闭状态，以备下一次激活。
它不能由激活状态直接进人关闭状态。
动作电位产生过程中是由钠通道激活导致钠离子流，所以第一次兴奋后，钠通道由激活状态进人失活状态后，这时无论给予其多么强大的刺激，均不能引起其再次开放，即引起新的动作电位。