IPTG诱导蛋白表达原理
iptg诱导原理
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IPTG诱导原理
IPTG（异丙基-β-D-硫代半乳糖苷）是一种结构类似于乳糖的化合物，常用于诱导细菌中外源基因的表达。
在诸多实验中，IPTG一直是实现诱导的常用试剂。
IPTG的诱导原理主要基于大肠杆菌（E. coli）中的lactose （乳糖）代谢途径。
在正常情况下，大肠杆菌利用lactose的降解途径来使细胞内的β-半乳糖苷酶（β-galactosidase）进行活性调控。
在大肠杆菌中，当培养基中的乳糖耗尽时，细菌会通过在培养基中积累的cAMP（环腺苷酸）来激活AMP依赖性蛋白激酶（AMP-dependent protein kinase）。
该激酶会磷酸化培养基中的cAMP受体蛋白（cAMP receptor protein，CRP），进而使CRP蛋白能够与细菌基因组上的lac操作子（lac operator）结合。
lac操作子是位于大肠杆菌lacZ基因附近的一个特定DNA区域，其能够阻止β-半乳糖苷酶基因（lacZ）的表达。
当CRP 蛋白与lac操作子结合后，它会诱导DNA环境的改变，从而阻止附近的lacZ基因的表达。
IPTG的作用在于模拟乳糖对细菌的作用。
IPTG和乳糖具有相似的化学结构，可以结合到CRP蛋白上，形成IPTG-CRP复合物。
这个复合物在结构上类似乳糖-CRP复合物，能够与lac 操作子结合，从而使CRP蛋白离开lac操作子，达到诱导lacZ
基因表达的效果。
综上所述，IPTG能够通过模拟乳糖对大肠杆菌的作用，诱导β-半乳糖苷酶的表达。
通过适当的浓度和处理时间，研究人员可以控制IPTG的使用来实现外源基因在大肠杆菌中的高效表达。
IPTG诱导蛋白表达的原理及实验步骤
活性蛋白整体方案IPTG诱导蛋白表达的原理及实验步骤摘要：在原核蛋白表达体系中，如E.coli（大肠埃希菌）系统，外源基因通常需要诱导剂的诱导才能进行表达，本文详细讲述了常用诱导剂IPTG对外源蛋白诱导表达的原理以及实验步骤。
原核生物绝大多数的基因按功能相关性成簇地排列，且密集于染色体上，共同形成一个转录单位——操纵子（元），也称基因表达的协同单位(a coordinated unit of gene expression)。
E.coli的乳糖操纵子（元）含Z、Y及A三个结构基因，分别编码β-半乳糖苷酶（β-galactosidase）、通透酶（permease）和乙酰基转移酶（transacetylas e)；此外还有调控基因：操纵序列O（operator）、启动序列P（promoter）；而I(编码Lac阻遏物，Lac repres sor)不属于乳糖操纵子。
乳糖操纵子结构基因Lac阻遏物是一种具有4个相同亚基的四级结构蛋白，都有一个与诱导剂结合的位点。
在没有乳糖存在时，lac 操纵子（元）处于阻遏状态，Lac阻遏物能与操纵基因O结合，阻碍RNA聚合酶与P序列结合，抑制转录起动。
而当有诱导剂与阻遏蛋白结合后，其蛋白构象就发生变化，导致阻遏物从操纵基因O上解离下来，RNA聚合酶不再受阻碍，发生转录。
在这个操纵子（元）体系中，真正的诱导剂并非乳糖本身。
乳糖进入细胞，经β-半乳糖苷酶催化，转变为半乳糖——即生理上的诱导剂。
而在实验中，通常选用异丙基硫代半乳糖苷（IPTG）作为诱导剂，IPTG是一种作用极强的诱导剂，不被细菌代谢而十分稳定，因此被实验室广泛应用。
活性蛋白整体方案IPTG诱导表达原理图实验方法材料LB（Luria—Bertani）培养基酵母膏(Yeast extract)5g蛋白胨(Peptone)10gNaCl10g琼脂(Agar)1-2%蒸馏水(Distilled water)1000ml pH7.0IPTG贮备液2g IPTG溶于10mL蒸馏水中，0.22μm滤膜过滤除菌，分装成1mL/份，-20℃保存凝胶电泳加样缓冲液50mmol/L Tris-CI(pH6.8)50mmol/L DTT2%SDS（电泳级）0.1％溴酚蓝10％甘油实验方案1)用适当的限制性内切核酸酶消化载体DNA和目的基因；2)按连接步骤连接目的基因和载体，并转化到转化DH5α感受态细胞中；3)分别挑取单菌落接种于5mL LB(0.1g·L-1氨苄青霉素)中，37℃培养过夜；4)以2%体积比转接于2ml LB(0.1g·L-1氨苄青霉素)中，37℃继续培养2.5hr，至细菌对数生长期，加0.1活性蛋白整体方案mmol/L IPTG2µl诱导3-4hr，同时设立不加IPTG诱导作为对照；5)取上述菌液1mL，12000rpm离心10min，收菌沉淀；6)重悬于冰的100µl PBS中，加入PMSF至终浓度为10mmol/L。
IPTG诱导蛋白表达全面介绍
IPTG全面介绍：优点·使用·配制·特点摘要: 异丙基硫代半乳糖苷(IPTG)是一种作用极强的诱导剂,不被细菌代谢而十分稳定,因此被实验室广泛应用。
IPTG 常用于需要诱导β-半乳糖苷酶活性的克隆实验。
它常与X-Gal 或Bluo-Gal 结合使用，用于重组细菌菌落的蓝白筛选，这些菌落可以诱导lac 操纵子在大肠杆菌中的表达。
IPTG 与lacI 阻遏蛋白结合并改变其构象而发挥作用，防止β-半乳糖苷酶编码基因lacZ 的抑制。
中文名：异丙基-β-D-硫代半乳糖苷( IPTG)英文名称：Isopropyl-beta-D-thiogalactopyranoside用途：异丙基硫代半乳糖苷(IPTG)是一种作用极强的诱导剂,不被细菌代谢而十分稳定,因此被实验室广泛应用。
IPTG 常用于需要诱导β-半乳糖苷酶活性的克隆实验。
它常与X-Gal 或Bluo-Gal 结合使用，用于重组细菌菌落的蓝白筛选，这些菌落可以诱导lac 操纵子在大肠杆菌中的表达。
IPTG 与lacI 阻遏蛋白结合并改变其构象而发挥作用，防止β-半乳糖苷酶编码基因lacZ 的抑制。
使用方法：首先把IPTG配制成23.83 mg/ml(100 mM)的水溶液，并进行过滤除菌后保存。
然后在100 ml的琼脂培养基中，加入100 μl 的上述溶液、200 μl的X-Gal(20 mg/ml的二甲基甲酰胺(DMF)溶液)和100 μl的Amp(100 mg/ml)，制作成IPTG、X-Gal、Amp平板培养基。
当dna 片段插入至pUC系列载体(或其他带有lacZ、Amp基因载体)，然后转化至lacZ缺失细胞中后，涂布上述的IPTG、X–Gal、Amp平板培养基，可根据长出菌体的蓝白色，而方便地挑选出基因重组体(白色为具有DNA插入片段的基因重组体)。
配制方法：在8ml蒸馏水中溶解2g IPTG后，用蒸馏水定容至10ml，用0.22μm滤器过滤除菌，分装成1ml小份贮存于-20℃。
iptg诱导大肠杆菌表达原理
IPTG（异丙基-β-D-硫代半乳糖苷）是一种化学诱导剂，常用于激活大肠杆菌表达系统中的T7启动子。
通过加入IPTG，可以促进靶蛋白的表达，从而实现对目的蛋白的高效生产。
下面我们来详细了解一下IPTG诱导大肠杆菌表达的原理。
1. T7启动子T7启动子是一种强效启动子，它可以在大肠杆菌中高效转录外源DNA。
T7启动子的活性受到T7 RNA聚合酶的调控，而T7 RNA聚合酶是一种高度特异性的RNA聚合酶，在大肠杆菌中并不存在。
当T7启动子与T7 RNA聚合酶相结合时，便可高效产生目的蛋白。
2. IPTG的作用IPTG是一种结构类似于乳糖的化合物，它可以结合到lac重pressor 蛋白上，从而阻止其对T7启动子的抑制作用。
在含有T7启动子和T7 RNA聚合酶的表达系统中，当添加IPTG后，它与lac repressor蛋白结合，使其失活，进而释放T7启动子，使T7 RNA聚合酶能够充分地转录外源DNA，从而高效表达目的蛋白。
3. IPTG浓度的选择在IPTG诱导大肠杆菌表达的过程中，IPTG的浓度选择非常重要。
一般来说，IPTG的最佳浓度应该能够充分激活T7启动子，同时又不会对大肠杆菌本身的生长造成太大的影响。
通常情况下，0.1-1.0mM的IPTG浓度是比较常用的范围。
4. IPTG诱导的时间和温度除了IPTG的浓度外，诱导时间和温度也会影响大肠杆菌表达系统的效果。
通常情况下，IPTG诱导的时间可以根据不同的目的蛋白进行优化，一般为4-16小时。
而温度则可以选择在37摄氏度左右进行诱导。
5. 相关注意事项在进行IPTG诱导大肠杆菌表达时，还需要注意一些相关的技术细节。
需要对大肠杆菌培养基进行预处理，保证培养基中的IPTG没有降解或者受到污染。
另外，在IPTG诱导的过程中需要监测大肠杆菌的生长情况，及时调整诱导条件，以保证目的蛋白的高效表达。
IPTG诱导大肠杆菌表达的原理主要是通过结合到lac repressor蛋白上，解除其对T7启动子的抑制作用，从而实现T7启动子的高效激活，使T7 RNA聚合酶能够高效转录外源DNA，最终实现对目的蛋白的高效表达。
IPTG诱导pET载体上目的蛋白表达的原因
IPTG诱导pET载体上目的蛋白表达的原因：1）噬菌体DE3溶源化的菌株如BL21(DE3)是最常用的表达菌株，噬菌体DE3是λ噬菌体的衍生株，构建好的表达载体可以直接转入表达菌株中，诱导蛋白的表达方式与lac启动子一样都是IPTG诱导。
2）表达菌株BL21(DE3)上带有lacI基因，T7 RNA 聚合酶编码基因以及lacUV5启动子，lacUV5启动子可以启动T7 RNA 聚合酶的表达；3）表达质粒如pET-28质粒带有T7启动子和编码阻遏蛋白lacI的基因，在插入目的基因后，lacI是失活的；4）在非诱导条件下，表达菌株中表达出的lacI阻遏蛋白可以作用于T7 RNA 聚合酶前的lacUV5启动子，从而抑制T7 RNA 聚合酶的表达。
IPTG是乳糖类似物，可以与阻遏蛋白lacI 结合，使其对lacUV5启动子失去阻遏作用，T7 RNA 聚合酶得以合成，继而与pET-28质粒上的T7启动子结合，启动下游基因包括目的基因的表达，从而产生目的蛋白。
pET-28质粒的基因图谱需要注意的是：由于T7 RNA 聚合酶的调控方式仍可能有痕量的本底表达，控制基础表达的手段之一是培养基外加葡萄糖，有助于控制本底表达水平。
二是采用带有T7 lac启动子的载体——这些质粒在紧邻T7启动子的下游有一个lac操纵子序列。
它们同样带有常规启动子以及编码lacI阻遏蛋白的序列，T7lac和lacI启动子位置交错。
采用这种载体及DE3溶原菌，lac阻遏蛋白既可以作用于宿主染色体lacUV5 启动子，抑制宿主聚合酶转录T7 RNA聚合酶，也可以作用于载体T7lac 启动子，从而阻断任何T7 RNA聚合酶导致的目的基因转录。
普通T7 启动子和T7 lac 启动子的区别在于蛋白表达的严紧性不同。
T7 lac启动子在启动子区下游17bp 处含有一个25bp 的lac 操纵序列，属于高严紧性的启动子。
该位点结合lac阻遏蛋白能够有效降低T7 RNA 聚合酶的转录。
IPTG诱导的外源蛋白表达
1. 课题起源：
试验环节：
接种 扩大培养 IPTG诱导 提取、纯化
蛋白
思索：
IPTG（异丙基硫代半乳糖苷）旳作用原理？
2. IPTG旳作用原理
IPTG (isopropylthiog- alactoside,异丙基硫代 半乳糖苷): 化学合成旳乳糖类似物，很强旳β －半乳糖苷酶诱导剂，诱导乳糖操纵元(lac operon)旳开放，本身不被催化分解。类似旳 X-gal(5-溴-4-氯-3-吲哚-β-半乳糖苷)也是一种 人工化学合成旳半乳糖苷，可被β－半乳糖苷 酶水解产生兰色化合物，所以能够用作 β－半 乳糖苷酶活性旳指示剂。IPTG和X-gal都被广 泛应用在分子生物学和基因工程旳工作中。
2.3 乳糖操纵元（lac operon）旳正调控
不难看出：CAP结合位点就是一种起正性调控 作用旳操纵子，CAP则是对转录起正性作用旳 调控蛋白──激活蛋白，编码CRP旳基因也是 一种调控基因，但是它并不在lac操纵元旳附 近，CAP能够对几种操纵元都起作用。
从上所述，乳糖操纵元属于可诱导操纵元 （inducible operon），此类操纵元一般是关 闭旳，当受效应物作用后诱导开放转录。此类 操纵元使细菌能适应环境旳变化，最有效地利 用环境能提供旳能源底物。
2.2 乳糖操纵元（lac operon）旳负调控
在这过程中乳糖（实际起作用旳是 别乳糖）就是诱导剂，与R结合起到去 阻遏作用（derepression），诱导了利 用乳糖旳酶类基因转录开放
2.3 乳糖操纵元（lac operon）旳正调控
细菌中旳cAMP含量与葡萄糖旳分解 代谢有关，当细菌利用葡萄糖分解产 生能量时，cAMP生成少而分解多， cAMP含量低；相反，当环境中无葡 萄糖可供利用时，cAMP含量就升高。
iptg诱导原理
iptg诱导原理IPTG诱导原理。
IPTG（异丙基硫代半乳糖苷）是一种常用的诱导剂，广泛应用于原核生物中对蛋白表达的调控。
在分子生物学领域，IPTG诱导原理是一个基础而重要的概念，本文将对其进行详细介绍。
IPTG是一种结构类似于乳糖的化合物，能够与lacI基因产物结合，从而解除对lacZYA操纵子的抑制，使得lacZYA基因的表达得以启动。
在大肠杆菌中，lacZYA基因编码了乳糖代谢途径的三个重要酶，包括β-半乳糖苷酶、乳糖转运蛋白和内源性乳糖酶。
这些酶的表达对于研究者来说非常重要，因为它们可以作为报告基因或是用于蛋白表达和纯化。
IPTG的诱导原理主要是通过模拟乳糖的作用，从而激活lacZYA基因的表达。
在含有lac操纵子的表达载体中，通常会将目标基因与lacZYA基因相连，构建成操纵子与目标基因串联的结构。
而lacI基因编码的蛋白质则能够结合IPTG，在其存在的条件下，解除对lacZYA操纵子的抑制，从而实现目标基因的表达。
在实验中，研究者通常会将含有目标基因的表达载体转化到大肠杆菌等宿主细菌中，然后在培养基中添加适量的IPTG，使得目标基因得以表达。
通过调节IPTG 的浓度和作用时间，可以实现对目标基因表达的精确调控，从而满足不同实验需求。
除了用于蛋白表达的调控外，IPTG还被广泛应用于原核生物中其他基因的表达调控，例如在双杂交实验中用于激活启动子的活性，或是在蛋白亲和纯化中用于标记融合蛋白的表达。
因此，对IPTG诱导原理的深入理解对于分子生物学领域的研究具有重要意义。
总之，IPTG的诱导原理是基于其模拟乳糖的作用，通过解除对lacZYA操纵子的抑制，实现对目标基因的表达调控。
在实验中，研究者可以通过调节IPTG的浓度和作用时间，实现对目标基因表达的精确控制，从而满足不同实验需求。
希望本文能够对IPTG诱导原理有所帮助，促进相关领域的研究进展。
iptg诱导原理
iptg诱导原理IPTG诱导原理。
IPTG（异丙基硫代半乳糖苷）是一种常用的诱导剂，被广泛应用于原核生物表达系统中。
它的诱导原理主要是通过模拟乳糖的作用，诱导lac操作子下的启动子活性，从而促进目的基因的表达。
在分子生物学研究中，IPTG的使用具有重要意义，本文将对IPTG的诱导原理进行详细介绍。
IPTG的化学结构与乳糖非常相似，因此它可以与lac操作子下的启动子结合，激活启动子的活性。
在常见的表达载体中，lac操作子通常与启动子相连，形成一个完整的表达单元。
当IPTG存在时，它会与lac操作子结合，使得启动子从原来的抑制状态转变为激活状态，从而促进目的基因的表达。
在实际操作中，研究人员通常会将IPTG加入到培养基中，使得细菌在生长过程中受到IPTG的诱导。
一般来说，IPTG的最佳浓度是0.1mM，这样可以在不影响细菌正常生长的情况下，有效地诱导目的基因的表达。
此外，IPTG的诱导时间也需要经过优化，通常在细菌达到对数生长期时进行诱导，以获得最佳的表达效果。
除了诱导启动子活性外，IPTG还可以通过其他方式影响目的基因的表达。
例如，IPTG的存在可以促进细菌内乳糖苷酶的表达，从而增加对乳糖的降解能力，为细菌提供更多的能量和生长物质，进而促进目的基因的表达。
此外，IPTG还可以调节细菌内部的代谢通路，影响蛋白质的折叠和修饰等过程，进而影响目的基因的表达水平。
总之，IPTG作为一种常用的诱导剂，可以通过多种途径影响目的基因的表达。
研究人员在使用IPTG进行诱导表达时，需要充分理解其诱导原理，合理设计诱导方案，并进行适当的优化，以获得最佳的表达效果。
希望本文对IPTG的诱导原理有所帮助，能够为相关研究工作提供一定的参考价值。
IPTG诱导蛋白表达原理
诱导剂(inducer): 别乳糖、半乳糖、 诱导剂(inducer): 别乳糖、半乳糖、 IPTG（异丙基硫代半乳糖苷） IPTG（异丙基硫代半乳糖苷）
The Lac Operon:
When Glucose Is Present But Not Lactose
Hey man, I’m ’ constitutive CAP Come on, let me through
诱导和阻遏表达
诱导（induction）：在特定的环境信号刺激下，相应基因被激 诱导（ ）：在特定的环境信号刺激下， ）： 刺激下 表达产物增加。 从而使基因的表达产物增加 这类基因称为可诱导基因。 活，从而使基因的表达产物增加。这类基因称为可诱导基因。 可诱导基因在特定环境中表达增强的过程，称为诱导 可诱导基因在特定环境中表达增强的过程，称为诱导 (induction)。 。 乳糖 → 利用乳糖的三种酶表达 阻遏（ ）：在 刺激下， 阻遏（repression）：在特定环境信号刺激下，相应基因被抑制， ）： 特定环境信号刺激下 相应基因被抑制， 从而使基因的表达产物减少 这类基因称为可阻遏基因。 表达产物减少。 从而使基因的表达产物减少。这类基因称为可阻遏基因。 可阻遏基因表达产物水平降低的过程称为阻遏 (repression）。 可阻遏基因表达产物水平降低的过程称为阻遏 ）。
操纵子（ 功能相关的 操纵子（operon)：很多功能相关的结构基因串联排列在染色体 ：很多功能相关 结构基因串联排列在染色体
上，由一个共同的控制区来操纵这些基因的表达，包含这些结构基 由一个共同的控制区来操纵这些基因的表达， 共同的控制区来操纵这些基因的表达 因和控制区的整个核苷酸序列就称为操纵子。 因和控制区的整个核苷酸序列就称为操纵子。
IPTG诱导蛋白表达的原理及方法步骤
IPTG诱导蛋白表达的原理及方法步骤E.coli的乳糖操纵子（元）含Z、Y及A三个结构基因，分别编码半乳糖苷酶、透酶和乙酰基转移酶，此外还有一个操纵序列O、一个启动序列P及一个调节基因I。
I基因编码一种阻遏蛋白，后者与O序列结合，使操纵子（元）受阻遏而处于关闭状态。
在启动序列P上游还有一个分解（代谢）物基因激活蛋白（CAP）结合位点。
由P序列、O序列和CAP结合位点共同构成lac操纵子的调控区，三个酶的编码基因即由同一调控区调节，实现基因产物的协调表达。
在没有乳糖存在时，lac操纵子（元）处于阻遏状态。
此时，I序列在PI启动序列操纵下表达的Lac阻遏蛋白与O序列结合，阻碍RNA聚合酶与P序列结合，抑制转录起动。
当有乳糖存在时，lac操纵子（元）即可被诱导。
在这个操纵子（元）体系中，真正的诱导剂并非乳糖本身。
乳糖进入细胞，经b－半乳糖苷酶催化，转变为半乳糖。
后者作为一种诱导剂分子结合阻遏蛋白，使蛋白构象变化，导致阻遏蛋白与O序列解离、发生转录。
异丙基硫代半乳糖苷（IPTG）是一种作用极强的诱导剂，不被细菌代谢而十分稳定，因此被实验室广泛应用。
材料1、诱导表达材料( 1 ) LB （Luria—Bertani）)培养基酵母膏 (Yeast extract) 5g 蛋白胨 (Peptone) 10gNaCl 10g 琼脂 (Agar) 1-2%蒸馏水 (Distilled water) 1000ml pH 7.0适用范围：大肠杆菌( 2 ) IPTG 贮备液：2 g IPTG溶于10 mL 蒸馏水中，0 . 22 μm 滤膜过滤除菌，分装成1 mL /份，－20℃ 保存。
( 3 ) l× 凝胶电泳加样缓冲液：50 mmol / L Tris -CI ( pH 6 . 8 )50 mmol / L DTT2 % SDS （电泳级）0.1 ％溴酚蓝10 ％甘油2、大肠杆菌包涵体的分离与蛋白纯化材料1 ）酶溶法（1）裂解缓冲液：50 mmol / L Tris-CI ( pH 8 . 0 )1 mmol / L EDTA100 mmol / LNaCI（2）50 mmol / L 苯甲基磺酰氟（PMSF ）。
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IPTG诱导蛋白表达的原理
IPTG诱导的产物是重组后表达载体中的插入序列所能够翻译的蛋白，并可视载体构建情况翻译后续的标签序列。
用乳糖操纵子作为启动子进行蛋白质表达的时候,需要诱导物进行诱导(相当于点火),但乳糖可以被细胞利用掉,所以利用IPTG(异丙基-β-D-硫代半乳糖苷)在结构上与乳糖的相似性也可以将基因表达启动,但它不能被细胞利用掉,从而实现持续的表达.
IPTG是一种诱导外源基因表达的诱导剂，它不仅仅如我们学过的作为乳糖的类似物诱导大肠杆菌表达半乳糖苷酶，它是一种普遍应用的诱导剂，能诱导菌种表达多种外源基因。
但是它能诱导基因表达的具体原理我却了解的不是很多，我在网上查到以下一些内容，供查阅者借鉴。
最早应用于的表达系统是Lac乳糖操纵子，乳糖的类似物IPTG可以和lacI产物结合，使其构象改变离开lacO，从而激活转录.
这种可诱导的转录调控成为了大肠杆菌表达系统载体构建的常用元件。
tac启动子是trp启动子和lacUV5的拼接杂合启动子，且转录水平更高，比lacUV5更优越。
trc启动子是trp启动子和lac启动子的拼合启动子，同样具有比trp更高的转录效率和受lacI 阻遏蛋白调控的强启动子特性。
在常规的大肠杆菌中，lacI阻遏蛋白表达量不高，仅能满足细胞自身的lac操纵子，无法应付多拷贝的质粒的需求，导致非诱导条件下较高的本底表达，为了让表达系统严谨调控产物表达，能过量表达lacI阻遏蛋白的lacIq 突变菌株常被选为
Lac/Tac/trc表达系统的表达菌株。
现在的Lac/Tac/trc载体上通常还带有lacIq 基因，以表达更多lacI阻遏蛋白实现严谨的诱导调控。
IPTG 广泛用于诱导表达系统，但是IPTG有一定毒性，有人认为在制备医疗目的的重组蛋白并不合适，因而也有用乳糖代替IPTG作为诱导物的研究。
另外一种研究方向是用lacI的温度敏感突变体，30度下抑制转录，42度开发。
热诱导不用添加外来的诱导物，成本低，但是由于发酵过程中加热升温比较慢而影响诱导效果，而且热诱导本身会导致大肠杆菌的热休克蛋白激活，一些蛋白酶会影响产物稳定.
T7启动子是当今大肠杆菌表达系统的主流，这个功能强大兼专一性高的启动子经过巧妙的设计而成为原核表达的首选，尤其以Novagen公司的pET系统为杰出代表。
强大的T7启动子完全专一受控于T7 RNA 聚合酶，而高活性的T7 RNA 聚合酶合成mRNA的速度比大肠杆菌RNA聚合酶快5倍——当二者同时存在时，宿主本身基因的转录竞争不过T7表达系统，几乎所有的细胞资源都用于表达目的蛋白；诱导表达后仅几个小时目的蛋白通常可以占到细胞总蛋白的50%以上。
由于大肠杆菌本身不含T7 RNA 聚合酶，需要将外源的T7 RNA 聚合酶引入宿主菌，因而T7 RNA 聚合酶的调控模式就决定了T7系统的调控模式——非诱导条件下，可以使目的基因完全处于沉默状态而不转录，从而避免目的基因毒性对宿主细胞以及质粒稳定性的影响；通过控制诱导条件控制T7 RNA 聚合酶的量，就可以控制产物表达量，某些情况下可以提高产物的可溶性部分。
有几种方案可用于调控
T7 RNA 聚合酶的合成，从而调控T7表达系统.
1.噬菌体DE3是lambda噬菌体的衍生株，含有lacI抑制基因和位于lacUV5启动子下的T7 RNA 聚合酶基因。
DE3溶源化的菌株如BL21(DE3)就是最常用的表达菌株，构建好的表达载体可以直接转入表达菌株中，诱导调控方式和lac一样都是IPTG诱导.
2.另一种策略是用不含T7 RNA聚合酶的宿主菌克隆目的基因，即可完全避免因目的蛋白对宿主细胞的潜在毒性而造成的质粒不稳定。
然后用λCE6噬菌体侵染宿主细胞——CE6是lambda噬菌体含温度敏感突变(cI857ts)和pL/pR启动子控制T7 RNA 聚合酶的衍生株，在热诱导条件下可以激活T7 RNA 聚合酶的合成.
此了噬菌体之外，还可以通过共转化质粒提供T7 RNA 聚合酶。
比如有人用受溶氧浓度控制的启动子调控T7 RNA 聚合酶合成，据说这比较适合工业化发酵的条件控制.
由于T7 RNA 聚合酶的调控方式仍有可能有痕量的本底表达，控制基础表达的手段之一是培养基外加葡萄糖，有助于控制本底表达水平。
2.是采用带有T7lac 启动子的载体——在紧邻T7 启动子的下游有一段lacI操纵子序列编码表达lac 阻遏蛋白(lacI)，lac 阻遏蛋白可以作用于宿主染色体上T7 RNA 聚合酶前的lacUV5 启动子并抑制其表达，也作用于载体T7 lac 启动子，以阻断任何T7 RNA 聚合酶导致的目的基因转录。
pLacI工转化也是同样的原理.
如果这还不够，更为严谨调控手段还有——在宿主菌中表达另一个可以结合并抑制T7 RNA 聚合酶的基因——T7融菌酶，降低本底。
常用的带溶菌酶质粒有
pLysS和pLysE，相容的ori都不会影响后继的表达质粒转化，前者表达的溶菌酶的水平要比后者低得多，对细胞生长影响小，而pLysE 会明显降低宿主菌的生长水平，容易出现过度调节，增加蛋白表达的滞后时间，从而降低表达水平.
通过几种不同方法来巧妙调控T7聚合酶合成，T7启动子发展出了史上功能最强大，最丰富的表达系统。
生物通在下面首先进行主流表达系统介绍：了解各种产品的特色，是选择合适的表达系统的关键哦。
在网上查的这些，回答的不是十分清楚，又不爱去查文献，所以想请问一下各位博友的高见。
（注：文档可能无法思考全面，请浏览后下载，供参考。
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