干扰素基因的克隆与表达1

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鸡α-干扰素基因克隆及其在大肠杆菌中表达

鸡α-干扰素基因克隆及其在大肠杆菌中表达

Ke y wo r ds : Ch i c k e n i n t e r f e r o n O ; Ge n e c l o n i n g; E. c o l i ;I n c l u s i o n b o d y ; Ac t i v i t y
Cl o ni ng o f Chi c k e n I FN- u Ge ne a nd I t s Ex pr e s s i o n i n Es e h e r i c h i a c o l i
Wa n g L e i ,L i n g Ho n g l i , Wa n g Ho n g h u a ,S u n Ha i x i n
a n d a n a l y s i s e d b y S DS - P AGE a te f r i n d u c t i o n wi t h I P TG. Th e r e s u l t s i n d i c a t e d t h a t t h e p r o t e i n wa s e x p r e s s e d a s i n c l u s i o n b o d y . T h e
中国动物检疫 2 0 1 3年第 3 0卷第 2期
主持 人: 胡藕祥
鸡 Q一 干扰 素基 因克隆及其在大肠杆菌 中表达
王 雷 ,凌红 丽 ,王宏华 ,孙 海新
( 青岛宝依特生物制药有限公司,山东青 岛 2 6 6 1 1 4 )
摘 要 :根据 Ge n B a n k中鸡 I F N. 0基 因设 计 引物对,利用 P C R技术克 隆并 测定 了 S P F鸡的 I F N. Q基 因,再在成 熟肽基 因 两侧 设计 一对 引物 ,分别加入合 适的酶切位 点 ,将其 亚克隆在表 达载体 p E T上 ,转化 BL 2 1( D E 3 )后用 I P T G诱 导表达 ,用 S DS — P AGE电泳分析表 达形 式,结果 为蛋 白以包涵体形式表 达。提取 的 包涵体用 7mo l / L盐酸胍变性 ,利用胱氨 酸一半胱氨 酸

牛干扰素-γ基因的克隆与真核表达载体的构建

牛干扰素-γ基因的克隆与真核表达载体的构建
we e o ti e y RT- CR a l c t n a d t e e e c o e no t e p r b a n d b P mp i ai n h n w r ln d i t h MD1 一 e tr i f o 8 T v co .Af ri e t c t n b e t cin e z me t d n i a i y r sr t n y e i f o i o
a l c t n R s l h we a e o ia te peso ls d c mpi ai . e ut s o dt t c mbn n x rsinp amisp DNA31+一 NFwees ce sul o sr ce . i f o s h r .() I r u c sfl c n t td y u
e k r t x rsi e trp D A . () p rp a f e s e ic t I F  ̄ e e w r d s n d T e t g t N a me t u a oi e pe s n v c c N 31 + ,a po r t p m  ̄ p c o N 一 g n ee ei e . h a e D A f g ns y c o o i e i i f g r r
中 图分 类 号 : 7 5 Q 8 文 献 标 识 码 : A
Co s r to o ka y tc Ex e so c o fCo I n t uc i n fEu r o i pr s i n Ve t r o w NF- vGe ne
So ng f n, LiYi c Baie ng hun,Zo Sha ,CuiY udo u n ng
牛外周血单核细胞 中扩增到编码牛 I F ^蛋 白基 因 , N 一y 其大小 为 50b 1 p左右 。将该基 因克 隆到 p 1 - MD 8 T载 体中 , 序结果与 测

猪α干扰素基因的克隆、原核表达及生物学活性鉴定

猪α干扰素基因的克隆、原核表达及生物学活性鉴定
安徽 医科 大学学报
At n e i t d iaiA h i 0 9Fb 4 ( ) c U i rt iMein l n u 2 0 e ;4 1 a v sa s e s
・ 表达及生物学活性 鉴定
夏俊 保 , 赵 俊, 汤仁树 , 崔 寰, 陈 伟 , 明 丽 王
mi g i f y h o c n. n n l @ ao.o c h
r s eern o l as n dit m oada i h mi r efs ni uym d l f rnrcrboe tc l ahtr a r d m y si e o y cri c e a e r i jr o e a e t ee r nr ua cte tw a g n ls / p uo n t i a v i r e
比 活 性 达 到 1 1×1 I/ 。结 论 成 功 克 隆 了 p IN 0 . 0 U mg oF 一【
干扰素 (ne eo ,F 是 一种 可抑 制流 感病 毒 it rn IN) f r 复 制 的细胞 因子 , 由病 毒 或其 他 IN诱 导 剂 刺 激 是 F 机 体后 产生 的一 种 小 分 子 量糖 蛋 白 , 有 广 谱 地 抗 具 病 毒 、 肿瘤 及免 疫 调节 等功 能 , 各种 类 型 的 IN 抗 在 F 中 , N o的抗 病 毒 作 用 最 强 I —【 F 。重 组 人 IN F. 已研 制成 功并 广 泛用 于 临床 治 疗 H V¨ C 等各 种病
摘要 目的 构 建 稳 定 、 效 表 达 的重 组 猪 0 干 扰 素 高 【
(p lN d 大 肠 杆 菌 表 达 菌 株 , 纯 化 鉴 定 该 菌 株 表 达 的 目 roF — ) 并 的蛋 白 , 行 生 物 学 活 性 检 测 。 方 法 进 提 取 猪 肝 脏 细 胞 基 因 传 学 中 图分 类号 R 9 87; 9 — ; 2 .4; 7. 1 7 . R 343 R3 9 2 R3 8 2 文 献 标 识 码 A 文 章 编 号 10 0 0—19 (0 9 0 —0 5 0 4 2 2 0 ) 1 0 3— 4

牛γ干扰素基因的表达及其多克隆抗体的制备

牛γ干扰素基因的表达及其多克隆抗体的制备
毒 、 肿瘤 活性外 , 重 要 的是 它 还具 有 促 进 MHC 抗 更
病 毒性药 物 , 必须 通 过 基 因工 程 技术 在 体外 生 产 重 组 IN7 F 一 。随着 基 因工 程 、 白质 工程 和 发 酵 与 细 蛋 胞 工程 的深入 发展 , 大规模 、 高效率 地生 产具 有生 物 学 活性 的干扰 素 已成 为可 能 , 将 使 人们 把 干 扰 素 这 广 泛地应 用 于科 学研 究 和 临床 , 为 最终 战 胜 疾病 并 提供 充足 的理论 和 实践基础 [ 。 6 ] 因此 , 了解 决 这 一 问题 我们 实 验 室 。 2 ]
能奠 定 了理论基 础 。
养牛 业在我 国 国民经济 中 占据 着相 当重 要 的地
1 材 料 与 方 法
青 年健 康 黑 白花奶 牛 ; 龄 8周
大肠埃 希菌 B 2 、 - I le L 1 xL u B
. 位 , 是牛 的二些 烈性传染 病 , 其 是病 毒病 严重 威 1 1 材 料 但 尤 . . 胁 着养牛 业 的 健康 发 展 。研 究 表 明 , oF 一 B l N 是 一 1 1 1 试 验 用动物
( 龙 江 八 一 农 垦 大 学 生命 科 学 技 术 学 院 , 龙 江 大 庆 13 1 ) 黑 黑 6 39

要 : 了获得 牛 丫干扰素表 达产 物及其 多克 隆抗体 , 用 分子 生物 学软 件分 析 G n a k公 布 的牛 为 利 eB n
干扰 素的氨基 酸序 列 , 对 这 一 基 因序 列 设 计 了一 对 特 异 性 引物 , 从 牛 脾 脏 淋 巴细 胞提 取 基 因 组 总 针 并
干扰 素 ( tr rn I N) 在 特 定 的诱 生剂 作 i ef o ,F 是 n e 用下, 由细胞分 泌 的具 有一定 的抗 病毒 、 肿瘤 和调 抗

干扰素生产工艺

干扰素生产工艺

(2)工程菌的特征:SmR、TcR、ApR
(3)具有生产干扰素精能选ppt 力:
23
2.3 菌种库的建立与保藏
• QC:菌种特性、生产能力、质粒稳定性 • 菌种检查合格后,方可投产。
精选ppt
24
3 .干扰素α-2b的发酵工艺过程
精选ppt
25
3.1摇瓶培养
取保存工作种子批菌种,室温融化 摇瓶培养:30℃,pH7.0,250 r/min,
对其它细胞的作用:IFNγ对其他细胞也有广泛影响:①刺激中性粒细胞,增强其 吞噬能力;②活化NK细胞,增强其细胞毒作用;③使某些正常不表达MHCⅡ类分 子的细胞(如血管内皮细胞、某些上皮细胞和结缔组织细胞)表达MHCⅡ类分子, 发挥抗原递呈作用;④使静脉内皮细胞对中性粒细胞的粘附能力更强,且可分化 为高内皮静脉,吸引循环的淋巴细胞。
1992年我国第一个基因工程药物IFN-α1b获 得国家一类新药证书。
研发中的重组干扰素:IFN ω,临床阶段
精选ppt
6
1.2干扰素的理化性质
精选ppt
143-166aa; MW:18-40 ku; pI: 6.5-7.5; 乙醚、氯仿敏感 容易吸附玻璃、淀粉、醋酸 纤维膜、琼脂和塑料等介质。
➢ 提高单核巨噬细胞、树突状细胞的抗原提呈能力
➢ 增强Tc细胞和NK细胞的杀伤活性
➢ 抑制TH2细胞形成,下调体液免疫应答
➢ 趋化作用
➢ 抗病毒和抗肿瘤作用(次要)
精选ppt
5
2. 根据动物来源确定分类,例如人干扰素(HuIFN),小鼠干扰素
上市重组干扰素: α2a、α2b、α1b、 β1b,γ
连续流离心机:冷却的发酵液,16000 r/min离心收集。

基因工程药物之干扰素的制备流程

基因工程药物之干扰素的制备流程

基因工程药物之干扰素的制备流程概述干扰素是一类重要的基因工程药物,具有抗病毒、抗肿瘤等作用。

本文将详细介绍干扰素的制备流程,包括干扰素的基因工程、表达和纯化等主要步骤。

1. 干扰素的基因工程干扰素的基因工程是制备干扰素的第一步,可以通过重组DNA技术构建包含干扰素基因的重组质粒。

具体步骤如下:•选择干扰素基因:从已知的干扰素基因库中选择合适的基因序列。

•克隆基因:将选定的干扰素基因通过PCR扩增等技术获得基因片段。

•构建重组质粒:将干扰素基因插入适当的表达载体中,构建重组质粒。

2. 干扰素的表达完成基因工程后,接下来是通过表达系统将干扰素基因表达为蛋白。

常见的表达系统包括大肠杆菌、哺乳动物细胞等,其中大肠杆菌表达系统是最常用的。

表达步骤如下:•转染表达宿主:将构建好的重组质粒导入表达宿主中。

•培养表达宿主:在适当的培养条件下,培养表达宿主,促使干扰素基因表达为蛋白。

•蛋白提取:采用合适的方法提取表达的干扰素蛋白。

3. 干扰素的纯化获得表达的干扰素蛋白后,还需要进行纯化步骤,将目标蛋白从其他杂质中分离出来,确保干扰素的纯度。

常见的纯化方法包括亲和层析、离子交换层析等:•亲和层析:利用干扰素与某种亲和基质之间的特异识别作用,实现干扰素的分离纯化。

•离子交换层析:根据蛋白的电荷性质,通过离子交换柱将干扰素与杂质分离。

4. 干扰素的检测与质控最后一步是对制备好的干扰素进行检测与质控,确保其质量符合要求。

常见的检测方法包括SDS-PAGE凝胶电泳、Western blotting等:•SDS-PAGE凝胶电泳:通过电泳分析蛋白的相对分子质量。

•Western blotting:通过特异抗体的靶向检测确认蛋白的存在。

结语通过上述步骤,干扰素的制备工作完成,得到的干扰素蛋白可以用于临床治疗等用途。

干扰素的基因工程、表达和纯化过程都需要严格控制,保证干扰素的质量和稳定性,为临床应用奠定基础。

猪γ干扰素基因的克隆、表达及其纯化

猪γ干扰素基因的克隆、表达及其纯化

猪γ干扰素基因的克隆、表达及其纯化
郭瀛军;吴丹;陈蕊雯;孙树汉
【期刊名称】《生物工程学报》
【年(卷),期】2001(017)002
【摘要】以RT-PCR方法,从经丝裂原诱导的猪外周血淋巴细胞总RNA中扩增出编码猪IFNγ的基因.经测序证实后插入载体pJLA-503,并实现在大肠杆菌中的高表达.表达产物以包涵体形式存在,经7mol/L盐酸胍变性及精氨酸存在的情况下复性.再经DEAE-Sepharose离子交换柱、Sephdex-200凝胶过滤柱分离获得电泳单一纯猪IFN-γ蛋白,细胞病变抑制实验检测纯化产物有干扰素活性.
【总页数】4页(P183-186)
【作者】郭瀛军;吴丹;陈蕊雯;孙树汉
【作者单位】第二军医大学医学遗传学教研室;第二军医大学医学遗传学教研室;第二军医大学医学遗传学教研室;第二军医大学医学遗传学教研室
【正文语种】中文
【中图分类】Q78
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小鼠干扰素应答基因(Ifrg15)的克隆、原核表达及其融合蛋白的亲和纯化

小鼠干扰素应答基因(Ifrg15)的克隆、原核表达及其融合蛋白的亲和纯化
1Colg f f ce c sFu a gNoma vest Ke a o ao yo E b oDe eo me t n p o u t eRe uain An u r vn e F ya le eo Li S in e , y n r l e Uni ri y, yL b rtr f m r v lp n dRe rd ci g lto , h i o ic , u ng y a v P
下成功纯化 了 GS &6 H s f l 融 合蛋 白。 T x iIg 5 —
关键 词 干扰 素应答基 因( rl )基 因克隆 , 1g5, f 原核表达 , 亲和层 析
Cln n n r k r o i p e s n o o s n e f r n Re p n i e Ge e o i g a d P o ay t Ex r si fM u e I tre o s o s n c o v
农业 生物 技 术 第 期 第 18 17
J r lf gclr ieho g,00V 18N - 鱼二 !兰 o n A ruuaBo cnl y21, o 1, j ! u ao i t l t o . o 6
2 6 4 , i a 2 Co l g f i l inc n c n l g , h i rc l r l i e st He e 3 0 6 Chma 3 0 1 Ch n ; l e o An ma e ea d Te h o o y A u e Sc n Ag iu t a v ri u Un y, f i 0 3 , 2


为研 究一个 可 能 的干 扰素 应答 基 因( tr rnrso s e e e1 , rl 所编 码 蛋 白质 的 生物 学功 i ef o p ni n 5 Ig n e e vg f
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()其它主要试剂 2
PG00 PS 胰蛋白 ET, O 姬姆萨染料均为Sga E80, , B 酶、 DA DS, M i 公司产品 其它无机盐均为 m ,
Sga im 公司产品.
()主要溶液的配制 3
a )培养液 DE 粉末 1. aC3 g g NH0 37 MM 34, . ,双抗 IM 原浓度 100um 青稼素+100gm 链霉 OL( 00l/L 00m/L
蛋白 , 酶、 酶K RA 溶菌酶等购自 N 宝生物工程有限公司、 华美生物工程公司、 rmg 公司、 Poea 原平 皓公司及北京化学试剂公司。
() 培养基 1L B
在901 5m 去离子水中溶解
细菌培养用 胰蛋白 bcot p n) 陈( t r t e a - y o l o g
内含子和三个外显子,总长 5b K 左右。将 PIN oF Y 基因克隆到真核表达载体PIn。 C-e 载体中,组
装成真核表达载体 PInoPIN C-e-oF Y 。利用脂质体转染法将重组载体 PI e-oF Y C- oPIN n 转染入仓 鼠卵巢细胞 (H )中,在 G1 的存在下进行筛选培养,获得转染细胞系。 CO 48
胰蛋白酶05 无钙镁 PS . , g B 溶液 20L 0m,过滤灭菌,-2℃保存。 0
e )胰蛋白酶/DA ET 消化液 NC 08 K 1. , C3 0g葡萄糖 0 1, A. , C00 gNH0 . , a l g . , 4 a 0 5 . ET00g胰蛋白酶 008 M l- 超 gD 2 .5, lQ i
() CCx 3 1 a1 M
在201 溶解 5ga1" , .2 m 0m 纯水中 4CC, 2 用02 u 滤器过滤除菌, 60 H 分装成 l l o 每份, m 贮存 于一0 。 20 制备感受态时, C 取出一小份解冻并用纯水稀释到 101 过滤除菌,℃预冷备用。 0m, 0
在 80l 0m 水中溶解 222NC,加水定容到 1。分装后高压灭菌。 9.gal L
() i l 5 LC 9 M
在80l 0m 水中完全溶解320gil 2z 0.5LC ・H ,定容到 1,高压灭菌。 O L
(0 E缓冲液 (H . T 1) P80 )
(2 XTET i- 5 B (rs翻酸) 1)
5grs 2 5 硼酸、 01.M AP80,用水溶解后定容到 1. . 4Ti 碱、 7 g 2m05 ET( . D H L 室温保存。出
现沉淀后则予以废弃。
(3 1)质粒提取溶液
溶液 I 5 M m 葡萄糖、2 M i ・ lP80, M A 80,高压灭菌, ℃保存. :; l 5 T s C ( .) l ET ( .) m r H O D P m H 4
中国农业大学硕士学位论文
实验 部分
第二部分 实验部分
实验一 猪干扰素一 PIN 基因的扩增、 ¥C F Y) O 真核载体构建及其在仓鼠
卵细胞中的表达
摘要 从猪的 肝脏组织中提取出 组DA 以 基因 N, 其为模板通过长链PR C 扩增出 干扰素- 全基因。 Y 经过核营酸序列测定, 证实其与 Gnak中 eBn 发表的 猪千扰素一 基因 Y 序列完全相同, 都包括四个
1 .实验材料和实验方法
1 1 材料 . 1 1 1 质粒及菌种 . . PInocI 质粒、 hF Y C-e- N 大肠杆菌菌株D5 Ha 由中国 农业大学生物技术国家重点实验室提供。 1 1 2 试剂及配制 . .
各种生化试剂、 h I Nt EoI Bml DA kr, 噬菌体 DA xo o I cR, H, mres T 、 、 a N a 4 N 连接酶、 NP, dTs
0 5 S S. . D %
(3 C ak n 缓冲液 2) c ig r
02o/ aH 0 %D, 蔗糖溶液。 NO, 5SS2% . lL m . 0
1 1 3 细血培养所孺材料 . . ( DE 粉末、双抗为 Gbo MM 1 ) ic 公司产品,胎牛血清 (C)国产为天津动物血清厂生产,进口为 FS Hcoe yln 产品,直径 IOm 3二 培养皿及细胞冻存管均为Crig Nn 公司产品。原 Om , 5 onn A c u 代仓鼠卵巢细胞由自己实验室提供。
h )姬姆萨干液
姬姆萨粉末。5 , . g加少量甘油将姬姆萨粉末在研钵中 充分磨碎,再加入甘油至总量为2m, 2L5 6
℃保温 2小时,加入 3m 纯甲醇,保存于棕色瓶中。 3L 1 1 4 . P R扩增猪的 工NR所设计的引物 ( . C P- 由上海生物工程公司合成)
素) L l- 超纯水定容,灭菌,4 保存。使用时加 1%FS . " C 0 C.
b DB 液 ) S P
PS 1 Ml Q B 粉末 97, il 超纯水定容,P 7072过滤灭菌,4 .g L - H -. . , ℃保存。
() T i C (H . P76 6 1 r s・ l 80和 H . M P )
在 80 1 0m 水中溶解 11IT i 碱, 2. rs 加入浓盐酸调 P 值至 80 m g H . 2 1 ( 4 浓盐酸) 76 m 和 . 0 1 ( 6 浓 盐酸) 1,分装后高压灭菌。 。定容到 L
(5 N 酶溶液 RA 1)
将胰 RA l M i ・ l . 5M l 配成 1 g l N 酶溶于 O T s C ( 76、1 NC 中 m r P ) m a H O / 的浓度,10 加热 mm 00 C 1 分钟,缓慢冷却到室温,分装成小份保存于一0 , 5 20 C
Pie : G CCA TAACGTTGA 3, rmr工S C GG GTACATCG 引物中含有 Xo 酶切位点. T C hl
Pi rI5 A GGCG AATTGTAGC 。 物中含有Nt 酶切位点. rm I: T GCC GCTCTGT 3 引 e } C G } ol
中国农业人学硕士学位论文
纯水定容至 I m .过滤灭菌,分装,-2 1保存。 OL O 0 C
f )细胞裂解液
lm T i.lP .)0 1 E AP .)05 D , ( 80,.M T ( 80,.9SS OM sC H r D H 6
9 B液 S )T NC8O C02 rsC3 g溶于1 重蒸水中 高压灭菌。 K1. Ti. 0, a1. g, g , 1. L ,
(1 2 )蛋 白酶 K
旦 绝 里 巨里里绝里里里里巴里 绝里里
中国农业人学硕士学位论文 2m / l 0 gm 溶于水,- 0 保存。 2" C
(2 2 )基因组抽提缓冲液
实验部分
1升溶液 中含有 1mo/ T i.lP80,.m lL T ( 80,0g A / Om lL sc ( .)0 lo/ E Ap .)2m R % L和 r H D H N
中国农业大学硕士学位论文
旦旦旦旦旦里生旦里里里里里里里里里里里里里里里里里里里巴巴旦里里里里里里里里里里里里里里里里里里里巴巴 巴 巴 巴巴巴 思 巴 巴 巴 里生 巴巴巴 巴 巴 巴巴 巴口 旦旦里巴 巴 巴 日 日 巨 巴 巴巴 曰 口
实验部分
在 10l 6m 水中溶解 4gaH 0NO,定容到20l 0m,高压灭菌。
() NA (H . P 70 4 3 a c 52 H . M P 和 )
在80l 溶解48l 三水乙 0m 水中 0. g 酸钠, 用冰乙 酸调P 值至52 H . 或用稀乙 酸调P 值至70 H ., 加水定容到1, 分装后高 L 压灭菌。
() N O 5 5 aH M
实验部分
1 .2 实验方法
1 2 1 基因组 DA的提取 . . N
1 取 1g ) 5 新鲜猪的 肝脏, 剪碎, 放入己 灭菌的 研磨锅中 研磨. 2 当研磨成肉 ) 糜时, 加入液氮, 迅速进行研磨, 反复多次, 直到磨成粉末. 3 把研磨成的粉末加入到 10l ) 5m 抽提缓冲液中, 轻轻摇晃, 搅拌。 直到粉末全部进入液体中并均
(9 0 D 1 %S S 1)
在90 水中 0m l 溶解SS0g Dl ,加热至60助溶, 0 8 C 加入儿滴浓盐酸调P 值至72 加水定容 H .,
到 1 ,无需灭菌,分装备用。 L (0 x凝胶加样缓冲液 6 2 )
02% .5 .5 澳酚蓝、02%二甲 苯青F, ( v蔗糖水溶液。 ℃保存。 F 4% ) 0 w / 4
lm Ti ・ I . m DAP .) ( 80、1 ET ( 80,高压灭菌. OM s C H ) M r P H
(1 T 缓冲液 SE 1)
O1 NC Im T s C ( 80、1 ET ( .)高压灭菌. . M i ・ l . d DAP80, .M l O r a P ) ( H H
细 培 用 提 物(c - a x a ) g 母 取 b t y s e r t 5 菌 养 酵 a o e t c t
N C a l lg o
用 5 NO 约02l H ( . 调P 值至74 加入去离子水定容到 1,高 M H a m) ., L 压灭菌 ( L 固体培养基 2 B ) 按上述配方配制L 培养基,临高压灭菌前加入细菌培养用琼脂 1gL B 5/, 上面两种培养基经高压灭菌冷却到5 0 ℃后加入抗生素, 即可制成选择性培养基。 氨节青霉素 工作浓度为 1 gm。 R l 卡那霉素工作浓度为5 a l 0 / 0 0 m, g /
溶液 I:02 aH 1 S 现用现配。 NO , D, [ .M %S
溶液I: l K , 51 M c 1.m 冰乙酸、2.m 水,高压灭菌,4 保存。( )溶菌酶溶液 I 6m5 A 1 I 0 85l 0 C 1 4
1 gm 溶于 l M s C ( 80,新鲜配制. m Ti ・ l . O /l m O r P ) H
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