叶绿素实验数据表

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不同环境条件下植物叶绿素a、b含量的比较(分光光度法测定)

不同环境条件下植物叶绿素a、b含量的比较(分光光度法测定)

一、实验课题名称不同环境条件下植物叶绿素a、b含量的比较(分光光度法测定)二、文献综述1.叶绿素a的生物合成过程起始物是谷氨酸,之后为5-氨基酮戊酸,两分子的ALA缩合形成胆色素原(PBG),4分子PBG相互连结形成原中卟啉IX.原卟啉IX与Mg结合形成Mg-原卟啉原IX,光下E环的环化形成,D环的还原作用和叶绿醇尾部的连接完成了整个合成过程,合成过程中的许多步骤在图中已省略2.影响叶绿素形成的条件(1)光光是影响叶绿素形成的主要条件。

从原叶绿素酸酯转变为叶绿酸酯需要光,而光过强,叶绿素又会受光氧化而破坏。

黑暗中生长的幼苗呈黄白色,遮光或埋在土中的茎叶也呈黄白色。

这种因缺乏某些条件而影响叶绿素形成,使叶子发黄的现象,称为黄化现象(etiolation)。

也有例外情况,例如藻类、苔藓、蕨类和松柏科植物在黑暗中可合成叶绿素,其数量当然不如在光下形成的多;柑橘种子的子叶及莲子的胚芽在无光照的条件下也能形成叶绿素,推测这些植物中存在可代替可见光促进叶绿素合成的生物物质。

(2)温度叶绿素的生物合成是一系列酶促反应,受温度影响。

叶绿素形成的最低温度约2℃,最适温度约30℃,最高温度约40℃。

秋天叶子变黄和早春寒潮过后秧苗变白,都与低温抑制叶绿素形成有关。

高温下叶绿素分解大于合成,因而夏天绿叶蔬菜存放不到一天就变黄;相反,温度较低时,叶绿素解体慢,这也是低温保鲜的原因之一。

(3)营养元素叶绿素的形成必须有一定的营养元素。

氮和镁是叶绿素的组成成分,铁、锰、铜、锌等则在叶绿素的生物合成过程中有催化功能或其它间接作用。

因此,缺少这些元素时都会引起缺绿症(chlorosis),其中尤以氮的影响最大,因而叶色的深浅可作为衡量植株体内氮素水平高低的标志。

(4)氧缺氧能引起Mg-原卟啉IX或Mg-原卟啉甲酯的积累,影响叶绿素的合成。

(5)水缺水不但影响叶绿素生物合成,而且还促使原有叶绿素加速分解,所以干旱时叶片呈黄褐色。

通过对室外旱池处理条件下的甘薯叶片叶绿素含量变化的研究,结果表明,水分胁迫下甘薯品种叶片中叶绿素a、b及总叶绿素含量比对照均有所下降,叶绿素a/b比值比对照也有所下降,且叶绿素a/b比值占对照百分率与品种抗旱性呈极显著负相关。

植物生理学实验-光合、呼吸速率、荧光参数测定

植物生理学实验-光合、呼吸速率、荧光参数测定

注意:当TPS处于测量状态时,按N键返回到主菜单,
然后再关机。
.
1 SET PLC 1:BROAD
2:UNIVERSAL
1
N
1 REC:M/A 2 INT:0/n FLO:300
1REC 2CAL 3DMP 4CLR 5CLK 6DIAG
Y
N
1 LIGHT=SUN(or LED) 2 LEAF AREA=02.5
.
3、IRGA法测定光合速率的气路系统 红外线气体分析仪只能进行CO2浓度
和H2O浓度的测定,要测定光合速率必须 与气路系统相结合。
开放式气路系统 气路系统主要有
密闭式气路系统
.
(1)开放式气路系统 公式:Pn=F×△CO2/S
稳定CO2气体
F. 值已知
△CO2
开放式气路系统的优点:
1.长时间动态监测 2.恒态测定;维持CO2稳定值 3.测定光-光合曲线:同一叶片不同光强下的光合速率 4.测定CO2-光合曲线:同一叶片不同CO2下的光合速率 5.测定光呼吸:不同气体下光合速率之差:R=Pn2-Pn21
A +/-nn.n CI nnnn 2·s-1
.正值为光合速率,负值呼吸速率。
使用LED光源,先进行光照强度的选择:
光源电源的连接
在“测定菜单”CONTROL SETTINGS
下,按Y显示: 1CO2 2H2O 3LED
按3显示:
LED LEVEL 0=0000 PRESS 0-9 OR Y
按7显示:
●植物生理学、生态学、作物栽培学、作物育 种学、林学、植物营养、病理等研究工作中, 经常需要测定光合速率,根据实验材料选择 一种快速、准确而又简便的光合速率测定方 法,以满足科学研究的需要。

实验六 叶绿素的提取、分离

实验六 叶绿素的提取、分离

叶绿素的提取、分离一、实验目的1.掌握从植物叶中提取叶绿素的方法。

2. 了解纸层层析的原理,掌握纸层析的一般操作和定性鉴定方法。

二、实验原理1. 叶绿素提取原理:叶绿素等是脂溶性的有机分子,根据相似相溶的原理,叶绿体中含有叶绿体色素(叶绿素a和b、胡萝卜素及叶黄素)等色素分子溶于有机溶剂而不溶于有极性的水。

故在研磨和收集叶绿色素时要用丙酮或乙醇等有机溶剂提取而不用水。

2. 色素分离的原理:纸层析是用滤纸作为载体的一种色层分析法,其原理主要是利用混合物中各组分在;流动相和固定相的分配比(溶解度)的不同而使之分离。

滤纸上吸附的水为固定相(滤纸纤维常能吸20%左右的水),有机溶剂如乙醇等为流动相,色素提取液为层析试样。

把试样点在滤纸的滤液细线位置上,当流动相溶剂在滤纸的毛细管的作用下,连续不断地沿着滤纸前进通过滤液细线时,试样中各组份便随着流动相溶剂向前移动,并在流动相和固定相溶剂之间连续一次有一次的分配。

结果分配比比较大的物质移动速度较快,移动距离较远;分配比较小的物质移动较慢,移动距离较近,试样中各组分分别聚集在滤纸的不同的位置上,从而达到分离的目的。

毛细管点样薄层色谱展开三、仪器和药品研钵、毛细管、漏斗、纱布、小烧杯、试管、培养皿等剪纸形状滤液基线95%酒精、丙酮、石油醚碳酸钙,石英砂四、实验步骤(1)取菠菜或其他植物新鲜叶片20g左右,洗净,用滤纸擦干,去掉叶柄和中脉剪碎,放入研钵。

(2)研钵中加入少量碳酸钙和石英砂,加4-5ml 无水乙醇,研磨至糊状,再加10ml 无水乙醇充分混匀以提取叶片匀浆中的色素,15-20分钟后,过滤入50ml锥形瓶中加塞待用。

分离:(1)取圆形定性滤纸一张(直径15cm),将其剪成滤纸条(15cm×2cm),将其2cm一端剪去两侧,中间留一长约1.5cm,宽约0.5cm的窄条,并在滤纸剪口上方用铅笔画一条直线,作为画滤液细线的基准线(注意:滤液线必须距底边1-1.5cm)。

叶绿体色素的提取、分离及定量测定

叶绿体色素的提取、分离及定量测定

叶绿体色素的提取、分离及定量测定一、实验结果1、 滤纸带纸层析:2、 圆形滤纸层析:3、 叶绿素a 、b 含量的测定Ca=12.7A663—2.69A645 Cb=22.9A645—4.68A663推动剂边缘 胡萝卜素 叶黄素叶绿素a (蓝绿色)叶绿素b (黄绿色) 叶绿素b (黄绿色)叶绿素a (蓝绿色)叶黄素胡萝卜素推动剂边缘次数组数Ca=31.35(稀释后数据计算)Cb=15.04(稀释后数据计算)二、问题思考1、大部分植物依靠光合作用合成自身生长繁殖所需的有机物。

光合作用所需色素主要有类胡萝卜素和叶绿素。

其中直接参与光合的是叶绿素a,中心色素,其余为天线色素。

2、叶绿素为双羧酸的酯,一个羧基被甲醇酯化,另一个羧基被叶绿醇酯化。

不溶于水而溶于有机溶剂如酒精、丙酮、石油醚。

叶绿素a为蓝绿色,叶绿素b为黄绿色。

结构的基本特点为拥有一个卟啉环头部及一条叶醇链尾部。

其卟啉环头部由四个甲烯基和四个吡咯环连接而成,大环中央有一个镁原子和四个氮原子结合。

镁原子带正电荷,相连的氮原子偏于带负电荷,因此卟啉环呈极性亲水,可以与蛋白质结合。

尾部叶醇基具有疏水性,为脂溶性物质。

叶绿素a、b结构基本相同,以-CHO代替CH3即为叶绿素b。

叶绿素吸收光谱3、纸层析可行原因:a、色素可提取b、色素可以溶解于某些溶剂中c、不同类型色素在同一溶剂中溶解度不同d、色素分子不会吸附滤纸纤维上e、色素分子可以在体外条件下稳定存在4、本次实验叶绿素a、b含量比值偏低,说明实验有误差。

而由于叶绿素a含有醛基,易于被氧化,亦可导致a的含量下降。

同时由于实验在11月末进行,植物中叶绿素含量下降,a,b的比值可能会受影响。

5、实验注意事项:a、叶片要选取绿色较深的部位,去除叶脉;b、尽量先剪碎,便于之后的研磨;c、研磨前加入二氧化硅和碳酸钠,注意用量。

量少研磨不充分,叶绿素会被液泡中的有机酸破坏;量大不易过滤完全且会使色素层析时颜色变淡;d、过滤时所用棉花不可过多,否则滤液完全被棉花吸收。

叶绿素含量的测定

叶绿素含量的测定

海洋生物学实验浮游植物叶绿素含量的测定一、实验目的:1、通过浮游植物细胞密度与单位水体叶绿素a(Chla)含量的测定,了解浮游植物数量和生物量的表示方法,并对不同粒径浮游植物加以比较。

2、学会使用采水瓶、水样固定、浓缩及浮游植物计数框的方法,掌握叶绿素a的测定方法。

二、原理:见《海洋生态学》P192-194生物量是指某一特定时间、某一特定范围内存在的有机体的量。

浮游植物是海洋生态系统的初级生产者,而初级生产水平与叶绿素a 含量存在密切关系,因而往往用叶绿素a含量来表示浮游植物的生物量。

海洋生态系统的种类组成结构以及能流、物质流特征与初级生产者的粒径大小有密切关系。

不同类型海区初级生产者的粒径组成存在很大差异,了解某一特定海区初级生产者的粒径组成,有助于深入研究海区的新生产力水平、营养平衡状态等结构、功能特征。

三、仪器与设备:1、分光光度计3、采水瓶4、抽滤器5、微孔滤膜6、冰箱7、离心机四、药品与试剂:丙硐、甲醛、MgCO3等。

五、实验步骤:1、采样:选择完站位后,以500mL、或1000mL采水瓶采取一定水层(也可几个水层比较)的水样。

2、水样处理:将所取水样分别以0.45μm微孔滤膜(叶绿素a 总量)、2μm核孔滤膜(>2μm孔径叶绿素a含量)以及先经20μm孔径筛绢过滤后再以2μm核孔滤膜(2-20μm孔径叶绿素a含量)过滤,以90%丙酮溶解滤膜后冰冻过夜。

3、数据测定:滤膜冰冻24小时后取出离心,取上清液于分光光度计测定叶绿素a含量(方法见附页),将所得不同孔径叶绿素a 含量及占叶绿素a总量比例等数据填入测定数据表中。

附:叶绿素a含量测定方法(分光光度法):A.检测限:0.02mg/m3。

B.方法概述:已知体积的海水以玻璃纤维过滤器过滤,用90%丙酮将色素从滤器上萃取出来,其浓度以分光光度法测定。

C.仪器和设备:1、分光光度计2、抽滤器3、电动吸引器4、采水瓶5、微孔滤膜6、离心沉淀器7、冰箱8、离心管D.取样方法和贮存:将0.5-10升海水经0.45μm微孔滤膜过滤。

实验二、植物叶绿素含量测定----丙酮提取法

实验二、植物叶绿素含量测定----丙酮提取法

二、植物叶绿素含量测定----丙酮提取法高等植物光合作用过程中利用的光能是通过叶绿体色素(光合色素)吸收的。

叶绿体色素由叶绿素a、叶绿素b、胡萝卜素和叶黄素组成。

叶绿体色素的提取、分离和测定是研究它们的特性以及在光合中作用的第一步。

叶片叶绿素含量与光合作用密切相关,是反眏叶片生理状态的重要指标。

在植物光合生理、发育生理和抗性生理研究中经常需要测定叶绿素含量。

叶绿素含量也是指导作物栽培生产和选育作物品种的重要指标。

[原理]叶绿素不溶于水,溶于有机溶剂,可用多种有机溶剂,如丙酮、乙醇或二甲基亚砜等研磨提取或浸泡提取。

叶绿色素在特定提取溶液中对特定波长的光有最大吸收,用分光光度计测定在该波长下叶绿素溶液的吸光度(也称为光密度),再根据叶绿素在该波长下的吸收系数即可计算叶绿素含量。

利用分光光计测定叶绿素含量的依据是Lambert-Beer定律,即当一束单色光通过溶液时,溶液的吸光度与溶液的浓度和液层厚度的乘积成正比。

其数学表达式为:A=Kbc式中:A为吸光度;K为吸光系数;b为溶液的厚度;c为溶液浓度。

叶绿素a、b的丙酮溶液在可见光范围内的最大吸收峰分别位于663、645nm处。

叶绿素a和b 在663nm处的吸光系数(当溶液厚度为1cm,叶绿素浓度为g·L-1时的吸光度)分别为82.04和9.27;在645nm处的吸光系数分别为16.75和45.60。

根据Lambert-Beer定律,叶绿素溶液在663nm和645nm处的吸光度(A663和A645)与溶液中叶绿素a、b和总浓度(a+b)(C a、C b、C a十b,单位为g·L-1),的关系可分别用下列方程式表示:A663=82.04C a+9.27C b (1)A645=16.76C a+45.60C b(2)解方程(1)和(2)得:C a=12.7 A663—2.59 A645 (3)C b=22.9 A645—4.67 A663(4)C a十b=20.3 A645—8.04 A663(5)从公式(3)、(4)、(5)可以看出,只要测得叶绿素溶液在663nm和645nm处的吸光度,就可计算出提取液中的叶绿素a、b浓度和叶绿素总浓度(a+b)。

植物含量测定实验报告

植物含量测定实验报告

植物含量测定实验报告1. 引言植物含量测定实验是植物学研究中常用的实验方法之一。

通过测定植物体内的水分含量、叶绿素含量和干物质含量,可以了解植物的生长状况和生理状态。

本实验旨在通过测定不同植物样本的含量,比较它们的生长状况,为进一步研究提供数据支持。

2. 实验设计2.1 实验目的- 测定植物样本的水分含量- 测定植物样本的叶绿素含量- 测定植物样本的干物质含量- 比较不同植物样本的含量差异2.2 实验材料和仪器- 植物样本(不同种类植物或同一种类植物不同处理)- 称量仪- 烘干器- 榨汁器- 叶绿素测定仪2.3 实验步骤1. 收集植物样本,并记录样本的来源和处理信息。

2. 手工切碎植物样本,以便更好地测定水分和干物质含量。

3. 将切碎的样本称重,并记录初始重量。

4. 将样本放入烘干器中,烘干至恒重(重量不再发生变化),称重并记录干重。

5. 计算并记录样本的水分含量和干物质含量。

6. 使用榨汁器榨取植物样本的汁液,并记录榨汁液的重量。

7. 使用叶绿素测定仪测定榨汁液中的叶绿素含量,并记录结果。

3. 实验结果3.1 植物样本的含量测定结果以下为实验测定得到的植物样本含量数据(以百分比表示):样本编号水分含量干物质含量叶绿素含量-样本1 68.2 31.8 2.5样本2 73.5 26.5 3.2样本3 65.9 34.1 2.83.2 植物样本的含量差异比较通过比较不同植物样本的含量数据,可以得出以下结论:1. 植物样本1、2、3的水分含量分别为68.2%、73.5%和65.9%,样本2的水分含量最高,样本3的水分含量最低。

2. 植物样本1、2、3的干物质含量分别为31.8%、26.5%和34.1%,样本3的干物质含量最高,样本2的干物质含量最低。

3. 植物样本1、2、3的叶绿素含量分别为2.5%、3.2%和2.8%,样本2的叶绿素含量最高,样本1的叶绿素含量最低。

4. 结论本实验通过测定不同植物样本的水分含量、干物质含量和叶绿素含量,并对结果进行比较,得出以下结论:1. 不同植物样本的水分含量存在显著差异,这可能与植物的生长环境和生理特性有关。

不同环境条件下植物叶绿素a、b含量地比较

不同环境条件下植物叶绿素a、b含量地比较

一、实验课题名称:不同环境条件下植物叶绿素a、b含量的比较二、选题背景或文献综述:《植物生理学实验指导》(第四版)、《植物生理学》(第六版)、上网查阅相关资料阴生植物也称“阴性植物”,是在较弱的光照条件下生长良好的植物,但并不是阴生植物对光照强度的要求越弱越好,而是必须达到阴生植物的补偿点,植物才能正常生长,阳生植物也称“阳性植物”,光照强度对植物的生长发育及形态结构的形成有重要作用,在强光环境中生长发育健壮,在阴蔽和弱光条件下生长发育不良的植物称阳性植物,这类植物要求全日照,并且在水分、温度等条件适合的情况下,不存在光照过强的问题。

阳生植物和阴生植物的区别:关于光的饱和点和补偿点光是光合作用的能量来源,光照强度直接影响光合速率,在其它条件都适宜的情况下,在一定范围内,光合速率随光照强度提高而加快,当光照强度高到一定数值后,光照强度再提高而光合速率不再加快,这种现象叫光饱和现象。

开始达到光饱和现象的光照强度称为光饱和点,在光饱和点以下,随着光照强度减弱,光合速率减慢,当减弱到一定光照强度时,光合作用吸收二氧化碳量与呼吸释放二氧化碳的量处于动态平衡,这时的光照强度称为光补偿点。

此时植物制造有机物量和消耗有机物量相等,不同类型植物的光饱和点和补偿点是不同的,阳性植物的光饱和点和补偿点一般都高于阴性植物。

结构和特性的区别:阴生植物的叶片的疏导组织比阳生植物稀疏,以叶绿体来说,阳生植物有较大的基粒,基粒片层数目多的多,叶绿素含量也高,阴生植物在较低的光照条件下充分的吸收光线,叶绿素a/叶绿素b的比值小,能够强烈的利用蓝紫光,阳性植物叶片小而厚,表面具蜡质或绒毛,叶脉密,单位面积内气孔多,叶绿素含量高,体内含盐分多,渗透压高,可以抗高温干旱,阳生植物的气孔一般在叶片下表皮分布的数量多于上表皮,这样可以避免阳光直晒而减少水分散失,阳生植物的呼吸速率高于阴生植物。

区分阳生植物与阴生植物,主要是根据植物对光照强度需要的不同,阳生植物要求充分直射日光才能生长或生长良好,阴生植物适宜于生长在荫蔽环境中,它们在完全日照下反而生长不良或不能生长,阳生植物和阴生植物之所以能适应不同光照,是与它们的生理特征和形态特征不同有关,以光饱和点来说,阳生植物的光饱合点是全光照(即全部太阳光照)的100%,而阴生植物是全光照的10%~50%。

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