有丝分裂实验

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有丝分裂观察 实验报告

有丝分裂观察 实验报告

有丝分裂观察实验报告有丝分裂观察实验报告引言:细胞是构成生物体的基本单位,而细胞分裂是细胞生命周期中至关重要的一环。

细胞分裂的过程可以分为两种类型:有丝分裂和无丝分裂。

本次实验的目的是通过显微镜观察和记录有丝分裂的各个阶段,并深入了解细胞分裂的机制。

材料与方法:1. 显微镜:用于观察细胞分裂的细节。

2. 细胞样本:我们选择了洋葱的根尖作为观察对象,因为根尖细胞在分裂活跃,且细胞数量众多。

3. 盐水:用于制作细胞悬液,保持细胞的正常状态。

4. 盖片和载玻片:用于制作细胞悬液的载体。

5. 染色剂:我们使用了伊红染色剂,用于增强细胞的对比度,便于观察。

实验步骤:1. 将洋葱根尖切下并放入盐水中,用镊子轻轻剥离外层的细胞。

2. 将剥离的细胞放入盖片上,并加入一滴盐水制成细胞悬液。

3. 加入一滴伊红染色剂,轻轻搅拌均匀。

4. 将载玻片放到显微镜下,调整镜片至合适的放大倍数。

5. 仔细观察细胞的各个阶段,并记录下来。

结果与讨论:经过观察,我们可以清晰地看到洋葱根尖细胞的有丝分裂过程。

有丝分裂分为五个阶段:前期、早期、中期、晚期和末期。

前期:在这个阶段,细胞核开始逐渐变大,染色质开始凝聚成染色体。

细胞核膜开始消失,纺锤体逐渐形成。

早期:在这个阶段,染色体进一步凝缩,纺锤体的纤维开始连接到染色体的中央区域。

这个阶段是有丝分裂的关键时刻。

中期:在这个阶段,染色体排列在细胞的中央区域,纺锤体的纤维与染色体的着丝粒相连。

细胞开始缩小。

晚期:在这个阶段,染色体开始分离成两个完全相同的染色体。

纺锤体的纤维逐渐消失,细胞核膜开始重新形成。

末期:在这个阶段,细胞完全分离成两个子细胞,并形成两个独立的细胞核。

细胞开始进入下一个细胞周期。

通过观察有丝分裂的各个阶段,我们深入了解了细胞分裂的机制。

有丝分裂是一种高度有序的过程,确保了细胞的遗传物质在分裂过程中的准确传递。

纺锤体的形成和消失是有丝分裂过程中的关键步骤,它负责将染色体正确分离到两个子细胞中。

有丝分裂实验报告

有丝分裂实验报告

有丝分裂实验报告有丝分裂实验报告引言:有丝分裂是生物界最基本的细胞分裂方式之一,它在生物体的生长、发育和修复过程中起着至关重要的作用。

本实验旨在观察和研究有丝分裂的过程,以及了解其在细胞生物学中的重要性。

实验材料与方法:材料:- 大麦芽酵母细胞- 甘露醇溶液- 乙醇- 青霉素-链霉素溶液- 无菌玻璃片- 显微镜方法:1. 将大麦芽酵母细胞培养在含有甘露醇的培养基中,保持在恒温恒湿的环境中。

2. 取适量的培养基中的细胞液滴于无菌玻璃片上。

3. 使用另一片无菌玻璃片将细胞液均匀涂抹开,使其形成一个薄而均匀的细胞涂片。

4. 将细胞涂片浸泡在青霉素-链霉素溶液中,使细胞固定。

5. 用乙醇进行脱水处理,使细胞涂片干燥。

6. 将细胞涂片放置在显微镜下,使用高倍镜观察细胞的有丝分裂过程,并记录所见现象。

实验结果与讨论:通过观察显微镜下的细胞涂片,我们可以清晰地看到大麦芽酵母细胞的有丝分裂过程。

有丝分裂可分为四个阶段:前期、中期、后期和末期。

前期阶段:在前期,细胞核逐渐变大,并且染色质开始凝聚成条状。

此时,细胞核膜逐渐消失,细胞质中出现纺锤体。

中期阶段:在中期,染色质进一步凝聚成染色体,并排列在纺锤体的中央区域。

纺锤体的纤维逐渐伸长,将染色体拉向两侧。

后期阶段:在后期,染色体分散在两个细胞极端,纺锤体逐渐退缩。

同时,细胞核膜开始重新形成。

末期阶段:在末期,细胞核膜完全形成,染色体解开,细胞质分裂,形成两个新的细胞。

通过观察实验结果,我们可以得出以下结论:1. 有丝分裂是一种有序而复杂的过程,它确保了细胞遗传物质的准确传递。

2. 在有丝分裂过程中,染色体的凝聚和分散是细胞遗传物质传递的关键步骤。

3. 纺锤体的形成和运动是有丝分裂过程中的重要组成部分,它通过拉动染色体的运动,确保了染色体的平分到两个新细胞中。

4. 有丝分裂的不同阶段具有明显的特征,通过观察这些特征,我们可以准确地判断细胞处于哪个阶段。

结论:有丝分裂是生物体中细胞分裂的重要方式之一,通过观察大麦芽酵母细胞的有丝分裂过程,我们可以更好地理解细胞的生命周期和遗传物质的传递。

初中生物有丝分裂实验教案

初中生物有丝分裂实验教案

初中生物有丝分裂实验教案
实验目的:通过观察有丝分裂的过程,了解细胞分裂的基本原理。

实验材料:洋葱、盐水、显微镜、玻片、提取器、草酸天蓝溶液、显微镜片、载玻片。

实验步骤:
1. 准备工作:将洋葱切成薄片,将盐水倒入盛有洋葱片的容器中,浸泡片刻,然后用提取
器将洋葱片取出并晾干备用。

2. 染色:将洋葱片放在载玻片上,滴上草酸天蓝溶液,静置片刻后用吸纸吸干余液。

3. 准备镜头和载片:将玻片放在显微镜片上,并调节显微镜,将洋葱片放在玻片上即可开
始观察。

4. 观察有丝分裂过程:通过显微镜观察洋葱根尖的细胞,观察到不同阶段的有丝分裂过程,比如分裂纺锤体形成、染色体分离等。

5. 记录实验结果:用笔和纸记录观察到的细胞分裂过程,注意起始时间、细胞数量和不同
阶段的变化。

实验注意事项:
1. 实验过程中要小心操作显微镜和实验用具,防止损坏。

2. 实验时要注意保持实验环境的清洁和整洁,防止细菌污染。

3. 实验结束后要归还实验用具,并清理实验台面。

备注:有丝分裂实验是生物学中非常基础的实验,通过实验可以直观地观察到细胞分裂的
过程,有助于加深对这一生物学现象的理解。

有丝分裂实验步骤

有丝分裂实验步骤

有丝分裂实验步骤实验前的准备:1.准备实验所需的材料:活酵母细胞、生理盐水、1M哈氏氯。

2.准备显微镜装置:显微镜、玻镜、盖玻片、显微镜载物架。

3.根据实验要求,选择适当的实验条件,包括温度、pH值和灯光强度。

实验过程:1.从培养皿中取出一部分酵母细胞,将其转移到一个离心管中,然后在离心管中加入一定量的生理盐水以稀释细胞悬浮液,使细胞悬浮液浓度适宜。

2.用离心管轻轻搅拌细胞悬浮液,使细胞均匀分布在悬浮液中。

3.用玻璃针或草酸溶液将细胞悬浮液中的细胞吸入显微镜载物架中,然后用盖玻片盖住。

4.将载有细胞的显微镜载物架放入显微镜中,调整镜头和焦距,找到适当的倍率和焦平面。

5.开始观察和记录细胞的有丝分裂过程。

注意细胞的形态和结构的变化,包括染色质的凝聚、有丝分裂纺锤体的形成和消失、核膜的分离和重组等。

6.使用摄像设备或数码相机记录有丝分裂的视频或图片。

实验后的分析:1.回放或打印有丝分裂的录像或图片,进行观察和分析。

注意有丝分裂过程中各个阶段的持续时间、细胞结构的变化和细胞数量的变化。

2.统计和计算有丝分裂过程中各个阶段的细胞数量和持续时间的平均值,以及其他统计参数。

3.根据实验结果,分析有丝分裂过程是否正常,比较不同条件下有丝分裂过程的差异,推测不同因素对有丝分裂的影响。

4.将实验结果与已知的有关有丝分裂的知识进行对比和讨论,验证实验结果的可靠性和科学性。

5.根据实验结果和讨论的结论,写出实验报告,包括实验目的、方法、结果、讨论和结论。

有丝分裂实验是一种常用且重要的实验方法,可以帮助科学家研究细胞的有丝分裂过程,探索细胞生物学中的诸多问题。

通过合理设计实验步骤和仔细分析实验结果,可以得到可靠的实验结论,为细胞生物学的研究提供重要的理论和实验基础。

高中生物实验有丝分裂教案

高中生物实验有丝分裂教案

高中生物实验有丝分裂教案
实验目的:通过观察有丝分裂过程,了解细胞有丝分裂的特点和重要性。

实验器材和试剂:
1. 显微镜
2. 盖玻片
3. 直尺
4. 玻璃棒
5. 水蛭
6. 肝细胞片
7. 甲醇
8. 苯酚
9. 吲哚
10. 盐水
实验步骤:
1. 将肝细胞片放入盐水中,用玻璃棒压碎均匀,制备细胞悬浊液。

2. 用吲哚预处理水蛭,使其产生有丝分裂,并取出水蛭卵母细胞。

3. 将卵母细胞取出涂在盖玻片上,加入甲醇、苯酚进行固定。

4. 将固定的卵母细胞片放置在显微镜下,调节放大倍率,观察有丝分裂的各个阶段。

5. 记录观察结果,包括细胞核的形态、数量和位置等。

实验要点:
1. 小心操作,避免细胞污染和损伤。

2. 观察时要细心观察,注意细胞核、纺锤体等细胞器的形态变化。

3. 实验结束后及时清洗实验器材,保持实验环境整洁。

实验总结:
通过本实验,我们可以清楚地观察到有丝分裂的各个阶段,了解细胞有丝分裂对于细胞生长和再生的重要性,加深对生命的奥秘和细胞生物学知识的理解。

植物的有丝分裂实验方法

植物的有丝分裂实验方法

实验过程:取材,解离,漂洗,染色,制片,观察,绘图.具体步骤:1. 取材:课前,将洋葱放在装满水的广口瓶上,底部接触水,装置放在温暖环境中,待根长至1-5cm.注意培养基应经常换水,目的是防止烂根(乙醇发酵).在上午10点——下午2点左右(分生区细胞分裂旺盛),切取其根尖(带有分生区)2-3mm.2. 解离:解离液为盐酸,时间为10——15min目的是使组织细胞相互分离开.(细胞壁由纤维素和果胶构成)解离时间过长,染色体被破坏.解离时间过短,组织细胞解离不充分,不能相互分离.此时通过解离已将细胞杀死,使细胞停留在不同的分裂时期,不会再发生变化而保持原来形态.由于看不到细胞的动态变化,故不可移动装片在视野周围寻找细胞的不同分裂期.3. 漂洗:漂洗液为水,时间为10min目的是洗去盐酸以防解离过度和便于染色.4. 染色:染色液为龙胆紫或醋酸洋红溶液(pH<7,但为有色阳离子碱性染料)目的是使染色体着色.染色时间过长——太深,无法观察.染色时间过短——太浅,不易观察.5. 制片:染色结束后盖上盖玻片,用拇指轻压盖玻片使细胞分散开.6. 观察:先低倍镜观察——找到根尖分生区.再高倍镜观察——找到各时期的细胞.注意:1. 解离和压片都有利于根尖分生细胞的分散,便于观察.2. 若视野内部部分细胞清晰而部分不清晰,则可能是根尖压片厚薄不均.3. 不能取成熟植物材料,因为其不再分裂,无法观察其有丝分裂.4. 动物细胞圆形,植物细胞方形.5. 若切取根尖太长,会导致视野中有大量伸长区,成熟区细胞,干扰了分生区细胞的观察.6. 合适地选取材料:分裂期时间越长(错误)分裂期时间在细胞周期的占比越大(正确)这样越容易找到不同分裂时期的图象.7. 滴加清水(使舒展),弄碎根尖以及压片都有利于细胞分散.8. 根尖分生区细胞无叶绿体,但可培养出含叶绿体的植株.9. 若用酶解处理,所用的酶是果胶酶.。

有丝分裂的实验原理

有丝分裂的实验原理

有丝分裂的实验原理
有丝分裂是一种细胞分裂过程,负责细胞的生长和再生。

它涉及两个主要阶段:有丝分裂和细胞质分裂。

以下是有丝分裂实验的原理:
1.准备样本:从一个正在进行有丝分裂的细胞中获取样本。

这可以通过取自植物根尖或动物体组织的细胞来完成。

2.处理样本:将细胞样本在一定时间内处理,以导致细胞进入不同的有丝分裂阶段。

这可以通过借助化学物质如科里定、分裂酶等来实现。

3.固定与染色:使用适当的固定剂(如甲醛)处理细胞样本,以止裂时的细胞结构。

之后,对样本进行染色以突出细胞核和染色体。

4.显微镜观察:将处理后的细胞样本放置在显微镜下观察。

透过增大显微镜镜头和调整对焦,可以准确观察到不同有丝分裂阶段的细胞。

5.记录和分析:观察并记录细胞的变化,包括染色体的数量、形状和位置。

通过分析记录的数据,可以得出有关有丝分裂过程中染色体的行为和细胞的变化的结论。

通过这些实验步骤,可以更好地理解细胞分裂的过程,并对细胞生长和再生进行进一步研究。

实验 观察有丝分裂

实验 观察有丝分裂
解离液
注:解离时间过短→细胞会重叠,分不清染色体 解离时间过长→解离过度,根尖结构会被破坏
(二)装片的制作 解离→漂洗→染色→制片
2.漂洗
(目的:洗去药液,防止解离过度。)
清水
注: 未漂洗的影响:影响染色,即染色体着色浅,模糊不清
3.染色
龙胆紫溶液或者醋酸洋红液
目的:使镜下会一片紫色, 无法看清染色体。
(1)实验原理 (2)实验材料
解离液:15%盐酸+95%酒精(1:1) 染色剂:龙胆紫染液(或醋酸洋红染液)紫色
(3)实验步骤
阅读教材
(一)洋葱根尖培养
(二)装片的制作
解离→漂洗→染色→制片 (三)显微观察
(一)洋葱根尖培养 待其根长5cm
(二)装片的制作 解离→漂洗→染色→制片
1.解离 目的:使组织中的细胞相互分离开来
第1节 细胞的增殖
实验 观察根尖分生组织细胞的有丝分裂
选材: ①分裂能力旺盛的部位, 如根尖、芽尖。 ②分裂期占分裂周期比例大
③染色体数目较少,便于观察
洋葱根尖结构
根毛区
伸长区 5cm
分生区 (2—3mm)
根冠
分生区:①根尖只有该区域有丝分裂旺盛,
②细胞呈正方形,排列紧密, ③无液泡和叶绿体
4.制片
压片
(三)观察
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植物细胞周期观察
一、实验目的
1.学会植物细胞、组织的固定、离析和压片方法,了解并初步掌握制作临时玻片和永久玻片的方法。

2.观察有丝分裂过程中染色体的形态特征和动态变化过程,着重了解分裂期内中、后期染色体变化的特征。

二、实验原理
植物根尖分生组织的细胞,依一定的程序有规律地进行着有丝分裂过程,植物种类不同,细胞周期所需时间不同。

每天都有分裂高峰时间,此时把根尖固定,经过染色和压片,再放置在显微镜下进行观察,可以看到大量处于有丝分裂各时期的细胞和染色体。

一些植物根尖细胞的分裂周期(小时)
根尖与茎尖是有丝分裂的高发部位,根尖由于取材方便,是观察植物染色体最常用的材料,根尖染色体压片法,是观察植物染色体最常用的方法,也是研究染色体组型、染色体分带、染色体畸变和姊妹染色单体交换的基础。

如果植物种子难以发芽,或仅有植株而无种子,也可以用茎尖作为材料。

实验结果显示:植物细胞分裂周期的长短不尽相同,通常在十到几十小时之间,温度明显地影响细胞分裂周期,同时不同植物有丝分裂高峰时间不尽相同,洋葱根尖细胞以6点到9点分裂相较多。

适于取材。

三、实验材料
大蒜、洋葱的鳞茎或蚕豆的种子
四、实验器具和药品
1.用具:载玻片,盖玻片,指管,试剂瓶,滴瓶,镊子,解剖针,吸水纸。

2.药品:无水酒精,冰醋酸,醋酸钠,改良苯酚品红。

五、实验过程
1.材料培养
先剪去洋葱的老根,然后置于盛有水的烧杯上,等不定根长出2cm时,进行预处理;或将蚕豆等种子经过吸胀处理24小时后,平展于铺有吸水纸的白磁盘中,加入适当量的水,于25℃培养,待侧根长到2cm进行预处理。

2.预处理
3.取材固定
将预处理后的根尖剪下,放入卡诺固定液,固定2~24小时。

然后依次放入90%、80%和70%酒精溶液,最后保存于70%酒精溶液中放于冰箱中,但保存时间最好不超过2个月。

4.制片:
水洗:将从保存液中取出的根尖用水冲洗掉酒精;
解离及制片:解离的目的是使分生组织细胞间的果胶质分解,细胞壁软化或部分分解,使细胞和染色体容易分散压平,解离方法有酸解法和酶解法。

酸解法是用盐酸水解根尖,步骤简便、容易掌握,广泛应用于染色体计数、核型分析和染色体畸变的观察。

根尖分生组织经过酸解和压片后,都呈单细胞,但是大部分分裂细胞的染色体还包在细胞壁中间。

将水洗后的根尖放到0.1mol/LHCl中,在60℃水浴中解离8-10分钟,或用浓盐酸:乙醇=1:1混合溶液处理根尖10分钟。

用蒸馏水漂洗酸解后的根尖,放在载玻片上。

将根冠和伸长区以上部位切去,保留分生组织细胞,并将生长点细胞切成细碎组织,根据分生组织的的大小,一般每一根尖可制片3~4片,加上1滴改良苯酚品红染色液,染色10~15分钟。

根尖着色后即可压片观察。

酶解法常用于染色体显带技术或姊妹染色单体交换等项研究,通过解离和压片,使分生细胞的原生质体,能够从细胞壁里压出,再经过精心的压片,使染色体周围不带有细胞质或仅有小量细胞质,易于进行观察。

将水中漂洗过的根尖用刀片切除根冠以及延长区(根尖较粗的蚕豆,可以把根尖
分生组织切成2—3片),把根尖分生组织放到醋酸钠配制的纤维素酶(2%)和果胶酶(0.5%)的混合液中,在28℃温箱中解离4—5小时,此时组织已被酶液浸透而呈淡褐色,质地柔软而仍可用镊子夹起,用滴管将酶液吸掉,再滴上0.1mol /L醋酸钠,使组织中的酶液渐渐渗出,再换入45%醋酸。

酶解后的根尖,如作分带或姊妹染色单体交换,可用45%醋酸压片,如作核型分析或染色体计数等常规压片,可放在改良苯酚品红中染色,经过酶处理的组织染色速度快。

一个解离良好的材料,只要用镊子尖轻轻的敲打盖玻片,分生组织细胞就可铺展成薄薄的一层,再用毛边纸把多余的染色液吸干,经显微镜检查后,选择理想的分裂细胞,再在这个细胞附近轻轻敲打,使重叠的染色体渐渐分散,就能得到理想的分裂相。

5.观察:
选择细胞分散、分裂相较多以及染色体形态舒展的制片进行观察。

注意观察细胞有丝分裂各时期特点。

6.封片:把压好的玻片标本,放在于冰或冰箱结冰器里冻结。

然后用刀片迅速把盖玻片和载玻片分开,用电吹风把玻片吹干后,滴上油派胶加上盖玻片封片,或经二甲苯透明后,滴中性树胶,加盖玻片封片,做成永久封片。

六、注意事项:
1.压片材料要少,避免细胞紧贴在一起,致使细胞和染色体没有伸展的余地;2.解离时间不可过长,以免染色体结构受损;
3.用镊子敲打盖玻片时,用力要均匀,若在压片时稍不留意,会使个别染色体丢失,而被迫放弃一个良好的分裂相的细胞。

七、附录
1.卡诺固定液的配制:用3份无水酒精,加入1份冰醋酸(现配现用)
2.酶液的配制:
以0.1ml/L醋酸钠为溶剂,配成纤维素酶(2%)和果胶酶(0.5%)的混和液。

3.酸解溶液:1N盐酸或浓盐酸和乙醇各一份混合配成。

4.染色液的配制:
4.1 配方1.石碳酸品红(Carbol . fuchsin),先配母液A和B。

母液A:称取3克碱性品红,溶解于100毫升的70%酒精中(此液可长期保存)。

母液B:取母液A10毫升,加入90毫升的5%石碳酸水溶液(2周内使用)。

石碳酸品红染色液:
取母液B 45毫升,加入6毫升冰醋酸和6毫升37%的甲醛。

此染色液含有较多的甲醛,在植物原生质体培养过程中,观察核分裂比较适宜,后来在此基础上,加以改良的配方II,称改良石碳酸品红,可以普遍应用于植物染色体的压片技术。

4.2 配方II:改良石碳酸品红
取配方1.石碳酸品红染色液2一10毫升,加入90—98毫升45%的醋酸和1.8克山梨醇(sorbit01)。

此染色液初配好时颜色较浅,放置二周后,染色能力显著增强,在室温下不产生沉淀而较稳定。

八、实验流程图:
培养(根部遮光培养)

预处理

取材

固定

制片:水洗酸解水洗染色压片

观察(注意观察有丝分裂各时期染色体特征)。

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