红曲霉菌株的分离鉴定及产红曲色素发酵条件优化

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红曲霉高产菌株筛选及固态发酵研究

红曲霉高产菌株筛选及固态发酵研究
红曲霉（Monascus）是一种重要的微生物资源，具有很高的发酵能力和广泛的应用价值。

红曲霉可以产生丰富的红色素，被广泛用于食品、饮料和保健品等行业。

本研究旨在
筛选高产红色素的红曲霉菌株，并研究其在固态发酵过程中的生长和产色情况。

从市场上购买了几种红曲粉样品，并进行菌株筛选。

将样品接种到琼脂平板培养基中，培养一段时间后，观察和比较菌落数量和颜色深浅，筛选出产菌量高和颜色鲜艳的菌株。

然后，选取产色较高的红曲霉菌株进行固态发酵实验。

制备适合红曲霉生长和产色的
固态培养基。

将红曲菌株接种到培养基上，使用恒温器控制温度和湿度。

在发酵过程中，
定期对培养基进行观察和采样，分析红色素含量的变化和菌落的生长情况。

通过对筛选出的菌株进行固态发酵研究，我们可以获得以下几个方面的结果：
1. 菌株的生长情况：通过观察和比较不同菌株的菌落直径和菌丝密度，可以确定哪
些菌株在固态发酵过程中具有较好的生长能力。

2. 产色情况：通过测定固态培养基中红色素的含量和颜色的深浅，可以确定产色较
高的菌株。

可以通过比较不同菌株在不同发酵时间下的红色素含量的变化趋势，确定最佳
的发酵时间。

3. 培养条件的优化：通过调节培养基的成分、pH值、温度和湿度等条件，可以进一
步提高红曲霉的产色能力和生长速度。

可以通过单因素实验和响应面实验等方法，确定最
佳的培养条件。

本研究通过筛选高产红色素的红曲霉菌株，并在固态发酵过程中研究其生长和产色情况，可以为红曲霉的产业化生产和利用提供科学依据和技术支持。

红曲菌发酵优化及其红色素提取特性研究

红曲菌发酵优化及其红色素提取特性研究红曲菌是一种常见的真菌，它具有广泛的应用价值。

在食品工业中，红曲菌可以用于发酵制作红曲米和红曲酱，这些产品不仅具有独特的风味，还具有保健作用。

本文将探讨红曲菌的发酵优化及其红色素提取特性研究。

首先，红曲菌的发酵优化是实现优质产品生产的关键。

红曲菌的发酵条件包括温度、pH值、发酵时间等因素。

通过对这些发酵条件的调节，可以最大限度地提高红曲菌的发酵效率和产红色素的量。

研究发现，适宜的发酵温度为25-30摄氏度，pH值在6-7之间，发酵时间为7-10天。

此外，适当添加一些辅助物质，如氨基酸和无机盐等，也有助于提高发酵效果和产红色素的量。

其次，红曲菌所产生的红色素具有多种保健功能。

红色素主要由红曲素和红曲酮组成。

这两种化合物具有抗氧化、抗癌、抗菌等多种生物活性。

研究表明，红曲素能够抗氧化，减少自由基对细胞的损害，从而有助于延缓衰老和预防慢性疾病的发生。

而红曲酮则具有潜在的抗肿瘤活性，可以抑制肿瘤细胞的增殖和转移。

此外，红色素还具有一定的抗菌作用，可以抑制多种细菌和真菌的生长繁殖。

然而，红曲菌的红色素提取技术也是一个重要的研究方向。

传统的红色素提取方法主要采用有机溶剂提取，但这种方法存在成本高、环境污染等问题。

因此，有必要寻找一种高效、环保的红色素提取方法。

近年来，超临界流体萃取技术逐渐被应用于红色素的提取中。

超临界流体具有高溶解能力和调控性，可以提高红色素的提取效率，并减少有机溶剂的使用量，从而降低生产成本和环境污染。

此外，还有一些新的红色素提取技术在不断发展中，如超声波辅助提取、微波辅助提取等。

最后，红曲菌的发酵优化和红色素提取特性研究对于提高红曲产品的质量和效益具有重要意义。

通过合理的发酵条件和优化的提取技术，可以提高红曲菌的产红色素能力，并最大限度地保留红色素的生物活性。

在产品应用方面，红色素可以被用于食品添加剂、保健品和医药等领域。

因此，进一步研究红曲菌的发酵和提取技术，有助于开发出更多高附加值的红曲产品，促进相关产业的发展。

红曲霉高产菌株筛选及固态发酵研究

红曲霉高产菌株筛选及固态发酵研究红曲霉（Monascus）是一种重要的食品、药用真菌，具有制作红曹和红曲色素的能力。

红曲霉色素是一种天然的食品着色剂，被广泛应用于食品加工和制药工业。

而红曲霉也是一种可以用于生物转化生产脂质和多糖等重要化合物的微生物。

红曲霉高产菌株的筛选及固态发酵研究对于提高红曲霉发酵产物的产量和质量具有重要意义。

一、红曲霉高产菌株筛选1. 优良菌株的选择红曲霉菌株的筛选是红曲生物技术研究的关键之一。

目前，常用的筛选方法是通过对菌株的培养条件、生理生化特性以及代谢产物等进行评价，从中选取表现出高产、高效、高稳定性的优良菌株。

在筛选过程中，需要考虑到不同菌株之间的遗传变异、发酵产物的生产能力等因素，综合评价后确定优良菌株。

2. 根据菌株代谢产物进行筛选红曲霉菌株具备多样的代谢产物，包括红曲素、黄酮素、黄酮甾醇和多糖等。

在筛选优良菌株时，可以通过检测这些代谢产物的合成能力，选择产量高、纯度高、质量好的优良菌株。

还可以采用高通量筛选技术，如基因组学、代谢组学和蛋白质组学等方法，加快筛选速度，提高筛选效率，为选取优良菌株提供科学依据。

3. 利用基因工程技术筛选优良菌株利用基因工程技术，可以对红曲霉的代谢途径进行调控和优化，从而提高其生产产物的能力。

通过转录组分析和基因功能鉴定，可以筛选出与产物合成相关的关键基因，并通过基因工程技术对这些基因进行改造、调控，从而提高产物的产量和质量。

二、红曲霉固态发酵研究1. 固态发酵的基本原理固态发酵是指微生物在不同有机物基质中进行生长和代谢过程。

相比于液态发酵，固态发酵具有体系复杂、生物多样性丰富、营养物质丰富等优点。

对于红曲霉来说，固态发酵可以有效提高产物的产量和质量，加快生长速度，促进代谢物的生成，增强抗胁迫能力。

2. 固态发酵的工艺优化固态发酵的工艺优化是红曲霉生物技术研究的重中之重。

优化工艺可以从发酵基质的选择、培养基成分、发酵条件等方面入手，通过对各项参数进行调控和优化，提高红曲霉的产物产量和质量。

产粉红色素红曲霉M4菌株发酵培养基的优化

氨基酸和生物资源
２１，２２２００３（）：６—２９
ＡｍｉｏＡｃｎｉｄｓ＆ＢｉｔｏｉｃＲｅｏｒｅｓｕｃｓ
产粉红色素红曲霉Ｍ４菌株发酵培养基的优化
王昌禄，传宝，勉华，玉荣，郑陈王班昭，杨华
（品营养与安全教育部重点实验室，津科技大学食品工程与生物技术学院，食天天津３０５）０４７
蔗糖、米粉、玉大米粉、红薯粉为碳源，其它为大豆蛋
到５Ｌ种子培养基中，００ｍ３￣Ｃ振荡培养３。按０ｈ
１％接种量接人到５００ｍＬ发酵培养基中，０Ｃ１０３￣８
ｒ・ｎ。养８—１。ｍｉ。培０ｄ１４３色价的测定．．
将Ｍｏａｃｓ４接人斜面培养基中，０ｎｓｕＭ３ ℃培养５
７ｄ。加人５ｍＬ无菌水于斜面制成孢子悬液，接
５０装液量５Ｌ２０ｍ。．，０ｍ／５Ｌ（）发酵培养基３碳源优化培养基：别以６的甘油、萄糖、分％葡
白０５、ａＯ０２，酸调ｐ至５０装液量．％ＮＮ．％乳Ｈ．，
５／５０ｍＬ２０ｍＬ。
作为肉制品的发色剂，在崇尚健康饮食的今天具有
十分重要的意义。。
目前，市场上红曲色素产品主要由红色和黄色
摘要：利用响应面法对红曲霉Ｍ４产粉红色红曲色素的发酵培养基进行了优化。研究了不同碳源、氮源对红曲霉Ｍ４产色素的影响，利用Ｃｎｒｏｐｓｅｅｔｌｍｏｉ试验设计对碳源、ａｃｔ氮源浓度进行了试验，得到红曲色素优化培养基回归方程为Ｙ＝１８０１３．００＋１．２６Ｘ＋０６８２Ｘ —１．３５Ｘ１１７Ｘ２．３４６２２０６９１．９２５２２３７５＋．５ｌ —０３７９Ｘ经分析，Ｘ确定出红曲色素的最佳发酵培养基碳、氮源浓度为：红薯粉１．７，０３％大豆蛋白０８％，．５发酵后红曲色素最高色价为每毫升４。ｌｕ关键词：响应面；红曲霉菌；色价；优化

红曲霉液态发酵生产红曲色素条件优化

红曲霉液态发酵生产红曲色素条件优化王远卓（南阳师范学院生命科学与技术学院）摘要：为了提高红曲色素的液态发酵水平，降低生产成本，采用单因素实验和正交试验获得了最佳工艺条件：葡萄糖30g/L，硝酸钠15g/L，PH5.5，液态量关键词：红曲霉、红曲色素、液态发酵、单因素实验、正交实验Abstract：In order to improve the yield of Monascus pigment and reduce the production costs,Key words：Monascus、Monascuspigment、submerged fermentation、、orthogonal experiment引言红曲霉菌属真菌界，子囊菌门，真子囊菌纲，散子囊菌目，红曲霉科，红曲霉属。

红曲色素是红曲霉生长过程中分泌的次级代谢产物，红曲色素分为红色素、橙色素和黄色素，是一种天然的着色剂，红曲色素可以用于肉制品、腐乳、糕点、糖果、冷饮、清酒、酱油等食品，也可用于化妆品；此外，红曲色素还有抑菌防腐的作用，还可作为医药用品具有降血脂、降血压、抗疲劳、抗肿瘤等保健作用。

培养红曲霉菌有俩种方法：固态发酵和液态发酵。

本次实验以紫色红曲霉菌液态发酵为基础，通过单因素实验和正交试验获得最好的优化条件。

本次试验改变的单因素实验条件有：碳源、氮源、PH及液态量这四个变量，本次实验通过改变这四个变量来探究红曲霉色素的最佳摇瓶发酵条件。

1 实验1 .1材料1.1.1 菌种红曲米培养出的紫色红曲霉菌.1.1.2 仪器设备LDZM立式压力蒸汽灭菌器（上海申安医疗器械厂）、ZSD-1160生化培养箱、DZKM-4电子恒温水浴锅、SW-CJ-IFD型单人单面净化工作台（苏州净化）、ZHWY-2112B 双层特大容量全温度恒温培养动荡器、PL602-S电子天平、752型紫外可见分光光度计、TDL-5A型台式低速离心机.1.1.3 培养基固体培养基：葡萄糖30g、NaNO33g、酵母提取物（酵母粉）1g、K2HPO41g、MgSO4·7H2O0.5g、KCl 0.5g、FeSO40.01g、PH5.6、琼脂20g、蒸馏水1L、121℃灭菌20min.液态培养基：葡萄糖30g、NaNO33g、酵母提取物（酵母粉）1g、K2HPO41g、MgSO4·7H2O0.5g、KCl 0.5g、FeSO40.01g、PH5.6、蒸馏水1L、121℃灭菌20min.1.1.4 主要试剂葡萄糖、蔗糖、淀粉、尿素、氯化铵、硝酸钠、乳酸.1.2 方法1.1.1 固体培养基培养红曲米菌种称取5g红曲米研磨后加入45ml的无菌水后混匀，放入60℃水浴锅中加热30min，加热后取悬浮液1ml加入固体培养基中在30℃恒温培养箱中培养，大概5天后长出来的菌种，然后选取长的旺的菌种用平板划线法筛选单个菌种群落，培养5天后，选取长的好的单个菌种鉴定，本次实验用培养出来的紫色红曲霉菌种（图1）作为条件优化的基础。

红曲菌株的分离纯化和鉴定

红曲菌株的分离纯化和鉴定【摘要】［目的］对红腐乳中的红曲菌进行分离纯化和鉴定。

［方法］根据红曲菌嗜酸、耐乙醇的生长特性，用含乙醇的麦芽汁、含乳酸的大米培养基分离红腐乳汁中的红曲菌，并用对数稀释平板法进行纯化。

纯化后的红曲菌显微观察确定其属别。

依照其在MEA培养基上25℃培养的菌落形态特征鉴定到种。

［结果］从红腐乳中分离的两个菌株经鉴定M-1属丛毛红曲菌（M.pilosus），M-3属红曲红曲菌（M.anka）。

［结论］红腐乳中分离的纯培养为红曲属真菌。

【关键词】红曲菌；分离；纯化；鉴定Abstract：［Objective］To isolate，purify and identify Monascus strains from red furu.［Method］Based on eosinophilic and ethanol tolerant characteristics of Monascus，stains were isolated from red furu by culturing on malt juice medium containing alcohol and rice medium containing lactic acid.Strains were purified using logarithmic plate dilution method，and then determined genera according to their micro-morphological characteristics.By culturing on malt extract agar medium with temperature of 25 degrees Celsius，strains were identified to species based on the morphological characteristics of colonies.［Result］M-1strain isolated from red furu was identified as Monascus pilosus and M-2 Monascus anka.［Conclusion］Strains isolated from red furn are Monascus fungi.Key words：Monascus；isolation；purification；identification红曲菌隶属真菌界（Eumycophyta）子囊菌门（Ascomycota）真子囊菌纲（Euascomycetes）散子囊菌目（Eurotiales）红曲菌科（Monascaceae）红曲属（Monascus）［1］，具有防腐，解毒；消食活血、健脾燥胃之功效［2］。

产红曲色素菌株的筛选及发酵培养基优化

红曲霉的发酵产物红曲色素是天然、安全的色素和防腐剂，在酿酒、食品、食用色素、中药等方面有广泛应用［１］。与其他天然食用色素相比，红曲色素除了具有着色力强，色调柔和，对ｐＨ稳定等优点外］，还有较强的耐光、耐酸碱、耐氧化还原的特性，几乎不受金
ｄｏｉ：１０．３９６９／ｊ．ｉｓｓｎ．１ｏｏＯ一９９７３．２０１３．０７．０１３
ＳｃｒｅｅｎｉｎｇｏｆＭｏｎａｓｃｕｓＳｔｒａｉｎｓａｎｄ０ｐｔｉｍｉｚａｔｉｏｎｏｆＦｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎＭｅｄｉｕｍ
２琼脂，于１２１℃灭菌２０ｍｉｎ。
ＰＤＡ斜面培养基（质量浓度，）：参照文献［５］。
种子培养基（质量浓度，）：葡萄糖１，酵母膏
０．５，ｐＨ５．８，于１２１℃灭菌２０ｍｉｎ。
ｒｅａｃｈｅｓ７２．８Ｕ／ｍＬｗｈｅｎｉｎｉｔｉａｌｐＨｉｓ５．０，ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｉｓ３０ ℃，ｒｏｔａｔｅｓｐｅｅｄｉｓ
基础液体发酵培养基（质量浓度，）：大米粉４，ＮａＮＯ３０．２，ＫＨ２ＰＯ ‘０．１５，ＭｇＳＯ ‘０．１，ｐＨ自然，于

红曲霉固态发酵产红曲色素研究进展

红曲霉固态发酵产红曲色素研究进展摘要：红曲是将红曲菌（Monascusspp.）接种于大米等淀粉类原料并经发酵的传统发酵产品。

我国是红曲的发源国，也是全球最大的生产国。

红曲产品按其用途可分为色曲、功能曲和酿造曲等，在食品、药品和化妆品中广泛应用，经济价值较高。

本文就红曲霉固态发酵产红曲色素的相关问题进行了探讨。

关键词：红曲霉；固态发酵；红曲色素前言红曲霉菌是一种丝状真菌，在发酵过程中可产生以洛伐他汀（Lovastatin）、红曲色素为主的具有降血脂、抗氧化功效的次级代谢产物。

已有研究表明红曲霉菌发酵过程中产生糖化酶、蛋白酶等酶类，将原料中多糖、蛋白质等大分子物质降解成人体易于吸收的小分子片段，同时产生新的活性次级代谢产物。

红曲霉发酵的过程中，产生色素、莫拉克林、γ－氨基丁酸（GABA）等次生代谢物，这些次生代谢物可用于食品着色剂、制作降胆固醇和降压药物，可见红曲具有很高的经济价值。

近几年，对红曲霉的研究主要集中在优良菌株的筛选及培养条件的优化。

红曲霉属于子囊菌，能产生耐热的子囊孢子，且红曲霉能在缺氧、高酸和高盐浓度下生存。

红曲霉可用于酿酒（黄酒、果酒和药酒）、制作发酵食品（腐乳、酱菜）、食品着色及保健品等。

红曲产品在亚洲地区广为流传，常见的为由大米发酵制成的红曲米，简称红曲，其被当做功能性食品已有数千年历史。

红曲最初被记载于《饮膳正要》，别名为赤曲、丹曲、红米、福曲、红大米、红槽等。

1红曲霉色素食品加工通常会导致食品色泽的变化，因此往往需要色素来改善其不良色泽，但目前对合成色素的研究表明其具有潜在的致癌物和致突变性，且可能导致某些儿童疾病。

因此，天然色素的生产就显得尤为重要。

红曲霉色素（Monascus pigments，MP）是红曲霉发酵的次生代谢产物。

红曲霉能合成31种颜色的色素，其中最为主要的是红色素、橙色素和黄色素，它们是苯并呋喃类混合物。

目前红色素中能明确结构式的为红斑胺素、红曲红胺素；橙色为红斑红曲素和红曲红素；黄色为红曲素和安卡红曲黄素。

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反复分离纯化得到较纯的菌株，保藏。
Ｌ３２菌株形态学观察．
红曲菌生物资源做了有益探索。
１实验
１１材料、剂和仪器．试
将筛选的菌株的孢子划线接种到形态鉴定培养基平板上，放人培养箱中，０℃倒置培养，天观察记录３每各菌株的菌落形态。菌丝和孢子显微结构的观察采用插片培养法Ｅ将接种好的培养皿置于３，０℃恒温培养
性试验、慢性毒性试验和致突变试验表明，曲色素无红
毒副作用和致突变作用。随着人们对合成食品添加剂
和化学药物对人体毒副作用的认识，世界各国掀起了
食用绿色食品和使用天然药物的热潮，曲作为药食红兼用的天然制品，引起了极大的关注。与化工合成的
出版社，００２１．
［３彭中健，淑娃，郧东，．曲霉深层发酵生产红曲色素的研８梁陈等红究［］四川食品与发酵，０４４（）２— １Ｊ．２０，０３：８３．［］后家衡，９叶砚，晓波，．曲霉产色素发酵条件优化及抑菌性徐等红
摘要：市售红曲发酵产品中成功分离得到１株红曲霉纯培养茵株，中一株肉眼观察高产红色素，过形态特从５其通
征观察‘ 定该红曲霉菌株为红色红曲茵（ｎｓｓｕｅ）命名为Ｒ－。对红曲霉Ｒ＿液体摇瓶发酵工艺进行了，确Ｍｏａｃｂｒ，ｕｒＰ１Ｐ１的初步研究，结果发现：当接种量为１％、养基初始ｐ值为６０时，５培Ｈ．最有利于红曲色素的合成。
［］ＷｏｇＨＫｏｈｅ．ｔｎｏｎｓｕ－ｉｍｅｔｐｏｕ— ３ｎＣ，ｅｌｒＰＥＭｕａｔｆｒＭｏａｃｓｐｇｎｒｄｃ
ｔｎＪ．ｏｄＳｉｎｅ１８，６３：５ —５．ｉＩ］Ｆｏｃｃ，９１４（）９６９７ｏ－ｅ
［１ＢｉＤ，ｈｎＷａ，ｔ１Ｍｉｏｌａｉｍｅｔｏｅ — ４ａＭＣｅｇＣＨ，ｎＨＭｅａ．ｃａｇｌｇｎｓｐｔｎｒｐｔｌｓｙｒｄｃｓｎｌｉｒｄｃｉｎＪ．ｏｒａｏｅＴｉｎＩ— ｉｐｏｕｔｉｉｄｐｏｕｔ［］Ｊｕｎｌｆｈａｗａｎａａｂｐｏｔ
步有必要对分离到的Ｒ一Ｐ１进行１Ｓｒ８ＤＮＡ、ＧＣ含量测定以进行准确鉴定。
，ａｖｌｏＪＣ，ｉＯ，ａｄｙＡ，ｔＩｉｐ１３ＣｒａｈＯｓｉＰｎｅｅａＢｏｉｍｅｔｆｍｏｓｈＢ．ｇｎｓｒＭ－ｏｎｓｕ：ｔａｎｓｌｔｎｃｒｉｒｄｃｉｎａｄｃｌｒｓｂｌｙＪ．ａｃｓＳｒｉｅｃｉ，ｉｉｎｐｏｕｔｎｏｏｔｉｔ［］ｅｏｔｎｏａｉ
能的测定［．刀上海交通大学学报（业科学版）２０，７４：６ — 农，０９２（）３３
３．６７
参数对红曲霉ＲＰ１液体发酵产红曲色素色价有影一响，接种量为１、５培养基初始ｐ值为６０时，有Ｈ．最
市售功能性红曲米粉，曲发酵饲料，腐乳等。红红
收稿日期：０２０ — １２１－５９
作者简介：庄禧懿（９１）男，江金华人，士研究生，１８一，浙硕主要从事微生物方面的研究；讯作者：卫华，士，教授，－ｉ通储博副Ｅｍａ．ｌ－
２１，ｏ２Ｎ．０ＶＩ９ｏ９亿与生物Ｚ程２．
Ｃｈｍｉｔｙ＆Ｂｉｅｎｉｅｉｇｅｓｒｏｇｎｅｒｎ
ｄｉｌ．９９ｊｉｓ．６２５２．０２０．１ｏ：Ｏ３６／．ｓｎ１７ — ４５２１．９０６
究表明，～ｚ％的接种量、养基初始ｐ值７０５ｏ培Ｈ．最有利于红曲色素的合成。他们的研究结果与本研究
有所差别，明红曲霉不同菌株产色素能力有着很大表差异，化发酵条件可以显著提高色素色价，优因此进行色素高产菌株筛选和发酵条件优化是十分有必要的。
ｓｉｕｅｏｔｔｆＣｈｍｉａｇｎｅｓ２１４（）：８ — ８．ｔｅｃｌＥｎｉｅｒ，０１，２５７３７６
３结论
从市售红曲发酵产品中成功分离得到１５株红曲霉纯培养菌株，中一株肉眼观察高产红色素，其通过形态特征观察，步鉴定该菌株为红曲属（ｎｓｕ）初Ｍｏａｃｓ中的红色红曲菌（ｎｓｕｕｅ）命名为ＲＰ１Ｍｏａｃｓｂｒ，ｒ一。下一
分离培养基：１马铃薯葡萄糖琼脂培养基（ＤＡ（）Ｐ培养基）（）加拉红培养基；３麦芽汁液体培养基；２孟（）
加乳酸调ｐ值２５加１％（积分数，Ｈ．，０体下同）乙醇。形态鉴定平板培养基：１麦芽汁琼脂培养基（（）Ｗａ
菌目（ｕｏｉｌ）红曲菌科（ｎｓａｅｅ、曲菌属Ｅｒｔｅ、ａｓＭｏａｃｃａ）红
乳酸，无水乙醇。高压灭菌锅，电热恒温培养箱，温摇床，恒超净工作台，微镜，一１０型分光光度计等。显ＵＶ２０
红曲霉菌株的分离鉴定及产红曲色素发酵条件优化
庄禧懿储卫华。，马兴旺朱，卫
（．国药科大学生命科学与技术学院，苏南京２００；１中江１０９
２南京日升康生物工程有限公司，苏南京２１０）．江１１３
ＢｒｚｌｎＡｒｈｖｓｏｉｌｇｎｃｎｌｇ２０，８（）：８－ａｉａｃｉｅｆＢｏｏｙａｄＴｅｈｏｏｙ，０５４６８５ｉ
８４９．
［］Ｍａａｉ，ｅｓｎＫＦ，ａｓｎＴＯ，ｔａＥｐｏｉｇｆｎａ６ｐｒＳＡＳＮｉｌＬｒｅｅ１ｘｌｒｕｇｌｅ．ｎ
ｃｕｉｕ２０＠ｙｈｏｃｒ。ｈｗｅｈａ０２ａｏ．ｏｎ
目— —— —— ——— —一 —— ——— ——— —
庄懿：曲菌的离定产曲素酵件化２２簟禧等红霉株分鉴及红色发条优／１９ｌｏ年Ｎｉ
Ｅ］邢旺兴，荣珍，鹤鸣。几种常见红曲霉的生理学特性研究２程宓等．［．刀药学实践杂志。０１１（）：３－３．２０，９４２１２４
关键词：曲茵；离；化；定；红分纯鉴色素；酵条件发中图分类号：１．Ｑ８４１文献标识码：Ａ文章编号：６２４５２１）９０４０１７ —５２（０２０ —０６－３
红衄霉菌属真菌界（ｕｃｐｙａ、囊菌门Ｅｍｙｏｈｔ）子（ｃｍｙｏａ、Ａｓｏｃｔ）真子囊菌纲（ｕｓｏｃｔｓ、子囊Ｅａｃｍｙｅｅ）散
色素相比，红曲色素具有安全性高、定性好、稳色调柔
０１ｐ值６０．，Ｈ．。
１３方法．
Ｉ３１红曲霉菌株的分离．．
称取１．００ｇ红曲粉，加入到９ＯｍＬ带玻璃球的无菌生理盐水中，摇１ｎ１振０ｍｉ，０倍梯度稀释。吸取０１ｍＬ．稀释液涂布于分离培养基上，０℃ 培养３３～７ｄ挑取单菌落转移接种到新的分离培养基培养，，经
利于红色素的合成。
参考文献：
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ｔｎｉｌａｕａｏｏｏａｔｌ］Ｃｒｅｔｉｉｎｉｉｔｃｎｌ— ｅｔｔｒｌｏｄｃｌｒｎｓＪ．ｕｒｎｎｏＢｏｅｈｏｏａｎｆ，Ｏｐｎ