PV金典(第二版)
电影文化知识题库
电影文化知识题库随着电影产业的发展，越来越多的人对电影文化产生浓厚的兴趣。
然而，即使是最狂热的电影迷也不可能知道每一部电影的所有细节。
因此，在这个时代，拥有电影文化知识库是至关重要的。
电影文化知识库是一个包含有关电影、电影制作、电影人物、电影历史、电影产业发展等方面的信息的数据库。
本文将介绍电影文化知识库的重要性以及如何创建和使用它。
1.电影文化知识库的重要性电影文化知识库可以帮助人们更好地了解电影产业的发展历程、电影制作过程和电影人物的背景等。
在接下来的几个方面中，将进一步解释为什么电影文化知识库是如此重要。
1.1 帮助理解电影如果你想要真正理解电影，你需要了解电影中的各个要素，包括故事情节、演员表演、电影音乐、摄影技巧等。
通过电影文化知识库，您可以更加深入地了解这些方面。
举个例子，如果您正在观看一部电影，您可能会注意到电影中的声音效果有多么的棒，然而了解到有关音响技术的知识后，您就可以更好地理解为什么这部电影的声音效果如此出色。
1.2 帮助了解电影历史电影历史是电影文化的重要组成部分。
了解关于电影产业的发展历程、电影标志性事件、电影流派等信息，不仅可以从历史的角度看待电影，同时也可以帮助人们更好地欣赏电影，并对当今电影产业的现状和未来发展进行更好的分析。
1.3 帮助研究电影制作过程电影制作是一个极其复杂的过程，它包括编剧、摄影、音效、演员表演等众多环节。
了解电影制作的各个阶段需要学习相关的技术和概念，熟悉相关的工具和流程。
电影文化知识库可以为学习电影制作的人们提供必要的帮助，让他们更好地掌握电影制作技术和交流相关工作。
2.如何创建电影文化知识库在创建电影文化知识库时，需要明确知识库的分类和内容范围。
尽管电影文化知识库可以包括无限的电影信息，但是最好将其细分为以下几个方面：电影制作技术和工艺、电影史、电影风格和流派、电影行业和电影人物，还有电影和社会文化的关系。
2.1 电影制作技术和工艺在电影制作技术和工艺方面，知识库中可以包括各种拍摄、剪辑和特效技术。
影视文学教程第2版PPT第三章 文学与电影
小说不再表现社会现实，不再表达思想， 语言本身就是小说的目的。 现代小说的语言不再描述形象，在语言的书写中，有形的、外在的现实已经不 复存在，甚至就连幻象也难以形成。
布鲁斯东所说的小说不再“反映现实”，而是“创造现实”的感 觉，也仅能代表某种先锋小说观念。 对比巴赞所谈论的当代小说，即可以知道现实主义小说远未消亡， 因此， 以是否反映现实来判断小说和电影艺术水准的高低，则未 免以偏概全了。
• 艺术作品的世界并非一个封闭的世界，它必须要敞开自己并将现实世界作 为重要的参照系。艺术的空间与现实的空间比较起来总是显得狭小局促， 而要使有限的艺术空间容纳更多的内容，那就必然会引起形式上创新的诉 求。电影或小说艺术的发展恰好回应了这样的艺术认知视角。开放的艺术 观念，从时间的维度上也显示出小说和电影所遇到的共同问题。现实时间 的无限性和艺术作品时间的有限性再次形成了奇妙的对比。
思考与练习
１．乔治·布鲁斯东是如何谈论电影与文学的差异性的？ P52-59 ２．温斯顿认为电影与小说相同的意识流手法有哪些？举例说明。 P64-66 ３．克拉考尔是如何论述电影与小说相近之处的？ P59-63 ４．在贝纳德·迪克看来，电影与文学的叙事手法有哪些相同之处？ P67-68 ５．凯思·科恩是如何论述电影 “不连续的连续性”特点的？ P70-71
凯思·柯恩认为，电影的 蒙太奇技巧助长了现代 小说家的某些反传统倾 向，因为电影蒙太奇具 有不连续的连续性特点。 电影经验的这种固有的 自相矛盾特征，可以称 作为 “不连续的连续 性”，并且也揭示了电 影视点可以很容易地发 生自由转换的特点。这 就意味着观众要培养起 自我连续电影各个环节 的能力。
书籍名称大全
学广告及平面设计必看书籍word精品
学广告及平面设计必看书籍1《当代广告学》，［美］威廉阿伦斯，华夏出版社，19992 •《一个广告人的自白》，［美］大卫奥格威，中国友谊出版社3 •《现代公共关系学》，黄禧祯，广东高教出版社4 •《策划学全书》，胡屹，中国社会出版社5.《定位》，［美］里斯？特劳特，中国财政经济出版社6 •《公共关系的战略与战术》，［美］丹尼斯？威尔科克斯等，解放出版社7 .《世界上最迷人的公关大师》，夏年喜，工商出版社&《杰克？韦尔奇自传》，［美］杰克？韦尔奇、约翰？拜恩，中信出版社9 .《海尔，中国造》，颜建军、胡泳，三环出版社10.《世界上最卓越的广告大师》，鲍文杰，工商出版社11•《广告创意训练教程》，郭肖华，高等教育出版社12•《策划与广告技巧及误区》，吴灿，四川人民出版社13•《新编现代广告策划实务》，文浩，蓝天出版社14. 《广告创意100》，卢泰宏等，广州出版社15. 《广告经典100》雪琴，广州出版社16. 《成功广告80例》，［台］颜伯勤，中国友谊出版公司17. 《广告人手记》，叶茂中，企业管理出版社，199918•《媒介事件：历史的现场直播》，［美］丹尼尔？戴扬等，北京广播学院出版社19. 《全球传播》，卡迈利保尔，清华大学出版社20. 《广告目标与效果测定》，［美］所罗门杜卡，内蒙古人民出版社21. 《社会心理学》，沙莲香，中国人民大学出版社22. 《松下经营哲学》，［日］松下幸之助，延边大学出版社23. 《社会心理语言学》，王德春，上海外语教育出版社24. 《工商管理精选教材广告学教程》，李宝元人民邮电出版社25. 《新编中外广告通史》，刘家林暨南大学出版社26. 《感性、悟性与理性广告语》，白光主编中国经济出版社27. 《经典创意广告书架一一4A杰出人性创意96例》，张惠辛，华夏出版社28. 《如何做大广告》，梁庭嘉，汕头大学出版社29. 《广告理论与策划》，赵路李东进韩德昌编著，天津大学出版社30. 《Photoshop CS广告设计大师》，李九宏编著，清华大学出版社31. 《广告英语一本通》，王燕希编著，对外经济贸易大学出版社32. 《如何进入广告业》，［美］安德雷？内德尔陕西师范大学出版社33. 《广告片头制作精粹》，北京色维空间数码动画制作有限公司编著，中国物资出版社34. 《一张广告单提升3倍营业额》，［日］泽田求中村聪树，科学出版社35. 《广告理论与实务》，刘俭云朱杰芦毅刚，民族出版社36. 《海尔背后：海尔广告全面代理纪实》，冯帼英/朱海松，广东经济出版社37. 《电脑美术平面设计实例教程丛书一一广告设计实例篇》，丁建超主编中国水利水电出版社38. 《电脑美术平面设计实例教程丛书一一广告制作实例篇》，丁建超主编中国水利水电出版社39. 《国外广告创意》，鹿耀世主编中国画报出版社40. 《经典创意广告书架——价值过亿：人性策划的故事》, 张惠辛华夏出版社41. 《广告战略——营销传播策划指南》, ［美］唐纳德?帕伦特中信出版社42. 《为世纪代言：中国近代广告》, 黄志伟/黄莹学林出版社43. 《著名企业营销与广告策划方案》, 伊立编著蓝天出版社44. 《艺术设计项目案例导航一一3ds max广告与影视动画设计精解》，腾龙视觉设计工作室编著, 科学出版社45. 《Soffim afe XSI 影视广告片头全攻略》，科学出版社46. 《公关第一，广告第二》，［美］阿尔?里斯等，上海人民出版社47. 《设计实例轻松学习——3ds max6 广告设计创意精粹》，张宏卫等，清华大学出版社48. 《赛艾诺策划实务丛书——营销广告策划实务》，熊超群，广东经济出版社49. 《再见老广告》，由国庆编，百花文艺出版社50. 《历届中国广告节金奖作品集：1986-2003》，大贺集团编，江苏美术出版社51. 《文化社会学》，司马云杰，山东人民出版社52. 《广告创意与策略——市场营销系列》，英文版，东北财大出版社53. 《创新思维设计丛书?前卫广告设计系列——有意味的形式：广告表现的形式语言》，张雪，重庆大学出版社54. 《广告摄影技术教程》，刘立宾，中国摄影出版社55. 《广告?中国（1979-2003）》，寇非，中国工商出版社56. 《广告创新经营实战点击》，罗振林等，中国工商出版社57. 《新视界广告与品牌书系——公益广告的奥秘》，张明新，广东经济出版社58. 《赢在简单一一广告策划与运作速成读本》，［英］A.D.Ferbey ，中国水利水电出版社59. 《广告心理学：对与成功广告息息相关的心理学原理的简明阐述》，［美］斯科特，中国发展出版社60. 《暨南大学MBA 微型案例库——用案例学管理：广告、促销与推销策略》，傅浙铭编著，南方日报出版社61. 《解密创意：李光斗影视广告创意结晶》，李光斗，广东旅游出版社62. 《21世纪外经贸英语丛书——广告与广告英语》，戚云方，浙江大学出版社63. 《艺术设计（广告?动画?影视）书系——广告摄影教程》，张亚杰，北京广播学院出版社64. 《预测决策方法——在广告中的应用》，齐小华，北京广播学院出版社65. 《广告艺术设计素描教程》，舒怡，北京广播学院出版社66. 《广告心理学》北京广播出版社67. 《有效广告投资——怎样选择广告公司》，倪政兴，西南财经大学出版社68. 《英文广告实用手册》，梁婷等，西南财经大学出版社69. 《平面广告新思维》，李巍编著，重庆出版社70. 《广告设施设计与检测技术》，王肇民，蒋演德等（编著），机械工业出版社71. 《传播科技纵横》，闵大洪著，警官教育出版社72. 《网络为王》，胡泳、范海燕著，海南出版社73. 《第三次浪潮》，［美］阿尔温.托夫勒著，三联书店74. 《广告艰难的说服——广告对美国社会影响的不确定性》，华夏出版社75. 《奥格威谈广告》，［美］大卫?奥格威机械工业出版社76. 《文化语言学论纲》，申小龙著，广西教育出版社77. 《中国社会语言学》，郭熙著，南京大学出版社78. 《广告艺术设计》，陈琏年黄吉淳编著，重庆大学出版社79. 《现代社会学》 ,［ 日］北川隆吉主编，中国人民大学出版社80. 《大众文化与传媒》 ，陆扬、王毅，三联书店81. 《创新思维设计丛书 ?前卫广告设计系列》 ，张雪李巍，重庆大学出版社82. 《广告大师奥格威 —— 未公诸于世的选集》 ，［美］大卫 ?奥格威，机械工业出版社83. 《旋转创意魔方：现代广告创意的魅力》84. 《广告经典故事：超级名牌的广告战略》85. 《唾弃游戏规则：非主流创意的终极挑战》86. 《叛逆者的步伐：后现代主义广告思潮》87. 《新编现代广告策划实务》 ，文浩编著 蓝天出版社 88. 《注意力行销》 ， ［美］ 肯?萨可瑞，汕头大学出版社89. 《台湾创意百科 —— 房地产广告设计》 ，高文治编著 岭南美术出版社90. 《设计师谈网页广告条设计》 ， ［ 韩 ］郑慧淑，金善爱 ， 电子工业出版社91.《广告人Must Read :制作成功广告的最高指导原则》，［美］贺许？高登？路易斯，汕头大学出版社 92. 《广告游戏》 ，黄文博， 汕头大学出版社93. 《财经易文 ——颠覆广告》 ， ［法］让-马贺 ?杜瑞 中国财政经济出版社94. 《真知灼见:中国广告人基础培训教程》 ，朱海松编， 广东经济出版社95. 《文化广告学》 ，陈月明（主编） ，国际文化出版公司96. 《方法比知识重要系列丛书 —— 国际 4A 广告公司基本操作流程》 ， 朱海松 , 广东经济 出版社 97. 《中华人民共和国广告法》 ， 法律出版社98. 《网络广告设计》 ，金琳 ，上海人民美术出版社99. 《POP 广告实务综合篇》 ， 庄景雄 ，中国青年出版社100. 《当代广告摄影》 ， 王天平等 ，上海人民出版社《中国广告猛进史 （1979-2003 ）》 国际广告杂志社、 北京广播学院广告学院、 IAI 国际广告 华夏出版社《发展中的中国广告业 —— 中国广告业廿五年发展报告》中国广告年鉴编辑部 新华出版 社 《中外广告简史》 黄勇 四川大学出版社《丰裕的寓言：美国广告文化史》 ［美］杰克逊 李尔斯 上海人民出版社中国广告 20 年》 黄升民 武警音像出版社《广告 价值 消费一一香港电视广告20年》黄少仪 龙吟榜有限公司日本企业在华广告 20 年》 王菲、倪宁 中国轻工业出版社《爱看书的广告》 范用生活读书新知三联书店中国广告 25 年》 范鲁斌 中国大百科全书出版社 工商侧影 -一个世纪的广告经典》 周伟 光明日报出版社中国近现代经营广告创意评析》 林升栋 东南大学出版社 现代广告通论》 丁俊杰 中国物价出版社 20 世纪广告传播理论研究》 张金海 武汉大学出版社 新广告观》 黄升民 中国物价出版社广告流 —— 理论与实证分析》 丁汉青 新华出版社 广告学教程》 倪宁 中国人民大学出版社 广告理论与战略》 （日）清水公一 北京大学出版社消费者行为学（第八版） 》（英文版） 清华大学出版社广告心理》 马谋超 中国物价出版社广告心理学》 余小梅 北京广播学院出版社 广告心理学》 王怀明 中南大学出版社 说服的艺术 —— 广告心理解析》 张家平著 上海辞书出版社 广告调查（第二版） 》 黄升民、王冰、黄京华 中国物价出版社 广告文案写作（第二版） 》 高志宏、徐智明 中国物价出版社，李巍 重庆大学出版社 ，李巍 重庆大学出版社 ，李巍 张雪 重庆大学出版社 ，张雪 重庆大学出版社《谁主鱼》安德鲁杰夫知识出版社广告公司的经营与管理》何海明中国物价出版社新定位》特劳特、瑞维金中国财政经济出版社《营销战（修订版）》（美）艾里斯、杰克特劳特中国财政经济出版社营销革命》艾.里斯、杰克.特劳特中国财政经济出版社《公关第一广告第二》［美］阿尔里斯劳拉里斯著上海人民出版社《整合行销传播》［美］唐E舒尔茨等中国物价出版社全球整合营销传播》唐E 舒尔茨、菲利普J 凯奇中国财政经济出版社整合营销传播：创造企业价值的五大关键步骤》［美］唐舒尔茨等中国财政经济出版社《整合营销传播广告、促销与拓展（第六版）》（美）特伦斯.A.辛普北京大学出版社营销管理（第十一版）》［美］菲利普?科特勒梅清豪译上海人民出版社水平营销》（美）菲利普?科特勒中信出版社科特勒营销新论》菲利浦科特勒、迪派克詹恩、苏维麦森西中信出版社麦肯的方法》朱海松广东经济出版社国际4A 广告公司基本操作流程》朱海松广东经济出版社《国际4A广告公司媒介计划精要》阿诺德M•巴尔班等著朱海松译广东经济出版社国际4A 广告公司媒介策划基础》朱海松编广东经济出版社方法——国际著名广告公司操作工具》文武文线装书局实效主义与精信》李克湖南美术出版社智威汤逊的智》唐锐涛、劳双恩等著机械工业出版社电通如何成为第一》何辉中国市场出版社《奥美有情》（台）庄淑芬企业管理出版社《奥美的观点I》宋秩铭庄淑芬白崇亮黄复华等著企业管理出版社《奥美的观点II》宋秩铭、庄淑芬等著企业管理出版社《广告创意解码》贝纳德格塞雷、罗伯埃伯格中国物价出版社《创意撩人——视觉行销力与品牌创见》江绍雄中国传媒大学出版社《创意潜规则：发掘你的5 种构想力》（美）安奈特穆瑟-魏曼著汕头大学出版社《广告创意与文案》（美）乔治弗尔顿中国人民大学出版社《一开始就不同凡响》（美）琳达卡普兰塞勒中国社会科学出版社《广告创意完全手册》马里奥普瑞根编著中国青年出版社《广告创意法则：22 位超凡广告人解析成功广告奥秘》（美）迈克尔纽曼电子工业出版社《有效的广告创意——从实例分析到理论探索》张树庭主编中国传媒大学出版社《360 度品牌传播与管理》［美］马克布莱尔、理查德阿姆斯特朗、迈克墨菲著机械工业出版社《榜上客——全球28 位顶级华文创意人谈广告》龙吟榜杂志社中国物价出版社《孙大伟的异想世界》孙大伟中国物价出版社《广告痴人说梦话》林俊明中国物价出版社不抹口红的广告》伦洁莹中国物价出版社广告武林秘笈》张乐山中国物价出版社«¥ 19.99 :顶尖广告高手自曝行业内幕》〔法〕弗雷德里克贝格伯德二十一世纪出版社《广告箴言》［美］鲍勃加菲尔德中国财政经济出版社广告副作用》李欣频［台］晶冠出版社《蔚蓝诡计》（美）乔治路易斯著，刘家驯译中国友谊出版社贩卖创意》（美）肯罗曼等著庄淑芬译内蒙古人民出版社《实效的广告》（美）罗素瑞夫斯，张冰梅译内蒙古人民出版社《我的广告生涯科学的广告》（美）克劳德霍普金斯，邱凯生译新华出版社广告界无冕女王》（美）玛丽韦尔斯劳伦斯机械工业出版社鸡蛋里挑骨头》黄文博企业管理出版社颠覆广告》让－马贺杜瑞中国财政经济出版社广告媒体研究》陈俊良中国物价出版社网络广告》于刃刚、魏超河北人民出版社网络广告教程》屠忠俊著北京大学出版社网络广告第一课》（台）刘一赐新华出版社户外广告》樊志育、樊震上海人民出版社《从引进到建构——日本广告效果研究与实战》胡晓云浙江大学出版社《广告效果测定技术》樊志育上海人民出版社《营销广告英汉词典》（美）杰里M. 罗森堡著机械工业出版社《广告与广告英语》戚云方浙江大学出版社《广告英语教程》华英、马永堂经济管理出版社《少数派广告》王铮电子工业出版社《首席营销官的忠告（广告的终结）》（美）塞尔希奥齐曼、阿明布洛特机械工业出版社《数字化生存》（美）罗杰菲德勒华夏出版社《会展学原理》俞华、朱立文机械工业出版社《阿拉丁广告实用手册（2005-2006 ）》谢万杰、郭宏智中国传媒大学出版社《中国广告年鉴》中国广告年鉴编辑部新华出版社有效公共关系》（美）司格特卡特利普，明暗香译华夏出版社公共关系学》熊源伟著安徽人民出版社公共关系学》刘建宏中国广播电视出版社国际公关教程》郭惠民复旦大学出版社公共关系案例》涂光晋主编辽宁大学出版社优秀公共关系案例评选》郭惠民复旦大学出版社危机传播管理》胡百精中国传媒大学出版社解析传媒变局——来自中国传媒业第一现场的报告》喻国明南方日报出版社中国媒体市场大变局》黄升民中信出版社媒介经营与产业化研究》黄升民、丁俊杰北京广播学院出版社中国广电媒介集团化研究》黄升民中国物价出版社数字电视产业经营与商业模式》黄升民、周艳、宋红梅中国物价出版社新闻事业经营管理》吴文虎主编高等教育出版社报业经济与报业管理》唐绪军著新华出版社当代报业经营管理》屠忠俊著华中理工大学出版社媒介管理研究—广播电视管理创新体系》胡正荣北京广播学院出版社传媒经济导论》周鸿铎经济管理出版社传媒经营与管理》周鸿铎经济管理出版社传媒产业经营实务》周鸿铎新华出版社传媒影响力》喻国明南方日报出版社中国媒介经济的发展规律与趋势》宋建武等著中国人民大学出版社中国媒介经济与媒介运作》宋建武著新华出版社电视收视率解析》刘燕南北京广播学院出版社媒介经营管理》凌昊莹中国广播电视出版社媒介战略管理》邵培仁复旦大学出版社媒体与广告》钟以谦中国人民大学出版社《大电影产业》（美）巴里利特曼清华大学出版社新华文摘》现代传播》新闻与传播研究》新闻大学》国际新闻界》新闻界》国际广告》现代广告》广告大观》中国广告》广告导报》广告人》媒介》市场观察——广告主市场》广告直通车》21 世纪广告》广告研究》龙吟榜》销售与市场》创意》动脑》。
subtypes PCV2a and PCV2b by prolonging PCV2 viremia and shedding 2011
Porcine reproductive and respiratory syndrome virus(PRRSV)influences infection dynamics of porcine circovirus type2(PCV2)subtypes PCV2a and PCV2b by prolonging PCV2viremia and sheddingA.Sinha a,H.G.Shen a,S.Schalk a,N.M.Beach b,Y.W.Huang b,X.J.Meng b,P.G.Halbur a,T.Opriessnig a,*a Department of Veterinary Diagnostic and Production Animal Medicine,College of Veterinary Medicine,Iowa State University,1600S.16th Street,Ames,IA50011, USAb Department of Biomedical Sciences and Pathobiology,Center for Molecular Medicine and Infectious Diseases,College of Veterinary Medicine,Virginia Polytechnic Institute and State University,1981Kraft Drive,Blacksburg,VA24061,USA1.IntroductionPorcine circovirus type2(PCV2)is responsible forconsiderable economic loss in the swine industry world-wide(Segale´s et al.,2005a).Porcine circovirus associateddisease(PCVAD)can manifest as enteric,respiratory,reproductive and systemic disease(Opriessnig et al.,2007).Lymphoid depletion is the hallmark lesion of PCVAD(Segale´s et al.,2004)and is thought to induce immuno-suppression or immune-modulation in the host(Darwichet al.,2003)that often leads to secondary infections withother viral or bacterial pathogens(Pallare´s et al.,2002;Kimet al.,2003;Dorr et al.,2007).PCV2is a single-stranded,non-enveloped,DNA virus(Tischer et al.,1982;Crowther et al.,2003)that has beendivided into several subtypes of which PCV2a and PCV2bVeterinary Microbiology152(2011)235–246A R T I C L E I N F OArticle history:Received2December2010Received in revised form19March2011Accepted4May2011Keywords:Co-infectionPorcine circovirus type2(PCV2)Porcine reproductive and respiratorysyndrome virus(PRRSV)SheddingTransmissionA B S T R A C TThe objective of this study was to determine the effect of porcine reproductive andrespiratory syndrome virus(PRRSV)infection on porcine circovirus type2(PCV2)subtypesa(PCV2a)or b(PCV2b)viremia and shedding characteristics in oral,nasal and fecal samplesin experimentally infected pigs.Twenty-three,2-to6-week-old pigs were randomlydivided intofive groups:negative control(n=3),PCV2a-I(n=5),PCV2a-PRRSV-CoI(n=5),PCV2b-I(n=5),and PCV2b-PRRSV-CoI(n=5).Blood,oral,nasal and fecal swabs werecollected in regular intervals from day post inoculation(dpi)0until dpi70and tested byquantitative real-time PCR for the presence and amount of PCV2DNA and by ELISA for thepresence of PCV2-specific antibodies.The results indicate that there were significantly(P<0.05)higher loads of PCV2a and PCV2b DNA in serum,oral swabs,nasal swabs andfecal swabs and a higher prevalence of detectable PCV2antigen in tissues of pigsconcurrently infected with PCV2and PRRSV compared to pigs singularly infected withPCV2further confirming that PRRSV enhances replication of PCV2.Moreover,PRRSVinfection significantly prolonged the presence of PCV2DNA in serum and increased theamount of PCV2DNA in oral and nasal secretions and fecal excretions in the later stages ofinfection between dpi28and70.Shedding patterns were similar between groups infectedwith PCV2a and PCV2b,indicating that there was no subtype-specific interaction with thePRRSV isolate used in this study.The results from this study highlight the interactionbetween PRRSV and PCV2and the importance of controlling PRRSV infection in order toreduce PCV2virus loads in pig populations.ß2011Elsevier B.V.All rights reserved.*Corresponding author.Tel.:+15152941137;fax:+15152943564.E-mail address:tanjaopr@(T.Opriessnig).Contents lists available at ScienceDirectVeterinary Microbiologyj o u rn a l ho m e pa g e:w w w.e l s e v i e r.c o m/l o c a t e/v e t m i c0378-1135/$–see front matterß2011Elsevier B.V.All rights reserved.doi:10.1016/j.vetmic.2011.05.005have been documented worldwide(Segale´s et al.,2008). The less prevalent subtypes include PCV2c that has been reported only in Denmark in archived samples(Dupont et al.,2008)and PCV2d and PCV2e that have been reported in China(Wang et al.,2009).Several groups have characterized the shedding pat-terns of PCV2from pigs experimentally infected with PCV2 and found that PCV2is shed in nasal and oral secretions as well as in urine and feces(Magar et al.,2000;Bolin et al., 2001;Shibata et al.,2003;Segale´s et al.,2005b;Caprioli et al.,2006).Horizontal transmission of PCV2via oral-nasal and oral-fecal routes has been suggested as the main mechanism of infection(Segale´s et al.,2005b;Dupont et al.,2009)which was further confirmed by a recent experimental study(Patterson et al.,2011b).In a retrospective study involving146different swine case submissions to a veterinary diagnostic laboratory in Spain, serum,nasal,tonsillar,tracheobronchial,urinary and fecal swab samples were tested for the presence and quantity of PCV2(Segale´s et al.,2005b).The authors confirmed that shedding of PCV2occurs via the oronasal,urine and fecal routes and that the PCV2DNA load was correlated with the clinical status of pigs(Segale´s et al.,2005b).Recently,the PCV2shedding patterns in U.S.pigs naturally(Patterson et al.,2011a)or experimentally(Patterson et al.,2011b) infected with PCV2b were characterized and results indicated that PCV2b was shed for at least181days in naturally infected pigs and69days in experimentally infected pigs.Vertical transmission associated with PCV2resulting in reproductive failure infield cases has been well docu-mented(O’Connor et al.,2001;Ladekjær-Mikkelsen et al., 2001).The PCV2shedding patterns in boar semen have been investigated in both naturally(McIntosh et al., 2006b)and experimentally(Larochelle et al.,2000; Madson et al.,2008)infected boars.It was found that boars shed PCV2intermittently(Larochelle et al.,2000)or continuously(Madson et al.,2008).Furthermore,in one experimental study it was concluded that PCV2-spiked semen administered via artificial insemination was able to cause reproductive failure in sows(Madson et al.,2009a). Investigators have also been able to prove that sows inoculated with PCV2during pregnancy shed PCV2in colostrum and milk during lactation(Ha et al.,2009).Co-infections increase the severity of the PCVAD caused by PCV2(Allan et al.,1999,2000;Kennedy et al.,2000; Harms et al.,2001;Rovira et al.,2002;Opriessnig et al., 2004).Porcine reproductive and respiratory syndrome virus(PRRSV)infection has been shown to enhance the severity of clinical PCVAD underfield and experimental conditions(Harms et al.,2001;Rovira et al.,2002;Dorr et al.,2007).Since both PCV2and PRRSV infect the monocytic cell lineage(Duan et al.,1997;Chang et al.,2006),PRRSV has been suggested to be associated with enhanced PCV2 replication(Allan et al.,2000)resulting in increased amounts of PCV2DNA present in the sera of PCV2-PRRSV co-infected pigs(Rovira et al.,2002).Moreover,PRRSV was found to increase Interleukin(IL)-10expression which in turn suppresses T cell response(Charerntantanakul et al., 2006);hence,this may allow PCV2to circumvent the host immune response.Co-infection of PCV2and PRRSV in pigs is frequently observed in swine herds underfield conditions;however, to our knowledge,the effect of PRRSV on PCV2shedding patterns under controlled experimental conditions has not been investigated to date.The objectives of this study were to determine if co-infection of piglets with PRRSV and PCV2has any affect on PCV2shedding characteristics and if there are differences between PCV2subtypes(PCV2a and PCV2b)in co-infected pigs.2.Materials and methods2.1.Animals and housingTwenty-three,2-to6-weeks-old,cross-bred,specific-pathogen-free(SPF)pigs were purchased from a herd known to be free of PCV2and PRRSV as determined by routine serology.The pigs were housed in a BSL-2facility at Iowa State University.Pigs were kept in groups of3–5 animals infive separate2mÂ2.5m rooms on a concrete floor,equipped with one nipple drinker and a self feeder. The pigs were fed a diet free of animal proteins(excluding whey)and antibiotics(Nature’s Made,Heartland Co-op, Cambridge,IA,USA).2.2.Experimental designThe experimental protocol was approved by the Iowa State University Institutional Animal Care and Use Committee(IACUC Number10-07-6441-S).The experi-mental design is summarized in Table1.After arrival(0 day post inoculation,dpi),10/23pigs were inoculated with PCV2a,10/23pigs were inoculated with PCV2b,and3/23 remained non-infected as control pigs.In addition,5/10 PCV2a and5/10PCV2b pigs were also inoculated with PRRSV on the same day as PCV2inoculation.Blood,oral, fecal and nasal samples were collected at regular intervals and tested for presence of PCV2DNA and anti-PCV2 antibodies.On each sample collection day,two different teams collected samples from PCV2a(PCV2a-I,PCV2a-PRRSV-CoI)and PCV2b infected pigs(PCV2b-I,PCV2b-PRRSV-CoI)to minimize risk of room cross-contamination. Necropsy was performed on all pigs at70dpi.2.3.Clinical evaluationAll pigs were checked daily for respiratory signs, lethargy,inappetence and other signs of disease such as lameness.2.4.InoculationInoculation was done intranasally by holding the pig upright and slowly dripping1.5ml of the inoculum into each nostril for a total of3ml of PCV2a or PCV2b per pig. PRRSV inoculation was done in a similar way.Three separate inoculation teams were used for PCV2a,PCV2b, and PRRSV inoculation to avoid cross-contamination between rooms.PRRSV inoculation was done approxi-mately30min before PCV2a and30min after PCV2b inoculation.Specifically,3ml of PCV2a strain40895A.Sinha et al./Veterinary Microbiology152(2011)235–246 236(Fenaux et al.,2000;Opriessnig et al.,2006)was used as the PCV2a inoculum at a dose of104.550%tissue culture infective dose(TCID50)per ml and administered to each of the10pigs in the PCV2a group.Similarly,3ml of PCV2b strain NC-16845(Opriessnig et al.,2008b)at an infectious dose of104.5TCID50per ml was administered to each of the 10pigs in the PCV2b group.In addition,3ml of PRRSV strain ATCC VR2385(Meng et al.,1994;Halbur et al.,1995b)at an infectious dose of105.0TCID50per ml was given to5/10 PCV2a and5/10PCV2b inoculated pigs,respectively.2.5.Sample collectionBlood,oral,fecal and nasal swabs were collected on dpi 0,1,3,5,7,9,11,13and14.Afterwards,samples were collected in7-day-intervals until the termination of the study at dpi70resulting in a total of17sample collection points.Oral,nasal and fecal swabs were collected using individually packaged sterile swabs(Fisherbrand applica-tors,Fisher Scientific,Inc.)which were stored in5ml polystyrene round bottom tubes(Falcon1,BD Biosciences, San Jose,CA,USA)containing1ml of sterile saline solution (Fisher Scientific Inc.).Blood was collected in8.5ml serum separator tubes(BD Vacutainer1,BD Biosciences),cen-trifuged at2000Âg for10min at48C and the serum was stored in5ml polystyrene round bottom tubes(Falcon1, BD Biosciences)atÀ808C until further use.2.6.PCV2DNA and PRRSV RNA extractionPCV2DNA and PRRSV RNA extraction were performed with an automated extraction machine(King Fisher1Flex 96Ambion1;Thermo Scientific,Pittsburg,PA,USA)and the MagMAX TM-96viral isolation kit(Ambion1,Austin,TX, USA)according to the instructions of the manufacturer.2.7.PCV2DNA detection and quantificationPCV2DNA detection was conducted to verify the presence of PCV2in all serum,oral,fecal and nasal samples and DNA quantification was done by a quantitative real-time PCR using the same primers and probe as previously described(Opriessnig et al.,2003).Differentiation of PCV2a and PCV2b DNA was achieved by a multiplex real-time PCR using primers and probes designed for the signature motif region of ORF2capable of distinguishing between PCV2a and PCV2b(Opriessnig et al.,2010).The following modifications were used for both real-time PCR assays:A TaqMan1Fast Universal PCR Master Mix(Applied Biosys-tems,Foster City,CA,USA)was used,the total PCR volume including2.5m l of DNA extract was25m l,and the thermal cycle conditions were958C for2min,followed by40cycles of958C for10s and608C for1min.Samples were considered negative if no signal was observed during the 40amplification cycles.The detection limit of PCV2 quantitative real-time PCR assay was1Â103copies/ml.2.8.PCV2-IgG antibody detectionAll serum samples were tested using the SERELISA1 PCV2Ab Mono Blocking kit(Synbiotics Europe,Lyon, France)according to the manufacturers’instructions. Results were expressed as sample to negative corrected (SNc)ratio.Samples were considered negative for the presence of anti-PCV2antibodies if the SNc ratio was greater than0.50and they were considered positive if the calculated SNc ratio was less than or equal to0.50.2.9.PRRSV RNA detectionQuantitative PRRSV real time RT-PCR was conducted on RNA extracts from all serum samples obtained from PRRSV infected pigs.In brief,a forward primer(NA15096F;50-TAGTGAGCGGCAATTGTGTCTG-30),a reverse primer (NA15229R;50-GGCGCACAGTATGATGCGT-30)and a probe (NA15173P;50-FAM-CAGGGAGGATAAGTTACACTGTGGAG-TTTAG-BHQ-30)specific for the ORF7of type2PRRSV strains were designed according to the GenBank accession number EU880438.The total reaction volume was25m l consisting of5m l of5ÂOneStep RT-PCR buffer(Qiagen,Valencia,CA, USA),1m l of(0.4mM)dNTP mix,1m l(0.4m M)of each primer,0.5m l(0.2m M)of probe,1m l of RT-PCR enzyme mix,0.5m l of1:10diluted ROX TM reference dye(Invitrogen Life Technologies,Baltimore,MD,USA),7m l of DNase/ RNase-free water and8m l extracted sample.The reactions were completed in a7500Fast Real-Time PCR system (Applied Biosystems)under the following conditions:508C for30min,958C for15min,followed by40cycles of958C for15s,and608C for1min.To produce a standard curve,five serial dilutions of TaqMan1NA PRRSV RNA Control (Applied Biosystems)were included in each PCR run. Samples were considered negative if no signal was observed during the40amplification cycles.2.10.PRRSV-IgG antibody detectionSerum samples collected at dpi0,35and70were tested for the presence of antibodies to PRRSV(HerdChek*PRRS X3,PRRS virus antibody test kit,IDEXX Laboratories Inc., Westbrook,MA,USA).According to the manufacturers’instructions,a sample-to-positive(S/P)ratio of equal to or greater than0.4was considered positive.2.11.NecropsyAt70dpi,the pigs were euthanized humanely using an intravenously administered overdose of pentobarbitalTable1Experimental design.Group designation Number of pigs Inoculation aPCV2b PRRSV bNegative controls3––PCV2a-I5PCV2a–PCV2a-PRRSV-CoI5PCV2a PRRSVPCV2b-I5PCV2b–PCV2b-PRRSV-CoI5PCV2b PRRSVPorcine circovirus type2(PCV2)and porcine reproductive andrespiratory syndrome virus(PRRSV)inoculation was done on0day postinoculation(dpi).b The following virus isolates were used for inoculation:PCV2a strain40895,PCV2b strain NC16845and PRRSV strain VR2385.A.Sinha et al./Veterinary Microbiology152(2011)235–246237(Vortech Pharmaceuticals,Dearborne,MI,USA)and necropsy was performed.Lung sections were scored for macroscopic lesions ranging from0%to100%(Halbur et al.,1995b).Lymph node size was scored from0(normal)to 3(enlarged four times its normal size)(Opriessnig et al., 2004).Sections of organs including lymph nodes,spleen, thymus,tonsil,lung,heart,kidney,liver,colon and ileum were collected in10%neutral buffered formalin and routinely processed for histological examination.2.12.HistopathologyMicroscopic lesions were evaluated by a veterinary pathologist(TO)blinded to the treatment groups.The lung sections were scored for the presence and severity of interstitial pneumonia ranging from0(normal)to6 (severe diffuse)(Halbur et al.,1995b).Lymphoid tissues (lymph nodes,tonsils and spleen)were evaluated for the presence of lymphoid depletion ranging from0(normal)to 3(severe)and histiocytic inflammation and replacement of follicles ranging from0(normal)to3(severe)(Opriessnig et al.,2004).Sections of formalinfixed lung,heart,kidney, liver,colon and ileum were evaluated for the presence of lymphohistiocytic inflammation.2.13.ImmunohistochemistryImmunohistochemistry(IHC)for detection of PCV2-specific antigen was performed on formalin-fixed and paraffin-embedded sections of lymph nodes(tracheo-bronchial,mesenteric,mediastinal,superficial inguinal, and external iliac),tonsil and spleen using a rabbit polyclonal antiserum(Sorden et al.,1999).Scores ranged from0(no signal)to3(more than50%of the lymphoid follicles contain cells with PCV2-antigen staining) (Opriessnig et al.,2004).IHC for detection of PRRSV-specific antigen was performed on lung sections as previously described(Halbur et al.,1995a).2.14.Statistical analysisStatistical analysis of the data was performed using the JMP1software version8.0.1(SAS Institute,Cary,NC). Summary statistics were calculated for all groups to assess the overall quality of the data including normality.One-way analysis of variance(ANOVA)was used to evaluate the differences among treatment groups.If differences in group means(positive and negative animals within a group were included)were observed then the Tukey–Kramer test was used for each pair-wise comparison.A P-value of less than0.05was set as a statistically significant level throughout this study. Real-time PCR results(copies per ml)were log10 transformed prior to statistical analysis;negative samples were treated as1copy per ml(log10=0).A non-parametric ANOVA(Kruskal–Wallis)was used for non-normally distributed data or when group variances were dissimilar,pair-wise comparisons were done using Wilcoxon rank sum test.A chi-square distribution was conducted to determine differences in prevalence.3.Results3.1.Clinical diseasePigs co-infected with PRRSV and PCV2developed mild respiratory signs starting at dpi5(sneezing and increased respiratory rates)which resolved by dpi14.One PCV2a-I pig developed severe lameness due to bacterial arthritis and had to be euthanized at63dpi.Wasting was not observed in any of the pigs.3.2.PCV2-IgG antibody detectionAt dpi0,all pigs were negative for anti-PCV2antibodies and negative control pigs remained seronegative for PCV2 throughout the study(data not shown).The group mean SNc ratio for all PCV2infected pigs is summarized in Fig.1. In the PCV2-infected pigs,seroconversion wasfirst observed at dpi9(PCV2b-PRRSV-CoI)or at dpi13 (PCV2a-I,PCV2a-PRRSV-CoI,PCV2b-I).All pigs co-infected with PRRSV had seroconverted to PCV2by dpi 21,all PCV2a-I pigs had seroconverted by dpi35and all PCV2b-I pigs had seroconverted by dpi42.Group mean SNc ratios among PCV2-infected groups were significantly (P<0.05)different on dpi7(PCV2a-I pigs had a higher SNc ratio compared to PCV2a-PRRSV-CoI pigs),dpi21(PCV2a-I and PCV2b-I pigs had higher SNc ratios compared to PCV2a-PRRSV-CoI and PCV2b-PRRSV-CoI pigs)and dpi28 (PCV2a-I and PCV2b-I pigs had higher SNc ratios compared to PCV2a-PRRSV-CoI and PCV2b-PRRSV-CoI pigs)(Fig.1).3.3.PCV2DNA detection in serum samplesThe prevalence of PCV2DNA-positive sera in pigs is summarized in Table2and the mean group amounts of log10PCV2DNA in groups infected with PCV2are summarized in Fig.2.All pigs were negative for PCV2 DNA at dpi0,and all negative control pigs remained negative for PCV2DNA through termination of the study at dpi70.All PCV2PCR-positive pigs were confirmed to be infected only with the PCV2subtype they were inoculated with as determined by PCV2a/b differential real-time PCR, indicating that cross-contamination between rooms had not occurred(data not shown).PCV2viremia wasfirst detected on dpi5in PCV2a-I and PCV2b-PRRSV-CoI groups, and by dpi11all pigs in all PCV2-infected treatment groups were viremic.All pigs co-infected with PRRSV (PCV2a-PRRSV-CoI,PCV2b-PRRSV-CoI)remained PCV2 viremic until dpi70,whereas singularly PCV2-infected pigs had intermittent viremia starting at dpi35(Table2). PCV2b-I pigs had significantly(P<0.05)less amounts of PCV2DNA compared to PCV2a-PRRSV-CoI at dpi11,13,14, 21and28.From dpi42to70,PCV2a-PRRSV-CoI and PCV2b-PRRSV-CoI had significantly(P<0.05)higher amounts of PCV2DNA compared to PCV2a-I and PCV2b-I.Concurrent PRRSV infection(regardless of PCV2subtype) significantly increased the amount of PCV2DNA in serum on dpi13,14,21,35,42,49,56,63,and70.In addition,pigs infected with PCV2a(regardless of PRRSV co-infection status)had significantly(P<0.05)higher amounts of PCV2A.Sinha et al./Veterinary Microbiology152(2011)235–246 238DNA compared to pigs infected with PCV2b on dpi 11and 28(Fig.2).3.4.PCV2shedding in oral,nasal,and fecal secretions and excretions3.4.1.Oral swabsPCV2DNA was not detected in any of the oral swabs obtained from the negative controls (data not shown).PCV2DNA was detected in oral secretions of PCV2-inoculated groups from dpi 1onwards (Tables 2and 3).There was a significant (P <0.05)effect of PRRSV status (regardless of PCV2subtype)on the amount of PCV2DNApresent in oral secretions on dpi 11,13,21,28,35,56,63,and 70on which days the mean group log 10PCV2DNA amount was higher in pigs concurrently infected with PCV2and PRRSV compared to pigs singularly infected with PCV2(Fig.3).In addition,PCV2a was shed in significantly (P <0.05)higher amounts compared to PCV2b on dpi 9,12,13,14and 49(data now shown).3.4.2.Nasal swabsPCV2DNA was not detected in any of the nasal swabs obtained from the negative controls (data not shown).PCV2DNA was detected in the majority of the nasal swabs on dpi 1(Tables 2and 3).At dpi 3through dpi 11,therewas0.10.20.30.40.50.60.70.80.91M e a n g r o u p S N c r a Ɵo sDays post inoculaƟonPCV2a-IPCV2a-PRRSV-CoI PCV2b PCV2b-PRRSV-CoIFig.1.Porcine circovirus type 2mean group sample to negative corrected (SNc)ratios in serum of pigs infected with PCV2a,PCV2b or concurrently infected with porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV).Samples were considered to be positive for anti-PCV2antibody if the SNc ratio was equal or less than 0.50.Table 2Prevalence of porcine circovirus type 2(PCV2)DNA shed in different sample types (serum samples,oral swabs,nasal swabs,fecal swabs)in pigs experimentally infected with PCV2a,PCV2b,or concurrently infected with porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV)at different days post inoculation (dpi).Sample typeGroup135791113142128354249566370Serum samplesPCV2a-I0/50/51/53/54/55/55/55/55/55/53/51/52/50/51/51/4a PCV2a-PRRSV-CoI 0/50/50/51/54/55/55/55/55/55/55/55/55/55/55/55/5PCV2b-I0/50/50/52/54/55/55/55/54/55/54/52/51/52/50/52/5PCV2b-PRRSV-CoI 0/50/51/52/54/55/55/55/55/55/55/55/55/55/54/55/5Oral swabsPCV2a-I5/51/52/51/55/54/55/55/55/53/52/53/52/54/55/53/4a PCV2a-PRRSV-CoI 5/55/53/50/54/55/55/55/55/55/54/52/55/54/55/54/5PCV2b-I5/53/54/50/52/51/55/53/55/53/51/51/51/50/50/50/5PCV2b-PRRSV-CoI 2/53/52/51/51/54/55/55/55/55/55/54/52/55/55/55/5Nasal swabsPCV2a-I4/55/52/52/55/52/55/55/55/55/52/54/54/53/53/51/4a PCV2a-PRRSV-CoI 4/53/53/55/55/55/55/55/55/55/55/55/55/55/55/54/5PCV2b-I5/53/54/51/52/51/55/55/54/54/54/53/55/55/54/54/5PCV2b-PRRSV-CoI 5/55/51/52/54/52/55/55/55/55/55/55/55/54/55/55/5Fecal swabsPCV2a-I4/54/55/52/55/55/55/54/55/55/55/54/55/55/54/52/4a PCV2a-PRRSV-CoI 2/54/55/54/55/55/55/55/55/55/55/55/55/55/55/55/5PCV2b-I3/53/54/51/53/54/55/55/55/55/54/53/55/52/54/55/5PCV2b-PRRSV-CoI1/55/55/52/54/54/55/55/55/55/55/52/55/55/54/54/5aOne animal was euthanized and necropsied on dpi 63.A.Sinha et al./Veterinary Microbiology 152(2011)235–246239a decreased prevalence of PCV2DNA-positive pigs;however,between dpi 13and 70the majority of PCV2-inoculated pigs were positive for PCV2DNA in nasal swabs without differences in prevalence among treatment groups (Table 2).PRRSV-infected pigs (regardless of PCV2sub-type)had a trend of having higher amounts of PCV2DNA in nasal swabs compared to singularly PCV2-infected pigs and the difference was significant (P <0.05)on dpi 13,14,21,35,42and 70(Fig.4).In addition,PCV2a (regardless of PRRSV status)was shed in significantly (P <0.05)higher amounts compared to PCV2b on dpi 9and 13,whereas on dpi 49the amount of PCV2b DNA in nasal swabs was significantly (P <0.05)higher compared to PCV2a DNA (data not shown).3.4.3.Fecal swabsPCV2DNA was not detected in any of the fecal swabs obtained from the negative controls (data not shown).The prevalence of PCV2DNA-positive fecal swabs in PCV2-infected pigs is summarized in Table 2,and was similarly high in all groups during the duration of the study.On dpi 5,21,28,35,49and 56,pigs concurrently infected with PRRSV and PCV2,regardless of PCV2subtype,had significantly (P <0.05)higher amounts of PCV2DNA in feces (Table 3and Fig.5).On dpi 9,13and 35,pigs infected with PCV2a (PCV2a-I,PCV2a-CoI)had significantly (P <0.05)higher amounts of PCV2DNA in fecal samples compared to pigs infected with PCV2b.3.5.PRRSV-IgG antibody detectionAll pigs were negative for anti-PRRSV antibodies on dpi 0.All pigs in the PRRSV-infected groups (PCV2a-PRRSV-CoI,PCV2b-PRRSV-CoI)seroconverted by dpi 35and remained positive throughout the study without differ-ences in mean group S/P ratios.All pigs in the other groups remained PRRSV seronegative through dpi 70(data not shown).3.6.PRRSV RNA detection in serumPRRSV RNA was not detected in any serum samples collected on dpi 0.Pigs that were not inoculated with PRRSV (negative controls,PCV2a-I,PCV2b-I)remained negative for PRRSV RNA in serum throughout the study.In the PRRSV-infected groups,PRRSV was detected in 4/5PCV2a-PRRSV-CoI pigs and in 3/5PCV2b-PRRSV-CoI pigs on dpi 1.All 10PRRSV-infected pigs were PCR positive on dpi 3,5,7,9,13and 14.Thereafter,PRRSV was detected in individual pigs in both groups until dpi 56.All PCV2a-PRRSV-CoI and PCV2b-PRRSV-CoI pigs were PRRSV nega-tive on serum on dpi 63and 70.There were no significant differences in the amounts of PRRSV RNA between the two PRRSV-infected groups;however,the magnitude of the PRRSV viremia appeared bicyclical in both groups with peaks at dpi 5and at dpi 21after which the amount of PRRSV steadily decreased in all pigs (data not shown).3.7.Macroscopic lesionsAt 70dpi,there were mild lung lesions present in individual PCV2-PRRSV co-infected pigs characterized by 4–17%of the lung surface affected by mottled tan consolidation.In addition,some of the lungs failed to collapse.Lymph nodes appeared normal to mildly enlarged in most infectedpigs.-10123456789G r o u p m e a n l o g 10 P C V 2 D N APCV2a-IPCV2a-PRRS V-CoI PCV2b PCV2b-PRRSV-CoIFig.2.Mean group amount (based on PCR positive and negative pigs within a group)of log 10porcine circovirus type 2(PCV2)DNA in serum of pigs infectedwith PCV2a,PCV2b or concurrently infected with porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV).A sample with no threshold cycle (C T )value during the 40amplification cycles was considered negative.The detection limit of PCV2quantitative real-time PCR assay was 1Â103copies/ml.A.Sinha et al./Veterinary Microbiology 152(2011)235–2462403.8.Microscopic lesionsPCV2-associated lymphoid lesions were essentially resolved in all pigs and lymphoid tissues were micro-scopically normal.A portion of the pigs in the co-infected groups had mild-to-severe lymphohistiocytic interstitial nephritis (4/5PCV2a-PRRSV-CoI pigs and 1/5PCV2b-PRRSV-CoI pig)and individual pigs in all groups had mild focal interstitial pneumonia characterized by accumula-tion of low numbers of macrophages and lymphocytes in alveolar septa.3.9.Presence of PRRSV and PCV2antigen in tissuesPRRSV antigen was not detected in any of the lung sections.PCV2antigen was detected in low to moderate amounts (score range from 1to 2)in the majority of lymphoid tissues tested of all ten PCV2-PRRSV-CoI pigs regardless of PCV2subtype whereas PCV2antigen (low amount in one follicle in the tonsil)was detected in 1/5PCV2b infected pigs and in 0/5PCV2a infected pigs.4.DiscussionBoth horizontal (Segale´s et al.,2005b;Dupont et al.,2009)and vertical (O’Connor et al.,2001;Ladekjær-Mikkelsen et al.,2001)routes of PCV2transmission have been documented;however,it is known that PCV2replication dynamics are highly influenced by certain co-factors (Opriessnig et al.,2007).To the authors’knowledge,no study to date has investigated the shedding characteristics of PCV2over time in pigs concurrently infected with PRRSV under experimental conditions.In this study,we also compared the shedding characteristics of the two primary PCV2subtypes,PCV2a and PCV2b,side by side in the growing pig model.Several research groups have investigated the length of PCV2viremia under both controlled experimental and natural settings (Bolin et al.,2001;Shibata et al.,2003;Caprioli et al.,2006;McIntosh et al.,2006a;Opriessnig et al.,2010).The PCV2shedding pattern of experimentally PCV2-infected cesarean-derived,colostrum-deprived (CDCD)pigs was monitored for 70days using orophar-yngeal,nasal and fecal swabs and it was found that PCV2was shed consistently for the 70-day observation period (Shibata et al.,2003).In another controlled experiment,pigs inoculated with PCV2a had persistent viremia for 140days despite the presence of anti-PCV2antibodies (Opriessnig et al.,2010).A recent controlled study demonstrated that PCV2b shedding in an experimental setting lasted for 69days (Patterson et al.,2011b ).The same study also demon-strated that,although the amount of PCV2DNA detected in nasal swabs,oral swabs and fecal swabs was not different at dpi 16and 19,a higher amount was detected in nasal swabs at dpi 69(Patterson et al.,2011b ).In the present study,similar results were obtained with PCV2DNA being shed in oral and nasal secretions and feces for an extended period of time with peak shedding between dpi 14and dpi 35,which was similar for both PCV2subtypes used in this study.In singular PCV2-infected pigs,low quantities ofT a b l e 3M e a n g r o u p a m o u n t o f l o g 10p o r c i n e c i r c o v i r u s t y p e 2(P C V 2)D N A s h e d d i n d i f f e r e n t s a m p l e t y p e s (o r a l s w a b s ,n a s a l s w a b s ,f e c a l s w a b s )i n p i g s e x p e r i m e n t a l l y i n f e c t e d w i t h P C V 2a ,P C V 2b ,o r c o n c u r r e n t l y i n f e c t e d w i t h p o r c i n e r e p r o d u c t i v e a n d r e s p i r a t o r y s y n d r o m e v i r u s (P R R S V )a t d i f f e r e n t d a y s p o s t i n o c u l a t i o n (d p i ).S a m p l e t y p e G r o u p7142128354249566370O r a l s w a b sP C V 2a -I 0.9Æ0.96.1Æ0.5A5.8Æ0.4A ,B3.1Æ1.31.5Æ0.9A2.6Æ1.11.7Æ1.1A ,B3.3Æ0.8A4.0Æ0.1A2.7Æ1.1A ,BP C V 2a -P R R S V -C o I 0.06.4Æ0.2A7.1Æ0.4A4.8Æ0.33.6Æ0.9A ,B2.1Æ1.35.0Æ1.3A3.7Æ1.0A4.5Æ0.3A3.9Æ1.0AP C V 2b -I 0.03.0Æ1.3B4.5Æ0.3B2.6Æ1.10.8Æ0.8A0.9Æ0.90.8Æ0.8B0.0B0.0B0.0BP C V 2b -P R R S V -C o I 0.9Æ0.96.0Æ0.4A6.8Æ0.3A5.3Æ0.25.6Æ0.4B4.0Æ1.11.6Æ1.0A ,B5.1Æ0.2A5.7Æ0.3C5.3Æ0.1AN a s a l s w a b sP C V 2a -I 2.2Æ1.4A ,B6.2Æ0.36.2Æ0.4A ,B5.1Æ0.4A ,B2.0Æ1.2A4.5Æ1.2A ,B3.7Æ0.9A2.7Æ1.13.3Æ1.40.9Æ0.9AP C V 2a -P R R S V -C o I 5.6Æ0.2A7.5Æ0.77.9Æ0.4A6.1Æ0.5A5.3Æ0.6A ,B6.7Æ0.4A5.5Æ0.5A ,B5.5Æ0.55.0Æ0.33.9Æ1.0A ,BP C V 2b -I 1.0Æ1.0B6.0Æ0.24.3Æ1.1B3.3Æ0.8B4.7Æ1.3A ,B2.6Æ1.1B5.7Æ0.3A ,B5.1Æ0.34.5Æ1.23.5Æ0.9A ,BP C V 2b -P R R S V -C o I 2.1Æ1.3A ,B6.6Æ0.37.9Æ0.3A6.4Æ0.4A6.6Æ0.9B5.1Æ0.3A ,B6.4Æ0.4B4.2Æ1.15.5Æ0.25.3Æ0.2BF e c a l s w a b sP C V 2a -I 2.5Æ1.56.3Æ1.67.6Æ0.6A ,B5.9Æ0.3A ,B6.7Æ0.5A ,B3.9Æ1.14.9Æ0.34.7Æ0.2A ,B3.9Æ1.01.7Æ1.0AP C V 2a -P R R S V -C o I 4.3Æ1.17.5Æ0.99.4Æ0.5A7.4Æ0.6A7.6Æ0.3A5.5Æ0.25.7Æ0.45.6Æ0.6A5.8Æ0.45.1Æ0.3BP C V 2b -I 0.9Æ0.96.3Æ0.36.3Æ0.5B4.8Æ0.4B4.0Æ1.1B3.8Æ1.64.3Æ0.32.2Æ1.3B3.5Æ0.94.2Æ0.2A ,BP C V 2b -P R R S V -C o I 2.0Æ1.26.9Æ0.58.2Æ0.7A ,B6.7Æ0.3A 6.5Æ0.5A ,B2.0Æ1.25.5Æ0.55.0Æ0.6A ,B4.6Æ1.24.0Æ1.0A ,BD i f f e r e n t s u p e r s c r i p t s (A ,B ,C )w i t h i n a c o l u m n i n d i c a t e s i g n i fic a n t (P <0.05)d i f f e r e n c e s i n a m o u n t o f l o g 10P C V 2D N A f o r a s a m p l e t y p e .A.Sinha et al./Veterinary Microbiology 152(2011)235–246241。
2019年南京航空航天大学参考书目
2019年南京航空航天大学参考书目2019年南京航空航天大学参考书目2019年南京航空航天大学参考书目考试科目参考书目811普通物理1. 《普通物理学》（第六版），程守洙、江之永主编，高等教育出版社。
2. 《物理学》（第五版），东南大学等七所工科院校编，马文蔚等改编，高等教育出版社。
815理论力学《理论力学》,范钦珊、陈建平主编，高等教育出版社，2010年816材料力学《材料力学（上、下册）》（第五版），刘鸿文.高等教育出版社510力学基础综合1、《飞行器结构力学》史治宇等编，国防工业出版社，2013年2、《机械振动基础》胡海岩主编，北京航空航天大学出版社，2004年511机械基础综合1. 《机械原理》郑文纬，高等教育出版社，1997年2. 《机械振动基础》胡海岩主编，北京航空航天大学出版社，2004年512振动基础综合 1.《机械工程材料应用基础》张代东主编机械工业出版社，2004年2.《机械振动基础》胡海岩主编，北京航空航天大学出版社，2004年513测试技术基础综合1. 单片机原理及应用分层教程，陈仁文编著，南京大学出版社，2015.122. 传感器与检测技术（第2版）)，陈杰、黄鸿，高等教育出版社，2010.11813无机化学2004 《无机化学》[第五版]，大连理工大学无机化学教研室编，高等教育出版社，2006823电工电子学秦曾煌《电工学》第七版，高等教育出版社，2009年刘海春《电子技术》第二版，科学出版社，2017年561材料工程基础 1. 机械工程材料应用基础张代东主编机械工业出版社，2004年2.《材料成形工艺基础》翟封祥等哈尔滨工业大学出版社，2008年817工程热力学《工程热力学》沈维道，高等教育出版社，2007年;《工程热力学》曾丹苓，高等教育出版社，2003年518 流体力学基础综合1、《空气动力学》陆志良等编著，北京航空航天大学出版社，2009年及以后修订版596电动力学《电动力学》，郭硕鸿，高等教育出版社，2008。
自考33-06008影视文学 速记宝典
影视文学（06008适用浙江）速记宝典命题来源：围绕学科的基本概念、原理、特点、内容。
答题攻略：（1）不能像名词解释那样简单，也不能像论述题那样长篇大论，但需要加以简要扩展。
（2）答案内容要简明、概括、准确，即得分的关键内容一定要写清楚。
（3）答案表述要有层次性，列出要点，分点分条作答，不要写成一段；（4）如果对于考题内容完全不知道，利用选择题找灵感，找到相近的内容，联系起来进行作答。
如果没有，随意发挥，不放弃。
简答题：考点1：简述黄金时代的概念。
答：美国好莱坞的“黄金时代”指的是20世纪三四十年代，这时期好莱坞摄制了六七千部影片并获得了丰厚利润。
在这一阶段，电影在美国发展成为一种流水生产的商业化娱乐工业。
考点2：简述好莱坞电影娱乐工业成功的原因。
答：美国好莱坞“黄金时代”电影作为娱乐工业获取成功的原因如下所述。
（1）声音使电影的表现手段更加丰富，从而为电影赢得了更多的观众，也即赢得了更多的市场。
电影史上最初把声音带入电影的是美国人。
1927年10月6日，由华纳兄弟公司拍摄并上映的一部音乐故事片《爵士歌手》，标志了有声电影的诞生。
虽然影片中只有几句话和几段歌词，但足以让当时观众觉得新奇无比，于是电影受到热捧。
（2）为赚取利润重要手段的电影，被纳入了经济机制，具备了成熟的生产、发行渠道。
（3）美国好莱坞形成了类型电影的模式。
所谓“类型电影”，是由不同的题材或者技巧所形成的不同的影片范式。
20世纪20年代，美国类型电影，如西部片等已经初具规模。
（4）明星制度的确立。
考点3：简述电影手册派和左岸派的共同点和不同点。
答：1、共同点：①他们都反对传统电影的做法；②强调电影是一种个人的艺术创作；③要求电影从传统艺术的束缚中解放出来；④注重对人的内心世界的开掘和表现，擅长运用银幕形象表现复杂的潜意识心理活动。
2、不同点：①“电影手册派”的电影由于内容简单，不触及政治，因此一般都能顺利地放映。
②而左岸派，即“作家电影”群体的作品由于涉及政治，所以一般都要遇到麻烦。
独树一帜还是随波逐流
费者会将自身的需求放在首位ꎬ 更在意产品的独特性和新颖性ꎬ 产品效用会随购买人数增加而降
１３１
珞珈管理评论
２０２４ 年卷第 ２ 辑 ( 总第 ５３ 辑)
低ꎻ 跟随型消费者则把其他消费者的期望或行为作为自己行为参照的准则ꎬ 进而在自己的产品评
管理评论
Ｌｕｏｊｉａ Ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ Ｒｅｖｉｅｗ
２０２４ 年卷第 ２ 辑 ( 总第 ５３ 辑)
Ｎｏ ２ꎬ ２０２４ ( Ｓｕｍ ５３)
独树一帜还是随波逐流?
消费者类型和奢侈品环保信息
交互效应对购买意愿的影响
∗
•冯文婷１ 李 洁２ 沈先运２ 刘陈陵２
(１ 中国地质大学 ( 武汉) 珠宝学院 武汉 ４３００７４ꎻ
侈品品牌热衷于投身可持续性实践活动ꎬ 开发可持续奢侈品的生产线ꎬ 可持续奢侈品日益成为一种
新的时尚潮流 ( Ｌｉ ＆ Ｌｅｏｎａｓꎬ ２０１９) ꎮ
可持续奢侈品是指符合环保诉求ꎬ 具有节能、 无害等可持续属性或相关联的奢侈品ꎮ 现有研究
表明ꎬ 消费者对于可持续奢侈品存在两种矛盾态度: 一方面ꎬ “ 可持续” 与自我超越、 道德和利他主
目ꎻ 阿玛尼则承诺 ２０２０ 年起避免在生产过程中使用危险化学品ꎻ 古驰也在 ２０１７ 年宣布不再使用一切
动物皮草ꎮ 此外ꎬ 在全球可持续时尚峰会上ꎬ 宝格丽首席执行官提出: “ 作为一个奢侈品品牌ꎬ 宝格
丽以其可持续性发展的品牌理念为傲ꎬ 在每一个经营环节中坚持合乎道德的生产准则” ꎮ 这表明ꎬ 奢
实验二验证消费者心理需求 ( 分化、 同化) 和奢侈品环保信息 ( 可持续、 非可持续) 的匹配一致性
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
明)， 答案多数经我个人的检查修改
后收录该文，还有一些答案是由我自
己 写 的。 目 的 在 于 让 大 家 更 加 系 统
掌 握P,V操 作 题 目 的 处 理 技 巧。 在
此声明： 若有错误请与我联系，
我会尽快更正其中的错误并升
级版本。若有更为新颖的题 目也可以和我联系继续
添 加 到 文 章 当 中。 若
2
目
录
3
十二真经之公交车问题(哈尔滨工业大学2000) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 32 十三真经之少林寺问题 · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 33 十四真经之过桥问题· · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 35 十五真经之帐户问题(南京大学2000) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 40 十六真经之机房上机问题(北大1997) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 40 十七真经之3进程问题 · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 41 十八真经之生产消费问题扩展(北大1994) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 47 十九真经之流程问题(北大1991) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 49 二十九阴真经之北航篇 · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 50
第三章 九阴真经之研究生题辑 · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 20 一 真经之银行排队问题(北京大学2000) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 20 二 真经之生产消费问题扩展(浙江大学2001) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 21 三 华南理工2000 · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 23 四 真经之生产者消费者扩展(同济1996) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 24 五 真经之理发师问题扩展(电子科技大学2000) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 24 六 真经之读者写者问题扩展(南航2001) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 26 七 真经之南航2002· · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 27 八 真经之管道通信问题(西北工大2000) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 28 九 真经之吃水果问题(南京大学2000) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 29 十 真经之安全岛问题(南开1997) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 30 十一真经之珍珑棋局问题 · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 32
第二章 Typical Excises · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 13 一 生产者-消费者问题扩展 · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 13 (一) 扩展一(北大1991) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 13 (二) 扩展二(北大1995) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 13 (三) 扩展三 · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 15 二 读者-写者问题扩展· · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 16 (一) 扩展一 · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 16 (二) 扩展二(苏州大学2004) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 17 三 吸烟者问题扩展· · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 18 (一) 扩展一(北大1999) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 18 (二) 扩展二 · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 18
有 版 权 争 议， 请
与我本人联
系！
♡
天莫北千 别下愁风里 董谁前吹黄 大人路雁云
不无雪白 高识知纷日 适eorem · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 4 一 Introduction of P,V Theorem · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 4 (一) Some Conceptions · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 4 (二) The Most Important Conceptions · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 5 二 Several Typical Examples · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 5 (一) 生产者一消费者问题(producer-consumer problem) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 5 (二) 读者一写者问题(Readers-Writers Problem) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 6 (三) 哲学家进餐问题(The Dining Philosophers Problem) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 8 (四) 理发师问题(Barber Problem)· · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 9 (五) 吸烟者问题(Smoker Problem) · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 10