Chapter2 细胞生物学研究方法

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细胞生物学 第二章细胞生物学研究方法

细胞生物学 第二章细胞生物学研究方法
• 用途:观察细胞或组 织的表面立体结构。
§1 细胞形态结构的观察方法
三、扫描隧道显微镜 (Scanning tunneling microscope,STM)
• 于1981年发明,发明者获 1986年度诺贝尔物理学奖。
• 特点: ①具有原子尺度的高分辨力,
侧(横)分辨率为0.1-0.2nm, 纵分辨率0.001nm; ②除在真空外,还可在空气、 液体等条件下观察; ③非破坏性测量:不受电子 束的轰击、破坏。
• 因此,可用已知的抗体检测未知的抗原。
• 但多数抗原-抗体结合后不出现可见反应,即不能检测 到二者的这种特异性结合。如何检测抗原-抗体发生了 结合反应?
• 用一种可见的标记物标记抗体,通过检测标记物的存
在与否判断抗原-抗体是否发生了结合反应——免疫标
记技术。
抗原
标记物
抗体
二、特异蛋白抗原的定位与定性
s 将二次电子收集并经一系列 的处理在荧光屏上成像。
s 这样,可以得到样品表面的 立体图像。
二、电子显微镜
• 扫描电镜的样品制备:
s 取材; s 固定; s 脱水; s 临界点干燥; s 喷镀; s 电镜观察。
• 分辨本领:较低,一般 在3nm。
• 放大倍数:几万倍。
二、电子显微镜
• 特点:成像具有立体 感。
• 可见光的波长400700nm。
• 光学显微镜的最大分辨 率为0.2μm。
一、光学显微镜
• 光镜样品制备: 石蜡包埋切片, 苏木精-伊红染色。
一、光学显微镜
(二)相差显微镜和微分 干涉显微镜
• 原理:利用显微镜中的 特殊装置,使光线通过 样品时波长和振幅发生 变化,以增大样品明暗 的反差。
• 用途:这两种显微镜可 用于观察未染色的活细 胞的细胞结构及其动态 变化。

第二章 细胞生物学研究方法

第二章 细胞生物学研究方法
Phase contrast micrograph
光学显微镜技术(Optical microscopy)
4、暗视野显微镜
(Dark field microscope)
原理 特殊的聚光器,使得光线不能直接 进入物镜,被样品散射的光线确可以进 入 主要物用镜途而被放大。因此,在黑暗的背景 中观可察活以细看胞到外明形亮清晰的图像。
Autoradiography 流程
支持物
清洗混合
Cells
脱水并包埋于石蜡或 塑料中
细胞和放射性 化合物共孵育
固定
显影
银粒位置
玻片 背景银粒
感暗光室层储乳中液存胶等态乳于待感胶曝光 光支持物
支持物 容器
玻片
玻片
Autoradiography Autoradiograph
显示DNA合成部位
三、 细胞的分离和分析技术
传代培养 (Secondary culture) 将适应了体外条件的原代培养细胞进 行传代和扩大培养。
细胞培养(Cell culture)
体外培养细胞的特性
贴壁生长
多数体外培养细胞需要贴附于玻璃或特殊塑料表 面才能生长、分裂,形成单层细胞(single layer cell)的现象。
接触抑制 (contact inhibition)
原理
电子束穿透样品而成像
主要用途 观察细胞超显微结构
电子显微镜技术(Electron microscopy)
透射电镜图片
制样技术
1)超薄切片
• 用于电镜观察的标本须制成厚度仅50nm的 超薄切片,用超薄切片机制作。
• 通常以锇酸和戊二醛固定样品,丙酮逐级 脱水,环氧树脂包埋,以热膨胀或螺旋推 进的方式切片,重金属(铀、铅)盐染色。

第二章细胞生物学研究方法

第二章细胞生物学研究方法

第二章细胞生物学研究方法(the research method in the cell biology)教学目的1、熟悉要紧工具与常用方法,侧重掌握基本原理与基本应用;2、认识工具与方法与学科进展的有关性。

教学内容本章从下列5个方面介绍了细胞生物学的研究方法:1.显微成像技术2.细胞化学技术3.细胞分选技术4.细胞工程技术5.分离技术6.分子生物学方法计划学时及安排本章计划3学时。

教学重点与难点生命科学是实验科学,它的很多成果都是通过实验才得以发现与进展的。

许多细胞生物学的重要进展与新概念的形成,往往来自新技术的应用。

因此,方法上的突破,关于理论与应用上的进展具有巨大的推动作用,这是学习本章应确立的基本思想。

1.显微成像包含直接成像与间接成像。

显微技术是细胞生物学最基本的研究技术, 包含光学显微技术与电子显微技术。

在光学显微技术中要掌握几种常用显微镜成像的基本原理,包含普通双筒显微镜、荧光显微镜、相差显微镜、暗视野显微镜、倒置显微镜。

电子显微镜是研究亚显微结构的要紧工具, 透射与扫描电镜的是两类要紧的电子显微镜, 对其基本结构、工作原理与样品制备方法则是学习的重点。

2.细胞化学技术介绍了酶细胞化学技术、免疫细胞化学技术、细胞分选技术, 其中流式细胞分选技术是细胞生物学与现代生物技术中的重要技术, 应重点掌握。

3.细胞工程技术是细胞生物学与遗传学的交叉领域,要紧利用细胞生物学的原理与方法,结合工程学的技术手段,按照人们预先的设计,有计划地改变或者制造细胞遗传性的技术。

包含体外大量培养与繁殖细胞,或者获得细胞产品、或者利用细胞体本身。

要紧内容包含:细胞融合、细胞生物反应器、染色体转移、细胞器移植、基因转移、细胞及组织培养。

4.分离技术是一大类技术的总称,包含细胞组分的分离与生物大分子的分离, 应掌握各类分离技术的原理与用途。

本章对分子生物学方法作了简要介绍, 为今后的学习奠定基础。

简言之,本章教学重点是仪器方法的基本原理与基本应用;教学难点是电镜制样及分子杂交技术。

细胞生物学 第2章 细胞生物学研究方法

细胞生物学 第2章 细胞生物学研究方法

PRA在散发性浸润性乳腺导管癌中 的表达
王辛,赵彤,赵嘉佳,熊静波. 中华医学杂志 2010, 90(20):1399-1402
(三)原位杂交技术
• 自学
三、 细胞分离技术
(一)离心分离技术
用离心力和沉降系数的差异进行分离、浓缩和提纯的方法。 是分离细胞器(如细胞核、线粒体、高尔基体)及各种大分子基
描电镜的有效放大倍率为0.2mm/10nm=20000X。
Scanning electron microscope( SEM)
• 工作原理:是用一束极细的电子束扫描样品,在样品表面
激发出次级电子,次级电子的多少与样品表面结构有关,
次级电子由探测器收集,信号经放大用来调制荧光屏上电
子束的强度,显示出与电子束同步的扫描图像。
(四)暗视野显微镜 dark field microscope
• 用于观察活细胞等无色透明标 本 • 聚光镜中央有挡光片,照明光
线不直接进人物镜,只允许被
标本反射和衍射的光线进入物 镜,因而视野的背景是黑的, 物体的边缘是亮的。 • 可观察 4~200nm的微粒子,
分辨率比普通显微镜高50倍。
(五)相差显微镜
• dX/dt=[2r2 (ρp—ρM) /9η]· · g=s g
• 式中dX/dt为粒子的沉降速度,ρp:颗粒的密度;ρM:悬浮 介质的密度;η:介质粘度;r:为粒子的半径;g:为重 力加速度。 • S:沉降系数(sendimetation coefficient), 与颗粒直 径、颗粒密度、介质密度、介质粘度有关; • S的单位:秒; • 习惯上把10-13s作为沉降系数的单位(svedberg unit), 简称S(大写)
λ=光源波长,可见光0.5um N=介质折射率,空气为1,油为1.5 θ=物镜镜口张角的半角

二章节细胞生物学研究方法

二章节细胞生物学研究方法
• 酶细胞化学技术(enzyme cytochemistry) 通过酶的特异细胞化学反应来显示酶在细胞 内的定位
• 免疫细胞化学技术(immunocytochemistry) 利用免疫反应定位组织或细胞中抗原成分分
布的一类技术。主要分为两大类: 免疫荧光 技术和免疫电镜技术。
分离技术
• 分离技术是一大类技术的总称,包括细胞 组分的分离和生物大分子的分离
第二章.细胞生物学研究方法
• 显微成像技术 • 细胞化学技术(cytochemistry) • 细胞培养和细胞融合 • 分离技术 • 分子生物学方法
显微成像技术 • 光学和电子显微镜成像原理 三个基本要素:①照明系统, ②被观察的样品,
③聚焦和成像的透镜系统
• 常用的光学显微镜 • 普通双筒显微镜(binocular microscope) • 荧光显微镜(fluorescence microscope) • 相差显微镜(phase contrast microscope) • 暗视野显微镜(dark field microscope) • 倒置显微镜
(gene knockin) • 乳腺生物反应器技术
基因克隆(gene cloning)
• 这项技术可概括为∶ 分、切、连、转、选
PCR技术
• PCR是英文聚合 酶链式反应 (polymerase chain reaction) 的简称, 是80年代发展起 来的一项具有重 大意义的分子生 物学技术
细胞融合与单克隆抗体技术
• 细胞融合(cell fusion) 指自发或人工诱导下,两个不同基因型的细胞或
原生质体融合形成一个杂种细胞(图2-33)。 • 单克隆抗体技术(monoclonal antibody
technique) 1975年英国科学家Milstein和Kohler发明了单克隆

细胞生物学研究方法(共165张PPT)

细胞生物学研究方法(共165张PPT)
显微镜结构:
① 机械部分:镜座、镜柱、镜臂 镜筒、调焦装置、 载物台(物镜转换器)
② 照明部分:反光镜、聚光镜
③ 光学部分:目镜、物镜
放大倍数(magnification):最终成像的 大小与原物体大小的比值。
总放大倍数=物镜放大倍数×目镜放大 倍数
光学显微镜的最大放大倍数为1,000倍.
电子显微镜的最大放大倍数为 1,000,000.
荧光漂白恢复技术 在细胞生物学中的应用
分析细胞内蛋白质运输、受 体在细胞膜上的流动和大分 子组装等细胞生物学过程。
是检测活体中生物大分子纳米级距离和纳 米级距离变化的有力工具,可用于检测某一细胞中两 个蛋白质分子是否存在直接的相互作用。
A)荧光漂白恢复技术 B) 相差显微镜技术 C) 微分干涉显微镜技术
两个特殊构件: 环状光阑(annular diaphragm):位于光源 与聚光器之间。
相位板(annular phaseplate):涂有光吸收物质和 相位推迟物质。
用途:能观察无色、透明、活细胞中的结构。
微分干涉显微镜
Human Cheek Epithelial Cells
微分干涉显微镜
•原理:利用两组平面偏 振光的干涉,加强影像 的明暗效果,能显示结 构的三维立体投影。
2 扫描电镜 (Scanning electron Microscope SEM ) 用于观察固体表面的形貌
1 透射电镜
超薄切片样品制备
电镜技术
超薄切片技术 电镜负染色技术 冷冻蚀刻电镜技术 电镜三维重构技术
超薄切片(uitrathin section) 电子束穿透力很弱,用于电镜观察的标本须 制成厚度仅50nm的超薄切片,用超薄切片 机(ultramicrotome)制作。 通常以锇酸和戊二醛固定样品,丙酮逐级脱 水,环氧树脂包埋,以热膨胀或螺旋推进的 方式切片,重金属(铀、铅)盐染色。

Chapter2+细胞生物学研究方法

Chapter2+细胞生物学研究方法

Chapter 2 细胞生物学研究方法2.1 显微成像技术2.1.1 光学显微镜焦距(focal length):是透镜的中心平面到焦点的距离。

角孔径(angular aperture):是光从样品进入显微镜的物镜半角α,因此角孔径实际表示有多少光离开样品通过透镜,最好的光学显微镜的角孔径大约是70度。

分辨率(resolution, r) :显微镜或人眼在25 cm明视距离处,能清楚分辨被检物体细微结构最小间隔的能力。

r=0.61λ/ n sinα其中:n=聚光镜和物镜之间介质的折射率, 空气为1, 油为1.5;α=样品对物镜角孔径的半角λ=照明光源的波长。

0.61是一个恒定的参数r值越小,分辨能力越高。

波长越短,分辨能力越高。

分辨极限(limit resolution):①一般地说,一定波长的射线不能用以探查比它本身波长短得多的结构细节,这是一切显微镜的一个基本限度。

②对可见光(0.4~0.7 μm )来说,能清楚地分辨出相邻两点之间的最小间隔是0.2 μm。

放大率(magnification) :最终成像的大小与原物体大小的比值称为放大率。

2.1.2 常用光学显微镜1.普通光学显微镜2.荧光显微镜(fluorescence microscope):荧光显微镜以紫外线为光源照射被检物体,使之发出荧光,然后在显微镜下观察物体的形态及其所在位置。

要求:被检物体发荧光(自发荧光、诱发荧光)用途:用于研究细胞内物质的吸收、运输及化学物质的分布和定位等。

3.相差显微镜(phase contrast microscope)优点:能够观察无色、透明、活细胞中的结构。

特点:能将物体本身的相位差(光程差)转换为振幅(光强度)变化的显微镜。

波长(颜色) 振幅(亮度) 相差(看不见的)实验原理:相差显微镜的环状光栏和相板(phase plate)能使活细胞或末经染色的标本中各部分的折射率或厚度的微小差异,产生相位差,然后利用光的衍射和干涉的原理,把相差变成振幅(明暗)之差,使人的肉眼能够辨认出来。

2020年(生物科技行业)第二章细胞生物学研究方法

2020年(生物科技行业)第二章细胞生物学研究方法

(生物科技行业)第二章细胞生物学研究方法第二章细胞生物学研究方法(theresearchmethodinthecellbiology)教学目的1、了解主要工具和常用方法,侧重掌握基本原理和基本应用;2、认识工具和方法和学科发展的相关性。

教学内容本章从以下5个方面介绍了细胞生物学的研究方法:1.显微成像技术2.细胞化学技术3.细胞分选技术4.细胞工程技术5.分离技术6.分子生物学方法计划学时及安排本章计划3学时。

教学重点和难点生命科学是实验科学,它的很多成果都是通过实验才得以发现和发展的。

许多细胞生物学的重要进展以及新概念的形成,往往来自新技术的应用。

因此,方法上的突破,对于理论和应用上的发展具有巨大的推动作用,这是学习本章应确立的基本思想。

1.显微成像包括直接成像和间接成像。

显微技术是细胞生物学最基本的研究技术,包括光学显微技术和电子显微技术。

在光学显微技术中要掌握几种常用显微镜成像的基本原理,包括普通双筒显微镜、荧光显微镜、相差显微镜、暗视野显微镜、倒置显微镜。

电子显微镜是研究亚显微结构的主要工具,透射和扫描电镜的是俩类主要的电子显微镜,对其基本结构、工作原理和样品制备方法则是学习的重点。

2.细胞化学技术介绍了酶细胞化学技术、免疫细胞化学技术、细胞分选技术,其中流式细胞分选技术是细胞生物学和现代生物技术中的重要技术,应重点掌握。

3.细胞工程技术是细胞生物学和遗传学的交叉领域,主要利用细胞生物学的原理和方法,结合工程学的技术手段,按照人们预先的设计,有计划地改变或创造细胞遗传性的技术。

包括体外大量培养和繁殖细胞,或获得细胞产品、或利用细胞体本身。

主要内容包括:细胞融合、细胞生物反应器、染色体转移、细胞器移植、基因转移、细胞及组织培养。

4.分离技术是壹大类技术的总称,包括细胞组分的分离和生物大分子的分离,应掌握各种分离技术的原理和用途。

本章对分子生物学方法作了简要介绍,为今后的学习奠定基础。

简言之,本章教学重点是仪器方法的基本原理和基本应用;教学难点是电镜制样及分子杂交技术。

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值口径,可以提高介质折射率,香柏油的折射率和载片玻璃的折射率(1.52)相近,光线可 以不发生折射而直接通过载片、香柏油进入物镜,从而提高分辨率。显微镜总的放大倍数是 目镜和物镜放大倍数的乘积,而物镜的放大倍数越高,分辨率越高。显微镜的最大有效倍 数为 1000X。
(二)相差显微镜和微分干涉显微镜(发明的人获得物理诺贝尔) 利用光线干涉的原理,将相位差转换成振幅差,实现对非染色活细胞的观察 –A. 当两束光的相位相同时,相互干涉的结果使光波的振幅增加 –B. 当两束光的相位相反时,则导致光波的振幅降低 相差显微镜 1、特点: 将光程差或相位差转换成振幅差(肉眼可辨) 。 不需要染色 环形光阑(annular diaphragm) :位于光源与聚光器之间 相位板(annular phaseplate) :物镜中加了涂有氟化镁的相差板,可将直射光或衍射 光的相位推迟 1/4λ 2、原理: 光线透过不同密度的物质时滞留时间长短不同, 把透过标本的可见光的光程差变成振幅 差,从而提高了各种结构间的对比度,使各种结构变得清晰可见。肉眼能够辨认出来。 3、用途: 可用于观察活细胞,观察未经染色的玻片标本,甚至研究细胞核、线粒体等细胞器的动 态。 微分干涉显微镜 利用两组平面偏振光的干涉,加强影像的明暗效果。适于研究活细胞中较大的细胞器。
(四)细胞内特异核酸的定位与定性 •原位杂交:用标记的核酸探针通过分子杂交确定特异核苷酸序列在染色体上或在细胞中的 位置
•光镜水平–同位素标记或荧光素标记的探针 •电镜水平–生物素标记的探针与抗生物素抗体相连胶体金标记结合 FISH(Fluorescent In Situ Hybridization)荧光原位杂交
二、电子显微镜技术 1.电子显微镜的基本知识 高分辨率<—电子束作为光源,波长小于 0.1nm ①电磁透镜聚焦②镜筒高度真空③图像通过荧光屏或感光胶片记录
2.电子显微镜的基本构造 ①电子束照明系统(电子枪和聚光镜)②成像系统(物镜、中间镜与投影镜)③真空系统④ 记录系统 3.电镜分辨本领与有效放大倍数 ①电子显微镜分辨率可达 0.2 nm;②电镜的分辨本领是指电镜处于最佳状态下的分辨率 电镜与光镜光路图比较
3.电子显微镜制样技术
应用超薄切片技术,几乎可以观察各种细胞的超微结构 (2)负染色技术:背景染色,衬托出样品的精细结构 ①观察线粒体基粒、核糖体、蛋白颗粒及细胞骨架纤维甚至病毒等 ②用重金属盐(如磷钨酸钠、醋酸铀等)对铺展在载网上的样品进行染色,使整个载网都铺 上一层重金属盐, 而有凸出颗粒的地方则没有染料沉积。 由于电子密度高的重金属盐包埋了 样品中低电子密度的背景,增强了背景散射电子的能力以提高反差,这样,在图像中背景是 黑暗的,而未被包埋的样品颗粒则透明光亮,这种染色称为负染技术。 ③分辨率可达 1.5 nm 左右 (3)冰冻蚀刻技术 包括冰冻断裂和蚀刻复型两步:主要用来观察膜断裂面的蛋白质颗粒和膜表面结构。 标本置于干冰或液氮中冰冻。然后断开,升温后,冰升华,暴露断面结构。向断面喷涂一层 蒸汽铂和碳。然后将组织溶掉,把铂和碳的膜剥下来,此膜即为复膜(replica) ,置于载网 上作电镜观察。 4.扫描电镜技术(Scanning electron microscope, SEM) 观察标本表面结构。 ①分辨率为 6~10nm;②电子“探针”扫描,激发样品表面放出二次电子,探测器收集二次 电子成象;③为了使标本表面发射出次级电子,标本在固定、脱水后,要喷涂上一层重金属 膜,重金属在电子束的轰击下发出次级电子信号;④CO2 临界点干燥法防止引起样品变形的 表面张力问题。 5.扫描隧道显微镜 STM (Scanning tunnel microscope)(发明者诺贝尔) ①探测微观世界物质表面形貌②利用量子力学中的隧道效应③具有原子尺度的高分辨本领
(三)荧光显微镜 Fluorescence Microscope 在光镜水平对特异蛋白质等大分子研究的最有力工具之一。 1.特点:光源为短波光;有两个特殊的滤光片;需要特异荧光染料。 2.原理:以紫外线为光源,经滤色系统发出一定波长的光作为激发光、激发标本内的荧光 物质发射出荧光后,再通过物镜和目镜的放大进行物体的形状及其所在位置的观察。 3.结构 荧光显微镜与普通光学显微镜相比较,增加了一些附件:荧光光源、激发光滤片和阻断滤 片。 荧光光源:一般采用超高压汞灯(50-200W) 激发滤片(一般有紫色、蓝色和绿色激发片) :使一定波长的激发光透过照射到标本上,而 将其他光都过滤掉; 阻断滤光片:1)吸收和阻挡激发光进入目镜、以免干扰荧光和损伤眼睛;2)选择并让特异 的荧光透过,表现出专一的荧光色彩。 免疫荧光技术——两种以上荧光素标记同一样品,可同时显示不同成分在细胞中的定位。
Formazan,并沉淀在细胞中,而死细胞没有这种功能。用酶标仪测定 OD 值可反映活细胞的 相对数目。 •MTT 法简单快速、准确,广泛应用于新药筛选、细胞毒牲试验、肿瘤放射敏感性实验等。 4. 细胞增殖测定:BrdU(5-溴脱氧尿嘧啶核苷)(5-乙炔基-2’脱氧尿嘧啶核苷):胸 腺嘧啶核苷类似物 BrdU:需要通过 BrdU 抗体介导的免疫荧光染色 EdU:可以和 Apollo 荧光染料特异性地结合 (二)细胞工程 1. 细胞融合(cell fusion)与细胞杂交(cell hybridization) •通过培养和介导,两个或多个细胞合并成一个双核或多核细胞的过程称为细胞融合(cell fusion)或细胞杂交。 •同核体:相同基因型的细胞融合而成。 •异核体:不同基因型的细胞融合而成。 •自发融合:同种细胞在培养过程中自发合并的现象。 •诱发融合:异种间的细胞必须经诱导剂处理才能融合。 •诱导细胞融合的方法:生物方法(仙台病毒、副流感病毒和新城鸡瘟病毒) 、化学方法(聚 乙二醇 PEG) 、物理方法(电击和激光) 。 2. 单克隆抗体(发明者诺贝尔) 融合后的杂交细胞既能分泌抗体,又能无限增殖。 3. 细胞显微操作技术 micromanipulation technique •显微操作技术是在倒置显微镜下利用显微操作器进行细胞或早期胚胎操作的一种方法。 •包括细胞核移植、显微注射、嵌合体技术、胚胎移植以及显微切割等。 细胞核移植技术(克隆羊多利)
细胞形态结构的观察方法 一、光学显微镜技术(light microscopy) ���普通复式光学显微镜(Compound Light Microscope) ���相差显微镜(phase-contrast microscope) ���微分干涉显微镜(differential interference contrast microscope,DIC) ���荧光显微镜(Fluorescence Microscopy) ���激光共焦扫描显微镜(Laser ConfocalMicroscopy) ���活细胞工作站(live cell station)
免疫染色为抗原抗体反应。 绿色荧光蛋白(GFP)的基因与编码某种蛋白质的基因相融合表达。 GFP 成就诺贝尔奖。
荧光显微镜
(四)激光共聚焦扫描显微镜(LCSM)LSCM:Laser confocalscanning microscope ①以激光为光源;②聚光镜和物镜同时聚焦到同一点上,排除焦平面以外的成像;③利用 激光扫描装置和计算机高速采集与处理汇聚每一个点上的信息, 形成清晰的二维图像; ④分 辨率比普通荧光显微镜高 1.4~1.7 倍 (五)活细胞工作站 Live cell station 计算机辅助的 DIC 显微镜可在高分辨率下研究活细胞中的颗粒及细胞器的运动 ①采用组合方式,集普通光镜、相差、荧光、DIC、摄影装置于一体;②自动化与电子化。
(一)普通复式光学显微镜 1. 构成 (1)照明系统:光源(普通光线可见光)、折光镜、聚光镜、滤光 (2)光学放大系统:两组玻璃透镜——目镜、物镜 (3)机械装置:保证光学系统的准确配置和灵活调控 2. 原理: 是将两个凸透镜系统适当地组合在仪器上对标本进行放大, 经物镜形成倒立实像, 经目镜放大成虚像。 3. 分辨率:是指区分开两个质点间的最小距离。指分辨物体最小间隔的能力。是显微镜最 重要的性能参数。
D=
������ 2
0.61λ ������ ∙ sin
������ 2
λ 为入射光波长; 数值口径:������ ∙ sin ; N=介质折射率; α =镜口角(样品对物镜镜口的 张角) ,通常最大值可达 140°。 显微镜的分辨率是由入射光波长和物镜数值口径决定,缩短使用的光波波长或增加数 值口径可以提高分辨率。可见光的光波幅度比较窄,紫外光波长短可提高分辨率。要增加数
(五)定量细胞化学分析与细胞分选技术 用途:对单个细胞进行快速定量分析与分选的一门技术
用于细胞周期、细胞凋亡的研究。
细胞培养与细胞工程
(一)细胞的培养 1. 几个基本概念: •原代培养(primary culture) :培养来自动物机体的细胞群。将细胞转移到新的容器中培 养称为传代或传代培养(passage) 。 •细胞系(cell line) :原代培养细胞成功传代即为细胞系。亚二倍体,接触抑制丧失。 •克隆(clone) :亦称无性系。指由同一个祖先细胞通过有丝分裂产生的遗传性状一致的细 胞群。 2. 动物细胞培养 •群体培养(mass culture) :将含有一定数量细胞的悬液置于培养瓶中,让细胞贴壁生长, 汇合(confluence)后形成均匀的单细胞层; •克隆培养(clonalculture) :培养高度稀释的细胞悬液,细胞贴壁生长,每一个细胞形成 一个细胞集落,称为克隆。 Eg:HeLa 宫颈癌上皮细胞 from Henrietta Lacks 培养细胞的特性: 培养细胞的生长方式: •贴附生长:必须贴附于支持物表面才能生长,见于各种实体瘤细胞。 •悬浮生长:于悬浮状态下即可生长,不需要贴附于支持物表面,见于 各种造血系统肿瘤细胞。
Chapter2 细胞生物学研究方法
细胞生物学研究方法:1. 细胞形态结构的观察方法; 2. 细胞组分的分析方法; 3. 细胞培养、细胞工程与显微操作技术 显微镜的历史:1. SalvinoD’ Armate第一个发明眼镜 2. the Jansen’s将几个透镜在一个长管中组合,放大倍数增大 3.Anton Van Leeuwenhoek(列文虎克)第一个使用显微镜(270*) 4.Robert Hooke 发现细胞,使用原始结构显微镜
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