叶点霉综述类
园林植物病害生物病原物

二.真菌的营养阶段 真菌营养阶段产生营养体,营养体大多数是
丝状体,少数是单细胞和原生质团。
丝状体由菌丝交织组成,又称菌丝体,它的基 本单位是菌丝。
(一)菌丝的形状 菌丝是圆管状的,无色透明的。 有的真菌原生质体内有多种色素,使菌丝
体呈现不同颜色。
第三页,共82页。
(二)菌丝的类型
有隔菌丝:
第六页,共82页。
第七页,共82页。
(四)菌丝的变态
1.菌核—由菌丝紧密交织而形成的坚
硬的休眠体;形状似鼠粪或
不规则形。
2.子座—由菌丝组织或菌丝与寄主组
织结合形成垫状结构。
3.厚垣孢子— 由菌丝体或孢子的某些
细胞膨大,原生质浓缩,
细胞壁加厚而形成。
第八页,共82页。
4.菌索 — 由菌丝平行排列而形成的
锈菌目.黑粉菌目;
第四十六页,共82页。
锈菌目引起许多植物的锈病;
黑粉菌目引起许多植物的黑粉病。
(1)锈菌目 ①锈菌目特性:
A.多型性 典型的锈菌历经五个不同的发育阶段,产生 五种不同的孢子;
有的锈菌只有三种孢子,
有的锈菌只有四种孢子
第四十七页,共82页。
孢子类型 性孢子 锈孢子
孢子器 性子器 锈子腔
(二)识别方法
1.症状观察 2.镜检 直接挑起病原镜检或保湿培养镜
检。
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3.柯赫氏证病法
(1)从感病的寄主上分隔得到病原菌纯种;
(2)将纯种接种到分离植物上,得到与 原来相同的症状;
(3)从接种发病的植物上分离,得到与原来
相同的病原。
第五十八页,共82页。
第三节 植物病原病毒
(3)假霜霉属: 引起凤仙花.瓜类霜霉病。
农业植物病理学试题参考答案综述

农业植物病理学试题参考答案一.填空(15分,每空0.5分)1、水稻白叶枯病的症状有4种类型:(普遍型)、(急性型)、(调萎型)、(黄叶型)。
2、玉米品种对玉米大斑病的抗病性可分为(数量抗病性)、(褪绿斑抗病性)、(褪绿点抗病性)和(无病斑抗病性)等4种类型。
3、稻瘟病菌通常以(分生孢子)和(菌丝)在(病草)和(病种)上越冬,成为次年的初侵染来源。
4、甜菜丛根病的发病程度与土壤中带毒的甜菜多黏菌的(休眠孢子)或(游动孢子)的量成正相关。
5、烟草野火病最突出的特点是(褐色病斑周围有明显的黄色晕圈)。
6、十字花科蔬菜软腐病的发生与(伤口种类和愈伤能力)(虫害)(气候条件)(栽培管理条件)(品种抗病性)等关系密切。
7、辣椒病毒病症状主要有(花叶型)(蕨叶型)(条斑型)三种类型。
8、菜豆炭疽病菌主要在(种子)、(病残体)上越冬。
9、(土壤)带菌是茄子黄萎病的主要侵染源。
此外,病菌也可以在(种子)内越冬,是病害远距离传播的主要途径。
该病靠(气流)(雨水)(人畜和农具)传播。
三、选择题(15分,每题1分)1、小麦赤霉病病害循环的类型为(a )a.多循环病害b.单循环病害c.只有初侵染d.积年流行病害2、防治水稻纹枯病的有效化学药剂为(d )a .三环唑b .粉锈宁c .敌克松d .井风霉素3、马铃薯晚疫病菌一旦形成无性孢子,必定是(c )。
a .分生孢子b .担孢子c .游动孢子d .芽孢子4、马铃薯病毒和防治策略是(d )a .防治蚜虫,加强栽培管理b .经常性换种c .以药剂防治为主d .生产和使用无毒种薯5、玉米丝黑穗病的越冬场所为( b )。
a.种子、粪肥b.土壤和种子c.土壤、病残体、种子d.种子、土壤、粪肥6、油菜菌核病是在开花期以子囊孢子先侵染(b )后,再要侵染茎秆。
a.叶片b.花瓣c.根部d.果荚7、属活体营养的病原物有(acde )。
a.小麦锈病菌b.玉米小斑病菌c.油菜霜霉病菌d.玉米丝黑穗病菌e.小麦白粉病菌8 、我国小麦条锈病主要流行年份为( d )。
植物病理学实验报告1

植物病理学实验报告实验一:病害症状观察实验学时:2实验类型:验证实验要求:必修一、实验目的本实验的目的是进行症状的观察,分两部分进行。
一部分在田间,观察田间作物病害的病状和病征;一部分在室内,观察室内所提供的植物病害标本的病状和病征。
通过实验,使同学们认识植物植物病害的症状类型、特点,初步掌握正确地描述病害症状的方法,加深对植物病害的感性认识,了解症状在病害诊断中的作用。
二、实验内容植物病害的症状表现十分复杂,按照症状在植物体显示部位的不同,可分为内部症状与外部症状两类。
在外部症状中,按照有无病原物子实体显露可分为病状与病征两种。
本实验主要进行植物病害症状的观察。
(一)病状类型病状就是在植物病部所看到的不正常的状态。
通常分为五种类型。
1.变色植物受外界有害因素的影响后,常导致色泽的改变,如褪色、条点、白化、色泽变深或变浅等,统称为变色。
主要表现有:(1)褪绿或黄化:褪绿和黄化是由于叶绿素的减少而叶片表现为浅绿色或黄色。
如小麦黄矮病、植物的缺铁、缺氮等。
(2)花叶与班驳:如烟草花叶病、菜豆花叶病、黄瓜花叶病等。
(3)变红色或紫色:如玉米或谷子红叶病、植物缺铁等。
2.坏死是由于感病植物组织和细胞的死亡而引起的。
(1)斑点:根、茎、叶、花、果实的病部局部组织或细胞坏死,产生各种形状、大小和颜色不同的斑点,如玉米大、小斑病、烟草赤星病、白菜黑斑病等。
(2)枯死:芽、叶、枝、花局部或大部分组织发生变色、焦枯、死亡。
如马铃薯晚疫病、水稻白叶枯病。
(3)穿孔、落叶和落果:在病斑外围的组织形成离层,是病斑从健康组织中脱落下来,形成穿孔,如桃细菌性穿孔病等;有些植物的花、叶、果等感病后,在叶柄或果梗附近产生离层而引起过早的落叶、落果等。
(4)疮痂:果实、嫩茎、块茎等的受病组织局部木栓化,表面粗糙,病部较浅,如柑桔疮痂病、马铃薯疮痂病等。
(5)溃疡:病部深入到皮层,组织坏死或腐烂,病部面积大,稍凹陷,周围的寄主细胞有时增生和木栓化,多见与木本植物的枝干上的溃疡症状。
扁豆的叶点霉斑点病

通过选用抗病品种、合理轮作、科学施肥等农业措施,降低病害 的发生和流行。
科研成果的应用与推广
1 2 3
加强科研与生产实践的衔接
将研究成果应用于生产实践,解决实际生产中 的问题,提高扁豆生产的效率和效益。
加强技术推广与培训
通过技术推广和培训活动,提高广大农民和技 术人员的防治技术水平,推动防治工作的有效 开展。
合理配药与施药
根据病情和药剂种类,合 理配制和使用药剂;注意 均匀喷施,避免漏喷或重 复喷施。
定期更换药剂
避免长期使用同一种药剂 ,以免病原菌产生抗药性 。
生物防治方法
使用生物制剂
使用生物制剂,如枯草芽孢杆 菌等,可有效抑制病原菌的生
长和繁殖。
以菌治菌
通过接种有益微生物,控制病原 菌的数量和繁殖,以达到防治病 害的目的。
高温高湿的条件有 利于该病害的发生 ,连阴雨天气会加 重病情。
传播途径主要通过 气流和雨水溅射进 行,从气孔侵入寄 主。
02
扁豆叶点霉斑点病的危害 与影响
对扁豆产量的影响
减少扁豆的产量
扁豆叶点霉斑点病会对扁豆的叶片和果实造成损害,导致产量下降。
降低种植收益
由于病害导致产量减少,扁豆种植的收益也会相应降低。
案例二
在扁豆种植区,发现叶片上出现圆形或近圆 形的褐色斑点,直径1-3毫米,有的病斑周 围有褪绿的晕圈。病斑密度逐渐增大,严重 时连接成片,导致叶片枯死。通过病原菌分 离和鉴定,确认病原菌为叶点霉属真菌。采 取的防治措施包括使用化学药剂进行防治等
。
成功防治经验的总结与推广
01
抗病品种的选育和利用
针对扁豆叶点霉斑点病的防治,选育抗病性强的品种是关键。可以通
叶点霉菌

2.1 聚酮类 (19/30)
2.1.2 含有芳香结构的聚酮类[12-13] (5/19)
15为植物毒素。
[9] Evidente, A.; Cimmino, A.; Andolfi, A.et al ., Phyllostictines A-D, oxazatricycloalkenones produced by Phyllosticta cirsii, a potential mycoherbicide for Cirsium arvense biocontrol. Tetrahedron 2008, 64, 1612-1619. [10] van Beverwijk, A. L.; Bunschoten, G. E.; Salemink, C. A.et al, Identity of Rand's fungus Phyllosticta caryae. Planta Med. 1963, 11, 407-9.
2.2 倍半萜类[11] (6/30)
21抑制肿瘤细胞。
[11]Wijeratne, E. M. K.; Paranagama, P. A.; Marron, M. T.et al, Sesquiterpene quinones and related metabolites from Phyllosticta spinarum, a fungal strain endophytic in Platycladus orientalis of the Sonoran desert. J. Nat. Prod. 2008, 71, 218-222.
2.3 酰胺类[12,13] (5/30)
Hale Waihona Puke [12] Evidente, A.; Cimmino, A.; Andolfi, A.Vurro, M et al, Phyllostictines A-D, oxazatricycloalkenones produced by Phyllosticta cirsii, a potential mycoherbicide for Cirsium arvense biocontrol. Tetrahedron 2008, 64, 1612-1619. [13] Kumaran, R. S.; Muthumary, J.; Hur, B.-K., Taxol from Phyllosticta citricarpa, a leaf spot fungus of the angiosperm Citrus medica. J. Biosci. Bioeng. 2008, 106, 103-106.
椒草(叶点霉)叶斑病

椒草(叶点霉)叶斑病
椒草(叶点霉)叶斑病,也称为椒草褐斑病或椒草枯萎病,是由真菌类寄生于椒草叶片上形成的一种疾病。
椒草是一种具有广泛草本性与匍匐性的常绿植物,有着丰富的营养价值和药用价值,但是它常常会遭受到叶斑病的侵害,导致植株死亡或者减产。
病因
椒草叶斑病的病原菌主要为真菌类的黄单胞菌属,这种真菌类对气候条件适应度广泛,而且生长速度快,容易感染椒草叶片,进而形成病斑。
此外,在潮湿、多雨的环境下,椒草的发病率更高,因此在植物高湿的地区,叶斑病的发病率也会相应的提高。
症状
椒草叶斑病的症状主要体现在椒草叶片上,病斑的形状不规则,一般为圆形或卵形,外围较清晰,中央区域呈现出褐色或黑色,像是出现了坑洞。
病斑的大小可根据不同的病程而变化,最初阶段较小,但随着病程进行,病斑会不断扩大,直到整片叶子呈现黑色或焦黄色,这时候植株就完全萎缩了。
防治方法
1. 选择抗性强的种植品种:在选育椒草时,可以选择抗病力强的品种,减少叶斑病的发生率。
2. 植株定期喷洒药物:在叶斑病盛行期及其前后期,需
要对椒草进行药物喷洒,保持植株的健康状态。
3. 监测植株枯死情况:及时监测叶斑病的病程变化,随
时标记已经受到感染的植株,及时对其进行处理,防止病害扩散。
4. 调整降雨量:在植物高湿的地区,可以通过控制降雨
量来减少椒草叶斑病的发生率。
常规浇水,避免长时间的积水,会影响叶片的通风和干燥,增加叶斑病的发生率。
总结
针对椒草叶斑病的发病机理、症状和防治方法进行了介绍,对于椒草生产的管理者和种植户来说,希望在日常管理工作中,能够按照上述防治方法开展工作,确保椒草的生长健康,提高其生产效益和质量。
黄瓜叶点霉叶斑病病症及防治方法
黄瓜叶点霉叶斑病病症及防治方法
一、黄瓜叶点霉叶斑病病症
黄瓜叶点霉叶斑病,是黄瓜种植中的一种常见的进入春天后易发的真菌病害。
危害的真菌葫芦科叶点霉,属于半知菌亚门类型的真菌。
主要为主要表现为在叶片表面出现数量不多、不太明显、大小不一的小黑粒点。
发病初期现大型水浸状斑,中部色较浅,后渐干枯,四周具浅绿色水渍状晕环,病斑大小15~20毫米;后期病斑中间呈薄纸状,浅黄色,易破碎,病斑上可见数量不多、不大明显的小黑粒点,即病菌的分生孢子器。
该病多发生在生长后期。
二、黄瓜叶点霉叶斑病
(1)实行2年以上轮作,覆盖地膜可减少初侵染。
(2)增施充分腐熟的有机肥,采用配方施肥技术,每667平米施惠满丰多元素复合液肥400毫升,对水稀释500倍喷洒叶面,可增强抗病性。
(3)合理灌溉适时适量控制浇水,雨后及时排水,必要时打去下部叶片,以增加通透性。
(4)发病初期开始喷洒75%百菌清可湿性粉剂600倍液或70%代森锰锌可湿性粉剂500倍液、64%杀毒矾可湿性粉剂500倍液、50%苯菌灵可湿性粉剂1500倍液,采收前3天停止用药。
1。
番荔枝类叶点霉叶斑病
病原和传播途径
病原
病原为真菌类叶点霉(Phyllosticta sp.),以菌丝体和分生孢子器在病组织中越 冬,分生孢子通过风雨传播。
传播途径
病原主要通过风雨传播,从气孔或伤口侵入叶片组织。
对植物的影响
01
02
03
影响生长发育
该病害会导致叶片组织受 损,影响植物的光合作用 和营养吸收,从而影响植 株的生长发育。
植物抗逆性下降
03
该病会导致番荔枝植物的抗逆性下降,使其容易受到其他病原
菌的侵染。
对番荔枝果实品质的影响
果实品质下降
番荔枝类叶点霉叶斑病会导致果实表面出现斑点、腐烂和落果等 现象,严重影响果实的品质和产量。
降低果实价值
该病会导致番荔枝果实品质下降,从而降低其市场价值和竞争力。
不利于果实储存和运输
该病会导致番荔枝果实容易腐烂和变质,不利于果实的储存和运输 ,影响市场销售。
01
番荔枝类叶点霉叶斑病的 防治研究与发展趋势
现有的防治方法及效果
化学防治
使用杀菌剂如三唑酮、苯醚甲环唑等,可有效控制病原菌的生长 和繁殖,减轻叶斑病的危害。
生物防治
通过引入拮抗微生物,如细菌、真菌等,抑制病原菌的生长和繁 殖,达到防治叶斑病的目的。
农业防治
采取合理的栽培措施,如加强肥水管理、修剪枝叶、提高植株抗 病能力等,可有效减少叶斑病的发生。
降低产量和质量
病害严重时,会导致叶片 大量枯死,降低果实的产 量和质量。
增加管理成本
为了控制病害的传播和蔓 延,需要采取一系列的防 治措施,增加了农业管理 的成本。
Hale Waihona Puke 1疾病识别典型症状识别
初期症状
常见园林植物真菌性叶斑病的研究综述
万寿菊和 14 个法国万寿菊(T.patula)品种抗病性的研究, 结果表明 3 个非洲万寿菊是易感品种,感病率在 70%以上, 而 10 个法国万寿菊是高抗品种,感病率在 10%以下[10]。农 作物是病原的源头之一。在日本,Nishi 报道的由番茄葡 柄 霉 Stemphylium lycopersici 引 起 的 菊 花 叶 斑 病 , [11] Mirkova and P.Konstantinova 对保加利亚温室的非洲菊叶 斑病进行了调查和病原鉴定,并认为引起非洲菊叶斑病 的病原为小孢子链格孢种群,试验证明该病原菌同时是 西红柿、辣椒、马铃薯块茎和胡萝卜等 9 种农作物的病原 菌[12]。在大田环境下,引起的夹竹桃科长春花(Catharan⁃ thus roseus)叶斑病(Alternaria sp.)的发生,指出高湿、低 肥、感病品种、种植时间是病害易发生的条件[13]。Hirooka 报道由帚梗柱孢霉 Cylindrocladium canadense 引起草莓和 珊瑚钟(Heuchera sanguinea)叶斑病,均为当地新记录寄 主病害[14]。Trkulja et al.通对内部转录间隔区(ITS)、钙调 蛋白基因(CAL)和组蛋白基因(H3)进行序列扩增,Blast 的结果与 Cercospora violae 同源性 100%,其寄主为多年生 草本植物香堇菜(Viola odorata)),这首次在塞尔维亚报 道[15]。Mmbaga 报道了在美国田纳西州的八仙花(Hydran⁃ gea macrophylla)叶斑病的病原是 Myrothecium roridum,接 种该菌 4~5d,能造成叶部不同程度的褐变[16]。Kwon 在韩 国植物检疫中发现花烛属(Anthurium)叶斑病的致病菌 M.roridum,接种能产生该菌的分生孢子器[17]。叶斑病病 原传播迅速,同一病原在不同地区出现了传播,这些叶斑 病病原的分布范围逐渐扩大,此前,没有发生过该种病害 的花卉,也成为该地的寄主新种。 1.2 国内报道 吴新颖对吉林省东部地区发生的万寿菊 叶斑病病原进行了鉴定,为石竹链格孢 Alternaria gyp⁃ sophila,在国际上也是首次报道万寿菊是该病原菌的自 然寄主[18]。余红梅经病叶镜检和 PDA 培养基分离培养鉴 定,确定千日红(Gomphrena globosa)叶斑病是由 Aternar⁃
叶斑病 霜霉病 锈病 树脂病 灰霉病 轮纹病 斑点落叶病
叶斑病霜霉病锈病树脂病灰霉病轮纹病
斑点落叶病
叶斑病、霜霉病、锈病、树脂病、灰霉病、轮纹病、斑点落叶病都是植物的病害,具体如下:
1.叶斑病。
侵染叶片、叶柄和茎部,病斑圆形,后扩大
呈不规则状大病斑,并产生轮纹,病斑由红褐色变为黑褐色,中央灰褐色。
2.霜霉病。
由真菌中的霜霉菌引起的植物病害。
霜霉菌
是专性寄生菌,极少数的霜霉菌已可人工培养。
3.锈病。
由真菌中的锈菌寄生引起的一类植物病害。
锈
菌一般只引起局部侵染,受害部位可因孢子积集而产生不同颜色的小疱点或疱状、杯状、毛状物。
4.树脂病。
真菌性病害,危害部位是叶、果实、枝干。
枝干染病时有水泡状病斑突起,流出浅褐色至褐色类似酒糟气味的胶液。
5.灰霉病。
是露地、保护地作物常见且比较难防治的一
种真菌性病害,属低温高湿型病害,病原菌生长温度为20~30℃,温度20~25℃、湿度持续90%以上时为病害高发期。
6.轮纹病。
是苹果枝干和果实重要病害之一。
常与干腐病、炭疽病等混合发生,为果品生产的重大威胁,近年有蔓延加重趋势。
7.斑点落叶病。
是由苹果链格孢的强毒株系侵染所引起的、发生在苹果上的病害。
主要危害苹果叶片,也危害叶柄、一年生枝条和果实。
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最早的叶点霉记录是由miura [1]记载的东北地区24种叶点霉,此后邓叔群戴芳澜(1979)等对国内不同地区的叶点霉亦作描叙。
在《中国真菌志》中,白金凯(2003)总结了国内有记录的叶点霉278种并详细描叙了其中143种
植物内生真菌是寄生于植物的根、茎、叶等器官组织内部的一种真菌,但在一般情况下并不会引起植物体的病害。
该真菌的生活史的全部阶段或一定阶段都是在宿主植物的组织或器官内,而宿主植物并不一定会表现出外在的病症[1][2],它们与宿主植物是互利共生的关系[3]。
因此,植物内生真菌的存在和作用长期以来并没有得到科学家们的重视。
直到1993 年,来自于美国蒙大拿州立大学的研究小组Strobel 从短叶红豆杉中首次分离得到了一种植物内生菌,经实验研究,该菌能合成一种具有抗肿瘤生物活性的物质——紫杉醇,从而证明了该植物内生菌具有合成与宿主植物相同或相似的生物活性成分的功能[4]。
从此,掀起了一股从药用植物中分离内生菌的热潮,并利用分离得到的内生菌进行发酵,用以生产重要的天然药物[5]。
研究表明,植物内生真菌是一个庞大的特殊真菌类群。
迄今为止已被发现的维管植物中几乎都有内生菌的存在[6]。
目前,内生真菌的研究涉及到低等的孢子植物,如海洋藻类[7]、蕨类[8]、苔藓、地衣等,以及某些高等植物。
植物内生真菌多数为子囊菌类(Ascomycetes) 的腔菌纲(Loculoasemoycetes) 、盘菌纲(Discomycetes)和核菌纲(Pyrenomycetes),无孢菌群的多种真菌以及少量接合菌、担子菌和半知菌
中常见的青霉属(Penicillium)、镰刀菌属(Fusarium)、链格抱菌属(Alternaria)等。
在多种植物中广泛分布的几个属为:叶点霉属(Phyllosticta)、半壳
霉属(Leptostroma)、拟茎点霉属(Phomopsis)、拟隐抱霉属(Ctyptosporipsis),其宿主有藻类、草本、灌木和针叶树等多个植物类群[9] 。
通常来说,从一种植物中可以分离出几种乃至上百种内生菌,其中至少有一种显示宿主特异性。
宿主环境成为影响植物内生真菌生存和代谢的主要因素[10],数据显示,热带地区的植物内生真菌的数目和其产生的活性代谢产物更多于温带[11]。
大黄叶点霉,是植物大黄地上部分叶片中的一种植物内生真菌。
药用植物内生真菌的次级代谢产物被分离鉴定后,证明其代谢产物中含有与宿主植物相同或功能相似的有效成分[12]——蒽醌类物质。
目前,对于植物内生真菌菌代谢产物分离鉴定的研究很多,尤其是叶点霉菌属的研究。
2008 年,Wijeratne[13]等从柏科植物侧柏的叶点霉代谢产物中分离出了倍半萜类衍生物,结构如图 1.1 所示,并用MTT 法对五中衍生物进行生物活性检测,实验结果显示其中一种衍生物Tauranin可以诱导PC-3M和NIH 3T3细胞系凋亡。
图 1.1 倍半萜醌类
Fig 1.1 Sesquiterpene quinines
同年,Kumaran[14]等从桔实叶点霉发酵产物中分离出了一种具有抗肿瘤活性的物质,经色谱技术的鉴定该物质为紫杉醇;Evidente[15]
等从蓟叶点霉中提取出了具有抗癌、抗病毒、抗疲劳的活性物质。
因此,在大黄叶点霉的发酵产物中也应含有药用大黄中的有效成分[16]——蒽醌
类物质。
[4] Stierle A, Strobel G, Stierle D. Taxol and taxane production by Taxomyces andreanae, an endophytic fungus of Pacific yew [J]. Science, 1993, 260(5105):
214-216.
[12] 潘景芝. 常见药用植物内生菌根真菌抑菌活性及分子生物学的初步研究[D].吉林农业大学, 2007.
[12]王楠,叶点霉发酵液中蒽醌类物质的分离提取及生物活性的初步研究[D].吉林大学,2014.
[1] K. Viswanathan, S. N. Ononye, D. L. Wright, et al. Bioorg. Med. Chem. Lett. 2012, 22, 6919
[2] Frédérick R, Denny WA. J Chem Inf Model. 2008, 48 (3) : 629-638.
[3] Kamishima T., Kikuchi T. et al. Eur J Org Chem. 2014, 16, 3443-3450.
[4] Cao S, Foster C , Brisson M, et al. Bioorg Med Chem , 2005, 13 (4 ) : 999-1003.
[1] 张珂,叶点霉属的分类和系统发育研究[D]. 2013.
[2]Wicht B. Fungal Diversity. 2011, 51 : 43-61.
[3]邓叔群,中国的真菌[M]. 科学出版社,1963.
[4]戴芳澜,中国真菌总汇[M]. 科学出版社,1979.
[5]白金铠,中国真菌志第十五卷球壳孢目[M]. 科学出版社,2003.
[6]王楠,叶点霉发酵液中蒽醌类物质的分离提取及生物活性的初步研究[D]. 吉林大学,2014.
[7]Spotts R. phytopathology. 1980, 70 (3) : 252-255.
[8]Weidemann G, Boone D, Burdsall Jr H. Mycologia. 1982, 74 : 59-65.
[9]Glienke C, Pereira O, Stringari D, et al.[J]. Persoonia-Molecular Phylogeny and Evolution of Fungi. 2011, 26 (1) : 47-56.
[10]Miura M. Flora of Manchuria and East Mongolia.
[11] Mazzeo G, Santoro E, Andolfi A, et al.[J]. Nat. Prod. 2013, 76, 588-599.
[12] Calhoun L A, Findlay J A, Miller J D, et al. [J]. Mycol. Res. 1992, 96, 281-286.
[13] Entwistle I D, Howard C, Johnstone R A W.[J]. Phytochemistry 1974, 13, 173-4.
[14] Calhoun L A, Findlay J A, Miller J D, et al. [J]. Mycol. Res. 1992, 96, 281-286.
[15]Wijeratne E M K, Paranagama P A, Marron M T, et al. [J]. Nat. Prod. 2008, 71, 218-222.
[16] Evidente A, Cimmino A, Andolfi A, Vurro M, et al. Tetrahedron
2008, 64, 1612-1619.
[17] Kumaran R S, Muthumary J, Hur B-K.[J]. Biosci. Bioeng. 2008, 106, 103-106.
[18]Stephen J, Danko, Y. Kono, J.et al,Structure and Biological Activity of a Host-Specific Toxin Produced by the Fungal Corn Pathogen Phyllosticta maydist.[J]. Biochemistry 1984, 23, 759-766.。