慢病毒滴度检测 SOP
慢病毒包装和滴度检测方案流程
慢病毒包装、滴度测定方案流程一、背景：四质粒的包装体系1.含有目的基因的转染质粒2.VSV-G：pMD2.G（包膜质粒）3.Rev：pRSV-Rev4.Gag/Pol：pMDLg/pRRE二、包装细胞：293T293T细胞由293细胞通过基因技术派生出的细胞系，是经过腺病毒E1A基因的转染，能表达SV40大T抗原，含有SV40复制起始点与启动子区。
该细胞贴壁松散，操作时请尽量轻柔；换液时需预热培养基。
培养条件：DMEM ＋10% FBS＋1% P/S三、主要试剂1.93T培养基：高糖DMEM（含丙酮酸钠、谷氨酰胺）+ 10% FBS + GlutaMAX2.病毒收获培养基：取50 ml 293T培养基，加入0.5 g BSA（Sigma A9418）和终浓度为10-15 mM的HEPES，0.22 µm过滤。
3.无内毒素质粒抽提试剂盒4.Polybrene (10 mg/ml)：促转染试剂，提高转染效率。
四、包装步骤1.Day1:汇合度90%的10cm dishs HEK293T细胞（~ 6×107/dish）按1：1比例传代至15cm dishs，第二天细胞汇合度达到90%-95%（~1.5×108/dish），培养基为Gibico高糖DMEM培养基（含10%FBS）。
2.Day2:1)转染前2-3个小时更换培养基（含10%FBS)；2)按照以下比例配制转染试剂：Mix 1体积μlMix 2量DMEM（无FBS）1000μlDMEM（无FBS）1000μl目的基因质粒25μgVGF190μl（1μg/μl）PMD2G7.5μgPSPAX215μgMix 1和Mix 2分别混合后，室温5-10min, 后将Mix 1和Mix 2混合，室温30min，加入至15cm dish中。
（细胞达到汇合度90%，细胞过少会影响转染效率）。
3.Day36h-24h内更换新鲜培养基（含10%FBS），观察转染效率并拍照。
慢病毒滴度测定方法简介
慢病毒滴度测定方法简介(表达荧光的慢病毒)Day 0：将生长状态良好的293T 细胞消化计数后稀释至1⨯105/ml, 加入96孔板，100 μl/孔(1⨯104个细胞)，每种病毒需要6个孔。
放入37℃，5% CO2培养箱中培养过夜。
Day 1: 在EP 管中做10倍梯度稀释，连续6个稀释度。
稀释方法如下：每种病毒准备6个1.5 ml EP 管，每管加入90 μl完全培养基，往第一个管中加入10 μl病毒原液，混匀后，吸取10 μl 加入第二个管混匀。
以此类推。
然后把稀释好的病毒和细胞孵育过夜。
Day 2：吸去带有病毒的培养液，在每个孔中再加入100 μl 完全培养液，以利于细胞的生长。
Day 3：显微镜观察荧光。
此时荧光会有初步表达。
Day 4：在荧光显微镜下观察结果，对荧光比例合适（10-30%之间）的孔进行细胞计数，并计算滴度。
其计算公式如下:滴度（TU/ml）=细胞数⨯荧光百分比⨯103/病毒原液体积(μl)。
举例：③号管对应孔的荧光比例为30%，细胞总数为8⨯104，滴度（TU/ml）=8⨯104⨯30%⨯103/0.1=2.4⨯108如果要感染2×105个细胞，MOI=30（1个细胞对应30个病毒粒子）（见下注），则需要病毒体积为=2×105⨯30/2.4⨯108（ml）=0.025 ml=25 μl.注：MOI值: MOI 是multiplicity of infection的缩写，中文译为感染复数,实际的含义即为每个细胞被多少个有活力病毒所感染。
各种细胞的最适MOI值有差别，请客户正式实验前先进行预实验摸索最适MOI。
慢病毒包装、纯化、滴度测定及感染
慢病毒包装、纯化、滴度测定及感染一、包装1.包装细胞Lenti-X™ Lentiviral Expression Systems User Manual.pdf（P11）; Lenti-X™ shRNA Expression Systems User Manual.pdf(P16)2.病毒载体及包装质粒病毒载体：DNA组构建及中量提取；包装质粒：商品化产品（Lenti-X™ Lentiviral Expression Systems User Manual.pdf（P12）; Lenti-X™ shRNA Expression Systems User Manual.pdf(P17)）或DNA中量提取（目前唯一使用来源）；3.细胞转染方法一：Lenti-X™ Lentiviral Expression Systems User Manual.pdf（P12）;Lenti-X™ shRNA Expression Systems User Manual.pdf(P17)；方法二：按照Lipofectamine™LTX & Plus Reagent (Cat.No.15338,invitrogen)进行，简要中文说明如下：a. 转染前24小时，把4–5 x 106个293T细胞传代至10cm培养皿中，加入完全培养基至终体积10ml，培养过夜，转染时，细胞密度为80–90%；b. 293T细胞转染前2小时换上9ml新鲜的完全培养基；c. 用之前充分混匀PLUS Reagent，在EP管中加入15ug的DNA混合物(pLVX-shRNA Plasmid DNA：pMDLg：pRes-Rev：pCMV-VSV-G 的摩尔比为1：1：1：1)，15ul的PLUS Reagent，用Opti-MEM定容到500ul，标记为Tube 1，温和混匀，室温孵育5分钟；d. 充分混匀Mix Lipofectamine LTX，在EP管中加入45ul的Mix LipofectamineLTX和455ul的Opti-MEM，标记为Tube 2，温和混匀；e. 将Tube 1的溶液加到Tube 2中，温和混匀，室温孵育5分钟；Tube 1 (Plasmid DNA) Tube 2 (LTX)15ug DNA MIX(pLVX-shRNA Plasmid DNA：455 µl Opti-MEMpMDLg：pRes-Rev：pCMV-VSV-G=1:1:1:1)15 µl PLUS Reagent 45 µl Mix Lipofectamine LTX Up to 500µl Opti-MEM 500 µl Total V olume500 µl Total Volumef. 将1 ml 转染复合物逐滴加入前一天种好细胞的100mm皿中，边加边摇匀。
关于慢病毒感染的相关知识总结
慢病毒使用操作手册一、慢病毒的储存与稀释:1. 病毒的储存：收到病毒液后在很短时间内即使用慢病毒进行实验，可以将病毒暂时放置于4 ℃保存；如需长期保存请放置于-80℃（病毒置于冻存管，并使用封口膜封口）①病毒可以存放于-80℃6个月以上；但如果病毒储存时间超过6个月，建议在使用前需要重新滴定病毒滴度②反复冻融会降低病毒滴度：每次冻融会降低病毒滴度10%；因此在病毒使用过程中应仅尽量避免反复冻融，为避免反复冻融,建议收到病毒后按照每次的使用量进行分装。
2. 病毒的稀释：如果需要稀释病毒，请将病毒取出置于冰浴融解后，使用培养目的细胞用PBS或无血清培养基(含血清或含双抗不影响病毒感染)。
混匀分装后4℃保存(请尽量在三天内用完) 分装后使用。
二、慢病毒用于体外（In Vitro）实验：感染培养原代细胞和建系细胞。
慢病毒对各种细胞和组织的亲嗜性不同，在使用慢病毒之前可以通过查阅相关文献，了解慢病毒对您的目的细胞的亲嗜性，感染复数（MOI 值）以及在体（In Vivo）注射所需要的病毒量。
如果没有相关文献支持，可以通过感染预实验得到合适的感染复数（MOI 值）（使用24孔板检测病毒对目的细胞的亲嗜性）。
慢病毒感染目的细胞预实验1. 慢病毒感染目的细胞预实验注意事项：①测定慢病毒对目的细胞的亲嗜性时，需要同时设置对慢病毒亲嗜性较高的细胞(HEK293T，Hela）作为平行实验的对照细胞。
②在进行慢病毒感染实验时，可以用完全培养基（培养目的细胞用）稀释；理论上，含有血清，双抗或者其他营养因子的完全培养基不影响慢病毒的感染效率。
③一般慢病毒单位为TU/ml，即每毫升中含有具有生物活性的病毒颗粒数。
如：病毒滴度为>1X108 TU/ml 即每毫升病毒液中至少含有1X108个具有生物活性的慢病毒颗粒。
2. 以24孔培养板为例，进行目的细胞和HEK293T 细胞的感染预实验实验前按照不同的MOI设置不同的感染孔，并根据MOI和细胞数量计算所需要的病毒量，如有必要可以使用PBS溶液或者无血清培养基稀释病毒原液。
怎么检测慢病毒滴度呢？
怎么检测慢病毒滴度呢？
滴度（Titer）：单位体积中有感染能力的病毒数目；单位：TU/mL（活性滴度单位）。
通常来说LV滴度检测：越准确，就越花时间；越省事的，就越不准确。
根据并不是所有的实验要求都需要精确检测，例如对于构建基因稳定过表达或干扰表达（shRNA）的细胞株，由于有后续的筛选的过程，就可采取快速检测法（死病毒也会检测出来）。
LV滴度的快速检测包括QPCR，ELISA和试纸法。
其差异在于，QPCR法：检测病毒核酸量；ELISA法：检测病毒衣壳蛋白量；试纸法：检测病毒p24衣壳蛋白含量。
而对于做RNAi-screening或CRISPR-screening等研究，则需要精确检测LV的滴度，包括荧光报告基因法和抗生素筛选法。
吉凯基因慢病毒滴度检测方法
吉凯基因慢病毒滴度检测方法逐孔稀释滴度测定法:一：样品准备1.检测前一天，对293T 细胞传代，每个24 孔中加１×105 个细胞，体积为500μL；2.次日，准备7~10 个无菌的Ep 管，在每个管中加入90 μL 的培养基（DMEM+10%FBS）；3.取待测定的病毒原液10μL 加入到第一个管中，混匀后，取10 μL 加入到第二个管中。
继续相同的操作直到最后一管；4.选取所需的细胞孔，吸去90 μL 培养基。
加入稀释好的病毒溶液。
放入37℃5%CO培养箱中培养；25.48 小时后，加入新鲜培养基500 μL。
小心操作，不要吹起细胞；6. 4 天后，抽提RNA 准备做RT-qPCR。
二：Real time 定量PCR 法测定滴度具体操作内容参考“吉凯基因慢病毒包装手册”14页“2) Real time 定量PCR 法测定滴度”三：滴度计算方法1.加入不同病毒量的细胞样品，通过提取总RNA后反转录为cDNA，然后进行定量PCR检测，通过比较control组和试验组的Ct值差异判断滴度值。
通常情况下，认为Ct值差异2以上存在显著差异。
2.反转录反应所获得的20 μL cDNA中只取了1 μL用于实时定量检测，所以该结果仅表示1/20样品的情况，所以在滴度计算时应该乘以系数20。
3.例如：若某次滴度检测中，1.00E-05 μL组样品和control组样品的Ct值存在2个左右差异，则认为在1.00E-05 μL组样品中存在病毒颗粒。
假定该组样品含有至少有1个病毒颗粒，则病毒的滴度为：1/(1.00E-05) *20＝2.00E+6 TU/μL=2.00E+9 TU/ml。
四：融解曲线说明由于SYBR GreenⅠ与所有的双链DNA相结合，因此由引物二聚体、单链二级结构以及错误的扩增产物引起的假阳性会影响定量的精确性。
通过测量升高温度后荧光的变化可以帮助降低非特异产物的影响。
由熔解曲线来分析产物的均一性有助于更准确地分析SYBR Green Real-Time PCR定量结果。
慢病毒收毒及纯化 SOP
慢病毒收毒及纯化标准操作细则1. 目的：规范慢病毒收毒及纯化标准操作程序2. 范围：适用于慢病毒收毒及纯化操作工序3. 操作程序3.1器材准备无菌10ml玻璃吸管、电动移液枪、50ml离心管，移液枪、各种枪头，1.5mL EP管、试管架，酒精灯、荧光显微镜、CO2培养箱、生物安全柜, 15ml超滤管、0.22μm滤膜、50mL无菌注射器、1mL无菌注射器,离心机3.2溶液准备OMEM培养基,1640培养基，FBS（gemini）3.3操作步骤3.3.1收集转染后48小时的细胞上清液于一个50ml离心管中，并更换10mL新的1640培养基，72小时（从转染开始计时）后再收集一次，并混合到一起。
3.3.2 4000rpm，离心5分钟，用0.22μm滤膜过滤收集好的上清液到新的50ml离心管中。
3.3.3准备一个15ml的超滤管，将过滤收集的上清液，根据上清液毫升数，分批次加入超滤管中（每次大约加入5ml）进行离心，4000rpm，离心10-15分钟，根据具体情况调整离心时间。
3.3.4每离心完成一次后，把管底部的废液弃掉，再加入新的上清液继续离心，最后一次离心完后，超滤管中保留500ul左右的病毒液，然后用移液器反复吹悬超滤管中病毒液，转移到无菌的EP管中。
3.3.5收集重悬后的慢病毒浓缩液于1.5mL离心管中，并做好标记，以10000rpm离心5min，以进一步去除其他杂质颗粒。
3.3.6用一支2mL注射器收集离心后的上清液，用0.22μm滤膜过滤于另一支干净的1.5mL EP管中，做好标记。
3.3.7根据需要将过滤后的样品进行小体积（50μL或20μL）分装，保留部分样品～20μL用于滴度检测，并做好标记，贴好标签。
填写入库记录，并将分装好的病毒进行入库，保存于-80℃冰箱。
3.4清场3.4.1物品集中在废液桶中灭菌后清洗。
3.4.2操作室台面用75%酒精擦拭消毒后，开启紫外灯进行灭菌。
慢病毒使用操作手册
慢病毒使用操作手册：1 慢病毒使用操作2 慢病毒安全使用规范3 悬浮细胞感染方法概要4 相关专业术语(详情可参考公司网站FAQ)5 细胞培养器皿的相关参数1、慢病毒使用操作手册1.1 慢病毒的储存与稀释:1.1.1 病毒的储存：用户收到病毒液后在很短时间内即使用慢病毒进行实验，可以将病毒暂时放置于4 ℃保存；如需长期保存请放置于-80℃（病毒置于冻存管，并使用封口膜封口）A．病毒可以存放于-80℃ 6个月以上；但如果病毒储存时间超过6个月，我们建议在使用前需要重新滴定病毒滴度B．反复冻融会降低病毒滴度：每次冻融会降低病毒滴度10%；因此在病毒使用过程中应仅尽量避免反复冻融，为避免反复冻融我们强烈建议客户收到病毒后按照每次的使用量进行分装。
1.1.2 病毒的稀释：用户需要稀释病毒时，请将病毒取出置于冰浴融解后，使用培养目的细胞用PBS或无血清培养基(含血清或含双抗不影响病毒感染)混匀分装后4℃保存(请尽量在三天内用完) 分装后使用。
1.2 慢病毒用于体外（In Vitro）实验：感染培养原代细胞和建系细胞1.2.1 慢病毒对各种细胞和组织的亲嗜性不同，用户使用Invabio提供的慢病毒之前可以通过查阅相关文献，了解慢病毒对您的目的细胞的亲嗜性，感染复数（MOI 值）以及在体（In Vivo）注射所需要的病毒量。
如果没有相关文献支持，可以通过感染预实验得到合适的感染复数（MOI 值）（使用24孔板检测病毒对目的细胞的亲嗜性）1.2.2 慢病毒感染目的细胞预实验1.2.2.1 慢病毒感染目的细胞预实验注意事项A．测定慢病毒对目的细胞的亲嗜性时，需要同时设置对慢病毒亲嗜性较高的细胞(HEK293T，Hela）作为平行实验的对照细胞。
B．在进行慢病毒感染实验时,可以用完全培养基（培养目的细胞用）稀释；理论上，含有血清，双抗或者其他营养因子的完全培养基不影响慢病毒的感染效率。
C． Invabio提供的病毒单位为TU/ml, 即每毫升中含有具有生物活性的病毒颗粒数。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
慢病毒滴度检测标准操作细则
1. 目的：
规范慢病毒滴度检测标准操作程序
2. 范围：
适用于慢病毒滴度检测操作工序
3. 操作程序
3.1器材准备
移液枪、各种枪头，1.5mL EP管、试管架，酒精灯、荧光显微镜、CO2培养箱、生物安全柜
3.2溶液准备
1640培养基，FBS（gemini），
3.3操作步骤
3.3.1检测前一天，对293T细胞传代，每个96孔中加8000个细胞，37度培养过夜，感染时细胞长至30~50％的融合密度；
3.3.2次日，准备10个无菌的Ep管，每个EP管中加入90 μL的培养基（1640培养基+10% FBS），取待测定的病毒原液10 μL加入到第一个管中，混匀（用移液枪反复吹吸混匀，注意不要吹起气泡）后，标记（10-1），取10 μL加入到第二个管中，继续相同的操作直到最后一管（10-8）。
3.3.4选取所需的细胞孔，吸去孔板中培养液，加入梯度稀释为10-3至10-8稀释好的病毒溶液90ul到孔板中，轻轻混匀，放入37℃ 5% CO2培养箱中培养；
3.3.5 24小时后，视具体情况更换新鲜完全培养基90ul。
小心操作，不要吹起细胞。
3.3.6 第四天，在荧光显微镜下观察各孔中荧光细胞数量，病毒滴度为表达荧光的细胞数乘以相应稀释倍数。
3.3.7例如：某一慢病毒感染细胞后96小时部分孔（某一视野）的荧光照片如下：
一号孔：一号稀释液，含有10*10-3ml慢病毒液
二号孔：二号稀释液，含有10 *10-4ml慢病毒液
三号孔：三号稀释液，含有10*10-5ml慢病毒液
四号孔：四号稀释液，含有10*10-6ml慢病毒液
五号孔：五号稀释液，含有10*10-7ml慢病毒液
六号孔：六号稀释液，含有10*10-8ml慢病毒液
七号孔：七号稀释液，含有10*10-9ml慢病毒液
八号孔：八号稀释液，含有10*10-10ml慢病毒液
某一病毒感染细胞293T，六号孔中观察到表达绿色荧光的细胞都至少为10个。
则病毒的滴度为： 10 TU/（10*10-8）ml=1*108TU/ml
3.3.8滴度检测数据分析及结果，统计相关数据制作慢病毒滴度检测报告。
3.4清场
3.4.1物品集中在废液桶中灭菌后清洗。
3.4.2操作室台面用75%酒精擦拭消毒后，开启紫外灯进行灭菌。
3.5 注意事项
3.5.1 梯度稀释过程中，注意及时更换枪头，避免交叉污染。
3.5.2做滴度检测的细胞，铺板前须保持状态良好。