免疫荧光的雷区该如何避免
免疫荧光操作步骤及注意事项
免疫荧光技术是在免疫学、生物化学和显微镜技术的基础上建立起来的一项技术。
它是根据抗原抗体反应的原理，先将已知的抗原或抗体标记上荧光基团，再用这种荧光抗体（或抗原）作为探针检查细胞或组织内的相应抗原（或抗体）。
利用荧光显微镜可以看见荧光所在的细胞或组织，从而确定抗原或抗体的性质和定位，以及利用定量技术（比如流式细胞仪）测定含量。
紫外光激发荧光物质放射荧光示意图免疫荧光实验的主要步骤包括细胞片制备、固定及通透（或称为透化）、封闭、抗体孵育及荧光检测等。
细胞片制备（通俗的说法是细胞爬片）是免疫荧光实验的第一步，细胞片的质量对实验的成败至关重要，原因很简单，如果发生细胞掉片，一切都无从谈起。
这一步关键的是玻片（Slides or Coverslips）的处理以及细胞的活力，有人根据成功经验总结出许多有益的细节或小窍门，非常值得借鉴。
固定和通透步骤最重要的是根据所研究抗原的性质选择适当的固定方法，合适的固定剂和固定程序对于获得好的实验结果是非常重要的。
免疫荧光中的封闭和抗体孵育与其它方法（如ELISA或Western Blot）中的相同步骤是类似的，最重要的区别在于免疫荧光实验中要用到荧光抗体，因此必须谨记避光操作，此外抗体浓度的选择可能更加关键。
最后需要注意的是，标记好荧光的细胞片应尽早观察，或者用封片剂封片后在4℃或-20℃避光保存，以免因标记蛋白解离或荧光减弱而影响实验结果。
由于操作步骤比较多，同时在分析结果时无法像WB那样可以根据分子量的大小区分非特异性识别，所以要得到一个完美的免疫荧光实验结果，除了需要高质量的抗体，以及对实验条件进行反复优化外，还必须设立严谨的实验对照。
总之，免疫荧光实验从细胞样品处理、固定、封闭、抗体孵育到最后的封片及观察拍照，每步都非常关键，需要严格控制实验流程中每个步骤的质量，才能最终达到你的实验目的。
基本实验步骤：（1）细胞准备。
对单层生长细胞，在传代培养时，将细胞接种到预先放置有处理过的盖玻片的培养皿中，待细胞接近长成单层后取出盖玻片，PBS洗两次；对悬浮生长细胞，取对数生长细胞，用PBS离心洗涤（1000rpm,5min）2次，用细胞离心甩片机制备细胞片或直接制备细胞涂片。
免疫荧光实验出现的问题及处理方案
免疫荧光实验出现的问题及处理方案一、引言免疫荧光实验是一种重要的实验方法，广泛应用于生物医学研究中。
然而，在实验过程中，我们时常会遇到一些问题，如背景信号过高、染色效果不理想等。
本文将针对这些常见问题进行分析，并提供相应的处理方案。
二、问题及处理方案2.1背景信号过高在免疫荧光实验中，背景信号过高是常见的问题之一，它会影响到我们对目标物质的检测和分析。
以下是一些可能导致背景信号过高的原因及相应的处理方案：非特异性结合1.：在实验中，可能存在一些非特异性抗体或试剂与样品中的其他成分结合，导致背景信号增大。
解决该问题的方法是使用合适的阴性对照，如对照抗体、缺乏特定抗原的样品等。
未充分洗涤 2.：洗涤步骤不充分可能导致残留的非特异性结合物增多，进而使背景信号过高。
解决该问题的方法是增加洗涤次数，并使用足够的缓冲液来洗涤样品。
荧光染料问题3.：某些荧光染料本身可能存在背景信号较高的情况。
在选择荧光染料时，应注意避免选择背景信号较高的染料。
在实验中，可以尝试不同的荧光染料以减少背景信号。
2.2染色效果不理想除了背景信号过高外，染色效果不理想也是在免疫荧光实验中常见的问题。
以下是一些可能导致染色效果不理想的原因及相应的处理方案：抗体不合适1.：选择不合适的抗体可能导致染色效果不理想。
在实验中，应根据样品的特点选择适当的抗体，并进行充分的优化。
如果抗体来源有问题，应尝试使用其他来源的抗体。
染色条件不合适2.：染色条件的温度、时间等因素对染色效果有重要影响。
如果染色效果不理想，可以尝试调整染色条件，如改变温度、延长或缩短染色时间等。
样品制备问题 3.：样品制备不当可能导致染色效果不理想。
在实验前，应充分准备样品，并采用合适的固定方法和处理步骤，以确保样品的完整性和稳定性。
三、其他问题及处理方案除了背景信号过高和染色效果不理想外，免疫荧光实验还可能存在其他问题，如溶液配制错误、仪器故障等。
以下是一些可能出现的问题及相应的处理方案：溶液配制错误1.：如果实验溶液配制错误，可能会对实验结果产生不利影响。
免疫荧光操作步骤及注意事项
免疫荧光操作步骤及注意事项免疫荧光技术是一种常用的免疫学研究方法，可以用于检测和定位抗原或抗体在细胞或组织中的表达和定位。
免疫荧光操作步骤及注意事项如下：步骤1：样品制备1.收集需要检测的细胞或组织样品。
2.如有需要，固定细胞或组织样品以保持其形态和抗原性。
3.如有需要，对组织样品进行切片以便于检测。
步骤2：抗体选择和标记1.根据需要选择合适的一抗和二抗，一抗用于识别目标抗原，二抗用于与一抗结合并携带荧光标记。
2. 选择合适的荧光染料或荧光标记，常用的有荧光素色素（FITC）、罗丹明（Rhodamine）等。
3.根据供应商指南或经典实验文献中的方法，进行抗体标记。
步骤3：荧光标记试剂的制备1.根据推荐的配方或说明书，在标记试剂的缓冲液中加入合适的荧光染料或荧光标记，并进行充分混匀。
2.如有需要，可以在标记试剂中加入其他辅助试剂以增强染色强度或减少非特异性结合。
步骤4：样品孵育1.将样品均匀分布在载玻片或孵育板上，并使其附着。
2.加入一抗和二抗的混合物，并在暗处孵育一段时间，通常在室温下孵育1-2小时或在4°C下孵育过夜。
3.如果需要，可以在抗体孵育结束后进行染色或共孵育其他标记试剂。
步骤5：洗涤1.在孵育结束后，用洗涤缓冲液洗涤样品，以去除未结合的抗体和其他杂质。
2.洗涤次数根据需要，通常进行3-5次洗涤，每次洗涤时间约5分钟。
步骤6：显微镜观察和成像1.将标本置于显微镜上，并使用荧光显微镜或倒置显微镜观察荧光信号。
2.使用合适的荧光滤光片或滤片盒，选择适当的波长来显现荧光染色。
3.根据需要，使用数字相机或图像分析软件进行图像采集和分析。
注意事项：1.仪器和试剂的准备与操作一定要在无菌和干净的条件下进行，以避免外源性污染或感染的发生。
2.使用抗体和试剂前请仔细阅读供应商提供的说明书，遵守推荐的使用和储存条件。
3.一抗和二抗的选取要慎重，确保其与目标抗原或抗体具有高度特异性。
4.荧光标记试剂的制备要注意在无菌和干净的条件下进行，避免污染或降低荧光标记效果。
免疫荧光实验成功的关键和注意事项
免疫荧光实验成功的关键和注意事项下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成，希望大家下载以后，能够帮助大家解决实际的问题。
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免疫荧光(单标和双标)注意事项及具体方法
免疫荧光（单标和双标）注意事项及具体方法一、技术简介免疫荧光细胞化学是根据抗原抗体反应的原理，先将已知的抗原或抗体标记上荧光素制成荧光标记物，再用这种荧光抗体（或抗原）作为分子探针检查细胞或组织内的相应抗原（或抗体）。
在细胞或组织中形成的抗原抗体复合物上含有荧光素，利用荧光显微镜观察标本，荧光素受激发光的照射而发出明亮的荧光（黄绿色或桔红色），可以看见荧光所在的细胞或组织，从而确定抗原或抗体的性质、定位，以及利用定量技术测定含量。
将不影响抗原抗体活性的荧光色素标记在抗体（或抗原）上，与其相应的抗原（或抗体）结合后，在荧光显微镜下呈现一种特异性荧光反应。
二、实验流程免疫荧光单标记方法免疫荧光单标记是指只标记一种蛋白质分子，方法比较简单，只要按照染色步骤去做，通常不存在太多的问题。
但要注意固定液的选择，固定液选择的合适与否，可能会直接影响染色结果。
具体染色方法如下。
1. 所需材料与试剂：a. 培养在盖玻片或玻璃培养皿中融合程度达到60%-70%的细胞。
b. 一抗、FITC或TRITC标记的二抗。
c. 4%多聚甲醛固定液或冷丙酮固定液 (-20℃预冷20 min)。
d. 封闭液。
e. 0.01mol／LPBS缓冲液。
2. 染色方法：a. 取出培养有细胞的盖玻片或glass-bottom培养皿，用0.01MPBS洗2-3遍。
b. 加入0.3%的Tritonx-100，37℃，30 rain。
c. 加入4%多聚甲醛试问固定30 min或冷丙酮4℃固定10 min。
d. 正常阻断血清1:20封闭试问20-30 min，抑制IgG的非特异性结合。
阻断血清必须选择与二抗同一种属的正常血清。
e. 去掉正常血清，直接加入一抗，37℃孵育1 h或4℃过夜。
抗体以0.01mo/LPBS稀释（理想的抗体浓度需经试验而定）。
f. 用0.3% TritonX-100洗5 min，0.01 mol/IPBS洗5 min，0.3% TritonX 5min，0.01 M PBS洗5 rain。
免疫荧光染色防止脱片的方法
免疫荧光染色防止脱片的方法免疫荧光染色是一种常用的细胞或组织检测方法，可以用于观察细胞或组织中特定蛋白质的分布情况。
然而，在进行免疫荧光染色时，脱片是一个常见的问题，会导致检测结果的丢失或不准确。
本文将介绍一些防止脱片的方法。
1.增强玻片与组织的附着力：提高玻片表面的亲水性，可以减少组织在玻片上的滑动。
一种常用的方法是用聚-L-赖氨酸涂覆玻片表面，提高其亲水性。
此外，也可以使用特殊涂层剂，例如玻片胶，它可以增加组织与玻片之间的黏附力。
2.优化组织处理步骤：在制备组织切片时，注意避免过度切片或切片过薄，这样可以减少组织的破裂和脱离情况。
此外，在固定和处理组织的时候，也要避免过度处理或过长时间浸泡，以免造成组织结构的破坏。
3.预处理和后处理步骤：在进行免疫荧光染色之前，进行预处理和后处理步骤也是非常重要的。
预处理包括使用预冷冰乙醇或冷冻等方法，可以增加组织与玻片的附着力。
后处理可以使用胶合剂或覆盖剂，以尽量固定组织在玻片上的位置。
4.使用适当的染色方法：选择合适的染色方法也能够有效防止脱片。
在进行染色之前，预先进行蛋白质解标或抗原修复步骤，可以修复组织中潜在的蛋白质交联，从而增加组织的稳定性。
此外，选择适当的荧光染料和染色条件也很重要，以保证染色的特异性和稳定性。
5.适当的封片剂和密封边界：选择适当的封片剂也是防止脱片的一个重要因素。
常用的封片剂有含有丙酮的溶剂，例如含丙酮的半乳胶。
此外，使用透明胶片或抗褪色胶片封住染有荧光的组织切片时，也可以加强附着力。
在封片边界处可以使用适当的密封剂，例如可溶性胶水或封片胶带，以防止染料的泄漏和刮擦。
总结起来，防止脱片的方法包括增强玻片与组织的附着力、优化组织处理步骤、合理选择染色方法、选择适当的封片剂和密封边界。
在进行免疫荧光染色时，可以结合以上方法，以提高染色的质量和稳定性，同时减少脱片的问题。
免疫荧光实验相关的注意事项汇总
免疫荧光实验相关的注意事项汇总免疫荧光实验原理很简单，其实就是使用荧光二抗，并在荧光显微镜下采集图像，其它的和IHC或ICC区别不大。
但是，想要得到良好的结果却很难，大家经常会遇以下问题：（1）目标蛋白的荧光很弱，导致组间差异并不明显，造成假阴性结果；（2）蛋白荧光太强，甚至形成非特异性的标记，一些背景染色可能被误认为阳性区域，造成假阳性结果；（3）DAPI染细胞核时，加入的试剂太多，造成高背景染色；（4）组织切片预处理不当或采用石蜡切片，导致高背景染色；（5）采集图像过程不当，导致原始图像不佳，直接影响后续半定量分析。
可以看出，无论是荧光太强或者太弱，都会造成免疫荧光实验结果差或者失败。
绝对消除影响是做不到的，希望大家能认识到这一点。
针对这些问题，我们只能尽可能地优化，减弱影响。
......接下来，只讲干货......问题分析：（1）目标蛋白的荧光很弱，导致组间差异并不明显，造成假阴性结果这种情况出现后，首先要检查一下抗体对不对，是否适用于你的预处理组织。
一个典型的例子就是，有些抗体只适用于冰冻切片，但若将其应用于石蜡切片，就会造成弱标记或无标记现象。
然后通过文献等查找一下目标蛋白在该组织或细胞的表达丰度如何。
若该蛋白本身表达就很少，那就没啥可说的，你的结果应该没问题。
此外，如果抗体修复不充分，抗原表位未完全暴露，也会出现弱标记现象。
比如，尽管大多数抗体都是在酸性环境中修复，但是也存在少量的抗体需要在碱性环境中修复，建议查看抗体说明书，严格按照其修复条件进行实验。
（2）目标蛋白的荧光太强，甚至形成非特异性的标记，一些背景染色可能被误认为阳性区域，造成假阳性结果这种情况一般出现在抗体浓度过高而漂洗又不充分的时候。
多余的抗体会吸附在组织上，造成荧光图像整体高背景。
改进方法是适当降低一抗或者二抗的浓度，增加漂洗时间，一般能够有所改善。
（3）DAPI染细胞核时，加入的试剂太多，造成高背景染色现在都是使用的防荧光衰减DAPI试剂，使用时滴上一滴就能将细胞核标记。
间接免疫荧光法实验操作常见问题(20110524)
间接免疫荧光法操作流程（2）
加荧光标记抗体 温育 清洗 封片 结果判断
1 sec flush 1 min cuvette
EUROIMMUN
间接免疫荧光法问题的解决方法错误的避免 (1)
实验准备阶段： • • • • 清洁工作台 用通常的家用洗涤剂和蒸馏水清洗加样板的反应区，用纸巾吸干。 在作某些特殊检测时需要使用消毒液清洗加样板。 只有当生物薄片载片平衡到室温后方可打开包装。
EUROIMMUN
温育过程中有液体蒸发
EUROIMMUN
间接免疫荧光法问题的解决方法辨别问题的 来源(6)
按传统的方法温育: 有肉眼可见的FITC结晶。
用滴定平板技术温育： 没有FITC结晶。
EUROIMMUN
间接免疫荧光法问题的解决方法辨别问题的 来源(7)
组织切片没有任何反应
主要的原因：
在温育过程中有血清或二抗的丢失。 缓冲液质量不好。
EUROIMMUN
清洗
EUROIMMUN
间接免疫荧光法问题的解决方法(6)
荧光素标记的二抗（结合物）的使用：
• 荧光二抗直接使用
• 不要将结合物放在阳光直射处。
EUROIMMUN
间接免疫荧光法问题的解决方法错误的避免 (7)
载片在第一次清洗后的处理：
• 从小杯中垂直取出载片。 • 用事先叠好的纸巾从背面擦拭载片。
• 不要擦拭反应区之间的间隙。
• 5秒钟内进行第二次温育。 • 从现在开始，避免阳光直射载片，直至实验结束。
EUROIMMUN
载片的擦拭
EUROIMMUN
间接免疫荧光法问题的解决方法错误的避免 (8)
封片：
• 可用聚苯乙烯封片板。 • 盖玻片上每反应区滴加PBS-甘油8ul，不要超过10ul。 • 用纸巾擦拭载片的背面和四周，不要擦拭反应区间隙。 • 将载片有生物薄片的一面朝下，盖在已准备好的盖玻片上，将盖玻片
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5、共定位的视野该如何选择？
答：共定位时，首先判断哪些细胞是转染成功的，比如我过表达了蛋白A，想做蛋白A和蛋白B的共定位关系，则在视野中寻找已成功转染蛋白A的细胞，一般荧光强度会显著高于周边其他细胞，再在这个细胞上观察蛋白B的表达，
6、视野中细胞与细胞之间存在散在的发光点。
答：有两种情况可造成：1，拍照时PBS量过少引起的非特异性；2，PBS未过滤，未溶解的残渣黏附而导致
成功免疫荧光如下图：
三、除此之外，这些注意事项也要牢记
1、合适的抗体稀释比例
通过优化抗体稀释比例来优化染色，通常情况下1ug/ml的纯化抗体或者
1:100-1:1000的抗血清足够达到特异性染色的结果。
但在能保证低背景染色的前提下，可以通过增加浓度来提高信号强度。
如果是第一次使用该抗体或测定某抗原，强烈建议浓度梯度实验。
2、抗体特异性
免疫荧光需要用到特异性非常强的抗体，可以避免高背景和不理想的蛋白定位结果。
在大多数情况下，纯化抗体的效果很好，但是正确的对照可以帮助精准定位抗原。
使用只有二抗染色的片子
3、细胞固定和通透
为达到最佳的检测效果，细胞需要经过固定和通透。
这些步骤非常关键，细胞和抗原需要保证最佳的结构，并利于抗体与抗原结合。
通常情况下，需要通过以下步骤得以实现：细胞用2%-4%多聚甲醛固定，之后用0.1%皂角苷或0.02%的Triton X-100进行通透。
前者是比较温柔的处理，但是对于核内抗原可能无效，需要用到Triton。
使用皂角苷进行通透时，要注意它会引起细胞膜的可逆性通透，也就是除了在通透初期，在每个抗体孵育环节都需要进行通透。
另外，细胞可以用冰甲醇进行同时固定和通透，可以避免去垢剂的使用。
4、封闭条件的优化选择
为了防止内源性非特异性蛋白抗原的结合，需要在一抗孵育前用封闭液封闭，这样可以减少非特异性的背景着色。
封闭液可以选择二抗来源一致的血清，一般来说，血清价格比较昂贵，可以用1%-5%BSA替代，BSA可以说是万能的封闭血清。
另外封闭时间不易过长，30-60min即可，且封闭后不用洗涤，直接加一抗孵育即可。
5、一抗二抗的选择
封闭过后需要一抗孵育，可以选择4度过夜孵育或者室温3h，以笔者的经验是一抗孵育4度过夜比较好，抗原抗体结合会比较充分。
一抗二抗的稀释比例可以根据抗体说明书来，再根据自己具体的实验要求进行优化。
如果抗体浓度过低，会造成信号太弱，如果抗体浓度过高可能会造成背景染色太强。
荧光二抗个人感觉Alex flour荧光基团信号强于Dylight强于FITC。
如果做免疫双标，一抗要来自不同种属，荧光二抗的光谱也要分开。