(完整版)各动物采血方法

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(完整版)各动物采血方法

各种动物采血方法及注意事项

1牛的静脉采血

1.1牛颈外静脉采血颈外静脉位于颈部肩骨乳突肌与胸头肌间凹窝处的颈静脉沟内。牛站立,助手保定好头部,使头部稍前伸上仰并稍偏向对侧,颈部稍有弯曲,颈静脉暴露出来,局部剪毛,消毒,术者稍弓腰蹲于颈静脉暴露的一侧,用左手拇指或食指与中指在颈静脉沟稍下方(近心端)压迫静脉管,使颈静脉充盈怒张,部分牛由于膘肥看不清,此时就要用左手食指和中指点击颈静脉沟,有跳动,再按压,用右手食指和中指探摸跳动的部位,有波动和弹性的管状物,颈为颈外静脉。右手拇指、食指、中指夹住16号针头,对准颈外静脉,并使针头与皮肤接近垂直(75°角),用腕力迅速将针头扎进皮肤,穿入血管,血液会喷射出来,即可采血,停止采血后先松左手,后拔针头,用消毒棉球压迫采血部位1min。

1.2牛尾静脉采血牛自然站立保定,术者站于牛的正后方,左手抓住牛尾中段用力抬起,使之与地面平行,右手触摸尾椎前段腹侧凹陷沟(大约在尾后下方4-5cm处),消毒后持12号针头与尾椎纵轴成垂直方向,依靠腕力快进针0.5-1cm后血液即喷射出来。

2马的静脉采血

马的颈静脉比较浅显,位于静脉沟内,术者用左手拇指或食指和中指横压颈下1/3与颈中1/3处的颈静脉沟,使脉管充盈怒张,右手持16号针头沿颈静脉在压迫点前方与皮肤成45°角用腕力迅速刺入皮肤血管内,感到空虚无阻力即见回血后,再沿脉管向前进针使针头

靠近皮肤靠近皮肤以减小其间的角度,近似平行地将针头再伸入血管内1-2cm,血液流出,即可采血。停止采血后,先松左手,后拔出针头,并用消毒棉球压迫采血点2min止血消毒。

3猪静脉采血

3.1耳静脉采血用捕猪器将猪站立保定,耳静脉局部常规消毒处理,助手用手指捏压耳根部静脉管处或用胶带于耳根部结扎,使静脉充盈,怒张,也可用酒精棉球反复擦静脉血管使之充血,血管怒张,或用手指弹叩引起血管充盈。术者用左手拇指和食指把持耳尖,将耳拉直托平,用中指、无名指和小指在耳下面向上托,使采血进针部位稍高,右手持一次性血样采集针沿静脉管使针头与皮肤呈30°角,向远心端刺入血管,有空虚感无阻力时即进入血管。回血,立即插入负压管采血。采血结束后,先松开握耳根的手,再拔针头,干棉球压迫采血处1min,伤口不出血为止。

3.2前腔静脉采血:前腔静脉由左右两侧的颈静脉与腋静脉在第一对肋骨的胸腔入口的气管腹侧面汇合而成。采血部位在第一肋骨与胸骨柄结合处的前方,由于左侧靠近膈神经,易损伤,故多于右侧进行采血,针头刺入方向呈近似垂直稍向中央及胸腔倾斜,刺入深度依猪体大小2-6cm,针头7-12号。站立保定时进针部位在右侧,于耳根至胸骨柄的连线上,距胸骨端1-3cm处,术者拿连接针头的注射器,稍斜向中央刺向第1肋骨间胸腔入口处,边刺边抽动注射器活塞,见回血即可采血,仰卧保定时胸骨柄向前突出,并于两侧第1肋骨结合处的直前侧方呈两个明显的凹陷窝称为前腔窝:是第1肋骨与胸骨柄

结合处的前方与气管围成一个三角区域,用手指沿胸骨柄两侧触诊时感觉明显,多在右侧前腔窝内采血。先固定好两前肢及头部,消毒后术者持连接针头的注射器由右侧沿第1肋骨与胸骨结合部前方的前腔窝处刺入,并稍斜刺向中央及胸腔方面,边刺边回血,见回血后即可采血,采毕后酒精棉球紧压针孔,拔针头,消毒。

4羊的静脉采血

4.1骑式站立保定头稍上仰偏向对侧,颈静脉露出,剪毛消毒,术者左手拇指或食指与中指压迫颈静脉下端,使颈静脉充分怒张,右手持12号针头与皮肤成75°角,用腕力直接刺入颈静脉,血液即可喷出,采血结束,松左手,拔针头,用消毒棉球压迫止血1min。

4.2侧卧保定适宜于膘肥绵羊,由助手将绵羊放倒,身体右侧着地,将头稍抬高向后弯曲,左侧颈静脉沟充分暴露,在颈中与颈上1/3结合处颈静脉沟剪毛约2×3cm,毛茬尽量剪断,消毒,对熟练采血者只要用手指拔开毛丛即可。左手拇指或食指与中指在近心端颈下1/3处施压,使静脉血流受阻而膨胀,如仍看不清则术者用左手食指和中指施压,用右手食指和中指在跳动的部位探摸,有弹性和波动感的管状物就是静脉血管,右手拇指、食指、中指夹住12号针头沿颈静脉纵向与颈成45°角用腕力刺入血管,感到阻力突然消失有空虚感即进入血管内,血液随即喷射,采血完毕,松左手,拔针头,酒精棉球压迫止血消毒1min即可。

5禽的静脉采血

目前,随着家禽疫病的频频暴发,我们需要采取更准确的实验室

血清学检测来准确判断家禽的免疫状况,而在血清学检测和实验研究中,采血技术是一项前提性的工作,采血质量的好坏,直接影响能不能进行实验和判定实验结果。家禽的采血方法主要有翅内侧腋下静脉采血、骨内侧静脉采血和心脏采血法等。下面简要介绍在临床实践中家禽的采血技术。

5.1 禽常用翼下静脉采血。助手将禽侧卧,禽翅膀展开与地面成30°角,露出腋窝部,术者在禽腹侧用脚踩住两脚,拔去羽毛,见到由翼根进入腋窝的一条较粗的静脉即翼根静脉,其远心端有一条较细的静脉即翼下静脉,常规消毒,术者用左手拇指压迫翼下静脉的近心端,使血管怒张,右手持一次性血样采集针由翼根的肌肉处进针,向翅膀方向即由近心端向远心端斜向刺入翼下静脉,感到有空虚感无阻力即见回血,立即插入负压管采血。如用针管采血,抽血时速度要缓慢,防止静脉瘪陷而采不出血。采毕后,松左手,拔针头,消毒棉球按压针孔1min。由于肌肉自身的收缩压迫止血,一般不会出现血肿。家禽的采血技术及注意事项

5.2翅内侧腋下静脉采血法

助手用左手抓住禽的两只脚,右手固定住两翅,使禽背部贴住助手上腹部,右手稍高于左手,暴露出翅内侧,采血者左手拨开翅内侧羽毛,在翅静脉处消毒后,右手持5号采血器与皮肤呈45度角方向顺血管进针,进针时手要稳,进针不宜过深,如刺穿血管,皮下很快水肿,导致采血不成功。见血液回流,慢慢回抽针芯,不可操之过急,采血完毕后,局部消毒按压30s后放走。

5.3跖骨内侧静脉采血法

此采血法一般适用于鸭子或野鸟。助手用一手固定两翼,另一手固定一脚,采血者固定另一只脚,背侧靠近助手,即可见暴露的清晰的静脉,采血者在跖骨内侧静脉处消毒后,持5号采血器与皮肤呈10度角方向顺血管进针,见血液回流,慢慢回抽针芯,采血完毕后,局部消毒按压30s后放走。

5.4心脏采血法

该法容易使被采血家禽因失血过多而死亡,所以在常规免疫监测中较少使用。助手固定两翅及两脚,右侧卧保定,在胸骨脊前端至背部下凹处连线1/2处或稍前方可触及心脏明显搏动,在此处消毒后,采血者手持7号采血器垂直刺入2~3cm,回抽针芯见有血液回流即可。

5.5注意事项

采血是一项既简单又复杂的基础工作。采血时,采血者要认真做好自身防护工作,采血设备需经消毒干燥。要做好采血记录,在送样过程中,血样不可剧烈摇晃以免溶血,血样送至实验室后要立即分离血清,不能立即分离的需及时冷藏。

5.6其他补充

一、鸡冠采血法:

多用于需血量较少的采血,用针头刺破鸡冠吸取血液或在鸡冠的尖端部用剪刀剪去一小片即可。吸取血液时需用手挤压鸡冠一次可吸取30~80ul血液。此法操作简便,但要十分注意伤口的止血预防感染,最方便有效的消毒止血方法是用浓碘酒涂抹伤口。

二、鸡颈静脉采血法:

右侧颈静脉较左侧粗,故常采用右侧颈静脉取血。左手以食指和中指夹住家禽头部,并使头偏向一侧,无名指、小指和手掌握住躯干,拇指轻压颈椎部以使静脉充血怒张。右手持注射器,针头倾斜45度沿血管方向一侧0.3~0.5cm挑破皮肤前行0.3~0.5cm刺人静脉,再与血管平行进针0.2~0.5cm抽取血液。采血完毕后压迫伤口处止血。这种方法采血可应用于15~45日龄的锥鸡,成年鸡单人操作保定较难,皮色较深不易找到血管。

三、鸡心脏采血法:

右侧卧保定,在左侧胸部触摸心搏动最明显的地方进行穿刺,连接注射器吸取血液。成年鸡心脏穿刺部位是:从胸骨峭前端至背部下凹处连接线的1/2处。用细针头在穿刺部位与皮肤垂直刺入约2~3cm即可。家禽品种和个体大小不同进针位置和深度不同要作适当调整。心脏采血可大量采血,但不宜连续使用,因有一定的死亡率。特别是对雏禽,常因针头刺破心脏导致出血过多而死亡,而且心脏的修复能力特别差,对畜禽后期影响较大。

四、胸外静脉采血法:

胸外静脉采血该脉管在翼下无毛区前方,呈上下偏斜走向,清晰可见。但由于皮下质肌肉疏松,不易刺中血管,而且血流量不多,所以一般不用。

五、鸡翼下静脉采血法:

静脉又称容量血管,其内含血量较多且流速较慢,位于翼下静脉具此

特点,此静脉易找到,健康安全范围内在此可采血10~20ml。而且操作方便,单人即可完成,采血量极易控制,止血彻底,对家禽影响小。

实验者右手持注射器,左手将家禽双翼提起,露出翼静脉的采血位置,把覆盖血管的羽毛拔开,即可见到明显一条较粗的静脉血管。采血时用左手大拇指夹住覆盖静脉的羽毛,食指协调大拇指夹住双翼,中指、无名指和手掌轻轻提起或轻按背部保定鸡只,待其安静方可刺针。针头在距静脉血管0.3~0.5cm一旁倾斜刺入皮肤,再与血管平行进针0.2~0.4cm后刺入血管,见有少量回血即可采集血液,采血完成后马上用手压迫伤口止血。

六、注意事项:

1、采血场所要有充足的光线,室温夏季最好在25~28℃,冬季14~20℃为宜;

2、采血所用器具:注射器或盛血容器等必须保持清洁干燥;消毒采用部位;

3、采血时小心一些鸡只顽强的争扎而把翅膀弄断或抓伤实验者的双手,要待鸡只保定平静下来,再实施采血工作。

4、静脉采血时抽血速度要保持缓慢,静脉血管回血流速较慢,内压突然降低致使血管壁接触而阻塞了针头,影响继续采血量。

5、静脉采血时,若需反复多次,应自远离心脏端开始,以免发生栓塞而影响整条静脉。

6犬静脉采血

前臂皮下静脉(也称头静脉)采血。此静脉位于前肢腕关节正前方稍偏内侧,犬可侧卧伏卧,站立保定(用透明胶带将嘴扎住),犬

主人从后面握住犬的肘部,使前臂前伸,用止血带结扎肘上部,局部剪毛,用刀片反复刮,用棉球反复擦拭,或用右手拇指和食指、中指弹叩,使静脉血管充分怒张,用右手食指和中指探摸,有波动和弹性的管状物为静脉血管,术者位于犬前面。一次性采集针由近腕关节1/3处与前臂成15-30°角刺入,有空虚感即见回血,则进入血管,立即插入负压管采血。采毕后松开止血带,以干棉球按压针孔拔针止血。

7采血时流不畅的原因

7.1针头在静脉内位置不当,针头斜面被静脉壁或瓣阻挡。

7.2穿刺过深或针头斜面未全部进入静脉内。

7.3采血导管被压粘连或弯曲变形。

7.4狗用止血带压力不足或过紧,造成浅表静脉不充盈或深部静脉回流受阻。

7.5猪耳静脉、禽翼下静脉采血应由近心端向远心端进针,否则易造成静脉瘪陷,采不出血。

8注意事项

8.1采血前按检验项目要求,准备好相应的采血器材,彻底消毒。

8.2用一次性注射器采血完后,取下针头,将血液沿管(瓶)壁缓慢注入适当容器,并防止产生泡沫,待血液自行凝固收缩后即可分离出淡黄色透明的血清,如需要全血或血浆,则将血液注入事先准备好的抗凝管(瓶)中,轻轻混匀,防止凝固,即为抗凝全血。

8.3采血完毕后应核对好号码与编码及对应的畜禽,将用过的器材回收处理,防治污染环境。

8.4防止溶血,造成溶血的原因有采血器材不干燥,不清洁,扎针不顺,损伤组织过多,抽血速度过快,血液注入容器时,血液注入容器时未取下针头或用力推出产生大量的气泡,运送过程振荡。

8.5抽血时只能外抽,不能向静脉内推,以免空气注入形成气栓。

8.6标本不能及时检测和需保留复查时一般应存放于2-8℃冰箱。

8.7采毕后在针孔部位按压1min,以压迫止血,不要按揉针孔,以免造成皮下血肿,若出现局部淤血,24小时后用毛巾热敷,促进吸收。

8.8采血前尽可能观察畜禽,询问畜主,只有健康并符合检验要求目的方可采血。如果用5ml的一次性使用静脉血样采集容器,每次采血2ml为宜,易渗出血清。

实验动物采血指南

实验动物采血指南 采血方法的选择,决定于实验的目的所需血量以及动物种类。凡用血量较少的检验如红、白细胞计数、血红蛋白的测定,血液涂片以及酶活性微量分析法等,可刺破组织取毛细血管的血。当需血量较多时可作静脉采血。静脉采血时,若需反复多次,应自远离心脏端开始,以免发生栓塞而影响整条静脉。例如,研究毒物对肺功能的影响、血液酸碱平衡、水盐代谢紊乱,需要比较动、动脉血氧分压、二氧化碳分压和血液pH值以及K+、Na+、CI-离子浓度,必须采取动脉血液。采血时要注意:⑴采血场所有充足的光线;室温夏季最好保持在25-28℃,冬季,15-20℃为宜;⑵采血用具有采用部位一般需要进行消毒;⑶采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥;⑷若需抗凝全血,在注射器或试管内需预先加入抗凝剂. 不同动物采血部位与采血量的关系

(一)小鼠、大鼠采血法 1.割(剪)尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒,然后浸在45℃左右的温水中数分钟,使尾部血管充盈。再将尾擦干,用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3-0.5cm,让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取,采血结束,伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口,割破尾动脉或静脉,收集血液的方法同上。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml,大鼠0.3~0.5ml。 2.鼠尾刺血法大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查),可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭,再用酒精消毒和擦拭,使鼠尾充血。用7号或8号注射针头,刺入鼠尾静脉,拔出针头时即有血滴出,一次可采集10~50mm3。如果长期反复取血,应先靠近鼠尾末端穿刺,以后再逐渐向近心端穿刺。 3.眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套),应防止动物窒息。当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧,使眶后静脉丛充血。右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈(3~4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径0.5-1.0mm),使采血器与鼠面成45℃的夹角,由眼内角刺入,针头斜面先向眼球,刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。刺入浓度,小鼠约2~3mm,大鼠约4~5mm。当感到有阻力时即停止推进,同时,将针退出约0.1-0.5mm,边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管中,当得到所需的血量后,即除去加于颈部的压力,同时,将采血器拔出,以防止术后穿刺孔出血。若技术熟练,用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮换更好。体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml;体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml,可适用于某些生物化学项目的检验。 4.断头取血采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤,并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈,约1/2-4/5的颈部前剪断,让血自由滴入盛器。小鼠可采用约0.8~1.2ml;大鼠约5-10ml。 5.心脏采血鼠类的心脏较小,且心率较快,心脏采血比较困难,故少用。活体

各动物采血方法

各种动物采血方法及注意事项 1牛的静脉采血 1.1牛颈外静脉采血颈外静脉位于颈部肩骨乳突肌与胸头肌间凹窝处的颈静脉沟内。牛站立,助手保定好头部,使头部稍前伸上仰并稍偏向对侧,颈部稍有弯曲,颈静脉暴露出来,局部剪毛,消毒,术者稍弓腰蹲于颈静脉暴露的一侧,用左手拇指或食指与中指在颈静脉沟稍下方(近心端)压迫静脉管,使颈静脉充盈怒张,部分牛由于膘肥看不清,此时就要用左手食指和中指点击颈静脉沟,有跳动,再按压,用右手食指和中指探摸跳动的部位,有波动和弹性的管状物,颈为颈外静脉。右手拇指、食指、中指夹住16号针头,对准颈外静脉,并使针头与皮肤接近垂直(75°角),用腕力迅速将针头扎进皮肤,穿入血管,血液会喷射出来,即可采血,停止采血后先松左手,后拔针头,用消毒棉球压迫采血部位1min。 1.2牛尾静脉采血牛自然站立保定,术者站于牛的正后方,左手抓住牛尾中段用力抬起,使之与地面平行,右手触摸尾椎前段腹侧凹陷沟(大约在尾后下方4-5cm处),消毒后持12号针头与尾椎纵轴成垂直方向,依靠腕力快进针0.5-1cm后血液即喷射出来。 2马的静脉采血 马的颈静脉比较浅显,位于静脉沟内,术者用左手拇指或食指和中指横压颈下1/3与颈中1/3处的颈静脉沟,使脉管充盈怒张,右手持16号针头沿颈静脉在压迫点前方与皮肤成45°角用腕力迅速刺入皮肤血管内,感到空虚无阻力即见回血后,再沿脉管向前进针使针头

靠近皮肤靠近皮肤以减小其间的角度,近似平行地将针头再伸入血管内1-2cm,血液流出,即可采血。停止采血后,先松左手,后拔出针头,并用消毒棉球压迫采血点2min止血消毒。 3猪静脉采血 3.1耳静脉采血用捕猪器将猪站立保定,耳静脉局部常规消毒处理,助手用手指捏压耳根部静脉管处或用胶带于耳根部结扎,使静脉充盈,怒张,也可用酒精棉球反复擦静脉血管使之充血,血管怒张,或用手指弹叩引起血管充盈。术者用左手拇指和食指把持耳尖,将耳拉直托平,用中指、无名指和小指在耳下面向上托,使采血进针部位稍高,右手持一次性血样采集针沿静脉管使针头与皮肤呈30°角,向远心端刺入血管,有空虚感无阻力时即进入血管。回血,立即插入负压管采血。采血结束后,先松开握耳根的手,再拔针头,干棉球压迫采血处1min,伤口不出血为止。 3.2前腔静脉采血:前腔静脉由左右两侧的颈静脉与腋静脉在第一对肋骨的胸腔入口的气管腹侧面汇合而成。采血部位在第一肋骨与胸骨柄结合处的前方,由于左侧靠近膈神经,易损伤,故多于右侧进行采血,针头刺入方向呈近似垂直稍向中央及胸腔倾斜,刺入深度依猪体大小2-6cm,针头7-12号。站立保定时进针部位在右侧,于耳根至胸骨柄的连线上,距胸骨端1-3cm处,术者拿连接针头的注射器,稍斜向中央刺向第1肋骨间胸腔入口处,边刺边抽动注射器活塞,见回血即可采血,仰卧保定时胸骨柄向前突出,并于两侧第1肋骨结合处的直前侧方呈两个明显的凹陷窝称为前腔窝:是第1肋骨与胸骨柄

犬猫的采血方法

犬猫的采血方法通常是在其前肢的前臂头静脉和后肢的阴静脉进行采血。对于一些静脉采血比较苦难的犬猫或采血量比较大时,可以考虑心脏采血。 2.1.采血前的准备 采血前的准备主要是保定,见前面。另外采血前的准备还包括准备好消毒棉球、合适的止血带、剪毛剪、干燥无菌的注射器和头皮针头等等。 2.2.采血的操作 在做好采血前的准备后,采血者选择一个合适的腿,然后在近心端用合适的止血绷带(小型犬猫可以用橡皮筋代替)扎紧,前肢扎在肘关节后面,后肢扎在踝关节上面。然后在前肢的臂部或后肢的掌部要采血的部位用酒精棉球消毒,用拇指的掌面部感受怒张的血管,必要的时候可以沿者怒张的血管进行剪毛(如果血管怒张不明显,可以沿者前肢中间的一根明显的韧带或后肢掌面的正中部)。如果血管不太清楚时,可以用酒精棉球上的酒精将采血的局部打湿,以促进血管怒张,有时还可以先松开止血带,轻柔一下采血部位,然后在扎上止血带。 找到血管后开始进针。将头皮针接在注射上,固定牢结合处。第一次的进针点选择在血管的远心端。当血管怒张不是太明显,动物挣扎不是太厉害时,可以正对着血管进针;血管怒张比较明显,动物挣扎比较厉害时,可以从血管的侧面进针,使动物适应后,再进入血管。开始进针时,左手握在其掌部(前肢),使腕关节弯曲,右手拿针,使针与皮肤呈45度,进针后见到血将针放平,沿着血管的走向往前进针,在运针时会有一种比较轻松的感觉。然后用左手的拇指压住头皮针的针柄,右手松开止血带后用用手抽动注射器进行采血,或者有助手来抽动注射器采血,操作者用右手挤压进针点的近心端或调整头皮针以利于采血。采足够的血后,放松注射器,使其呈自然状态,然后用右手快速的抽出头皮针,并及时的用棉球压迫。 2.3.采血后的处理 抽出头皮针后,用酒精棉球及时按压。按压点在扎针点上靠后一点,直到不在出血为止。然后,将采血用的器具收拾干净。

良好的实验动物给药和采血(包括途径和体积)规范指南

A Good Practice Guide to the Administration of Substances and Removal of Blood,Including Routes and Volumes 良好的实验动物给药和采血(包括途径和体积)规范指南 Karl-Heinz Diehl1, Robin Hull2, David Morton3, Rudolf Pfister4, Yvon Rabemampianina5, David Smith6,*, Jean-Marc Vidal7 and Cor van de V orstenbosch 8 1Aventis, PO Box 1140, D35001 Marburg, Germany 德国马尔堡市35001区1140信箱安万特公司 2N I B S C, Blanch Lane, South Miimms, Potters Bar, Hertfordshire EN6 3QG 英国赫特福德郡EN6 3QG波特斯巴镇South Miimms布兰奇道英国国家生物制品检定所 3The University of Birmingham, Medical School, Edgbaston, Birmingham B15 2TT 英国伯明翰市B15 2TT艾吉马斯顿伯明翰大学医学院 4Novartis Pharma AG, CH-4002 Basel, Switzerland 瑞士巴塞尔CH-4002诺华制药公司 5Centre de Recherche Pfizer, Etablissement d’Amboise, Z1 Poce′-sur-Cisse-BP 159 37401 Amboise Cedex, France 法国Amboise Cedex Z1 Poce′-sur-Cisse-BP 159 37401 Etablissement d’Amboise 辉瑞研究中心 6AstraZeneca R&D Charnwood, Bakewell Road, Loughborough, Leics LE11 5RH 英国莱斯特郡LE11 5RH拉夫堡市贝克韦尔路Charnwood阿斯利康研究中心 7Aventis, 102 Route de Noisy, 95235 Romainville Ce′dex, France 法国Romainville Ce′dex 95235 Noisy路102号安万特公司 8N V Organon, PO Box 20, 5340 BH Oss, Netherlands 荷兰BH Oss5340 20号信箱欧加农公司 Key words: blood volumes; blood removal; administration substances; laboratory animals; refinement. 关键词:血容量;采血;给药;实验动物;简化 This article is the result of an initiative between the European Federation of Pharmaceutical Industries Associations (EFPIA) and the European Centre for the Validation of Alternative Methods (ECV AM).Its objectives are to provide the researcher in the safety evaluation laboratory with an up-to-date, easyto-use set of data sheets to aid in the study design process whilst at the same time affording maximum welfare considerations to the experimental animals. 该文章为欧盟制药工业协会(EFPIA)和欧洲替代动物实验方法验证中心(ECV AM)之间的初步结果。其目的在于为安全性评价实验室的研究者提供最新的易于使用的数据库以帮助研究设计过程,同时最大可能地考虑到实验动物的福利。 Although this article is targeted at researchers in the European Pharmaceutical Industry, it is considered that the principles underpinning the data sets and refinement proposals are equally applicable to all those who use these techniques on animals in their research, whether in research institutes,universities or other sectors of industry. The implications of this article may lead to discussion with regulators, such as those responsible for pharmacopoeial

项目二十七 常用实验动物的接种和采血方法

项目二十七常用实验动物的接种和采血方法 一、接种方法 (一) 皮下注射 皮下组织疏松的部位都可皮下注射。一般小鼠在腹部两侧,豚鼠在腹部或大腿内侧,家兔取背部,大腿内侧或耳根部皮下注射。注射部位消毒后,左手提起皮肤,右手持注射器将针头水平刺入皮下,针头摆动无阻力,说明已进入皮下,慢慢注入,注射部位随即隆起。注射完毕,用棉球压住针刺处,再拔出针头。小鼠注入量一般为0.2~0.5ml。家兔或豚鼠注入量为0.5~1.0ml. (二) 皮内注射 先将动物注射部位的毛剪去,消毒,然后左手绷紧皮肢,针头斜面向上,紧贴皮肤表层刺入,然后向上挑起再稍刺入,缓慢注射。若注入皮内,注射部位马上有小泡隆起。皮内注射量一般为0.1~0.2ml。 (三) 肌内注射 应选择肌肉发达、无大血管通过的部位。一般多选臀部、大腿内侧或外侧。针头直接刺入肌肉,回抽针栓如无回血即可注射。家兔等大动物注射量不超过2ml。 (四) 腹腔注射 小白鼠腹腔注射时,用右手拉鼠尾,左手食指和拇指捏住脑背部皮肤,翻转鼠体,把鼠尾和一侧的后腿夹于小指和无名指之间,使动物处于头低位,使内脏移向上腹,右手持注射器在下腹部左侧或右侧刺入皮下,沿皮下朝头部方向进针0.5~1.0cm,再以45°角刺入腹腔,此时有落空感,回抽无肠液,尿液或血液即可缓缓注入。家兔等较大动物注射,应先固定,于腹部腹中线旁侧1cm处进针。小鼠注射量一般为0.5~1.0ml,家兔或豚鼠为5ml。 (五) 静脉注射 1.家兔将家兔固定,用酒精棉球轻轻按摩耳翼,压迫耳根部静脉,使耳缘静脉扩张。用左手拇指与中、食指抓住耳尖部,从耳尖部边缘静脉平行进针,试推进少量注射液,如果觉得没有阻力,局部也没有隆起,表示已进入静脉,将注射液缓缓注入。若失败,再逐步向耳根部移位重新注射。注射完毕,用棉球压住针眼处,拔出针头。注射部位一般选用耳外缘静脉,易固定,表浅;耳内缘静脉深,不易固定,故不常用。 2.小鼠于尾部两侧静脉注射。固定小鼠使尾巴露出,置45℃~50℃温水浸泡1~2min,使尾部静脉扩张。取出尾巴,擦干消毒,在末端1/3或1/4处用左手捏住尾巴,右手持注射器,针头与静脉平行缓慢进针,试注入少许注射液,如无阻力,皮肤不发白,表示针头刺入静脉,否则应更换部位重扎。注射时多选用4 1/2# 针头。最大注射量为0.5ml。 二、采血方法 (一) 小鼠采血方法 1.断尾采血将小鼠固定,露出尾巴,用手轻揉或浸泡于45℃温水中数分钟或用酒精棉球涂擦,使尾血管充血。将鼠尾擦干,用剪刀剪去尾尖1~2mm。然后用手指从尾根部向尾尖捋,血即从断端流出。采血结束后消毒止血。此法采血每只小鼠可采十余次,每次可采血约0.1ml。 2.眼眶后静脉丛采血左手抓注鼠耳间头部皮肤,将头按在桌面或鼠笼上,轻压颈部两侧,引起头部静脉血液回流困难,使眼球充分突出,眶后静脉丛充血。右手持长为7~10cm 玻璃滴管(毛细管端内径1~1.5mm,长约1cm)或7# 针头的1ml 注射器,在内眼角与眼球之

小鼠取血方法

1.割(剪)尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒,然后浸在45℃左右的温水中数分钟,使尾部血管充盈。再将尾擦干,用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3-0.5cm,让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取,采血结束,伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口,割破尾动脉或静脉,收集血液的方法同上。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml,大鼠0.3~0.5ml。 2.鼠尾刺血法大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查),可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭,再用酒精消毒和擦拭,使鼠尾充血。用7号或8号注射针头,刺入鼠尾静脉,拔出针头时即有血滴出,一次可采集10~50mm3。如果长期反复取血,应先靠近鼠尾末端穿刺,以后再逐渐向近心端穿刺。 3.眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套),应防止动物窒息。当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧,使眶后静脉丛充血。右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈(3~4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径0.5-1.0mm),使采血器与鼠面成45℃的夹角,由眼内角刺入,针头斜面先向眼球,刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。刺入浓度,小鼠约2~3mm,大鼠约4~5mm。当感到有阻力时即停止推进,同时,将针退出约0.1-0.5mm,边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管中,当得到所需的血量后,即除去加于颈部的压力,同时,将采血器拔出,以防止术后穿刺孔出血。若技术熟练,用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮换更好。体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml;体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml,可适用于某些生物化学项目的检验。 4.断头取血采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤,并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈,约1/2-4/5的颈部前剪断,让血自由滴入盛器。小鼠可采用约0.8~1.2ml;大鼠约5-10ml。 5.心脏采血鼠类的心脏较小,且心率较快,心脏采血比较困难,故少用。活体采血方法与豚鼠相同。若做开胸一次死亡采血,先将动物作深麻醉,打开胸腔,暴露心脏,用针头刺入右心室,吸取血液。小鼠约0.5-0.6ml;大鼠约0.8-1.2ml。 6.颈动静脉采血先将动物仰位固定,切开颈部皮肤,分离皮下结缔组织,使颈静脉充分暴露,可用注射器吸出血液。在气管两侧分离出颈动脉,离心端结扎,向心端剪口将血滴入试管内。 7.腹主动脉采血最好先将动物麻醉,仰卧固定在手术架上,从腹正中线皮肤切开腹腔,使腹主动脉清楚暴露。用注射器吸出血液,防止溶血。或用无齿镊子剥离结缔组织,夹住动脉近心端,用尖头手术剪刀,剪断动脉,使血液喷入盛器。 8.股动(静)脉采血先由助手握住动物,采血者左手拉直动物下肢,使静脉充盈。或者以搏动为指标,右手用注射器刺入血管。体重15-20g 小鼠采血约0.2-0.8ml,大鼠约0.4-0.6ml。

药理实验中对动物的给药体积与采血体积控制

药理实验中对动物的给药体积与采血体积控制 本文由wyj摘要翻译 本文是2001年由欧洲制药工业协会联合会 (The European Federation of Pharmaceutical Industries and Associations ,EFPIA)和欧洲替代方法验证中心(European Centre for the Validation of Alternative Methods,ECV AM)联合发布的关于对动物不同途径给药或采血时所能充许的给药体积和采血体积指导原则。动物包括小鼠、大鼠、兔、狗、猴、豚鼠,给药方法包括po、ip、im、sc、一次性iv、缓慢静注、静脉点滴等的一般给药体积、最大充许给药体积、给药速度等,采血包括各种动物的最大充许采血量和恢复时间等。是一部实用、全面而又难得的指导原则,相信对从事药理、毒理研究者及其他动物实验工作者有一定的帮助。 下面的节选由wyj摘要翻译,原文见欧洲联盟欧洲制药工业协会联合会,A Good Practice Guide to the Administration of Substances and Removal of Blood, Including Routes and Volumes(2000). J. Appl. Toxicol. 21, 15–23 (2001) 第一部分:动物实验中的给药体积与给药速度 一、一般给药体积与速度 对于各种给药途径的最大给药体积,取决实验动物种属和制剂性质。一般推荐给药最大容积为见附表((欧洲联盟欧洲制药工业协会联合会,2000)。 特殊给药途径每次的给药体积(英国药业会,1995):每眼0.01 ml;⑥直肠0.5 ml/kg;⑦阴道:大鼠0.2 ml,兔1 ml;⑧吸入2 mg/L;⑨鼻:猴或犬每鼻孔0.1 ml。 表1各种给药途径的给药体积及可能的最大给药体积a (欧洲联盟欧洲制药工业协会联合会,2000) 给药途径与体积 (ml/kg, except b ml/site)d 动物种属 Oral sc ip im iv (单次) iv (缓慢注射) 小鼠10 (50) 10 (40) 20 (80) 0.05b (0.1)b 5 (25) 大鼠10 (40) 5 (10) 10 (20) 0.1b (0.2)b 5 (20) 兔10 (15) 1 (2) 5 (20) 0.25 (0.5) 2 (10) 犬 5 (15) 1 (2) 1 (20) 0.25 (0.5) 2.5 (5) 猴 5 (15) 2 (5) C (10) 0.25 (0.5) 2 c 狨猴10 (15) 2 (5) C (20) 0.25 (0.5) 2.5 (10) 小型猪10 (15) 1 (2) 1 (20) 0.25 (0.5) 2.5 (5) 说明: a:给非水溶液后,确定再次给药时间时应考虑前次药物是否已被吸收。肌肉内注射每天不能 超过2次。皮下注射每天限制在2~3个部位,前述皮下注射部位,不包括弗氏佐剂的使用。

关于动物取血问题

1、关于小鼠血液量的问题: 小鼠循环血量占体重的6%,或50-70ml/kg,采血占全血量的10%不会对机体造成严重的不良影响。3-4周后可以重新采集一次。特别注意的是:老年小鼠血量降低。疾病会加重不良反应,所以必须考虑这些影响因素。采血后应补充响应体积的液体,如果需要很短时间反复采血,比如每天一次,每次的采血量不应超过全血的1%。 2、关于取血方法的问题: (1)尾尖取血:当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾,将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟,也可用二甲苯等化学药物涂擦,使局新血管扩张。将鼠尾擦干,剪去尾尖,血自尾尖流出,让血液滴入盛器或直接用移液器吸取。如需间隔一定时间,多次采取鼠尾尖部血液,每次采血时,将鼠尾剪去很小一段,取血后,先用棉球压迫止血并立即用6%液体火棉胶涂于尾巴伤口处,使伤口外结一层火棉胶薄膜,保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血,三根尾势脉可交替切割,并自尾尖向尾根方向切割,每次可取0.2~0.3ml血,切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好,可以较长的间隔时间连续取血,进行血常规检查。 (2)眼眶后静脉丛取血:当需中等量的血液,而又需避免动物死亡时采用此法。用左手固定鼠,尽量捏紧头部皮肤,使头固定,并轻轻向下压迫颈部两侧,引起头部静脉血液回流困难,使眼球充分外突(示眼眶后静脉丛充血),右手持毛细玻璃管,沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入。刺入深度小鼠2~3mm,大鼠4~5mm。当感到有阻力时再稍后退,保持水平位,稍加吸引,由于血压的关系,血液即流人玻璃管中。得到所需的血量后,拨出毛细管。若手法恰当,小鼠约可采血0.2~0.3ml,大鼠约可采血0.4~0.6ml。 (3)断头取血:当需要较大量的血液,而又不需继续保存动物生命时采用此法。左手捉持动物,使其头略向下倾,右手持剪刀猛力剪掉鼠头,让血液滴入盛器。小鼠可采血0.8~1.0ml,大鼠可采用5~8ml。 (4)眶动脉和眶静脉取血:此法既能采取较大量的血液,又可避免断头取血法中因组织液的混入导致溶血的现象,现常取代断头取血法。先使动物眼球突出充血后,以弯头眼科镊迅速钳取眼球,并将鼠倒置,头向下,眼眶内很快流出血液,让血液滴入盛器,直至不流为止。此法由于取血过程中动物未死,心脏不断在跳动,因此取血量比断头法多,一般可取鼠体重4~5%的血液量,是一种较好的取血方法。 (5)心脏取血:动物仰卧固定在固定板上,剪去心前区部位的被毛,用碘酒酒精消毒皮肤。在左侧第3~4肋间,用左手食指摸到心搏处,右手取连有4~5号针头的注射器,选择心搏最强处穿刺,当针刺入心脏时,血液由于心脏跳动的力量自动进人注射器。此法要求实验者掌握以下要点:要迅速而直接插入心脏,否则,心脏将从针尖处滑脱;如第一次没刺准,将针头抽出重刺,不要在心脏周围乱探,以免损伤心、肺;要缓慢而稳定的抽吸,否则,太多的真空反而使心脏塌陷。若不需保留动物生命时,也可麻醉后切开动物胸部,将注射器直接刺人心脏抽吸血液。 (6)大血管取血:大、小鼠还可从颈动、静脉,股动、静脉和腋下动、静脉取血,在这些部位取血均需麻醉后固定动物,然后作动、静脉分离手术,使其暴露清楚后,用注射器沿大血管平行刺入(或直接用剪刀剪断大血管),抽取所需血量。切断动脉时,要防止血液喷溅。

常用实验大小鼠采血方法及其对实验动物福利的影响

2019年1月 第29卷一第1期 中国比较医学杂志 CHINESE JOURNAL OF COMPARATIVE MEDICINE January,2019 Vol.29一No.1 杨健莉,刘佳,郑志红.常用实验大小鼠采血方法及其对实验动物福利的影响[J].中国比较医学杂志,2019,29(1):90-94. Yang JL,Liu J,Zheng https://www.360docs.net/doc/5916177010.html,parison and analysis of blood sampling methods from rats and mice [J].Chin J Comp Med,2019,29(1):90-94. doi:10.3969/j.issn.1671-7856.2019.01.016 [基金项目]国家自然科学基金(2015408002)三 [作者简介]杨健莉(1989 ),女,学士学位,专业:实验动物学三E-mail:yangjianli0603@https://www.360docs.net/doc/5916177010.html, [通信作者]郑志红(1969 ),女,教授,研究方向:实验动物转基因与基因敲除研究三E-mail:zhihongzheng@https://www.360docs.net/doc/5916177010.html, 常用实验大小鼠采血方法及其对 实验动物福利的影响 杨健莉,刘一佳,郑志红? (中国医科大学实验动物部,沈阳一110122) 一一?摘要?一近些年大量的文献对实验大小鼠采血方法进行了比较研究,以探究出最适合的采血方法,从而获得 高质量的血液样本三本文主要介绍了几种实验大小鼠常用的采血方法,及不同采血方法对动物福利的影响,为选择最适的采血方法提供相关的理论依据,提高实验效率,降低实验影响三 ?关键词?一实验大小鼠;采血方法;实验动物福利 ?中图分类号?R -33一一?文献标识码?A一一?文章编号?1671-7856(2019)01-0090-05 Comparison and analysis of blood sampling methods from rats and mice YANG Jianli,LIU Jia,ZHENG Zhihong ? (Department of Laboratory Animal Science,China Medical University,Shenyang 110122,China) 一一?Abstract ?一Recently,many studies have compared different methods for blood collection from experimental rats and mice to determine the most suitable method to obtain high-quality blood samples.This review introduces several blood collection methods commonly used in rats and mice,and their effects on animal welfare.This will provide a theoretical basis for selecting the most suitable method of blood collection to improve experimental efficiency and reduce the impact on experimental results. ?Keywords ?一experimental rats and mice;methods of blood collection;laboratory animal welfare 一一实验大小鼠的使用在哺乳动物实验中约为 75%左右[1],主要应用于药代动力学二毒理学二行为学二遗传学以及肿瘤学等领域,对实验大小鼠进行血液采集是实验操作过程中重要的实验操作,不同的采血方法对动物组织损伤程度二采血间隔及采血量要求等各不相同;那么选择适合的采血方法,获得高质量的血液样本,是获得良好动物实验数据的基础三本文主要介绍几种大小鼠常用的采血方法,对采血量的确定二采血频率 的选择及不同采血方法对动物福利的影响进行阐述,为实验者在操作过程中选择合适的采血方法提供依据三1一常用的采血方法 依据采血位点不同实验大小鼠常用的采血方法可分为鼠尾采血二眼眶采血二颈静脉采血二隐静脉采血二面部采血二心脏采血和腹主动脉采血;下面分别对不同的采血方法要点及应用进行介绍三

实验动物采血完全指南

实验动物采血完全指南 凡用血量较少的检验如红、白细胞计数、血红蛋白的测定,血液涂片以及酶活性微量分析法等,可刺破组织取毛细血管的血。当需血量较多时可作静脉采血。静脉采血时,若需反复多次,应自远离心脏端开始,以免发生栓塞而影响整条静脉。例如,研究毒物对肺功能的影响、血液酸碱平衡、水盐代谢紊乱,需要比较动、动脉血氧分压、二氧化碳分压和血液pH值以及K+、Na+、CI-离子浓度,必须采取动脉血液。采血时要注意:⑴采血场所有充足的光线;室温夏季最好保持在25-28℃,冬季,15-20℃为宜;⑵采血用具有采用部位一般需要进行消毒;⑶采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥;⑷若需抗凝全血,在注射器或试管内需预先加入抗凝剂. 1.取少量血 a.尾静脉大鼠、小鼠 b.耳静脉兔、狗、猫、猪、山羊、绵羊 c.眼底静脉丛兔、大鼠、小鼠 c.舌下静脉兔 d.腹壁静脉青蛙、蟾蜍 e.冠、脚蹼皮下静脉鸡、鸭、鹅 2.取中量血 a.后肢外侧皮下小隐静脉狗、猴、猫 b.前肢内侧皮下头静脉狗、猴、猫 c.耳中央动脉兔 d.颈静脉狗、猫、兔 e.心脏豚鼠、大鼠、小鼠 f.断头大鼠、小鼠 g.翼下静脉鸡、鸭、鸽、鹅 h.颈动脉鸡、鸭、鸽、鹅 3.取大量血 a.股动脉、颈动脉狗、猴、猫、兔 b.心脏狗、猴、猫、兔 c.颈静脉马、牛、山羊、绵羊 d.摘眼球大鼠、小鼠

采动物品种最大安全采血量(ml) 最小致死采血量(ml) 小鼠0.2 0.3 大鼠 1 2 豚鼠 5 10 兔10 40 狼狗100 500 猎狗50 200 猴15 60 1.割(剪)尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒,然后浸在45℃ 左右的温水中数分钟,使尾部血管充盈。再将尾擦干,用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3-0.5cm,让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取,采血结束,伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口,割破尾动脉或静脉,收集血液的方法同上。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml,大鼠 0.3~0.5ml。 2.鼠尾刺血法大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查),可采用本法。先将鼠尾用温水擦 拭,再用酒精消毒和擦拭,使鼠尾充血。用7号或8号注射针头,刺入鼠尾静脉,拔出针头时即有血滴出,一次可采集10~50mm3。如果长期反复取血,应先靠近鼠尾末端穿刺,以后再逐渐向近心端穿刺。 3.眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手 套),应防止动物窒息。当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧,使眶后静脉丛充血。右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈(3~4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径0.5-1.0mm),使采血器与鼠面成45℃的夹角,由眼内角刺入,针头斜面先向眼球,刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。刺入浓度,小鼠约2~3mm,大鼠约4~5mm。当感到有阻力时即停止推进,同时,将针退出约0.1-0.5mm,边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管中,当得到所需的血量后,即除去加于颈部的压力,同时,将采血器拔出,以防止术后穿刺孔出血。若技术熟练,用本法短期内可重复采血均无多大困难。 左右两眼轮换更好。体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml;体重200-300g大鼠每次可采血 0.5-1.0ml,可适用于某些生物化学项目的检验。 4.断头取血采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤,并作动物头朝下倾的姿 势。右手用剪刀猛剪鼠颈,约1/2-4/5的颈部前剪断,让血自由滴入盛器。小鼠可采用约0.8~1.2ml; 大鼠约5-10ml。 5.心脏采血鼠类的心脏较小,且心率较快,心脏采血比较困难,故少用。活体采血方法与豚鼠相同。 若做开胸一次死亡采血,先将动物作深麻醉,打开胸腔,暴露心脏,用针头刺入右心室,吸取血液。 小鼠约0.5-0.6ml;大鼠约0.8-1.2ml。 6.颈动静脉采血先将动物仰位固定,切开颈部皮肤,分离皮下结缔组织,使颈静脉充分暴露,可用注 射器吸出血液。在气管两侧分离出颈动脉,离心端结扎,向心端剪口将血滴入试管内。 7.腹主动脉采血最好先将动物麻醉,仰卧固定在手术架上,从腹正中线皮肤切开腹腔,使腹主动脉清 楚暴露。用注射器吸出血液,防止溶血。或用无齿镊子剥离结缔组织,夹住动脉近心端,用尖头手术

畜禽采血方法

畜禽疫情监测中的采血技术 摘要:随着国家动物防疫水平的不断提升,畜禽疫病监测实验室工作在各级动物防疫部门迅速开展起来,监测工作的开展需要大量的血清,采血是目前获取血清的主要技术手段。下面将牛、猪、羊、禽等畜禽的采血技术方法做以详细论述,为动物疫病检测工作顺利完成和重大动物疫病的防控打下基础。 关键词:疫情监测畜禽采血 随着我国的养殖业日益向规模化、集约化方向发展,同时畜禽及其产品流通交易的日益频繁,使我国的畜禽疫病呈现新的发病特点,如病症复杂化和非典型化、混合感染居多等。要对疫病进行正确的诊断分析,实施日常疫病监测和免疫抗体监测,从而为政府决策和疫病的预防、控制、净化提供技术支持,必须进行血清学检测,因此国家逐年加大了对动物疫情和动物免疫监测的力度。熟练掌握一套采血技术是保质、保量完成血清收集必备条件,也是保护采血人员安全的必要保障。现将几种畜禽的血液采集方法做如下介绍: 1.牛血样的采集 按照国标奶牛生产技术规程,奶牛布病检测是畜牧兽医部门一项日常任务,每头奶牛一年必须接受不少于1次的布病检测,再加上其他牛疫病防疫效果的检测,牛血清的需要量就相对较大。一般散养户多采用颈静脉采血法,规模化养殖场多采用尾静脉采血法。 1.1颈静脉采血 牛颈静脉分为颈内静脉和颈外静脉。颈内静脉较小与颈动脉伴行,末端与颈外静脉汇合。颈外静脉较粗,位于颈部肩骨乳突肌与胸头肌间的凹窝内采血前助手要保定好牛头部,使其向一侧上仰,使侧颈静脉暴露出来,采血者蹲于牛颈部颈静脉暴露一侧,取l6号针头,以拇指、食指和中指夹住,依靠腕力,垂直扎进颈静脉上的皮肤,然后调整位置,一旦进入血管,血液即会喷射出。 1.2 尾静脉采血 牛尾静脉位于尾椎腹侧正中的脉管沟内,尾静脉采血具有方便快速的优点,

(完整word版)动物免疫与动物采血实验操作规范

动物免疫与动物采血 一、动物保定 在进行动物免疫和动物采血之前,进行动物保定是非常必要的。正确的抓取固定动物是为了不损害动物健康,不影响观察指标,并防止被动物咬伤,保证试验顺利进行。下面介绍几种常见实验动物的保定方法。 1 小鼠的抓取固定方法 小鼠性情温顺,一般不会主动咬人,但取用时动作也要轻缓。抓取时先用右手抓取鼠尾提起,放在其前,爪能抓牢的物体表面稍后提,或放在实验台上,在其向前爬行时,用左手拇食指迅速提住其后颈部皮肤,把鼠体置于左手心中,将鼠尾用无名指和小指压在手掌上。右手即可进行各种操作,如注射、灌胃及其他实验操作。 如进行解剖、手术、心脏及尾部采血和尾静脉注射时,则需将小鼠做一定形式的固定,解剖手术和心脏采血等均可使动物先取背卧式(必要时先进行麻醉),再用大头针或线绳将鼠前后肢依次固定在支持物上。尾静脉采血或尾静脉注射时,可用小鼠尾静脉注射架固定;或倒放适当大小和重量的容器,把小鼠放在里面只露尾巴,这种容器能够压住尾部不让活动,同时起,到驱赶血液的作用;或把小鼠放在一黑布口袋里小鼠趋黑,向前爬动,在尾部将小口袋缩口,固定小布口袋后,可进行尾静脉采血或尾静脉注射等操作。 如只想移动小鼠,可用两手把它捧起或用右手拇指和食指的指腹抓住尾部中央将小鼠倒提起来。 2 大鼠的抓取固定方法 4-5周龄以内的大鼠和小鼠一样抓住尾部提起来,周龄较大的大鼠尾部皮肤因为容易被剥脱,所以用左手从背部中央到胸部捏起来抓住。 由于大鼠比小鼠牙尖性猛,不易用袭击方式抓取,以防大鼠在惊恐或击怒时咬伤手指,提拿时最好戴上防护手套,轻轻抓住尾巴后提起,置于试验台上,固定方法随操作目的而定。如需尾静脉取血或注射,可将大鼠固定盒内或用小黑布口袋装大鼠,使其只露尾部;如需腹腔注射或肌肉注射或灌胃,可用右手提住鼠尾,将鼠放在鼠爪能抓牢的物体表面,如铁丝笼子,稍向后拉鼠尾、鼠身被拉长,用左手贴在鼠背,捏紧头顶部和背部皮肤,即可将大鼠固定在左手中,右手可进行其他操作;如需长时间固定操作,可将大鼠四肢固定在木板上,用一根棉绳拉住两只门齿固定在头部后木板上。 3 豚鼠的抓取固定方法 豚鼠较为胆小易惊,不宜强烈刺激和受惊,所以在抓取时,必须稳、准和迅速。抓取幼小豚鼠时,用两手捧起来,成熟动物则用右手大把抓起来,用手固定,方法是先用手掌迅速扣住鼠背,抓住其肩胛上方,以拇指和食指环握颈部,另一只手托住臀部。也可用固定器固定豚鼠或将豚鼠四肢固定在木板上。 4 家兔的抓取固定方法。 家兔比较顺服不会咬人,但脚爪较尖,应避免抓伤。进行皮下、腹腔、肌肉注射或测肛温时,只须将家兔抓牢或按住就行即可,抓兔的方法是用右手把两耳轻轻地拿在手心,抓紧颈后部的皮厚处,提取兔,然后用左手托住臀部,使兔的体重大部分落在左手上,不能单提两耳,因为兔耳并不能承担全身重量,易造成疼痛而引起挣扎。单提两耳,捉拿四肢,提抓腰部和背部都是不正确的抓法。 当只对兔的头部进行操作时,如耳静脉注射、采血等,可用兔固定器固定头部,对兔进行测量血压,呼吸及手术时,可将兔固定在实验台上,四肢用棉绳固定在实验台两侧,另用一根棉绳拴住兔的两只门牙,另一端固定在实验台的铁柱上即可。

动物的采血方法

动物的采血方法 一、小鼠、大鼠的采血 1.眼眶后静脉丛采血 左手拇指及食指抓住鼠两耳之间的皮肤使鼠固定,并轻轻压迫颈部两侧,阻碍静脉回流,使眼球充分外凸。右手持玻璃采血管,将其尖端插入内眼角与眼球之间,轻轻向眼底方向刺入,小鼠刺入2~3mm,大鼠刺入4~5mm,当感觉有阻力时即停止刺入,放置取血管以切开静脉丛,血流即流入取血管。采血结束后,拔出取血管,放松左手,出血即停止。本方法在短期内可重复采血。小鼠一次可采血0.2~0.3ml,大鼠一次可采血0.5~1.01ml。为防止血液在取血管中凝固,可将取血管进入1%肝素溶液,干燥后使用。 2.摘眼球采血 此方法用于鼠类大量采血。采血时,用左手固定动物,压迫眼球,尽量使眼球凸出,右手用弯头镊子摘除眼球,眼眶内很快流出血液。 二、兔的采血 1.耳中央动脉、耳沿静脉采血 左手固定兔,并用酒精棉球消毒采血部位,右手持注射器,在兔耳血管的末端,沿着与血管平行的向心方向刺入血管,即可见血液流入针管,注意固定好针头。采血结束后,拔出注射器,用棉球压迫止血2~3min。 2.颈静脉采血 将兔麻醉后,仰卧在固定台上固定,剪去一侧颈部被毛,用碘酒、酒精棉球消毒皮肤,手术刀轻轻划破皮肤,钝性分离静脉,颈静脉暴露后,用注射器针头沿血管平行的远心方向刺入,采血结束后,拔出注射器,缝合切口。 三、狗的采血 1.前、后肢皮下静脉血 此方法一次可取较多的血,操作可参照相应的静脉注射。如需采少量血。则可用5.5号针头直接刺入静脉。如需采一定量的血,最好用静脉滴注针头与注射器连接,以防狗挣扎时针头刺破血管。 2.股动脉采血 将狗仰卧后固定,伸展后肢向外拉直,暴露腹股沟,在腹股沟三角区动脉搏动的部位剪去被毛,用碘酒、酒精消毒。左手中指、食指探摸股动脉搏动部位并固定好血管,右手区静脉滴注针,针头由动脉搏动处慢慢刺入,当血液流入针头后的朔料管时,固定好针头,连接好注射器可抽到大量血液。 3.心脏采血 将狗仰卧固定,前肢向背侧方向固定,暴露胸部,剪去左侧第3~5肋间的被毛,用碘酒、酒精消毒皮肤。左手触摸心脏部位,选择心跳最明显处穿刺。一般在胸骨左缘外1cm第四肋间处,用连有6.5号针头的注射器,从心跳最明显处垂直刺入心脏。当针头正确刺入心脏时,血液即进入注射器,便可抽取大量血液。如采不到血,可调整刺入方向和深度,调整方向时,要将针头上提后再刺入,不能让针头在胸腔内乱晃。

猪的采血

动物的血样采集和血清分离方法 责任编辑:张丽娟发布时间:2012-10-12 一、不同动物采血部位和方法 1、家禽采血:心脏采血法易使被采血家禽因失血过多而死亡,所以在常规免疫监测中较少使用。常选以翅下静脉采血,助手抓住两鸡腿,将家禽右侧卧右翅压鸡体身下,采血者右手持5ml一次性注射器,左手食指中指固定左翅拇指压住近心端翅静脉,右手将针尖接近平行刺破表皮和血管壁,感觉无阻力时缓缓拉动注射器的活塞,血液便缓缓进入注射器内。鸡皮和血管壁薄,应注意针尖斜面与角度倾斜大或力度大会刺破双层血管而发生血肿现象。采血完毕后,用干棉球压紧采血部位拔出注射器,持续压采血部位1~2 min,至不出血为止,采血部位消毒。 2.猪的采血: A猪采血较困难,一般小猪选取前腔静脉采血。 前腔静脉的解剖位置及采血的部位:猪的前腔静脉是注入右心房的静脉干,在胸腔前门由左、右颈静脉和左、右腋静脉汇合而成。采血部位就在第一肋骨与胸骨柄结合处的前侧方呈两个明显的凹陷窝。由于左侧靠近膈神经,故多于右侧凹陷窝进行采血。采血针头刺入方向呈近似垂直并稍向中央及胸腔方向,刺入深度依猪体大小而定,一般2~6cm 。一般30千克以下的猪其体重、体型都比较小一点,采取仰卧保定

方式。一位保定人员分别抓住小猪的 2 只后腿向后拉或倒提,一位保定人员左手把住嘴使头部贴地稍向右偏,另一只手把住猪的一只前腿。消毒皮肤后,采血人员左手可以调整猪的一条腿使前肢与体中线基本垂直,这时凹陷窝达到最深的程度右手持5ML一次性注射器向右侧凹陷窝处,由上而下针尖对准对面的肩胛角或稍偏向中央及胸腔方向刺入,见有回血,即可采血,一般3~4毫升,采血完毕,左手拿酒精棉球紧压针孔处,右手迅速拔出采血针管,为防止出血,应压迫片刻,并涂擦碘酒消毒。 B成猪或稍大些的猪采取套猪器套住猪的上颌向上提拉保定,选取耳静脉采血,以前用一次性注射器耳静脉易瘪造成血量不够,我的经验是用人用一次性真空采血管,先用针刺破血管有血回流后再另一头插入真空管内,此法采血有如下的好处: A一次性真空采血管内含惰性凝胶物质和促凝剂, 对血液有促凝血、促血清分离作用, 具有血清分离快而且多、受温度影响小、分离血清可利用的特点。 b使用一次性真空采血管, 可减少溶血现象的发生。因为在采血过程中血液是在小负压作用下沿着管壁慢慢注人采血管中, 红细胞不易被破坏同时采血管内均涂有的硅酮可以避免血细胞附壁, 防止离心时血细胞破碎, 不易溶血。这就减

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