不同动物的采血安全及致死量

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小动物采血法

小动物采血法
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(2)EDTA抗凝:采血前,用灭菌生理盐水将 EDTA配制成4%溶液,然后按预采血液的量, 以每ml血液加入1mg~2mg的EDTA的液体量 于采血容器内。采血,并不断摇动采血容器,使 之混匀。 (3)玻璃珠法:预先将适量的玻璃珠(根据采 血量多少而定)清洗后,装入采血容器中,灭菌 后备用。采血过程中,边采边摇采血瓶,以使小 玻璃珠在血液中滚动,以机械地除去纤维蛋白, 使血液不能凝固。本法虽较麻烦,但对淋巴细胞 的活性影响最小,且可减少血小板的混杂。
3.取大量血
a.股动脉、颈动脉 : 狗、猴、猫、兔 b.心脏 : 狗、猴、猫、兔 c.颈静脉 : 马、牛、山羊、绵羊 d.摘眼球 : 大鼠、小鼠

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采动物品种 最大安全采血量(ml) 最小致死采血量(ml)
小鼠 大鼠 豚鼠 兔 狼狗 猎狗 猴

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1.取少量血
a.尾静脉: 大鼠、小鼠 b.耳静脉 : 兔、狗、猫、猪、山羊、绵羊 c.眼底静脉丛 : 兔、大鼠、小鼠 d.舌下静脉: 兔 e.腹壁静脉 : 青蛙、蟾蜍 f.冠、脚蹼皮下静脉 : 鸡、鸭、鹅

0.2 1 5 10 100 50 15
0.3 2 10 40 500 200 60

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1.割(剪)尾采血
当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出 鼠尾。将尾部毛剪去后消毒,然后浸在45℃左 右的温水中数分钟,使尾部血管充盈。再将尾擦 干,用锐器(刀或剪刀)割去尾尖,让血液自由滴 入盛器,采血结束,伤口消毒并压迫止血。也可 在尾部作一横切口,割破尾动脉或静脉,收集血 液的方法同上。每鼠一般可采血10余次以上。 小鼠每次可取血0.1ml,大鼠0.3~0.5ml。

药理动物采血实验报告

药理动物采血实验报告

一、实验目的1. 掌握药理实验中动物采血的方法和技巧。

2. 学习不同动物采血点的选择及其适用性。

3. 了解采血过程中的注意事项,确保实验数据的准确性。

二、实验原理药理实验中,动物采血是获取实验数据的重要环节。

通过采血,可以检测动物体内的血液指标,如血糖、血脂、血常规等,从而评估药物对动物的影响。

本实验采用小鼠作为实验动物,分别通过尾静脉采血和眼眶静脉采血两种方法获取血液样本。

三、实验材料1. 实验动物:小鼠(体重18-22g)。

2. 采血器材:采血针、注射器、试管、酒精棉球、止血带等。

3. 实验试剂:生理盐水、抗凝剂等。

四、实验方法1. 尾静脉采血- 将小鼠放入固定盒中,用止血带固定尾部。

- 将尾部毛剪去,用酒精棉球消毒。

- 观察尾静脉,选择较粗的静脉进行采血。

- 用采血针对准静脉,缓慢插入,避免损伤血管。

- 收集血液至试管中,加入适量抗凝剂。

- 采血完毕后,用酒精棉球消毒伤口,压迫止血。

2. 眼眶静脉采血- 将小鼠放入固定盒中,用止血带固定头部。

- 用酒精棉球消毒眼眶周围。

- 用拇指和食指轻轻按压眼球,使眼眶静脉暴露。

- 用采血针对准静脉,缓慢插入,避免损伤血管。

- 收集血液至试管中,加入适量抗凝剂。

- 采血完毕后,用酒精棉球消毒伤口,压迫止血。

五、实验结果1. 尾静脉采血:小鼠体重18-22g,每次采血量约0.1ml,可重复采血3-5次。

2. 眼眶静脉采血:小鼠体重18-22g,每次采血量约0.05ml,可重复采血2-3次。

六、实验讨论1. 尾静脉采血操作简便,采血量充足,适用于一般药理实验。

但反复采血可能导致小鼠尾部损伤,影响实验动物的存活率。

2. 眼眶静脉采血操作相对复杂,采血量较少,但损伤较小,适用于需要多次采血或对动物存活率要求较高的实验。

3. 采血过程中应注意以下几点:- 操作者应熟悉动物解剖结构,避免损伤血管。

- 采血针插入血管后,应缓慢抽拉,避免血液凝固。

- 采血完毕后,应及时对伤口进行消毒和压迫止血。

畜(禽)的采血方法及注意事项

畜(禽)的采血方法及注意事项

下的小猪应采两前肢 与气管交 汇
4 禽
禽 的采血 常在 翅 内静脉 。采 血者 左 手拨 开 翅 内 侧羽 毛 , 在翅 静 脉处 消 毒后 , 手持 5号 采血 器 与 皮 右 肤呈 4 。方 向顺 血管 进 针 , 针 时手要 稳 , 5 进 进针 不 宜 过深 , 刺穿 血管 , 如 皮下 很快 水肿 , 导致 采血 失 败 。见
处, 种公母猪和 3 千克以上的中大猪可选颈部最低 0 凹处 。进 针 时要 掌握好 方 向 、 角度 和 深度 , 时 调整 。 及 血管被刺穿 , 会引起血肿 , 要立 即停止采血 。特别要 注意的是对仔猪施行前腔静脉采血时 , 不能太猛、 太 深, 以免 伤及 心包 或心 脏 。 采到血液后不能有气泡 , 也不能振荡 , 同时倾斜 放置。送样过程 中, 血样不可剧烈摇晃以免溶血 , 血 样送至实验室后要立即分离血清 ,不能立即分离的 需及时冷藏 ; 若要送 检血清 , 夏天在常温下放置 , 冬 天要 放
由于牲 畜 的大小 不 同 , 静脉 的 脉 ) 血 。此静 脉位 于前 肢 腕关 节正 前方 稍偏 内侧 。 采 一 吉林省德惠市岔路 口 镇畜牧兽医站 要 犬可侧卧、 卧或站立保定 , 伏 助手或犬主人从犬 的后 深浅 不一 样 , 求 使用 的针 头也是 侧握 住肘 部 , 皮肤 向上牵 拉 和静 脉怒 张 , 可 用 止 使 也 不一 样 。采血 使用 一 次性注 射器 , 必须保 持 清洁 干燥 。
皮 肤垂 直刺 人 2 3厘 米 即 可采 得
心血 。
仔猪 和 中等 大小 的猪侧 卧保 定 后 ,将 两前 肢 身
Байду номын сангаас
后拉直或使两前肢与体中给垂直。注意将头部拉直 , 这样可使前腔静 脉紧 张并 可使胸前 窝充分显露 出 来 。肥育猪可站立保定 , 用绳环套在上颌 , 拴于柱栏 即可 。穿刺部位是左侧或右侧胸前窝 , 即由胸骨柄 、 胸头肌和胸骨舌骨肌的起始部构成 的陷窝 。在玻璃 注射器内事先吸入少量的抗凝剂 , 右手持针管 , 使针 头斜 向对 侧或 向后 内方与 地 面呈 6 o ,刺 人 2 3厘 0 ~ 米即可抽出血液, 术前、 术后均按常规消毒 。

动物实验

动物实验

动物实验●动物的选择选择的原则:一切实验动物应具有个体间的均一性,遗传的稳定性和容易获得三个基本要求。

1.从研究目的和实验要求选择,尽量选择与研究对象的机能,代谢,结构,疾病性质的动物。

2.是否易获得,是否经济,是否容易饲养。

●实验动物本实验室常用的实验动物多为小鼠和家兔1.小鼠(Mus musculus)实验小鼠是目前教学,医学科学研究工作中经常应用的,使用量最大的一种动物。

其性成熟早,产仔多,繁殖快,体型小,便于管理,价格低廉,应用极广,特别使用于需要大量动物进行的实验,如药物筛选,半数致死量,药物的效价比较等。

用人工接种或化学致癌物方法可以导致生长各种响应肿瘤,因此也很适应抗癌药物的研究。

我国医学实验中常用的小鼠是野生鼷鼠的变种,属于哺乳纲,啮齿目,鼠科,鼠属。

小鼠1.5-2 月龄体重达20g以上,可供实验使用。

常用的实验小鼠,尤其是纯品系小鼠,经过人们长期的定向培育与纯化之后,一般具有与野生动物或家畜不同的独有特性(对实验的敏感性和实验结果的一致性,个体动物遗传的均一性),这些都是衡量实验小鼠质量好坏的重要标志。

我国常用的实验小鼠品种有:Balb/c鼠,昆明鼠等。

2.家兔(Oryctolagus cunieulus Rabbits)兔形目,兔科。

常用的家兔为真兔属,由欧洲野生穴兔驯化而成,目前已有五十多个品种。

生物医学研究中常用的家兔均为欧洲兔的后代,使用最多的有新西兰兔,大耳白兔,青紫兰兔,荷兰兔,弗莱密西兔。

●抗原剂量的选择不同抗原的免疫原性强弱不同,取决于其分子量,化学活性基团,立体结构,物理性状和弥散速度等。

抗原的免疫剂量依照给予抗原的种类,免疫次数,注射途径以及受体动物的种类,免疫周期及所要求的抗体特性等而不同。

剂量过低不能形成足够强的免疫刺激,剂量过高,又有可能造成免疫耐受。

在一定范围内,抗体效价随注射抗原的剂量而增高。

蛋白质抗原的免疫剂量比多糖类抗原宽。

一般而言,小鼠首次抗原剂量为50-400μg/次,大鼠为100μg-1mg/次,加强免疫的剂量为首次剂量的1/5-2/5。

动物采血原则

动物采血原则

动物采血原则
动物采血的总体原则是:
采血体积和频率的选择决定于体循环中的血液体积和红细胞更
新的速度。

过量采血会导致低血容量性休克、生理应激甚至死亡。

为了动物健康考虑,采血体积应该是推荐最大体积的下限。

最大采血体积是针对正常健康动物制定的。

采血过程中,应该最小化采血体积。

多次采血的情况下,应该尽量减少采血量。

此外,根据不同动物和具体实验需求,还应当遵循以下原则:
单次采血:在不补充液体的情况下,单次采血的最大采血量约为全血量的10%,即7.7-8µL/g。

如25g小鼠,大约是193-200μL。

如果补充液体,单次采血的最大量约为血液总量的15%,即12µL/g。

在25g的小鼠中,这大约是300µL。

一般补充体液时,应预热后经皮下注射。

多次采血:如果实验需要多次采血,应尽量减少采血量。

每周最大采血量不超过血液总量的7.5%,为6µL/g。

对于25g的小鼠,每周大约为145-150µL。

放血法:通过放血法收集血液,可以收集血液总体积的一半左右,即40µL/g。

以上信息仅供参考,具体操作应根据实际情况和实验需求进行调整,并遵循相关动物伦理和法律法规。

常见实验动物的采血量及家兔的采血方法

常见实验动物的采血量及家兔的采血方法

常见实验动物的采血量及家兔的采血方法
常见实验动物的最大安全采血量与最小致死采血量见表。

一次采血过多或连续多次采血都可影响动物健康,造成贫血或导致死亡,须予注意。

家兔的采血方法
(1)耳缘静脉取血:如要采集少量血液,可采用此法。

将家兔放在固定盒内,拔去拟采血部位的毛,用电灯照射加热或用电吹风吹热或用二甲苯棉球擦耳壳,使耳部血管扩张。

用粗针头刺破耳缘静脉或以刀片在血管上切一小口,让血液自然流出即可。

取血后用棉球压迫止血。

亦可用针头插入耳线静脉取血,其操作步骤基本与耳缘静脉注射相似。

最好有一助手帮助压紧耳根部,这样采血时比较容易。

(2)兔耳中央动脉取血:在兔耳的中央有一条较粗、颜色较鲜红的中央动脉,用左手固定兔耳,右手持注射器,在中央动脉末端,沿着动脉向心方向平行刺入动脉,此法一次可取血10~15ml。

取血完毕后注意止血。

抽血时要注意:由于兔耳中央动脉易发生痉挛性收缩,因此抽血前,必须先让兔耳充分充血,当动脉扩张,未发生痉挛性收缩前立即抽血。

不要在近耳根处取血,因耳根部软组织厚,血管位置较深,易刺透血管造成皮下出血。

(3)心脏取血:兔心脏取血法和大、小鼠心脏取血法类似,且比较容易掌握。

将兔仰卧固定在手术台上,将心脏部位被毛剪去,用碘酒酒精消毒皮肤,选择心搏最明显处穿刺,针头刺入心脏后即有血液涌入注射器。

取得所需血量后,迅速将针头拔出,这样心肌上的穿孔易
于闭合。

经6~7天后,可以重复进行心脏采血。

此外,还可以从颈动静脉、股动静脉、眼底(一般不常采用)取血。

关于动物取血问题

关于动物取血问题

1、关于小鼠血液量的问题:小鼠循环血量占体重的6%,或50-70ml/kg,采血占全血量的10%不会对机体造成严重的不良影响。

3-4周后可以重新采集一次。

特别注意的是:老年小鼠血量降低。

疾病会加重不良反应,所以必须考虑这些影响因素。

采血后应补充响应体积的液体,如果需要很短时间反复采血,比如每天一次,每次的采血量不应超过全血的1%。

2、关于取血方法的问题:(1)尾尖取血:当所需血量很少时采用本法。

固定动物并历出鼠尾,将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟,也可用二甲苯等化学药物涂擦,使局新血管扩张。

将鼠尾擦干,剪去尾尖,血自尾尖流出,让血液滴入盛器或直接用移液器吸取。

如需间隔一定时间,多次采取鼠尾尖部血液,每次采血时,将鼠尾剪去很小一段,取血后,先用棉球压迫止血并立即用6%液体火棉胶涂于尾巴伤口处,使伤口外结一层火棉胶薄膜,保护伤口。

也可采用切割尾静脉的方法采血,三根尾势脉可交替切割,并自尾尖向尾根方向切割,每次可取0.2~0.3ml血,切割后用棉球压迫止血。

这种采血方法在大鼠进行较好,可以较长的间隔时间连续取血,进行血常规检查。

(2)眼眶后静脉丛取血:当需中等量的血液,而又需避免动物死亡时采用此法。

用左手固定鼠,尽量捏紧头部皮肤,使头固定,并轻轻向下压迫颈部两侧,引起头部静脉血液回流困难,使眼球充分外突(示眼眶后静脉丛充血),右手持毛细玻璃管,沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入。

刺入深度小鼠2~3mm,大鼠4~5mm。

当感到有阻力时再稍后退,保持水平位,稍加吸引,由于血压的关系,血液即流人玻璃管中。

得到所需的血量后,拨出毛细管。

若手法恰当,小鼠约可采血0.2~0.3ml,大鼠约可采血0.4~0.6ml。

(3)断头取血:当需要较大量的血液,而又不需继续保存动物生命时采用此法。

左手捉持动物,使其头略向下倾,右手持剪刀猛力剪掉鼠头,让血液滴入盛器。

小鼠可采血0.8~1.0ml,大鼠可采用5~8ml。

(4)眶动脉和眶静脉取血:此法既能采取较大量的血液,又可避免断头取血法中因组织液的混入导致溶血的现象,现常取代断头取血法。

(完整)动物全血量及最大注射量

(完整)动物全血量及最大注射量

(完整)动物全血量及最大注射量
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表12—22 实验动物全血、血浆、红细胞的容量和静脉血比容[61]
注:Pv=血浆容量 VH=红细胞比积 EV=红细胞容量 BV=全血容量
几种动物不同给药途径的最大注射量(ml)。

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不同动物的采血安全及致死量
1.采动物品种最大安全采血量(ml)最小致死采血量采动物品种最大安全采血量(ml) 最小致死采血量(ml)
小鼠0.2 0.3
大鼠 1 2
豚鼠 5 10
兔10 40
狼狗100 500
猎狗50 200
猴15 60
2.眼眶静脉丛采血
1.采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套),应防止动物窒息。

当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧,使眶后静脉丛充血。

右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈(3~4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径0.5-1.0mm),使采血器与鼠面成45℃的夹角,由眼内角刺入,针头斜面先向眼球,刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。

刺入浓度,小鼠约2~3mm,大鼠约4~5mm。

当感到有阻力时即停止推进,同时,将针退出约0.1-0.5mm,边退边抽。

若穿刺适当血液能自然流入毛细管中,当得到所需的血量后,即除去加于颈部的压力,同时,将采血器拔出,以防止术后穿刺孔出血。

若技术熟练,用本法短期内可重复采血均无多大困难。

左右两眼轮换更好。

体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3m l;体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml,可适用于某些生物化学项目的检验。

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