实验动物采血指南汇总
鸡采血方法实验报告
一、实验目的1. 熟悉鸡的采血部位和方法。
2. 掌握采血过程中的操作技巧，确保采血安全、高效。
3. 学习采血后血液样品的处理方法。
二、实验材料1. 实验动物：健康成年鸡2只2. 采血器材：注射器、注射针、止血带、酒精棉球、碘伏、试管、离心管、离心机等3. 感染预防用品：手套、口罩等4. 生理生化分析仪器三、实验方法1. 实验动物准备将实验鸡编号，观察其一般情况，确保其健康状态良好。
2. 采血部位选择根据实验目的，选择合适的采血部位。
本实验采用鸡翅静脉采血。
3. 采血步骤a. 将鸡固定在实验台上，充分暴露鸡翅。
b. 在鸡翅内侧，找到明显的静脉血管。
c. 用酒精棉球对鸡翅内侧进行消毒。
d. 戴上手套，用止血带绑扎鸡翅根部，使血液积聚在鸡翅静脉中。
e. 取出注射器，将针头插入鸡翅静脉，缓慢抽取所需血量。
f. 采血完毕后，立即用酒精棉球对注射针孔进行消毒，并松开止血带。
4. 血液样品处理a. 将采集到的血液样品分装到试管和离心管中。
b. 根据实验需要，对血液样品进行离心处理。
c. 将处理好的血液样品放入冰箱保存。
四、实验结果1. 成功采集到鸡的血液样品。
2. 采血过程中，鸡表现安静，未出现异常反应。
3. 血液样品处理过程顺利，未发生污染。
五、实验讨论1. 鸡采血部位的选择鸡的采血部位有多种，如鸡翅静脉、翅下静脉、颈静脉等。
本实验选择鸡翅静脉采血，因其操作简便、血液流量较大，且易于观察。
2. 采血过程中的注意事项a. 采血前应充分了解鸡的生理特征，选择合适的采血部位。
b. 采血过程中，动作要轻柔，避免造成鸡的疼痛和不适。
c. 采血后，要及时对采血部位进行消毒，防止感染。
3. 血液样品处理a. 血液样品的采集和处理要严格按照操作规程进行，确保样品质量。
b. 根据实验需要，对血液样品进行适当的处理，如离心、分离等。
六、实验结论1. 鸡采血方法操作简便，采血效果良好。
2. 本实验成功采集到鸡的血液样品，为后续实验提供了有力支持。
大鼠和小鼠的采血方法
大鼠和小鼠的采血方法1.麻醉方法：在采血前，先给大鼠或小鼠进行麻醉，以减少它们的疼痛感受。
常用的麻醉方法有以下几种：-静脉麻醉：将合适剂量的麻醉剂通过尾静脉或背静脉注射给大鼠或小鼠，使其进入麻醉状态。
-吸入麻醉：将麻醉气体或气溶胶通过麻醉箱或麻醉罩给大鼠或小鼠吸入，达到麻醉效果。
-局部麻醉：将麻醉剂涂抹在采血部位的皮肤上，使局部麻木，减少疼痛感。
2.采血部位：常用的大鼠采血部位有尾静脉、颈静脉、眼眶突静脉等，而小鼠采血部位则有尾静脉、颈静脉、眼眶突静脉、前肢静脉等。
3.采血工具和器材：-采血针：选择合适大小的采血针，不同大小的动物需要选择不同规格的针头。
-注射器：用于抽取和储存血液样本的容器。
常用的有离心管、毛细管等。
-注射器插管：将采集到的血液导入注射器中储存。
4.采血方法：-尾静脉采血：将大鼠或小鼠的尾巴用温水浸泡，使其尾部静脉扩张。
然后用酒精消毒尾巴，用手指轻轻压住尾部静脉靠近尾根的部位，使尾尖鼓胀，再用采血针针尖刺破尾尖的皮肤，顺着静脉方向将血吸入注射器中。
-颈静脉采血：将大鼠或小鼠定位于侧卧位，用酒精消毒颈部的皮肤。
手指轻轻压住颈侧的静脉，使其充血，然后用采血针针尖针插入触及到静脉，将血液吸入注射器中。
-眼眶突静脉采血：先给大鼠或小鼠进行眼眶突的局部麻醉，随后用消毒酒精将眼眶突部分消毒。
再用适当大小的针头插入眼眶突静脉，将血液抽取到注射器中。
5.采血后的处理：-停血：采血后需用无菌棉球或无菌纱布轻轻按住针刺处，让血液凝结停止流血。
-保存：将采集到的血液样本转入离心管中，用离心机离心，分离血浆和血细胞。
将血浆或血细胞储存在冷冻管中，冷冻保存。
以上就是大鼠和小鼠采血的最全方法。
在进行采血操作时，需要注意动物的麻醉和疼痛管理，操作要轻柔、快速、准确，以减少动物的痛苦和疼痛。
另外，为了确保采血的科学性和准确性，还需要遵守实验室的相关规范和伦理要求，确保实验与动物实验道德的合理性。
动物采血方法实验报告
一、实验目的1. 掌握动物采血的基本方法与技巧。
2. 了解不同动物采血方法的特点及适用范围。
3. 培养实验操作技能，提高实验成功率。
二、实验材料1. 实验动物：豚鼠、小鼠、兔2. 采血工具：注射器、止血带、剪刀、刀片、酒精棉球、碘酒棉球、无菌纱布、脱脂棉、止血钳、手术刀、手术台、酒精灯3. 试剂：20%柠檬酸钠溶液、抗凝剂、生理盐水三、实验方法1. 豚鼠采血（1）耳缘剪口采血：将豚鼠固定，消毒耳缘，用锐器割破耳缘，涂抹20%柠檬酸钠溶液，待血液自动流出，进入盛器。
（2）心脏采血：取血前探明心脏搏动最强部位，选心跳最显的部位作穿刺。
针头宜稍细长些，以免发生手术后穿刺孔出血。
（3）肌动脉采血：将动脉仰位固定在手术台上，剪去腹股沟区的毛，麻醉后，局部用碘酒消毒。
切开长约2～3cm的皮肤，使股动脉暴露及分离。
然后，用镊子提起股动脉，远端结扎，近端用止血钳夹住，在动脉中央剪一小孔，用无菌玻璃小导管或聚乙烯、聚四氟乙烯管插入，放开止血钳，血液即导管口流出。
（4）背中足静脉取血：助手固定动物，将其右或左右膝关节伸直提到术者面前。
术者将动物脚背面用酒精消毒，找出背中足静脉后，以左手的拇指和食指拉住豚鼠的趾端，右手拿的注射针刺入静脉。
拔针后立即出血，呈半球状隆起。
2. 小鼠采血（1）割（剪）尾采血：固定动物并露出鼠尾，剪去尾部毛，消毒，将尾部浸在45左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。
再将尾擦干，用锐器割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取。
3. 兔采血（1）耳静脉采血：将兔放入仅露出头部及两耳的固定盒中，选耳静脉清晰的耳朵，去除耳静脉部位的毛，局部消毒。
用手指轻轻摩擦兔耳，使静脉扩张。
用注射器在耳缘静脉末端刺破血管待血液流出，接取血液。
（2）耳中央动脉采血：在兔耳的中央有一条较粗、颜色较鲜红的中央动脉，一手固定兔耳，另一手持注射器，在中央动脉的末端，沿着动脉平行地向心方向刺入动脉，轻轻回抽取血。
实验动物采血完全指南
实验动物采血完全指南凡用血量较少的检验如红、白细胞计数、血红蛋白的测定，血液涂片以及酶活性微量分析法等，可刺破组织取毛细血管的血。
当需血量较多时可作静脉采血。
静脉采血时，若需反复多次，应自远离心脏端开始，以免发生栓塞而影响整条静脉。
例如，研究毒物对肺功能的影响、血液酸碱平衡、水盐代谢紊乱，需要比较动、动脉血氧分压、二氧化碳分压和血液pH值以及K+、Na+、CI-离子浓度，必须采取动脉血液。
采血时要注意：⑴采血场所有充足的光线；室温夏季最好保持在25-28℃，冬季，15-20℃为宜；⑵采血用具有采用部位一般需要进行消毒；⑶采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥；⑷若需抗凝全血，在注射器或试管内需预先加入抗凝剂.１．取少量血ａ．尾静脉大鼠、小鼠ｂ．耳静脉兔、狗、猫、猪、山羊、绵羊ｃ．眼底静脉丛兔、大鼠、小鼠ｃ．舌下静脉兔ｄ．腹壁静脉青蛙、蟾蜍ｅ．冠、脚蹼皮下静脉鸡、鸭、鹅２．取中量血ａ．后肢外侧皮下小隐静脉狗、猴、猫ｂ．前肢内侧皮下头静脉狗、猴、猫ｃ．耳中央动脉兔ｄ．颈静脉狗、猫、兔ｅ．心脏豚鼠、大鼠、小鼠ｆ．断头大鼠、小鼠ｇ．翼下静脉鸡、鸭、鸽、鹅ｈ．颈动脉鸡、鸭、鸽、鹅３．取大量血ａ．股动脉、颈动脉狗、猴、猫、兔ｂ．心脏狗、猴、猫、兔ｃ．颈静脉马、牛、山羊、绵羊ｄ．摘眼球大鼠、小鼠采动物品种最大安全采血量(ml) 最小致死采血量(ml)小鼠0.2 0.3大鼠 1 2豚鼠 5 10兔10 40狼狗100 500猎狗50 200猴15 601.割(剪)尾采血当所需血量很少时采用本法。
固定动物并露出鼠尾。
将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。
再将尾擦干，用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。
也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上。
每鼠一般可采血10余次以上。
小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。
动物心脏采血要领
动物心脏采血要领
动物心脏采血是一种常用的实验技术，用于获取动物体内
的血液样本。
以下是一些采集动物心脏血液样本的要点：
1. 动物选择：选择符合实验需求的动物进行心脏采血。
通常，小鼠和大鼠是最常用的实验动物。
2. 麻醉：在采血前，使用适当剂量的麻醉剂使动物处于无
痛苦状态。
确保麻醉剂的剂量和方式符合动物福利准则。
3. 准备工具：确保准备好所需的工具和材料，包括注射器、采血针、吸管或培养皿等。
4. 解剖：在麻醉后，通过剖腹或取样位置的皮肤切口暴露
心脏。
5. 定位：通过手术镊子将心脏固定，并找到适当的位置进
行血液采集。
通常，左心室或右心房是最常用的采集点。
6. 采血：使用注射器和采血针小心地穿刺心室或心房，在
注射器中吸取所需的血液样本。
注意，采血时要尽量避免
心脏损伤和其他组织的污染。
7. 存储：将采集的血液样本转移到适当的容器中。
根据实
验需要，血液样本可以被分装成小份，并冷藏或冷冻保存。
8. 清洁和恢复：在完成采血后，使用适当的方法清洁和缝
合切口。
接下来，提供适当的康复和监护，确保动物快速
恢复。
血液采集是一项技术性很强的任务，如果你不熟悉或没有
经验，最好请找有经验的实验技术人员进行操作，确保操
作安全和准确。
同时，保证动物的福利，并遵守当地的伦
理和法规要求。
常见实验动物的采血量及家兔的采血方法
常见实验动物的采血量及家兔的采血方法
常见实验动物的最大安全采血量与最小致死采血量见表。
一次采血过多或连续多次采血都可影响动物健康，造成贫血或导致死亡，须予注意。
家兔的采血方法
（1）耳缘静脉取血：如要采集少量血液，可采用此法。
将家兔放在固定盒内，拔去拟采血部位的毛，用电灯照射加热或用电吹风吹热或用二甲苯棉球擦耳壳，使耳部血管扩张。
用粗针头刺破耳缘静脉或以刀片在血管上切一小口，让血液自然流出即可。
取血后用棉球压迫止血。
亦可用针头插入耳线静脉取血，其操作步骤基本与耳缘静脉注射相似。
最好有一助手帮助压紧耳根部，这样采血时比较容易。
（2）兔耳中央动脉取血：在兔耳的中央有一条较粗、颜色较鲜红的中央动脉，用左手固定兔耳，右手持注射器，在中央动脉末端，沿着动脉向心方向平行刺入动脉，此法一次可取血10～15ml。
取血完毕后注意止血。
抽血时要注意：由于兔耳中央动脉易发生痉挛性收缩，因此抽血前，必须先让兔耳充分充血，当动脉扩张，未发生痉挛性收缩前立即抽血。
不要在近耳根处取血，因耳根部软组织厚，血管位置较深，易刺透血管造成皮下出血。
（3）心脏取血：兔心脏取血法和大、小鼠心脏取血法类似，且比较容易掌握。
将兔仰卧固定在手术台上，将心脏部位被毛剪去，用碘酒酒精消毒皮肤，选择心搏最明显处穿刺，针头刺入心脏后即有血液涌入注射器。
取得所需血量后，迅速将针头拔出，这样心肌上的穿孔易
于闭合。
经6～7天后，可以重复进行心脏采血。
此外，还可以从颈动静脉、股动静脉、眼底（一般不常采用）取血。
动物采血法实验报告
一、实验目的1. 掌握动物采血的基本原理和方法。
2. 熟悉常用动物采血技术，如心脏采血、耳缘静脉采血等。
3. 提高实验操作技能，为后续生物学实验奠定基础。
二、实验原理动物采血是生物学实验中常用的技术，主要目的是获取动物血液样本，用于各种生物学研究。
采血方法包括心脏采血、耳缘静脉采血、股动脉采血等。
本实验主要介绍心脏采血和耳缘静脉采血方法。
三、实验材料1. 实验动物：豚鼠、兔子、小鼠等。
2. 实验器材：剪刀、针头、注射器、酒精棉球、碘酒棉球、无菌试管、烧杯、镊子等。
3. 实验试剂：生理盐水、肝素、抗凝剂等。
四、实验步骤（一）心脏采血1. 将豚鼠放入实验台上，用酒精棉球消毒其颈部皮肤。
2. 用剪刀剪开豚鼠颈部皮肤，暴露心脏。
3. 用碘酒棉球消毒心脏表面。
4. 用左手固定豚鼠，右手持注射器，在心脏搏动最明显处，用7号或9号针头刺入心脏。
5. 慢慢抽取血液，约5ml，注入无菌试管中。
6. 用酒精棉球按压针孔处，防止出血。
7. 将血液放入烧杯中，加入适量生理盐水，混匀。
（二）耳缘静脉采血1. 将兔子固定在实验台上，用酒精棉球消毒其耳缘皮肤。
2. 用镊子轻轻提起兔子耳缘，暴露耳缘静脉。
3. 用碘酒棉球消毒耳缘静脉。
4. 用左手固定兔子耳缘，右手持注射器，在耳缘静脉处刺入。
5. 慢慢抽取血液，约5ml，注入无菌试管中。
6. 用酒精棉球按压针孔处，防止出血。
7. 将血液放入烧杯中，加入适量生理盐水，混匀。
五、实验结果通过实验，成功采集到豚鼠和兔子的血液样本，血液颜色正常，无凝块。
六、实验讨论1. 心脏采血和耳缘静脉采血是常用的动物采血方法，适用于不同实验需求。
2. 采血过程中，应注意消毒和止血，防止感染和出血。
3. 实验操作要熟练，避免损伤动物。
七、实验总结本次实验成功掌握了动物采血方法，为后续生物学实验奠定了基础。
在实验过程中，应注意以下几点：1. 实验操作要规范，防止感染和出血。
2. 实验操作要熟练，提高实验效率。
实验动物采血实验报告
一、实验目的1. 掌握实验动物采血的方法和技巧。
2. 熟悉实验动物采血设备的操作流程。
3. 了解采血过程中的注意事项及紧急处理方法。
二、实验原理实验动物采血是生物医学研究中常用的实验技术，通过采集动物的血液样本，可以检测血液中的各项指标，为疾病诊断、治疗和预防提供依据。
实验动物采血主要包括心脏采血、股动脉采血和尾静脉采血等方法。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：大鼠、小鼠等。
2. 采血设备：采血针、注射器、酒精棉球、止血带等。
3. 实验试剂：抗凝剂、生理盐水等。
四、实验方法1. 实验动物准备：将实验动物放入安静、舒适的环境中，使其适应实验环境。
2. 采血部位选择：根据实验需要，选择合适的采血部位。
本实验以尾静脉采血为例。
3. 采血操作：（1）用酒精棉球消毒实验动物尾根部，待酒精挥发后，用止血带扎紧实验动物尾巴。
（2）左手捏住实验动物尾巴，右手持采血针，垂直刺入尾静脉。
（3）拔出采血针，将血液吸入注射器中，注意防止气泡进入。
（4）采集完成后，迅速拔出采血针，用酒精棉球按压伤口，防止出血。
4. 血液处理：（1）将采集到的血液加入抗凝剂，混匀。
（2）将血液样本置于离心机中，以3000r/min离心10分钟。
（3）取上清液，放入冰浴中保存。
五、实验结果与分析1. 实验结果：成功采集到实验动物血液样本。
2. 结果分析：通过本次实验，掌握了实验动物采血的方法和技巧，熟悉了采血设备的操作流程。
在实验过程中，注意了采血过程中的注意事项，如消毒、止血等，确保了实验的顺利进行。
六、实验讨论1. 采血部位的选择：不同实验动物和实验目的选择不同的采血部位。
本实验采用尾静脉采血，操作简便，创伤小，适用于一般实验。
2. 采血技巧：采血时，动作要轻柔，避免对实验动物造成不必要的伤害。
同时，注意观察实验动物的反应，以便及时调整采血方法和力度。
3. 采血过程中的注意事项：（1）严格遵守无菌操作规程，防止感染。
（2）采血过程中，注意观察实验动物的反应，避免过度采血。
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实验动物采血指南采血方法的选择，决定于实验的目的所需血量以及动物种类。
凡用血量较少的检验如红、白细胞计数、血红蛋白的测定，血液涂片以及酶活性微量分析法等，可刺破组织取毛细血管的血。
当需血量较多时可作静脉采血。
静脉采血时，若需反复多次，应自远离心脏端开始，以免发生栓塞而影响整条静脉。
例如，研究毒物对肺功能的影响、血液酸碱平衡、水盐代谢紊乱，需要比较动、动脉血氧分压、二氧化碳分压和血液pH值以及K+、Na+、CI-离子浓度，必须采取动脉血液。
采血时要注意：⑴采血场所有充足的光线；室温夏季最好保持在25-28℃，冬季，15-20℃为宜；⑵采血用具有采用部位一般需要进行消毒；⑶采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥；⑷若需抗凝全血，在注射器或试管内需预先加入抗凝剂.1.割(剪)尾采血当所需血量很少时采用本法。
固定动物并露出鼠尾。
将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。
再将尾擦干，用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。
也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上。
每鼠一般可采血10余次以上。
小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。
2.鼠尾刺血法大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查)，可采用本法。
先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。
用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集10～50mm3。
如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。
3.眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套)，应防止动物窒息。
当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血。
右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈(3～4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径0.5-1.0mm)，使采血器与鼠面成45℃的夹角，由眼内角刺入，针头斜面先向眼球，刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。
刺入浓度，小鼠约2～3mm，大鼠约4～5mm。
当感到有阻力时即停止推进，同时，将针退出约0.1-0.5mm，边退边抽。
若穿刺适当血液能自然流入毛细管中，当得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，同时，将采血器拔出，以防止术后穿刺孔出血。
若技术熟练，用本法短期内可重复采血均无多大困难。
左右两眼轮换更好。
体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml；体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml，可适用于某些生物化学项目的检验。
4.断头取血采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤，并作动物头朝下倾的姿势。
右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2-4/5的颈部前剪断，让血自由滴入盛器。
小鼠可采用约0.8～1.2ml;大鼠约5-10ml。
5.心脏采血鼠类的心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故少用。
活体采血方法与豚鼠相同。
若做开胸一次死亡采血，先将动物作深麻醉，打开胸腔，暴露心脏，用针头刺入右心室，吸取血液。
小鼠约0.5-0.6ml；大鼠约0.8-1.2ml。
6.颈动静脉采血先将动物仰位固定，切开颈部皮肤，分离皮下结缔组织，使颈静脉充分暴露，可用注射器吸出血液。
在气管两侧分离出颈动脉，离心端结扎，向心端剪口将血滴入试管内。
7.腹主动脉采血最好先将动物麻醉，仰卧固定在手术架上，从腹正中线皮肤切开腹腔，使腹主动脉清楚暴露。
用注射器吸出血液，防止溶血。
或用无齿镊子剥离结缔组织，夹住动脉近心端，用尖头手术剪刀，剪断动脉，使血液喷入盛器。
8.股动(静)脉采血先由助手握住动物，采血者左手拉直动物下肢，使静脉充盈。
或者以搏动为指标，右手用注射器刺入血管。
体重15-20g 小鼠采血约0.2-0.8ml，大鼠约0.4-0.6ml。
(二)豚鼠采血法1.耳缘剪口采血将耳消毒后，用锐器(刀或刀片)割破耳缘，在切口边缘涂抹20%柠檬酸钠溶液，阻止血凝，则血可自切口自动流出，进入盛器。
操作时，使耳充血效果较好。
此法能采血0.5ml左右。
2.心脏采血取血前应探明心脏搏动最强部位，通常在胸骨左缘的正中，选心跳最显的部位作穿刺。
针头宜稍细长些，以免发生手术后穿刺孔出血，其操作手法详见兔心脏采血。
因豚鼠身体较小，一般可不必将动物固定在解剖台上，而可由助手握住前后肢进行采血即可。
成年豚鼠每周采血应不超过10ml为宜。
3.肌动脉采血将动脉仰位固定在手术台上，剪去腹股沟区的毛，麻醉后，局部用碘酒消毒。
切开长约2-3cm的皮肤，使股动脉暴露及分离。
然后，用镊子提起股动脉，远端结扎，近端用止血钳夹住，在动脉中央剪一小孔，用无菌玻璃小导管或聚乙烯、聚四氟乙烯管插入，放开止血钳，血液即导管口流出。
一次可采血10-20ml。
4.背中足静脉取血助手固定动物，将其右或左右膝关节伸直提到术者面前。
术者将动物脚背面用酒精消毒，找出背中足静脉后，以左手的拇指和食指拉住豚鼠的趾端，右手拿的注射针刺入静脉。
拔针后立即出血，呈半球状隆起。
采血后，用纱布或脱脂棉压迫止血。
反复采血时，两后肢交替使用。
(三)兔采血法1.耳静脉采血本法为最常用的取血法之一，常作多次反复取血用，因此，保护耳缘静脉，防止发生栓塞特别重要。
将兔放入仅露出头部及两耳的固定盒中，或由助手以手扶住。
选耳静脉清晰的耳朵，将耳静脉部位的毛拔去，用75%酒精局部消毒，待干。
用手指轻轻摩擦兔耳，使静脉扩张，用连有5(1/2)号针头的注射器在耳缘静脉末端刺破血管待血液漏出取血或将针头逆血流方向刺入耳缘静脉取血，取血完毕用棉球压迫止血，此种采血法一次最多可采血5-10ml。
2.耳中央动脉采血将兔置于兔固定筒内，在兔耳的中央有一条较粗、颜色较鲜红的中央动脉，用左手固定兔耳，右手取注射器，在中央动脉的末端，沿着动脉平行地向心方向刺入动脉，即可见动脉血进入针筒，取血完毕后注意止血。
此法一次抽血可达15ml。
但抽血时应注意，由于兔耳中央动脉容易发生痉挛性收缩，因此抽血前，必须先让兔耳充分充血，当动脉扩张，未发生痉挛性收缩之前立即进行抽血，如果等待时间过长，动脉经常会发生较长时间的痉挛性收缩。
取血用的针头一般用6号针头，不要太细。
针刺部位从中央动脉末端开始。
不要在近耳根部取血，因耳根部软组织厚，血管位置略深，易刺透血管造成皮下出血。
3.心脏取血将家兔仰卧固定，在第三肋间胸骨左缘3毫米处注射针垂直刺入心脏，血液随即进入针管。
注意事项有：⑴动作宜迅速，以缩短在心脏内的留针时间和防止血液凝固；⑵如针头已进入心脏但抽不出血时，应将针头稍微后退一点。
⑶在胸腔内针头不应左右摆动以防止伤及心，肺、一次可取血20-25ml。
4.后肢胫部皮下静脉取血将兔仰卧固定于兔固定板上，或由一人将兔固定好。
拔去胫部被毛，在胫部上端股部扎以橡皮管，则在胫部外侧浅表皮下，可清楚见到皮下静脉。
用左手两指固定好静脉，右手取带有5(1/2)号针头的注射器内皮下静脉平行方向刺入血管，抽一下针栓，如血进入注射器，表示针头已刺入血管，即可取血。
一次可取2～5ml。
取完后必须用棉球压迫取血部位止血，时间要略长些，因此处不易止血。
如止血不妥，可造成皮下血肿，影响连续多次取血。
5.股静脉、颈静脉取血先作股静脉和颈静脉暴露分离手术⑴股静脉取血注射器平行于血管，从股静脉下端向心方向刺入，徐徐抽动针栓即可取血。
抽血完毕后要注意止血。
股静脉较易止血，用于纱布轻压取血部位即可。
若连续多次取血，取血部位宜尽量选择靠离心端。
⑵外颈静脉取血注射器由近心端(距颈静脉分支2-3厘米处)向头侧端顺血管平等方向刺入，使注射针一直引深至颈静脉分支叉处，即可取血。
此处血管较粗，很容易取血，取血量也较多，一次可取10ml以上。
取血完毕，拔出针头，用干纱布轻轻压迫取血部位也易止血。
兔急性实验的静脉取血，用此法较方便。
(四)狗、猫采血法1.后肢外侧小隐静脉和前肢内侧下头静脉采血此法最常用，且方便。
后肢外侧小隐静脉在后肢胫部下1/3的外侧浅表的皮下，由前侧方向后行走。
抽血前，将狗固定在狗架上或使狗侧卧，由助手将狗固定好。
将抽血部位的毛剪去，碘酒一酒精消毒皮肤。
采血者左手拇指和食指握紧剪毛区上部，使下肢静脉充盈，右手用连有6号或7号针头的消毒器迅速穿刺入静脉，左手放松将针固定，以适当速度抽血(以无气泡为宜)。
或将胶皮带绑在狗股部，或由助手握紧股部，即可，若仅需少量血液，可以不用注射器抽取，只需用针头直接刺入静脉，待血从针孔自然滴出，放入盛器或作涂片。
采集前肢内侧皮下的头静脉血时，操作方法基本与上述相同。
一只狗一般采10-20ml血并不困难。
2.股动脉采血本法为采取狗动脉血最常用的方法。
操作也较简便。
稍加以训练的狗，在清醒状态下将狗卧位固定于狗解剖台上。
伸展后肢向外伸直，暴露腹肥肉沟三角动脉搏动的部位，剪去毛。
用碘酒消毒。
左手中指、食指探摸股动脉跳动部位，并固定好血管，右手取连有5(1/2)号针头的注射器，针头由动脉跳动处直接刺入血管，若刺入动脉一般可见鲜红血液流入注射器，有时还需微微转动一下针头或上下移动一下针头，方见鲜血流入。
有时，往往刺入静脉，必须重抽之。
待抽血完毕，迅速拔出针头，用干药棉压迫止血2～3分钟。
3.心脏采血本法最好在麻醉下进行，驯服的狗不麻醉也行。
将固定在手术台上，前肢向背侧方向固定，暴露胸部，将左侧第3-5肋间的被毛剪去，用碘酒-酒精消毒皮肤。
采血者用左手触摸左侧3-5肋间处，选择心跳最显处穿刺。
一般选择胸骨左缘外1cm第4肋间处。
取连有6(1/2)号针头的注射器，由上述部位进针，并向动物背侧方向垂直刺入心脏。
采血者可随针接触心跳的感觉，随时调整刺入方向和浓度，摆动的角度尽量小，避免损伤心肌过重，或造成胸腔大出血。
当针头正确刺入心脏时，血即可进入抽射器，可抽取多量血液。
4.耳缘静脉采血本法宜取少量血液作血常规或微量酶活力检查等。
有训练的狗不必绑嘴，剪去耳尖部短毛，即可见耳缘静脉，手法基本与兔相同。
5.颈静脉狗不需麻醉，经训练的狗不需固定，未经训练的狗应予固定。
取侧卧位，剪去颈部被毛约10×3cm2范围，用碘酒、酒精消毒皮肤。
将狗颈部拉直，头尽量后抑。
用左手拇指压住颈静脉入胸部位的皮肤。
使颈静脉怒张，右手取连有6(1/2)号针头的注射器。
针头沿血管平行方向向心端刺往前血管。
由于此静脉在皮下易滑动，针刺时除用左手固定好血管外，刺入要准确。
取血后注意压迫止血。
采用此法一次可取较多量的血。
猫的采血法基本与狗相同。
常采用前肢皮下头静脉、后肢的股静脉、耳缘静脉取血。
需大量血液时可从颈静脉取血。
方法见前述。
(五)猴采血法与人类的采血法相似，常用者有以下几种：1.毛细血管采血需血量少时，可在猴拇指或足跟等处采血。
采血方法与人的手指或耳垂处的采血法相同。