项目二十七 常用实验动物的接种和采血方法
(完整版)各动物采血方法
各种动物采血方法及注意事项1牛的静脉采血1.1牛颈外静脉采血颈外静脉位于颈部肩骨乳突肌与胸头肌间凹窝处的颈静脉沟内。
牛站立，助手保定好头部，使头部稍前伸上仰并稍偏向对侧，颈部稍有弯曲，颈静脉暴露出来，局部剪毛，消毒，术者稍弓腰蹲于颈静脉暴露的一侧，用左手拇指或食指与中指在颈静脉沟稍下方（近心端）压迫静脉管，使颈静脉充盈怒张，部分牛由于膘肥看不清，此时就要用左手食指和中指点击颈静脉沟，有跳动，再按压，用右手食指和中指探摸跳动的部位，有波动和弹性的管状物，颈为颈外静脉。
右手拇指、食指、中指夹住16号针头，对准颈外静脉，并使针头与皮肤接近垂直（75°角），用腕力迅速将针头扎进皮肤，穿入血管，血液会喷射出来，即可采血，停止采血后先松左手，后拔针头，用消毒棉球压迫采血部位1min。
1.2牛尾静脉采血牛自然站立保定，术者站于牛的正后方，左手抓住牛尾中段用力抬起，使之与地面平行，右手触摸尾椎前段腹侧凹陷沟（大约在尾后下方4-5cm处），消毒后持12号针头与尾椎纵轴成垂直方向，依靠腕力快进针0.5-1cm后血液即喷射出来。
2马的静脉采血马的颈静脉比较浅显，位于静脉沟内，术者用左手拇指或食指和中指横压颈下1/3与颈中1/3处的颈静脉沟，使脉管充盈怒张，右手持16号针头沿颈静脉在压迫点前方与皮肤成45°角用腕力迅速刺入皮肤血管内，感到空虚无阻力即见回血后，再沿脉管向前进针使针头靠近皮肤靠近皮肤以减小其间的角度，近似平行地将针头再伸入血管内1-2cm，血液流出，即可采血。
停止采血后，先松左手，后拔出针头，并用消毒棉球压迫采血点2min止血消毒。
3猪静脉采血3.1耳静脉采血用捕猪器将猪站立保定，耳静脉局部常规消毒处理，助手用手指捏压耳根部静脉管处或用胶带于耳根部结扎，使静脉充盈，怒张，也可用酒精棉球反复擦静脉血管使之充血，血管怒张，或用手指弹叩引起血管充盈。
术者用左手拇指和食指把持耳尖，将耳拉直托平，用中指、无名指和小指在耳下面向上托，使采血进针部位稍高，右手持一次性血样采集针沿静脉管使针头与皮肤呈30°角，向远心端刺入血管，有空虚感无阻力时即进入血管。
大鼠和小鼠的采血方法
大鼠和小鼠的采血方法1.麻醉方法：在采血前，先给大鼠或小鼠进行麻醉，以减少它们的疼痛感受。
常用的麻醉方法有以下几种：-静脉麻醉：将合适剂量的麻醉剂通过尾静脉或背静脉注射给大鼠或小鼠，使其进入麻醉状态。
-吸入麻醉：将麻醉气体或气溶胶通过麻醉箱或麻醉罩给大鼠或小鼠吸入，达到麻醉效果。
-局部麻醉：将麻醉剂涂抹在采血部位的皮肤上，使局部麻木，减少疼痛感。
2.采血部位：常用的大鼠采血部位有尾静脉、颈静脉、眼眶突静脉等，而小鼠采血部位则有尾静脉、颈静脉、眼眶突静脉、前肢静脉等。
3.采血工具和器材：-采血针：选择合适大小的采血针，不同大小的动物需要选择不同规格的针头。
-注射器：用于抽取和储存血液样本的容器。
常用的有离心管、毛细管等。
-注射器插管：将采集到的血液导入注射器中储存。
4.采血方法：-尾静脉采血：将大鼠或小鼠的尾巴用温水浸泡，使其尾部静脉扩张。
然后用酒精消毒尾巴，用手指轻轻压住尾部静脉靠近尾根的部位，使尾尖鼓胀，再用采血针针尖刺破尾尖的皮肤，顺着静脉方向将血吸入注射器中。
-颈静脉采血：将大鼠或小鼠定位于侧卧位，用酒精消毒颈部的皮肤。
手指轻轻压住颈侧的静脉，使其充血，然后用采血针针尖针插入触及到静脉，将血液吸入注射器中。
-眼眶突静脉采血：先给大鼠或小鼠进行眼眶突的局部麻醉，随后用消毒酒精将眼眶突部分消毒。
再用适当大小的针头插入眼眶突静脉，将血液抽取到注射器中。
5.采血后的处理：-停血：采血后需用无菌棉球或无菌纱布轻轻按住针刺处，让血液凝结停止流血。
-保存：将采集到的血液样本转入离心管中，用离心机离心，分离血浆和血细胞。
将血浆或血细胞储存在冷冻管中，冷冻保存。
以上就是大鼠和小鼠采血的最全方法。
在进行采血操作时，需要注意动物的麻醉和疼痛管理，操作要轻柔、快速、准确，以减少动物的痛苦和疼痛。
另外，为了确保采血的科学性和准确性，还需要遵守实验室的相关规范和伦理要求，确保实验与动物实验道德的合理性。
实验动物与动物实验方法教案--动物实验的常用实验技术动物血液的采集方法精选全文
精选全文完整版可编辑修改第三篇动物实验的常用实验技术第一章动物实验的基本操作第一节实验动物的编号大鼠和小鼠的编号一般都用不同颜料涂染皮毛的方法来标记，常用的涂染化学品如下①涂染黄色用3～5%苦味酸溶液;②涂红色用0.5%品红溶液等。
前者最常用。
在动物固定的不同部位涂上苦味酸斑点表示不同号码。
一般习惯在左前腿上为1，腰部为2，在左后腿上为3，在头部为4，在正中为5，在尾基部位6，在右前腿为7，在右侧要不为8，在右后退上为9，不涂染鼠为10。
如果试验时动物编号超过10，可在动物同一部位上再涂染另一种涂染剂。
标记方法如图。
第二节动物的捉持和固定一、小白鼠的捉持：捉拿时可先用右手抓住并提起鼠尾，置于实验台或鼠笼上，并稍向后拉；用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳后颈背部的皮肤，将鼠置于左手心中，拉直后肢，以无名指及小指按住鼠尾或小鼠的左后肢即可。
二、大白鼠的持：大白鼠的捉拿时，可戴上手套。
实验者可用右手捉住鼠尾，放在实验台或鼠笼上，并稍向后拉；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。
三、家兔的捉持：用一手抓住家兔颈背部皮肤，将兔提起，另一手托其臀部，使兔呈坐位姿势。
第三节常用动物的给药方法一、小鼠、大鼠常用的给药方法1、灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。
一般的给药量小鼠为0.1～0.3ml／10g，大鼠为1～2.0ml／100g。
2、皮下注射（sc）: 常在背部皮下注射。
一手固定动物，另一只手注射给药。
一般给药量小鼠为0.1～0.20ml ／10g，大鼠为1ml／100g。
3、腹腔注射（ip）: 左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45度角刺入腹腔，进针约3～5mm，一般给药量小鼠为0.1～0.3ml／10g，大鼠1～2.0ml／100g。
4、肌内注射（im）：多注射后肢股部肌肉。
实验动物给药和采血方法
实验动物给药和采血方法1.割(剪）尾采血当所需血量很少时采用本法。
固定动物并露出鼠尾。
将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。
再将尾擦干，用锐器（刀或剪刀）割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。
也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上。
每鼠一般可采血10余次以上。
小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。
2.鼠尾刺血法大鼠用血量不多时（仅做白细胞计数或血红蛋白检查），可采用本法。
先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。
用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集10～50mm3。
如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。
3.眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部（大鼠采血需带上纱手套），应防止动物窒息。
当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血。
右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈（3～4cm）硬质玻璃滴管（毛细管内径0.5-1.0mm），使采血器与鼠面成45℃的夹角，由眼内角刺入，针头斜面先向眼球，刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。
刺入浓度，小鼠约2～3mm，大鼠约4～5mm。
当感到有阻力时即停止推进，同时，将针退出约0.1-0.5mm，边退边抽。
若穿刺适当血液能自然流入毛细管中，当得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，同时，将采血器拔出，以防止术后穿刺孔出血。
若技术熟练，用本法短期内可重复采血均无多大困难。
左右两眼轮换更好。
体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml；体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml，可适用于某些生物化学项目的检验。
4.断头取血采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大（小）鼠的颈部皮肤，并作动物头朝下倾的姿势。
右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2-4/5的颈部前剪断，让血自由滴入盛器。
实验小鼠给药与采血方法
实验小鼠给药与采血方法1.实验小鼠给药方法：a.静脉注射：i.静脉注射是一种常用的给药方法，适用于需要迅速将药物输送到循环系统中的实验。
ii. 首先，选择小鼠尾静脉作为给药途径。
悬空小鼠尾部并握紧尾根，使用角度较小的针头（例如26G针头）直接注射药物。
iii. 注射前，可以先用温水或者温湿纱布预热小鼠的尾部，以增强血管的扩张和血流。
iv. 确认成功注射药物后，将小鼠放回饲养笼中，并观察其行为和健康状况。
b.口服给药：i.口服给药是一种常用的给药方法，适用于需要药物通过消化系统进行吸收的实验。
ii. 在给药前，可以在小鼠笼子的饮水中添加药物溶液，或将药物悬浮液灌注到小鼠胃部。
iii. 同时，在给药过程中，需要将小鼠固定住，可以使用实验动物颈环进行固定。
iv. 给药后，观察小鼠的饮食情况和健康状况，并适当调整药物剂量和给药方式。
2.实验小鼠采血方法：a.尾静脉采血：i.尾静脉采血是一种常用的、非常便捷的小鼠采血方法。
ii. 首先，选择小鼠尾部静脉作为采血部位。
悬空小鼠尾部并使用温湿纱布加热，以增加血管扩张和血流。
iii. 使用角度较小的针头，例如26G针头，刺入尾静脉，然后将血收集到适当的试管中。
iv. 在采血过程中，保持顺利的血流，可以使用温湿纱布加热尾部以保持血管扩张。
v.采集到所需血液样本后，用棉球或止血带对采血部位施加轻压，以避免出血和感染。
vi. 采血结束后，观察小鼠的健康状况，并给予适当的处理和护理。
b.眼窝静脉注射采血：i.眼窝静脉采血是一种比较特殊的小鼠采血方法，适用于需要大量血液样本的实验。
ii. 在采血前，可以使用温湿纱布加热小鼠眼部，以增加血管扩张和血流。
iii. 使用角度较小的针头，例如26G针头，插入眼窝静脉并拔回，将血液从针头收集到适当的试管中。
iv. 在采血过程中，保持稳定的手部和注射器位置，以避免对小鼠造成伤害。
v.采集到所需血液样本后，用棉球或止血带对采血部位施加轻压，并进行适当的处理和护理，以减少对小鼠的不适和伤害。
实验动物的接种,采血以及剖检的方法
实验动物的接种，采血以及剖检的方法一、实验目的学习实验动物的接种，采血以及剖检的方法。
二、实验材料一次性注射器、鸡、酒精棉，剪刀、镊子、酒精灯、火柴等三、实验步骤(一)实验动物接种法1．皮下接种：(1)家兔皮下接种：由助手把家兔伏卧或仰卧保定，于其背侧或腹侧皮下结缔组织疏松部分剪毛消毒，术者右手持注射器，以左手拇指、食指和中指捏起皮肤使成一个三角形皱褶，于其底部进针，感到针头可随意拨动即表示插入皮下。
当压入注射物时感到流利畅通也表示在皮下。
拔出注射针头时用消毒棉球按住针孔并稍加按摩。
(2)豚鼠皮下接种：保定和术式同家兔。
(3)小白鼠皮下注射：作小白鼠皮下注射接种无须助手帮助保定。
术者在做好接种准备后，以右手捏取鼠尾，此时鼠头会向前挣扎而可以紧牵其尾，然后用左手的拇指和食指捏住其两耳及其头颈部皮肤使其翻转，背部皮肤固定于左手中指、无名指及拇指基部之间，以小指压住其尾根，小自鼠即仰卧保定于左手上。
右手操作局部消毒，把持注射器，以针头稍微挑起皮肤插入皮下，注入时见有水泡微微鼓起即表示注入皮下。
拔出针头后，同家兔皮下注射时一样处理。
2．皮内接种：作家兔、豚鼠及小白鼠的皮内接种时，均需助手保定动物，其保定方法与皮下接种相同。
接种时术者以左手拇指及食指夹起皮肤，右手持注射器，针头要很细，针头插入拇指与食指之间的皮肤内，针头插入不宜过深，同时针头插入角度要小，即与夹起的皮肤平行，注射时感到有阻力且注射完毕后皮肤上有小硬疱即为注入皮内的表现。
皮内接种要慢．否则容易使皮肤胀裂或自针孔流出注射物而散播传染。
3．腹腔内接种：在家兔、豚鼠及小白鼠作腹腔接种，宜采取仰卧保定。
接种时其后躯应稍抬高使其内脏倾向前腔，接种部位在腹后侧面，针头先插入皮下，后进入腹腔，注射时应无阻力．注射后皮肤应无疱隆起。
其余术式同于皮下接种法。
4．静脉注射：(1)家兔的静脉注射：将家兔纳入保定器内或由助手保定兔体露出其头。
选一侧耳边缘静脉，助手以拇指及食指紧压耳根部，使静脉努张，术者剪去静脉管上皮肤的毛，消毒局部，若需对同一动物作多次接种时，应自接近耳尖处开始刺入接种，以后逐次接近耳根。
实验动物的接种与采血技术（论文资料）
三、实验材料
1. 家兔： 1只/组；
2. 鸡：
1只/组；
3. 小白鼠： 1只/人；
4. 豚鼠1只；
5. 常规接种工具：
1mL注射器（1支/人），
50mL注射器（1支/组），
小镊子、剪毛剪
6. 灭菌生理盐水，抗凝剂；
7. 酒精棉球、碘酊棉球。
四、实验内容
练习以下内容：
1. 家兔
① 皮内注射 ② 皮下注射 ③ 肌肉注射 ④ 耳静脉注射 ⑤ 心脏采血 ⑥ 颈静脉放血
实验四 实验动物的接种与采血技术
扬州大学兽医学院 成大荣
2009年5月4日星期一
一、目的要求
1. 学习并掌握实验动物的接种方法； 2. 学习并掌握实验动物的采血方法。
二、背景知识介绍
1. 什么是实验动物？
指经人工饲育，对其携带的微生物实行控制，遗传背景 明确或来源清楚，用于科学研究、教学、生产、检定以及 其他科学实验的动物。
紧贴皮肤表层刺入皮内;
• 注射后, 可见皮肤表面鼓起小皮丘。
③ 肌肉注射
• 选择肌肉发达、无大血管的部位(如臀部) ，垂直迅速 刺入肌肉，回抽针栓如无回血，即可进行注射。
④ 腹腔注射
• 用大、小白鼠做实验时，以左手抓住动物，为避免伤及 内脏，可使动物腹部向上并处于头低位，内脏移向上腹;
• 右手将注射针头于下腹部刺入皮下，再穿过腹肌，固定 针头，缓缓注入药液。
① 腹腔注射
2. 小白鼠 ② 摘取眼球采血
③ 脊椎脱臼
3. 鸡
① 颈部皮下注射 ② 胸部肌肉注射 ③ 翅静脉采血
五、注意
1. 几种动物不同给药途径的常用注射量（mL）
注射途径 小鼠 大鼠 豚鼠
兔
常用实验动物的采血方法简介
常用实验动物的采血方法一小鼠和大鼠的采血方法1、剪尾采血:需血量较少时常用此法。
先将动物固定，将鼠尾浸在50℃左右温水中浸泡几分钟或用酒精棉球或二甲苯涂擦鼠尾，使尾部血管充盈，剪去尾尖1～2mm(小鼠)或3～5mm(大鼠)，便血液顺血管壁自由流入试管或用血红蛋白吸管吸取。
采血结束时，伤口消毒并用棉球压迫止血。
此法每只鼠一般可采血 10次以上，小鼠每次可取血0.1mL左右，大鼠可取血0.3～0.5ml。
2、眶后静脉丛采血:操作者一手固定小鼠或大鼠，拇指和食指尽量将鼠头部皮肤捏紧，或轻轻压迫颈部两侧，使鼠眼球突出，眶后静脉丛充血，另一只手持毛细采血管，以45°从内眼角刺入，并向下旋转，感觉刺入静脉丛后，再向外边退边吸，当得到所需血量后，放松加于颈部的压力，并拔出采血器，以防穿刺孔出血。
若技术熟练，此方法在短斯内可重复采血，小鼠一次可采血0.2～0.3ml，大鼠可采血约0.5ml。
如只进行一次取血，可采用摘眼球法，右手取一眼科弯镊，在鼠右或左侧眼球根部将眼球摘去，并将鼠倒置；头向下，抽取血液。
3、鼠装进固定器，漏出尾巴，同1，使尾部血管充盈，作好尾部消毒，用1 ml针筒接好4号针头，穿刺尾静脉，抽取血液。
4、腋下采血：将麻醉后的小鼠仰卧固定，剪开腋下皮肤，钝性分离腋下的胸肌等组织，暴露腋下血管，剪断腋下静脉，用注射器或吸管吸血。
5、断头采血：用剪刀迅速剪掉动物头部，立即将动物头朝下，提起动物，血液可流入试管中。
6、心脏采血：切开动物胸膛，直接从见到的心脏内采血，也可剪破心脏直接用注射器或吸管吸血。
7、股动脉采血:大量取血时常用此法。
需手术分离股动脉，用注射器套上针头刺入血管取血或剪断股动脉用吸管吸取血样，小鼠的一次采血量可达 0.5ml，大鼠可达2.0ml，操作时防止喷血。
二豚鼠、家兔的采血方法1、家兔耳缘静脉采血穿刺采血法：是家兔最常用的采血方法。
具体方法同耳缘静脉注射给药。
此法一次可采血5～lOml，可多次重复使用。
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项目二十七常用实验动物的接种和采血方法
一、接种方法
(一) 皮下注射
皮下组织疏松的部位都可皮下注射。
一般小鼠在腹部两侧，豚鼠在腹部或大腿内侧，家兔取背部，大腿内侧或耳根部皮下注射。
注射部位消毒后，左手提起皮肤，右手持注射器将针头水平刺入皮下，针头摆动无阻力，说明已进入皮下，慢慢注入，注射部位随即隆起。
注射完毕，用棉球压住针刺处，再拔出针头。
小鼠注入量一般为0.2～0.5ml。
家兔或豚鼠注入量为0.5～1.0ml．
(二) 皮内注射
先将动物注射部位的毛剪去，消毒，然后左手绷紧皮肢，针头斜面向上，紧贴皮肤表层刺入，然后向上挑起再稍刺入，缓慢注射。
若注入皮内，注射部位马上有小泡隆起。
皮内注射量一般为0.1～0.2ml。
(三) 肌内注射
应选择肌肉发达、无大血管通过的部位。
一般多选臀部、大腿内侧或外侧。
针头直接刺入肌肉，回抽针栓如无回血即可注射。
家兔等大动物注射量不超过2ml。
(四) 腹腔注射
小白鼠腹腔注射时，用右手拉鼠尾，左手食指和拇指捏住脑背部皮肤，翻转鼠体，把鼠尾和一侧的后腿夹于小指和无名指之间，使动物处于头低位，使内脏移向上腹，右手持注射器在下腹部左侧或右侧刺入皮下，沿皮下朝头部方向进针0.5～1.0cm，再以45°角刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液，尿液或血液即可缓缓注入。
家兔等较大动物注射，应先固定，于腹部腹中线旁侧1cm处进针。
小鼠注射量一般为0.5～1.0ml，家兔或豚鼠为5ml。
(五) 静脉注射
1．家兔将家兔固定，用酒精棉球轻轻按摩耳翼，压迫耳根部静脉，使耳缘静脉扩张。
用左手拇指与中、食指抓住耳尖部，从耳尖部边缘静脉平行进针，试推进少量注射液，如果觉得没有阻力，局部也没有隆起，表示已进入静脉，将注射液缓缓注入。
若失败，再逐步向耳根部移位重新注射。
注射完毕，用棉球压住针眼处，拔出针头。
注射部位一般选用耳外缘静脉，易固定，表浅；耳内缘静脉深，不易固定，故不常用。
2．小鼠于尾部两侧静脉注射。
固定小鼠使尾巴露出，置45℃～50℃温水浸泡1～2min，使尾部静脉扩张。
取出尾巴，擦干消毒，在末端1/3或1/4处用左手捏住尾巴，右手持注射器，针头与静脉平行缓慢进针，试注入少许注射液，如无阻力，皮肤不发白，表示针头刺入静脉，否则应更换部位重扎。
注射时多选用4 1/2# 针头。
最大注射量为0.5ml。
二、采血方法
(一) 小鼠采血方法
1．断尾采血将小鼠固定，露出尾巴，用手轻揉或浸泡于45℃温水中数分钟或用酒精棉球涂擦，使尾血管充血。
将鼠尾擦干，用剪刀剪去尾尖1～2mm。
然后用手指从尾根部向尾尖捋，血即从断端流出。
采血结束后消毒止血。
此法采血每只小鼠可采十余次，每次可采血约0.1ml。
2．眼眶后静脉丛采血左手抓注鼠耳间头部皮肤，将头按在桌面或鼠笼上，轻压颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难，使眼球充分突出，眶后静脉丛充血。
右手持长为7～10cm 玻璃滴管(毛细管端内径1～1.5mm，长约1cm)或7# 针头的1ml 注射器，在内眼角与眼球之
间轻轻向眼底方向刺入，刺入深度约2～3mm，当感到有阻力时停止，同时边旋转采血管边退出约0.1～0.5mm，以切开静脉丛，利于取血。
稍加抽吸即可取出血液。
当得到所需血量后，即除去颈部压力，同时将采血器拔出。
可在数分钟后同一穿刺孔部位重复采血。
每次可采血0.2～0.3ml。
3．摘除眼球采血用左手将小鼠固定，压迫颈部，使眼球突出，将鼠倒置，用弯头小止血钳或镊子迅速摘除眼球(或挖取眼球)，并将眼球后包膜捅破，血液极快自眼眶流出或喷出，直至达到取血量。
如取血时眼部血液凝固，可再摘除对侧眼球，并规律性挤压胸腔，以便更多血液流出。
一般可取动物体重4%～5％的血液量。
此种方法为一次性取血，取血后动物多死亡。
(二) 豚鼠采血方法
1．心脏采血将豚鼠背位固定，胸腹部朝上，用左手触摸选择心脏跳动最明显处(一般在胸骨左侧4～6肋间)进针。
如果刺入心脏，血液随心脏搏动进入注射器，迅速抽取血液。
若抽不出血液，可把针慢慢进入或退出，直至血液抽出。
如采血失败，应拔出针再操作，不许在胸腔内将针头左右摆动，以防划破心、肺引起死亡。
每次采血量6～7ml，间隔2～3周后可再次采血。
2．耳缘切口采血将耳消毒后，用刀片割破耳缘，血液即可自切口处流出。
采血后用消毒纱布压迫止血5～15s。
每次采血量约0.5ml。
(三) 家兔采血方法
1．耳静脉采血剃去耳缘毛，用浸二甲苯的棉球擦试耳缘静脉使其扩张，然后涂以无菌凡士林以防血凝。
用刀片尖沿血流方向切开血管3～5mm，用无菌试管收集流出的血液。
用纱布压迫止血，并用酒精擦洗、再用冷水擦洗除去二甲苯。
5～10min内可放血30～50ml。
每3～4天可重新放血，在短期内至少可收集100ml血清。
2．耳中央动脉采血在兔耳中央有一条较粗、颜色较鲜红的中央动脉，用浸二甲苯的棉球擦试使血管扩张，然后用洒精棉球擦洗消毒，插入针头，将血液流入无菌离心管。
每次可收集30～50ml，可每周放血一次。
3．心脏采血采血前应禁食18～24 h 。
将家兔仰卧固定，剪去心前区毛，消毒，用左手触摸选择心跳动最明显处(约在由下向上数第3～4肋间、胸骨左侧外3mm处)进针，当进入心脏，可感到心脏搏动或针管中见回血。
否则稍拔出(针尖至胸壁或皮下)，改变角度再刺入。
心脏采血动作要谨慎，否则容易划破心脏使动物死亡。
每次可采血20～30ml，可每周采血一次。
4．颈动脉放血将动物仰卧位固定，使头部后仰，剪去前颈部毛，局部消毒，并使周围毛弄湿。
纵向切开前颈侧部皮肤，剥离皮下组织，露出肌层，用刀柄加以分离，即可见强烈搏动的颈动脉。
再细心把迷走神经与颈动脉分离，结扎颈动脉远心端，近心端用止血钳夹住。
在结扎部位近心端一侧用止血钳(或镊子)尖部夹住，留一空隙，并在此空隙部将颈动脉剪断。
然后在两止血钳之间远心端部位将血管剪一斜口(不要把血管壁全部剪断，否则不能固定血管)，伸入采血瓶中，松开近心端止血钳，血液便流入瓶中，直至血液放尽。
(四) 绵羊颈静脉采血方法
将羊按倒，捆缚住羊蹄，使颈部拉直，头后仰。
剪去颈部一侧羊毛，碘酒、酒精棉球消毒皮肤，用止血带扎住颈部近心端，使颈静脉怒张(注意止血带不可扎得太紧)。
左手按压静脉，右手持针头沿血管平行方向向心端刺入。
当进入血管后，就感到针头犹入空隙，稍抽即见血液流出，抽取所需血量。
采血完毕，去止血带，用酒精棉球压住针刺处，抽出针头，压迫止血。
一般一次采血量为50～100ml。
(五) 鸡采血方法
1．静脉采血将鸡固定，伸展翅膀，在翅膀内侧选一粗大静脉，小心拔去羽毛，用碘
酒和酒精棉球消毒，再用左手食指、拇指压迫静脉心脏端使该血管怒张，针头由翼根部向翅膀方向沿静脉平行刺入血管。
采血完毕，用碘酒或酒精棉球压迫针刺处止血。
一般可采血10～30ml。
2．心脏采血将鸡侧位固定，右侧在下，头向左侧固定。
找出从胸骨走向肩胛部的皮下大静脉，心脏约在该静脉分支下侧；或由肱骨头、股骨头、胸骨前端三点所形成三角形中心稍偏前方的部位。
用酒精棉球消毒后在选定部位垂直进针，如刺入心脏可感到心脏跳动，稍回抽针栓可见回血，否则应将针头稍拔出，再更换一个角度刺入，直至抽出血液。
每只鸡可取血30ml不死亡。