生理设计性实验
生理学期末设计性实验终稿

⽣理学期末设计性实验终稿研究不同因⼦对肠道平滑肌⽣理特性的影响实验⼀实验原理取离体兔肠段置于台⽒液中,⽤计算机采集系统扫描其收缩曲线,假如滴加不同的因⼦,观察他们对于离体肠段平滑肌收缩的影响。
通过这种观察,学习离体肠段平滑肌的实验⽅法,分析酸和碱环境下以及不同中药试剂下消化管的收缩作⽤。
⼆、试剂配制1000ml 台⽒液:NaCl 8.0g 、 KCl 0.2g 、10% MgCl 2 0.1g NaH 2PO 2 0.05g 、NaHCO 3 1.0g 、 CaCL 2 0.2g 、葡萄糖 1.0g 。
蒸馏⽔加⾄1000ml 。
配制Ph 分别为6.0,7.0,8.0的试剂,以盐酸和氢氧化钠为原料。
并且分别准备好10ml 的王⽼吉,菊花茶,凉茶王,藿⾹正⽓⽔。
三、材料与器材家兔两只计算机BL-310⽣物机能系统、HU-I 型⼒换能器、麦⽒浴⽫、恒温⽔浴锅、温度计、⼿术器械、注射器、缝针、⼤⼩烧杯、滴管、丝线。
四、实验步骤1.如右图装好实验装置,麦⽒浴槽外的⽔浴温度为37℃,浴槽内调温⾄37±0.5℃.2.制备离体兔肠段兔⽿缘静脉注射乌拉坦,致其昏迷后⽴即剖开腹腔,找到胃幽门与⼗⼆指肠交界处。
在⼗⼆指肠起始端扎⼀线,剪取⼗⼆指肠、空肠,放⼊冷台⽒液内。
先⽤20m1注射器冲洗肠内容物,冲洗⼲净后剪成若⼲约1.5cm长的⼩肠段(每⼀实验⼩组⼀段)。
在其两端结扎,⼀端做⼀短线环固定在通⽓的L管下⽅或浴⽫内,另⼀端扎线与张⼒传感器相连。
将肠段完全浸浴在调好温度的麦⽒浴槽中,并调整好台⽒液充⽓量(⼩⽓泡接连不断)。
游离及取出肠段时,动作要快,取兔肠及兔肠穿线时,尽可能不⽤⾦属及⼿指触及。
为保持离体肠段的活性,可先预冷充氧的营养液,游离肠段及穿线在预冷的营养液中进⾏。
3.开启计算机采集系统,接通与张⼒传感器相连的通道。
固定L管并调节扎线与张⼒传感器,使肠段运动⾃如⼜能牵动传感器(注意:扎线不可贴壁或过紧过松)。
病理生理设计性实验

缺氧实验(一)【目的要求】1.学习复制动物缺氧病理模型的方法,掌握不同缺氧类型主要的发病原因和机制。
2.观察不同类型缺氧时呼吸、皮肤粘膜颜色、活动以及氧分压的改变。
3.了解机体功能、代谢特点与缺氧对机体影响的关系。
【实验原理】不同的缺氧条件均可造成动物的缺氧状态,并表现出相应的机…【目的要求】1.学习复制动物缺氧病理模型的方法,掌握不同缺氧类型主要的发病原因和机制。
2.观察不同类型缺氧时呼吸、皮肤粘膜颜色、活动以及氧分压的改变。
3.了解机体功能、代谢特点与缺氧对机体影响的关系。
【实验原理】不同的缺氧条件均可造成动物的缺氧状态,并表现出相应的机能代谢改变。
但动物的不同年龄、不同机能状态,对缺氧的耐受能力也不尽相同。
【实验动物】1.体重相近的小白鼠6只。
2.新生幼鼠1只。
【药品与器材】钠石灰、玻璃珠、7%柠檬酸钠溶液、CO、2%亚硝酸钠、0.04%氰化物、蒸馏水、测氧仪、天平称、手术器械一套、试管、5ml注射器、青霉素小瓶、广口瓶、三角烧瓶。
【实验项目、步骤与观察指标】1.年龄因素对缺氧耐受性的影响(1)取新生幼鼠1只,放入青霉素小瓶内(瓶口塞以少量棉花以免成年鼠伤害),然后将其与成年鼠一起放入广口瓶内,观察动物一般状况。
(2)密闭瓶塞,记录时间,观察两鼠状况。
(3)记录两鼠死亡时间。
注意,当其中一只小鼠死亡后,不能揭开瓶盖;如另一鼠至各项实验结束时仍未死亡,实验也应中止。
2.低张性缺氧实验(1)用天平称重小鼠,取体重相近的2只小白鼠(体重相差<1g),分别投入钠石灰瓶(A)和玻璃珠瓶(B)内,在观察它们一般的活动状况后,同时密闭两只玻璃瓶,并开始计时。
观察过程中必须经常注意瓶子的密闭性。
观察要点:两鼠在瓶内的活动度、呼吸、皮肤粘膜的颜色等变化,每3min记录一次,在其中一只小鼠死亡时,记录死亡时间,并做下步骤操作。
(2)立即用5ml注射器同时地从连接两只瓶子的乳胶管部位分别抽取约2ml气体,在注意固定注射针与注射器连接部位的情况下拔出注射针,并立即将注射针插入软木塞使抽取的气体与外界空气隔绝。
浅谈动物生理学综合设计性实验的创新实践

浅谈动物生理学综合设计性实验的创新实践
动物生理学综合设计性实验是创新实践的重要方面
它要求学生综合运用经典理论、实验方法以及信息处理技术的基本知识,以及运用一定的逻辑分析和思维分析技巧,加强动物生理学研究技术方面的实践与实践的能力。
一般来说,综合设计的实验,应以探讨观察对象的某一方面作为实验对象,利用假设,从比较不同条件下的实验数据中把握实验设计、实验过程和结果分析之间的关系,以确保实验结果正确可靠。
实验过程中,学生需要使用完整的理论和知识,不断试探和思考,通过综合设计、假设、实验与实验,调查具体环节过程,最终得出结论。
除了要求学生具有较强的理论基础外,针对综合设计性实验的创新实践,还应注重激发学生的创新思维,培养他们在实践中发现
问题,解决问题的能力,以提高教学效果。
因此,在动物生理学的实验训练中,要注重注重对学生思想的引导和学习心理探索,提醒学生在实践中总结重要观察分析结果,加深学习体会,开拓创新。
另外,综合设计性实验的教学还应加强相关教学资源搭建,提供学生有关技术材料,为学生展示实验目的、仪器操作方法等,帮助学生理解实验的具体内容,同时丰富学习内容,提高学习效析。
总而言之,动物生理学综合设计性实验是创新实践的重要组成部分
教师和学生要注重探究式实践,从实践中发现问题,并在实践中充分发挥创新思维,探索新的知识,以提高教学效果。
植物生理学综合性和设计性实验教程课程设计

植物生理学综合性和设计性实验教程课程设计一、选题背景植物生理学是生物学中的一个重要分支,它研究的是植物的生命现象、生理机制和生长发育等方面的科学。
通过研究植物生理,可以更好地了解植物的生命现象,进而掌握植物的生长机理、调控和发展规律。
为了使学生更好地掌握植物生理学的理论和实践,本文将结合实验教学,设计出植物生理学综合性和设计性实验教程课程。
二、选课目的通过这门课程的学习,学生将全面了解植物生理学的基本理论和实践技术,即掌握植物生理学的基本知识,深化对植物的生命现象和它们之间的关系的理解,从而提高学生的实验能力和创造力。
三、课程设置本课程主要分为理论学习和实验两部分。
其中理论学习部分主要包括植物的组织和器官的生物学基础、植物营养物质的转运、植物的光合作用和呼吸作用等基本概念。
实验部分包括植物的根发育、光合作用、呼吸作用等生理学实验和设计性实验。
四、实验教学设计1. 植物的根发育实验设计实验目的通过观察、测量和比较植物的根系发育,了解植物根系的生长形态和生理机制。
实验原理植物的根系是植物生长过程中不可分割的一部分,主要参与吸收和转运水分和营养物质。
根系的生长发育受到多种因素的影响,如土壤条件、养分状况、根系建构等。
实验步骤(1)选取相同的植物种子,分别种植在不同的土壤质地和养分条件下;(2)在一定时间内观察并记录植物的生长情况,包括根长、根数、根系形态等;(3)通过比较不同土壤和养分条件下植物根系的生长情况,了解根系生长的影响因素。
2. 植物的光合作用实验设计实验目的通过测量和分析植物在不同光照条件下的光合作用速率,了解光合作用的基本原理和影响因素。
实验原理光合作用是植物生长过程中的重要生命现象,是植物体内通过光能转化为化学能的过程。
光合作用的速率受到光照强度、光质、温度等多种因素的影响。
实验步骤(1)选取相同的植物,分别置于光强不同的环境下;(2)测量在不同光强下的CO2的吸收量和O2的释放量;(3)计算不同光强条件下的光合作用速率。
生理科学创新性实验第一组

2.3大量静脉输入液体、利尿剂强化利 尿促进药物经肾脏排出,加大药物的排泄 量
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▪ 3.静脉应用纳洛酮 常用0.8—1.2mg/d静滴,兴奋呼吸中枢,减 少巴比妥类药物对呼吸中枢的抑制作用。 (本实验采用呼吸兴奋药加强呼吸解救)
▪ 4.对症支持治疗 包括维持血压、呼吸和体温,昏迷患者预防感
▪ 4、观察记录家兔在注射苯巴比妥之前呼气相, 吸气相,呼吸幅度和频率,血压等各项指标。
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▪ 5、给家兔第二次从耳缘静脉注射苯巴比妥 15mg/kg,观察并记录上述指标的变化,待 中毒症状明显后,然后立即从耳缘静脉注射 美解眠50mg,静脉注射后,每20min追加 25mg直至家兔呼吸曲线趋于正常停药,同 时从右侧颈外静脉滴注生理盐水以稀释血药
浓度同时增加尿量的排出以降低苯巴比妥的
浓度。若同时伴有血压下降等微循环障碍, 应从耳缘静脉注射0.01%去甲肾上腺素 0.1ml/kg。
▪ 6、按上述步骤操作后看上述指标是否恢复
正常。
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四、创新性
▪ 利用Medlab系统同时观察家兔呼吸指数与血压,直观 明了,利于观察相应变化
▪ 实验通过苯巴比妥麻醉,可以观察其麻醉效果
生理科学设计性实验——
家兔急性苯巴比妥中毒及其解救
组 别: 10级临床05班第1 组
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一、实验目的:
▪ 学习制备家兔急性苯巴比妥中毒动物模型 的方法,观察急性苯巴比妥中毒时动物的 一般表现,掌握急性苯巴比妥中毒的发病 原理及其抢救方法。同时了解掌握呼吸兴 奋药美解眠的药理作用,观察其对呼吸运 动的影响。
染等。
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动物生理设计实验报告

一、实验题目动物心肌细胞动作电位与兴奋传导的观察二、实验目的1. 观察动物心肌细胞动作电位的变化。
2. 分析心肌细胞兴奋传导的规律。
3. 掌握观察心肌细胞动作电位和兴奋传导的实验方法。
三、实验原理心肌细胞是心脏的基本功能单元,其兴奋和收缩是心脏搏动的基础。
心肌细胞动作电位是心肌细胞兴奋和收缩的前提,兴奋在心肌细胞之间的传导则是心脏协调搏动的基础。
本实验通过观察动物心肌细胞动作电位的变化和兴奋传导的规律,进一步了解心肌细胞的功能和心脏的生理机制。
四、实验材料1. 实验动物:家兔2. 实验仪器:显微镜、心肌细胞培养箱、心肌细胞培养液、电极、信号采集系统、计算机3. 实验试剂:胎牛血清、青霉素、链霉素、培养皿、吸管、手术刀、缝合针等五、实验方法1. 动物心肌细胞的培养:(1)取家兔心脏,用无菌手术刀切取心肌组织,放入含有胎牛血清的培养液中,用吸管吹打使其分散成单个细胞。
(2)将分散的细胞放入培养皿中,加入培养液,放入心肌细胞培养箱中培养。
(3)待细胞生长至一定密度后,进行实验。
2. 观察心肌细胞动作电位:(1)将培养好的心肌细胞涂在载玻片上,用显微镜观察。
(2)用电极刺激心肌细胞,观察动作电位的变化。
3. 观察心肌细胞兴奋传导:(1)将心肌细胞分为两组,一组为实验组,另一组为对照组。
(2)在实验组心肌细胞的一端施加刺激,观察兴奋传导的情况。
(3)对照组不施加刺激,观察心肌细胞的正常状态。
六、实验结果与分析1. 动物心肌细胞动作电位的变化:(1)实验组心肌细胞动作电位表现为快速上升和下降,峰电位明显。
(2)对照组心肌细胞动作电位表现为缓慢上升和下降,峰电位不明显。
2. 心肌细胞兴奋传导的规律:(1)实验组心肌细胞兴奋传导速度较快,且呈对称性。
(2)对照组心肌细胞兴奋传导速度较慢,且呈不对称性。
七、结论1. 动物心肌细胞动作电位的变化与兴奋传导的规律密切相关。
2. 心肌细胞动作电位的变化和兴奋传导的规律是心脏搏动的基础。
植物生理实验设计

植物生理实验设计植物生理实验是研究植物的基本生命过程和机能的实验,可通过模拟自然条件或人为干预来观察和测定植物对外界环境的响应和适应能力。
本文将介绍一种植物生理实验设计,旨在探究植物对光照强度的生理响应。
实验目的:探究不同光照强度对植物生长的影响,了解植物对不同光照条件的适应能力。
实验材料:- 大豆种子- 盆栽土壤- 清水- 不同光照强度的光源设备- 透明塑料袋- 盆或种植盒- 水量计实验步骤:1. 将大豆种子浸泡在清水中,静置一晚以提高其发芽率。
2. 准备盆栽土壤,确保土壤湿润但不过湿。
3. 在盆或种植盒中均匀撒上适量的土壤。
4. 将预处理后的大豆种子均匀撒在土壤表面,稍微覆盖一层土壤。
5. 将种子播种盆或种植盒置于光源设备下,设定不同的光照强度作为处理组。
同时设置一个和室内自然光照相似的光源作为空白组对照。
6. 使用透明塑料袋覆盖在盆或种植盒上,以创造温室效应并保持相对湿度。
7. 每天固定时间记录每组植物的生长状态,包括苗高、叶片数量、叶片颜色等。
8. 每隔一段时间(例如每周或每两周),为植物浇水,并记录浇水量。
9. 持续实验一定时间后,将数据进行整理和分析。
实验结果分析:通过实验观察和数据记录,可以得出以下结论:1. 不同光照强度对大豆的生长有显著影响。
高强度光照促进植物生长,使植株高度增加,叶片数量增多,叶片颜色较深。
低强度光照则使植物生长缓慢,植株矮小,叶片发黄。
2. 高强度光照条件下,植物对水分需求较大,需要加大浇水量以满足其生长需求;低强度光照条件下,植物的水分需求较低,浇水量相对减少。
实验意义和应用:通过该实验,可以更好地了解植物对光照强度的生理响应机制,对于优化大豆的种植条件、指导农业生产具有重要意义。
此外,植物生理实验设计可以用于研究其他植物生理特性,如温度、湿度等因素对植物生长的影响,为植物栽培、生态环境保护等方面提供科学依据。
结论:通过本实验设计,我们成功地探究了植物对光照强度的生理响应,并得出了相关结论。
小鼠生理设计性实验

小鼠生理设计性实验一、实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛,摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。
二、实验动物:昆明小鼠2只(1雌1雄)三、实验步骤:1、抓取和固定,标记2、去毛3、给药:消化道、腹腔往射、尾静脉注射4、取血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法5、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉6、处死:脊椎脱臼法7、解剖:雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明)雌性:双角子宫、卵巢肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺四、实验结果:1、抓取和固定标记:抓取:抓小鼠的尾根部固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指和无名指将尾巴固定在手掌面。
2、灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针,紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0.5ml3、注射给药:腹腔注射:从下腹部的两侧进针,进针时针与腹部成45°。
进针后稍微晃动针,如无粘滞感则可注射药物。
尾静脉注射:一人固定小鼠,另一人用左手中指和拇指将尾拉直,食指托住尾部在尾动脉位置进针注射0.5ml生理盐水。
注射完毕拔出针头,用无菌棉球压迫止血。
4、采血从眼角内侧0.5cm处进针眼球摘除法:左手抓取用固定小鼠,右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除,头朝下,眼眶内血迅速流出。
5、麻醉:0.5%氯胺酮腹腔麻醉:本小鼠重22g,按100mg/kg的药量给药,2分钟麻醉成功6、处死:脊椎脱臼法:按住头部,将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死7、解剖:雄性:寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺雌性:双角子宫、卵巢3.7.2肾上腺:米粒大小胰腺:位于胃下方,类似于脂肪组织,浑浊状3.7.4,胆囊:芝麻大小,浅绿色,半透明,甲状腺:紧贴环状软骨,另可解剖出胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏。
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生理设计性实验
不同浓度的钾离子对神经干动作电位传导速度的影响
【实验目的】
测定并观察不同浓度的钾离子对神经干动作电位传导速度的影响
【实验原理】
1.兴奋在神经干上的传导有一定的速度,且可以受到细胞外液中钾离子的影
响,而动作电位去极化的速度是影响动作电位传导速度的重要因素且受膜电位的影响。
2.细胞的静息电位约等于细胞外液钾离子的平衡电位,所以钾离子浓度的变化
可影响静息电位。
3.用不同浓度的钾离子处理神经干并测出其传导速度,使之与正常情况下作比
较可得出不同浓度钾离子对传导速度的影响。
【器材与药品】
药品:
NaCl, KCl(0.002mol/l 、0.001mol/l 、0.0015mol/l 、0.0025 mol/l、
0.003mol/l ),任氏液。
器材:
蛙类手术器械一套。
生物信号采集处理系统,神经标本屏蔽盒,滤纸片,丝线,培养皿
【实验对象】
蟾蜍
【方法步骤】
1.试剂配制
对照组:
S: 任氏液
实验组:
A: 0.001mol/l KCl + 任氏液
B: 0.0015mol/l KCl + 任氏液
C: 0.0025mol/l KCl + 任氏液
D: 0.003mol/l KCl + 任氏液
2.蟾蜍神经干标本制备及处理
㈠取10只体重大小相近的健康蟾蜍,用水冲洗干净备用。
a.破坏脑脊髓
b.去除躯干上部及内脏
c.剥皮、清洁器具、分离两腿
d. 坐骨神经腓神经标本的制备
㈡将20个坐骨神经腓神经标本随机平均分为a~e共5组,每组内随机从1~4编号。
将每组坐骨神经标本分别放入试剂S、A、B、C、D中。
3.仪器标本连接
1.将神经干屏蔽盒上的两对记录电极的引导线输入至计算机上的1通道和2
通道
2.打开电源→启动BL-420生物机能实验系统→弹出BL- 420菜单条→单击实
验项目→肌肉神经系统实验→神经干兴奋传导速度测定。
4.速度测定及数据处理
1. 测量S组中四条神经干的动作电位传导速度并求平均值,即为S组的原
始速度v0,并记录。
2.将S放回标准任氏液中,重复此方法依次测出A~D组的速度v1-4,记录
数据。
3.比较v0-4大小关系与其钾离子浓度高低之间的联系。
【预计结果】
1.实验数据表明标准任氏液中的S组前后速度基本不变,而降低钾离子浓度处
理后的A、B组速度加快,并且浓度越低速度越快。
2.高浓度钾离子任氏液处理后的C、D组速度减慢,且浓度越高速度越慢。
3.钾离子浓度高达一定值时则不再传播动作电位。
【结果分析】
(1) 神经干上神经纤维的静息电位接近K离子的平衡电位,细胞外液K离子浓
度升高可使细胞膜内外浓度差减小,K离子平衡电位减小,膜发生去极化。
实验说明在一定范围内低浓度的钾离子会增加神经干动作电位的传导速
度,而一定范围内高浓度的钾离子会降低神经干动作电位的传导速度,过
高浓度的钾离子则会使神经干丧失传播动作电位的能力。
(2)一般认为高浓度钾离子溶液的作用机制有俩方面:一方面,高渗透压导致神经脱水,神经纤维脱水后,直径变小,电阻变大,从而导致其传导动作电位的机能下降,甚至出现神经传导阻滞。
另一方面,由于胞外钾离子浓度大,增导致静息电位变小,使得静息电位到阈电位的电位差增大,从而达到阈电位的时间将增长,传导速度变慢;反之,胞外钾离子浓度减小,小静息电位到阈电位的电位差减少,从而达到阈电位的时间将减少,即速度加快
【注意事项】
1.实验蟾蜍坐骨神经腓神经干标本制作应足够长。
2.分离过程中避免污染神经干,保持神经干的兴奋性。
3.动作电位传导速度测量应尽量减少误差。
【参考文献】
1.朱大年主编。
生理学。
第7版。
北京:人民卫生出版社,2010:25,95-96。
2. 刘永年主编。
医学机能学实验教程。
北京大学医学出版社,2008:47-55
3. 金春华主编。
机能实验学。
北京:科学出版社,2006:123-124。