生理学设计性实验
动物生理学实验设计
动物生理学实验设计引言：动物生理学实验是研究动物生理功能和机制的重要手段。
通过设计合理的实验方案，可以揭示动物身体各个系统的运作规律，深入理解生命的奥秘。
本文将从呼吸、循环和消化三个方面，设计一系列动物生理学实验，以探究动物的生理过程。
一、呼吸系统实验1. 实验目的：观察不同动物在不同环境条件下的呼吸变化，并探究呼吸与环境的关系。
2. 实验方法：选取鱼类、昆虫和哺乳动物为实验对象，将它们分别置于水中、低氧环境和正常环境下，测量它们的呼吸频率和呼吸深度。
3. 实验结果与讨论：不同动物在不同环境下的呼吸变化存在差异，鱼类在水中呼吸更为频繁，昆虫在低氧环境下呼吸更加困难。
这些结果表明动物的呼吸与其生活环境密切相关。
二、循环系统实验1. 实验目的：研究动物的心脏功能和血液循环过程，并探究身体活动对循环系统的影响。
2. 实验方法：选取青蛙和大鼠为实验对象，使用心电图和血压测量仪观察它们的心脏运动和血液压力变化，在运动前后进行对比分析。
3. 实验结果与讨论：实验结果显示，运动会导致心率和血压的升高，心脏的收缩力增强。
这说明运动对循环系统有促进作用，有利于保持心血管系统的健康。
三、消化系统实验1. 实验目的：研究动物的消化过程和消化酶的活性，探究食物对消化系统的影响。
2. 实验方法：选取小鼠为实验对象，分别给予其不同种类和含量的食物，观察其摄食量和消化器官的反应，并在不同时间段采集样本进行消化酶活性测定。
3. 实验结果与讨论：实验结果显示，不同食物对小鼠的摄食量和消化酶活性有不同的影响。
高蛋白饮食可以促进消化酶的分泌，高脂饮食会导致摄食量增加。
这些结果揭示了食物对消化系统的重要影响。
结论：通过以上实验设计，我们可以更深入地了解动物的呼吸、循环和消化等生理过程。
这些实验不仅可以为人类生理学研究提供参考，还有助于揭示动物适应环境的生存机制。
动物生理学实验的设计和探究将为人类提供更多关于生命奥秘的启示，推动科学的进步。
在生理学设计性实验中培养学生的科研思维和科研能力
【 关键词 】 生理 学； 设计性 实验 ； 科研 思维 ； 科研 能力
Ｔｈ ｒ ｉ ｉ ｇ ｏ ｈ ｔ ｄ ｎ ｓ ｃｅ ｔ ｃ ｍｉ ｄ ａ ｄ ｓ ｉｎ ｉ ｃ ｒ ｓ ａ ｃ ｂ ｌ ｙ ｉ ｈ ｅ ｉ ｎ ｂ ｅ ｅ ｐ ｒｍｅ ｔ ｏ ｈ ｓｏｏ ｙ ＨＵ ｅ ｔ ａ ｎ ｎ ｆ ｔ ｅ ｓｕ ｅ ｔ ’ｓ ｉ ｎ ｉ ｎ ｎ ｃｅ ｔ ｅ ｅ ｒ ｈ ａ ｉ ｔ ｎ ｔ ｅ ｄ ｓｇ ａ ｌ ｘ ｅ ｉ ｎ ｆ ｐ ｙ ｉ ｌ ｇ ＡＮＧ ｉ ｆ ｉ ｆ ｉ
Ｂ ｉ ３ ０ ０， ｈ ｎ ａ ｓ ５ ３ ０ Ｃ ｉａ ｅ
【 ｂｔ ｃ】 Ｔ ｐ ｖｄｒ ｅｒ ｕｌ ｅｉ ｌｔ ｅｔ ｗ ａ ｐ ｃｃ ｈｓｌ ｙ ｅ ｇｉ ｐｒ ｅｔｉ ｍ ｎ ｅ ｔ ｅｔ Ａ ｓ ａｔ ｒ ｏｍ ｒ ｅ ｓａ ｈｑａｔ ｉ ｍ ｄ ａ ｓ ｄｎ ，ｅ ｓ ｒ ｔｅ ｐｙ ｏ ｇ ｄｓ ｎ ｇ ｘｅ ｍ ｎ ｔｎａ ｏｇｔ ｕ ｎ ｉ ｏ ｅ ｃ ｉ ｎ ｙ ｃ ｕ ｓ ｈ ａｉｄ ｉｏ ｉ ｎ ｅ ｉ ａｏ ｈ ｓｄ ｓ
查找文献的手段 ， 是获取原 始文献 的必要 ， 这样 会使 学生 大开 眼 界， 启发他们强烈 的求知识欲望和掌握获取知识 的最 新手段 。在
检索一个课题之前 ， 指导教 师要 引导学 生如何 分析课 题 ， 弄清 楚
本课题所涉及 的检索 范围 ， 从分类途径检索该课题应 属于哪一类 目、 类号 ； 从主题途径检索如何确定 主题 词 ； 如何索取 原文 以及 检 索过程 中出现的其他 问题等 ， 教师都要给予指导 。通过进行 设 计性实验后 ， 生都学会 了如何进行 全 面的文献 检索 ， 高 了学 学 提 生利用检索工具查阅 医学文献 的方 法和技 巧 ， 掌握文 献的 检索 、 整理 、 分析和综 合 利用 的能 力 。可 以 为学生 提供 了一个 接 触科 研、 发展科研思维 的平 台。为以后 工作 中独立进行科研 活动奠定
生理学设计性实验方案及实验教学改革设想
维普资讯
２ ０ 第 ４期 ０６年
大 同 医学专 科 学校 学报
５ ９
１７ 评价 ： ． 实验方案实施结束后 ， 以实验 小组为单 位讨论方案的实施情况 ， 总结经验教训和未完成 的 部分内容及出现的问题 ， 可简单分析问题 的原因， 尽 可能地列 出解决办法及今后努力 的方 向。教师可在 综合各组实施情况的基础上 ， 肯定成绩 ， 出不足。 找 指出今后应注意的事项 。
学生 的积极 性 、 主动 性 、 创造性 。因此要 想培养 学 生
容包括 ： ①题 目： 要求简明、 准确 ， 基本符合有关实验 内容和要求 ； ②引言 ： 即立项选题依 据， 要简单说 明
实验 目的、 内容 、 方法 、 范围及拟解决的问题等 ； ③材 料： 说明所需仪器设备 、 药品试剂 、 实验动物等物 品 的名称 、 数量、 规格等 ； ④方法与步骤 ： 重点说 明操作 要点、 观察 与记 录方式， 包括指标 、 位、 部 强度 、 反应 等 。还要说 明每一步骤的时问要求 、 大致结果等 ； ⑤ 予计总体结果 ： 要说明操作 中可能出现的问题 、 解决
理学 、 生物化学等原理相通、 内容相融、 方法相似 、 步 骤相近。根据我 国现代化建设对人才 的需求 ， 生理
学实验 教学 必须 注 重 激 发 学生 的学 习兴 趣 ， 养 学 培
生的创新能力 ， 以提高学生 的综合素质。 生理学传统 的实验教学大多 内容单一 ， 方法简 便， 操作容易， 很少注重激发学生 的学习兴趣， 调动
１８ 方 法 ： ． 采用 教 师 讲 授 与 指 导 、 生 集 中讨 论 和 学
３４ 教 师 要 处 处 起 主 导 作 用 ， 手 让 学 生 自主 实 ． 放
生理学设计性实验
不同pH值对牛蛙离体心脏收缩活动的影响2008231144 赖泽红生科一班摘要：本实验主要是采用斯氏蛙心插管法，在保持灌流液高度恒定的情况下，分别以不同pH值的溶液对牛蛙离体心脏进行灌流，经张力换能器、RM6240D型生物信号采集处理系统与处理系统记录心肌的活动过程，探讨不同pH对离体心脏活动的影响，以揭示酸碱度与心脏收缩活动的关系。
关键词：pH值；离体心脏；收缩活动生理状态下，血液pH值保持在7.35—7.45，这是保证细胞惊醒正常代谢和机能活动的基本条件。
在生命活动的过程中，体内不断生成酸性或碱性产物，机体通过多方面的调解活动，使血液pH值保持在正常范围内。
然而，一旦机体酸碱调节失衡，会导致体内酸中毒或碱中毒，对机体造成影响。
心脏直接与血液接触，心肌细胞的收缩活动容易受血液pH值的影响。
本实验通过用不同PH值的灌流液灌流牛蛙离体心脏，观察其对心脏某些功能的影响，以揭示酸碱度与心脏收缩活动的关系，用离体牛蛙心脏，排除了在体时的神经体液干扰，故实验结果更为可靠。
一、实验材料：1、实验仪器：RM6240D型生物信号采集处理系统、张力换能器、pH酸度计。
2、常用器械：蛙板或蜡盘，蛙心夹、蛙心套管，滴管，培养皿或小烧杯，玻璃板、容量瓶，移液管、量筒、污物缸，纱布，棉线，常用手术器械。
3、药品：任氏液， HCL溶液，NaOH溶液。
4、实验动物：牛蛙2-4只（雌雄不限）。
二、实验步骤与方法1、药品配制（1）任氏液配制母液及容量成分 NaCl、 KCl 、CaCl2 、NaH2PO4 、NaHCO3 、葡萄糖、蒸馏水，注: 表内各成分除葡萄糖以 g 为单位外，均以 ml 为单位. 任氏液的配制方法：一般先将各成分分别配制成一定浓度的母液，而后按所要的容量混合。
需要注意的是：CaCl2 应在其他母液混合并加入蒸馏水后，再边搅拌边加入，以防钙盐生成。
另外，葡萄糖应在用前临时加入，否则不宜久置。
两栖类的为PH6.5-7.0 （2）不同PH浓度的任氏液配制。
动物生理学实验设计
动物生理学实验设计
一、实验题目：白鼠对训练后对无声刺激条件反射信号的反应实验
三、实验背景知识：白鼠属于哺乳类动物，头部有两只小眼睛，具有明显的情绪表现，嗅觉、听觉、触觉和视觉等感官反应较为敏感，可表现出良好的条件反射能力。
五、实验仪器：无声环境室、PC机、鼠实验箱及训练键等。
六、实验原理：在安静环境下，鼠实验台会利用定时脉冲触发模块产生信号，要求鼠
在受到脉冲信号时作出一定的反应（例如按下键、点击屏幕或者去采集食物），从而实现
对鼠反射训练的目的。
七、实验步骤：
1．放置实验动物：把一只白鼠放入无声环境室中，并反复观察它的行为，如吃、坐、站等；
2．对实验动物进行虚拟训练：用PC机控制实验箱中的定时脉冲触发模块产生训练
信号，给实验动物展示相应的训练任务，让实验动物在常规时间间隔内完成灯光按键等训
练动作；
3．检测实验动物的反射反应：检测实验动物在无声环境中是否存在条件反射，让
它在不同的时间间隔下，面对不同类型的刺激信号，对训练时的任务作出反应；
4．进行反应数据收集：对实验动物的反射反应做出回应，定期记录反应时间，并
计算出反应时间与实验条件的关系；
5．分析和评价：根据实验结果，得出结论。
八、预防措施：
1．检查实验仪器和实验动物：检查实验仪器是否正确连接，实验动物是否放置正常；
2．严格观察训练过程：在训练过程中注意实验动物的反射反应，并及时给予调整
和修改；
3．定期更换实验动物：定期更换实验动物，以防止实验动物训练过程中出现过度
疲劳等问题。
九、实验结论：
经过上述实验，证明了白鼠在无声环境条件下，可以完成有关训练任务，可以对刺激
信号做出反应，具有良好的条件反射能力。
医学生理学实验教学设计与评价
针对学生在课后作业中遇到的问题和困难，教师应提供辅 导答疑服务，帮助学生解决问题并提升学习效果。
实验报告与讨论
要求学生提交完整的实验报告，包括实验目的、原理、步 骤、结果分析和结论等。组织学生进行课堂讨论和交流， 分享实验经验和心得体会。
04
实验教学效果评价
学生成绩评定
实验报告
评价学生的实验报告，包括实验目的、步骤、结果和 讨论等部分的完整性和准确性。
01
掌握医学生理学的基本概念和原理，理解相关疾病的生理机制
。
能力目标
02
培养学生独立操作实验、观察实验现象、分析实验数据的能力
，以及运用所学知识解决实际问题的能力。
情感目标
03
培养学生对医学事业的热爱和责任感，形成良好的医德医风。
教学内容选择
基础性实验
如血液凝固、心电图描记等基础生理学实验，帮助学生理解正常 生理功能。
实验教学可以培养医学生的实践能力和创新能力，通过实 验设计、操作、数据分析和解释等环节，提高医学生的实 验技能和解决问题的能力。
促进学科交叉融合
实验教学可以促进医学生理学与其他学科的交叉融合，通 过与相关学科的实验教学相结合，培养医学生的综合素质 和跨学科思维能力。
02
实验教学设计
教学目标制定
知识目标
结果性评价
通过实验报告、口头报告等形式 展示实验结果和数据分析，评价 学生对知识的掌握程度和应用能 力。
综合性评价
综合考虑过程性评价和结果性评 价的结果，以及学生的出勤率、 学习态度等因素，对学生进行全 面客观的评价。
03
实验教学实施
课前准备
制定实验教学计划
根据教学目标和课程要求，制定详细的实验教学计划，包括实验内 容、时间安排、所需设备和材料等。
对生理学设计性实验的讨论
关键 词 ： 生理学； 生理实验； 设计性实验； 素质； 能力
中图分类号 ：６２ 文献标识 码 ： 文章编 号 ：６４ ８３（ １）１ １ — Ｇ４ Ａ １ ． ７． ０００． ０ ０ ７３ ２ ０ ８３
生理学 是高等 院校生 物 医学 教育 的主干 课程之
一
，
是 密切联 系基 础 生 物学 、 医学 的重 要 桥 梁学 科 ．
沟通能 ￣ Ｉ ． ］ ３ ｊｉ
留在培养学生 的实验操作技能和验证部分课堂讲授
理 论层 面 ， 利于学 生综合 能力 的培养 ， 不 也不 能激发
收 稿 日期 ：００Ｏ．５ ２ １．１１
第一作者简介： 寇正酒（９８）男 ， １５ ．， 吉林省四平市人 ， 现为吉林 师范大学生命科学学 院副教授 ， 博士生研究生 ． 研究方向 ： 神经生理学
２ｌ Ｏ ０年 ２月
吉林 师范 大学学报 （ 自然科 学版 ）
Ｊｕｎｌ ｆ ｉｎＮ ｒ ａ Ｕ ｉ ｒ ｔ Ｎ ｔｒ ｃ ｎｅＥ ｉｏ ） ｏｒａ ｏ Ｊ ｉ ｏｍ ｌ ｎｖ ｓｙ（ ａ ａ Ｓｉ ｃ ｄｔｎ ｌ ｅｉ ｕｌ ｅ ｉ
№ 。 １ Ｆ ｂ． ０１ ｅ ２ ０
第１ 期
存在 问题及 增加综合性和自主设计性实验 ， 提高实验课的整体 ２ 生理学设计性 实验课 的特 点、
教学水平 ， 加强课程的实践性 ， 培养学生的创新意识 注意事项 和创新 能力 Ｉ ． 实情况下 ， ２现 ］ 提高 学生 的综合 素质进 传统 的 生理 学 实 验教 学 主 要 采 用单 项 实 验 为 而提高 就业率正 成 为 教 育工 作 者关 注 的 焦点 ． 调 据 主 的小 实验 教 学 法 ， 每次 实 验 （ 时 ） 求 学 生 即 ３学 要 查表 明 ， 学生 就业 时四种 能力最受 关注 ： 决基 本问 解 测定一 项生理 指标 或 分 析 一种 实 验 现象 ， 完 成一 再 题 的能 力 、 折承 受 力 、 新 意 识 和组 织 策划 、 调 挫 创 协 篇模 式化 的实 验报 告 ． 种 传 统 的教 学 方法 只 能停 这
蛙生理设计实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 观察和了解蛙的生理现象。
2. 掌握蛙的生理实验基本操作方法。
3. 学习使用生理学实验仪器，提高实验技能。
4. 分析蛙的生理机制，为后续生理学学习打下基础。
二、实验原理蛙是一种两栖动物，具有丰富的生理现象，如呼吸、循环、神经和消化等。
本实验通过观察蛙的生理现象，了解蛙的生理机制，掌握生理实验的基本操作方法。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍、生理盐水、剪刀、镊子、解剖剪、显微镜、滴管、生理盐水瓶等。
2. 实验仪器：解剖台、显微镜、生理信号采集系统、生理信号处理软件等。
四、实验步骤1. 蛙的解剖：将蟾蜍置于解剖台上，用解剖剪剪开蟾蜍的皮肤，暴露出内脏器官。
2. 呼吸观察：观察蟾蜍的呼吸运动，记录呼吸频率和深度。
3. 循环观察：观察蟾蜍的心脏搏动，记录心跳频率和强度。
4. 神经观察：观察蟾蜍的神经系统反应，如刺激蟾蜍的皮肤，观察蟾蜍的反应时间。
5. 消化观察：观察蟾蜍的消化系统运动，如给蟾蜍喂食，观察蟾蜍的吞咽和消化过程。
五、实验结果与分析1. 呼吸观察：蟾蜍的呼吸运动表现为腹式呼吸，呼吸频率约为30次/分钟，深度适中。
2. 循环观察：蟾蜍的心脏搏动明显，心跳频率约为100次/分钟，心跳强度适中。
3. 神经观察：刺激蟾蜍的皮肤，蟾蜍的反应时间为0.5秒，表明神经系统反应迅速。
4. 消化观察：给蟾蜍喂食后，蟾蜍的吞咽和消化过程明显，食物从口腔进入食道，再进入胃和肠道。
六、实验讨论1. 呼吸现象：蟾蜍的呼吸运动是通过肺进行气体交换，呼吸频率和深度适中，表明蟾蜍的呼吸功能正常。
2. 循环现象：蟾蜍的心脏搏动有力，心跳频率和强度适中，表明蟾蜍的循环系统功能正常。
3. 神经现象：蟾蜍的神经系统反应迅速，表明神经系统功能正常，对外界刺激有良好的适应性。
4. 消化现象：蟾蜍的消化系统运动明显，表明消化功能正常，能将食物消化吸收。
七、实验结论通过本次实验，我们成功观察了蛙的呼吸、循环、神经和消化等生理现象，了解了蛙的生理机制。
生理学实验课程设计
生理学实验课程设计1. 引言生理学是一门研究生物体功能活动规律的学科，是医学、生物学等学科的基础学科之一。
生理学实验课程是生理学教学中非常重要的一部分，通过实验教学可以深化学生对生理学理论的认识，增强学生的实践能力和科学研究意识。
本文将介绍一种生理学实验课程的设计方案。
2. 实验目的本实验旨在通过观察和比较不同年龄段、不同性别和不同体质的人对运动耐力测试的表现，探讨身体状态对运动能力的影响。
3. 实验材料和方法3.1 实验材料•健康志愿者20名，其中男性10名，女性10名•一台定速跑步机•心率监测仪•血压计•实验记录表3.2 实验设计将20名志愿者分为两组，分别进行不同强度的运动耐力测试。
其中一组进行低强度跑步测试，跑步过程中速度为每小时6公里，持续时间为30分钟。
另一组进行高强度跑步测试，跑步过程中速度为每小时10公里，持续时间为10分钟。
实验期间记录每个志愿者的心率和血压情况。
3.3 实验步骤1.对参加实验的志愿者进行身体检查，保证其身体健康，符合实验要求。
2.对参加实验的志愿者按照性别、年龄和身体状况进行随机分组。
3.一组进行低强度跑步测试，另一组进行高强度跑步测试。
4.在运动过程中实时监测每个志愿者的心率和血压变化情况。
5.记录每个志愿者运动前后的数据变化。
6.分析数据，探讨身体状态对运动能力的影响。
4. 实验结果和分析根据实验数据统计结果，得出结论：1.不同年龄段的人对于低强度的运动能够有较好的耐力表现，并且运动前后心率和血压变化相比较小；2.不同性别的人对于运动能力表现差异较大，男性较女性耐力表现更好，在同样的运动强度下，心率和血压的变化程度也远远小于女性；3.高强度运动对于身体状态较好的人来说较为容易实现，对于身体状态欠佳的人则需要适当的篇幅，通过逐渐增加运动强度的方式来提高耐力。
5. 结论通过本次实验，我们可以发现不同身体状态对于运动能力的表现具有较大的影响，因此我们需要适当地调整自己的身体状态，通过适量的运动和锻炼来提高自己的身体素质，将有助于我们更好地适应日常生活和工作状态。
人体及动物生理学实验
《人体及动物生理学实验》设计性（创新性）实验实验一血型鉴定实验设计[设计要求]已知甲某的血型为A型（或B型），现在又无标准血清,要求设计一实验来判断乙某的血型？[实验目的][实验原理][实验对象][实验药品][仪器与器材][实验方法与步骤]：[注意事项][思考题]（可以引伸思考的问题）实验二影响心输出量的因素[设计要求]心输出量是衡量心功能的重要指标。
心输出量是指一侧心室每分钟射出的血量，等于每搏输出量与心率的乘积。
心输出量的多少取决于每搏输出量的多少和心率的快慢。
每搏输出量反映了心肌收缩力与做功的大小，可受前负荷、后负荷及心肌收缩能力等因素的影响。
本实验拟用离体蟾蜍(或豚鼠等)心脏，在消除了神经反射对心率的影响，可保持心率基本恒定。
因此，主要考虑每搏输出量对心输出量的影响。
心室收缩前负荷是心肌尚未收缩时所遇到的阻力，与心室舒张末期容积（充盈量）直接有关。
在一定范围内，回心血量增加，心室舒张末期容积增加，心肌收缩开始前受到的前负荷增加，使心肌纤维初长度拉长，每搏输出量也增加，心肌开始收缩受到的总外周阻力（大动脉血压）即是后负荷。
后负荷如大动脉血压增加时，心室壁收缩期张力增大，做功增加。
心肌收缩力是指心肌内在收缩机制改变所引起的收缩力量的改变，与前、后负荷无关，而且可受去甲肾上腺素、乙酰胆碱等神经递质和体液因素的影响。
现要求根据上述原理，设计一实验来探讨前负荷、后负荷及心肌收缩能力改变对每搏输出量的影响（可是某一单个或多个因素），并对心脏功能进行评价。
[实验目的][实验原理]要求在上述原理的基础上，进一步阐述拟采用的实验方法和技术路线的理论根据（即通过何仪器和技术实现引起心输出量改变的因素？如何评价心泵血功能）。
[实验药品][仪器器械][实验对象][实验步骤与方法]1.现介绍两种离体心脏灌流标本的制备方法供参考：（1）离体蛙心双管灌流标本的制备①取蟾蜍（或蛙）破坏脑和脊髓，背位固定于蛙板上，剪开胸壁，暴露心脏，分离两侧主动脉，用线结扎右主动脉后再在左主动脉下穿一线备用。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
不同pH值对牛蛙离体心脏收缩活动的影响2008231144 赖泽红生科一班摘要：本实验主要是采用斯氏蛙心插管法，在保持灌流液高度恒定的情况下，分别以不同pH值的溶液对牛蛙离体心脏进行灌流，经张力换能器、RM6240D型生物信号采集处理系统与处理系统记录心肌的活动过程，探讨不同pH对离体心脏活动的影响，以揭示酸碱度与心脏收缩活动的关系。
关键词：pH值；离体心脏；收缩活动生理状态下，血液pH值保持在7.35—7.45，这是保证细胞惊醒正常代谢和机能活动的基本条件。
在生命活动的过程中，体内不断生成酸性或碱性产物，机体通过多方面的调解活动，使血液pH值保持在正常范围内。
然而，一旦机体酸碱调节失衡，会导致体内酸中毒或碱中毒，对机体造成影响。
心脏直接与血液接触，心肌细胞的收缩活动容易受血液pH值的影响。
本实验通过用不同PH值的灌流液灌流牛蛙离体心脏，观察其对心脏某些功能的影响，以揭示酸碱度与心脏收缩活动的关系，用离体牛蛙心脏，排除了在体时的神经体液干扰，故实验结果更为可靠。
一、实验材料：1、实验仪器：RM6240D型生物信号采集处理系统、张力换能器、pH酸度计。
2、常用器械：蛙板或蜡盘，蛙心夹、蛙心套管，滴管，培养皿或小烧杯，玻璃板、容量瓶，移液管、量筒、污物缸，纱布，棉线，常用手术器械。
3、药品：任氏液， HCL溶液，NaOH溶液。
4、实验动物：牛蛙2-4只（雌雄不限）。
二、实验步骤与方法1、药品配制（1）任氏液配制母液及容量成分 NaCl、 KCl 、CaCl2 、NaH2PO4 、NaHCO3 、葡萄糖、蒸馏水，注: 表内各成分除葡萄糖以 g 为单位外，均以 ml 为单位. 任氏液的配制方法：一般先将各成分分别配制成一定浓度的母液，而后按所要的容量混合。
需要注意的是：CaCl2 应在其他母液混合并加入蒸馏水后，再边搅拌边加入，以防钙盐生成。
另外，葡萄糖应在用前临时加入，否则不宜久置。
两栖类的为PH6.5-7.0 （2）不同PH浓度的任氏液配制。
不同PH值灌流液的配制。
首先，校整酸度计。
先将酸度计“PH-mv”开关拨到位置。
打开电源开关，指示灯亮，预热30分钟。
取下放蒸馏水的小烧杯，并用滤纸轻轻地吸去玻璃电极上多余水珠，在小烧杯内放入选择好的已知的PH值准确的缓冲溶液。
将电极浸入。
根据标准缓冲液的PH，将量程开关拧到 0～7 或 7～14 处。
调节控温钮指示的温度与室温相同，调节零点，使指针在PH为7.0处。
轻轻按下或稍许转动读数开关使开关卡住。
调节定位旋钮，使指针恰好指在标准缓冲溶液的PH值处。
放开读数开关，重复操作，直到数值稳定为止。
校整后,切勿再旋动定位旋钮，否则需要重新校整。
取下标准液小烧杯，用蒸馏水冲洗电极10。
其次，配制不同PH值的任氏液。
将电极上多余的水珠吸干或用被测溶液冲洗二次，然后将电极浸入被测溶液中，并轻轻转动小烧杯，使溶液均匀接触电极。
校整零位，按下读数开关，指针所指的数值即是待测溶液的PH值，若在量程PH值在 0～7 的范围内测量时指针读数超过刻度，则应该将量程开关置PH值在 7～14 处再测量。
测量完毕，放开读数开关后，指针必须指在PH值处，否则重新调整。
关闭电源，冲洗电极，并按照前述方法浸泡。
第三，将配制好的任氏液用酸度计精确标定PH值分别为 4.0， 5.0， 6.0，7.0，8.0，9.0等值梯度，密封于瓶内。
（3）离体心脏的制备动物离体处理将牛蛙双毁髓后，背位置于蛙板上，暴露心脏，仔细识别心脏左右的大血管。
找准左主动脉，并将其挑起下方穿一线，并在动脉圆锥处结扎，接着左手轻轻提起主动脉上的结扎线，挑起左右主动脉，并于左右主动脉下方穿一线，打一个活结备用，左手提起主动脉上的结扎线，右手用手术剪在动脉圆锥附近沿蛙心方向将动脉上壁剪一个小的斜口，选择大小适宜的蛙心套管，然后将盛有少量套管内 2-3 ㎝高度任氏液的斯氏蛙心套管（为了防血液凝固，堵塞套管细口部，可加少许柠檬酸钠），由开口处插入动脉圆锥。
当套管内尖端到达动脉圆锥基部时，应将套管稍稍后退，使尖端向动脉圆锥的背部后下方及心尖方向推进，经主动脉瓣插入心室腔内（于心室收缩时插入，但不可插得过深以免心室壁堵住套管下口），此时可见套管中血液冲入套管，并使液面随心脏搏动而上下移动，表明操作成功否则需退回并重新插入。
将原来准备的活结系紧，用滴管吸去套管中的血液，更换新鲜任氏液。
稳定住套管后轻轻提起备用线，将左、右主动脉，连同插入的套管用双结扎紧（不得漏液），用任氏液反复冲洗心室内余血（动作要快，不然有可能少量的血液凝固，堵住蛙心管细口），使套管灌流液不再有残留血液。
看清静脉的位置，于静脉窦下方剪断有牵连的组织，仅保留静脉窦与心脏的联系，使心脏离体（切勿损伤静脉窦）。
保持套管内液面高度一致（1.5～2 ㎝）。
（4）仪器准备：打开RM6240生物信号采集与处理系统（多道生理信号采集处理系统要先预热二十分钟），接通张力换能器输入通道。
从显示器的“设置”菜单，弹出“设计实验标记”对话框，选择“蛙心灌流”后，再从“实验项目”的“循环实验”中，选定“蛙心灌流”实验，系统进入该实验信号记录状态。
（5）将蛙心插管固定在铁支架上，用蛙心夹在心室舒张期夹住心尖，并将蛙心夹的线头连至张力换能器的应变梁上，插管内加任氏液2ml，并在插管上标记灌流的高度，在此后的实验过程中，灌流液恒定于2ml。
（千万不要夹破心脏，连接的过程中注意力量要恰当。
力过大，易拉破心脏或拉断线；力过小，张力传感器不能接受信号）（6）灌流牛蛙离体心脏：在蛙心套管 1/2 处做一标记，用任氏液将斯氏蛙心套管内血液清洗干净后，加任氏液至标记处，记录蛙心搏曲线，待心搏稳定后，记录正常蛙心搏曲线，然后更换溶液，在蛙心套管中滴加与任氏液同样液面的PH值不同的任氏液（先滴加与牛蛙正常体液相差不大的值的灌流液），并观察记录心搏曲线，待心搏出现反应后，暂停记录并快速用25℃任氏液清洗蛙心 3 次以上，然后再观察记录心搏恢复情况。
每种浓度的溶液分别在 3 只蛙心上进行重复试验。
（7）观察指标，描记心动曲线，记录心室搏动频率心率和心脏舒张状态，运用用 DPS 软件进行数据处理和数据分析。
2、实验方法1）在蛙心套管中添加2ML任氏液，标记好液面，观察心搏变化，待曲线走了一段后，保存稳定正常的曲线。
2）吸去套管中的任氏液，用已配制好的pH值为6的溶液2ml灌流离体牛蛙心脏,观察心搏变化。
待曲线出现明显变化时，立即吸取套管中的灌流液，并用新鲜任氏液清洗2到3次，待心搏回复正常。
（换液时注意不要碰到套管，以免影响描记曲线的基线）。
（3）吸去套管中的任氏液，用pH值为5的溶液2ml灌流离体心脏，观察心搏曲线的频率和振幅变化，当曲线出现明显变化时，立即吸去套管中的灌流液，迅速用新鲜任氏液清洗2到3次，待心搏回复正常。
（4）同法向套管内加入pH值为4的溶液2ml，观察并记录心搏曲线的变化。
当出现明显的变化时，立即更换任氏液，待心搏回复正常（如果恢复迟缓，可多次冲洗）。
（5）同法记录套管中分别加入pH值为8、9、10的灌流液2ml 后心搏曲线的变化。
三、试验结果：见后面页。
四、试验结果分析实验结果描述：心脏舒张状态用PH为 4.0 的灌流液灌流时，心脏完全舒张。
以后随着灌流液的PH的不断升高，当心肌收缩性逐渐增强,为PH=9.0时心脏呈痉孪性收缩状态，而当用PH为5.0-6.0的灌流液灌流时，心脏的心搏曲线变化不明显，心率变化不显著，因此可以说强酸强碱对心脏的活动有显著影响。
如图：当用PH为7.0的任氏液灌流时，心搏曲线与正常时的心搏曲线一样。
只是通过观察可发现，蛙的搏动减慢，但是变化不大。
而在整个过程中，通过心搏曲线可观察到心肌收缩幅度没有明显变化，这说明心脏功能正常，心肌收缩能力未受到影响。
但是通过数据处理软件，处理后获得的结果显示，正常的蛙心搏动曲线与PH为7.0时的心搏曲线有显著的差异。
我认为，可能是实验操作的误差，可能是配制的溶液的PH浓度存在误差。
如图：当添加PH为6.0时，心搏曲线与正常情况相比较变得很不稳定，具体情况是心率减慢，但是心率变化不大。
但是在整个过程中，心肌收缩幅度没有明显变化。
说明心脏功能正常，心肌收缩能力未受到影响。
另外经过T检验分析后，PH为6.0与正常情况有明显差别，原因可能是由于心肌活力受损，所以曲线不稳定，也可能是在实验过程中清洗不干净，或受到振荡，影响了实验结果。
如图：当添加PH为5.0的灌流液时，由于心脏受到一定程度的损伤，表现出心率减慢，收缩幅度下降的情况，但仍可以对比出，PH 为6.0的灌流液使当蛙心率明显下降，心肌收缩幅度也相应的减小，说明心肌的收缩力减弱。
如图：当添加PH为4.0的灌流液时，虽然正常情况下，由于心脏的损伤，蛙心率减慢，收缩幅度降低，但是仍可以明显的观察到，蛙心脏的心率极其明显的下降，收缩幅度也明显缩短，正如T检验结果所示，正常情况与PH为4.0的情况有极显著的差异。
如图：当添加PH为8.0时，由于在强酸的作用下，心脏表现出明显的衰弱现象，但是添加了PH为8.0的灌流液后，心率反而增加，收缩峰值也增加。
与正常时相比心率也增加了，收缩性也加强了，是整个实验中心率最高的点。
如图：当添加PH为9.0时，与正常情况相比较，心率下降，收缩幅度变小，但是变化不明显。
四、实验中的注意事项1.制备离体心脏标本时，勿伤及静脉窦。
2.蛙心夹应在心室舒张期一次性夹住心尖，避免因夹伤心脏而导致漏液。
3.每一观察项目都应先描记一段正常曲线，然后再加药并记录其效应。
加药时应在心跳曲线上予以标记，以便观察分析。
4.各种滴管应分开，不可混用。
5.在实验过程中，插管内灌流液面高度应保持恒定；仪器的各种参数一经调好，应不再变动。
6.给药后若效果不明显，可再适量滴加，并密切注意药物剂量添加后的实验结果。
给药量必须适度，加药出现变化后，就应立即更换任氏液，否则会造成不可挽回的后果，尤其是K＋，H+稍有过量，即可导致难以恢复的心脏停跳。
7.标本制备好后，若心脏功能状态不好（不搏动），可向插管内滴加1～2滴2%CaCl2或1：10000肾上腺素，以促进（起动）心脏搏动。
在实验程序安排上也可考虑促进和抑制心脏搏动的药物交换使用。
8.谨防灌流液沿丝线流入张力传感器内而损坏其电子元件。
七、实验中遇到的问题与解释在此次实验中，总共解剖了四只蛙，但有三只解剖后，心脏活性差，现试做出以下解释：1.插管插入后,管中的液面不能随心脏搏动而波动,或波动幅度不大，影响结果的观察。
(1) 插管插到了主动脉的螺旋瓣中，未进入心室。
(2)插管插到了主动脉壁肌肉和结缔组织的夹层中。
(3)插管尖端抵触到心室壁。
(4)插管尖端被血凝块堵塞。
2.插管后，心脏不跳动。
（1）心室或静脉窦受损。