《实验动物学》复习重点
实验动物学重点汇总
一、实验动物、近交系动物、转基因动物、屏障环境实验动物(Laboratory Animal):是指经人工饲养、繁育，对其携带的微生物及寄生虫实行控制，遗传背景明确或者来源清楚的，应用于科学研究、教学、生产和检定以及其他科学实验的动物。
包括四个基本内涵：1.遗传背景明确（近交系、封闭群、杂交群）2.对携带微生物和寄生虫实施控制（普通动物、清洁动物、无特定病原体动物、无菌动物）3.在特定的环境条件下，人工培育而成的动物4.应用范围明确近交系(Inbred Strain)是指至少连续经过20代以上全同胞兄妹或亲子交配，品系内所有个体都可追溯到起源于第20代或以后代数的一对共同祖先。
近交系动物的近交系数（Inbreeding Coefficient）应大于99%。
近交系动物的特点：1．基因纯合性和同基因性2．各品系均具有独特的特性3．研究结果的一致性4．可作为有价值的动物模型5．具有标准实验材料特性6. 遗传背景清楚通过实验手段将新的遗传物质(外源性的基因片段)导入到动物的胚细胞中，并能稳定的遗传，由此获得的动物称为转基因动物。
常用的方法有显微注射法、逆转录病毒载体法、胚胎干细胞介导法、精子载体法、电转移法、基因直接导入法等。
屏障环境：与外界隔离，是饲养清洁级动物和SPF级动物的设施。
进入实验动物生存环境的空气须经过滤净化处理，其洁净度相对于10000级，进入屏障内的人、动物和物品如饲料、水、垫料及实验用品等均需有严格的微生物控制。
二、实验动物环境设施分类实验动物设施是指实验动物和动物实验设施的总和。
一个设施可以大到动物中心或生产繁殖机构，小至某一实验动物室。
总体的原则是提供实验动物最适宜的环境，保障实验动物的质量和为动物实验的准确性提供可靠保障。
（一）、按其功能分类1．动物生产设施（Animal Production Facility）指用于实验动物的饲育繁殖、生产的建筑物、设备以及运营管理在内的总和。
《实验动物学》复习资料
《实验动物学》复习资料一、实验动物定义实验动物是指经人工培育、遗传背景明确或来源清楚，对其质量实行控制、用于科学实验及产品生产的动物。
实验用动物是指能够用于科学实验所有动物，实验用动物不仅包含了实验动物，而且还包括野生动物、经济动物和家畜等。
由于野生动物和经济动物及家畜与实验动物相比其生物学特征、遗传背景、微生物控制状态等都有一定的不确定性，因此应用这些动物进行科学实验其结果往往出现较大差异，降低了实验结果的可信程度。
二、实验动物分类（一）按照遗传学控制标准，可将实验动物分为：1、近交系（inbred strain）动物：是指至少连续20代的全同胞兄弟姐妹或亲子交配培育而成的动物。
近交系数高达99.6%。
特征是：遗传基因位点纯合性、同基因性、长期遗传稳定性，表现型一致性、独特性、可分辨性，分布广泛性、资料可查性。
2、突变系（mutation gallery）动物：由自然突变，或经人工诱导，使动物正常染色体上的基因发生突变，动物表现出某种遗传缺陷，且这种特异的遗传性状能够维持稳定的遗传品质。
这种变化了的能保持遗传基因特性的品系，称之为突变系。
如侏儒、无毛、肥胖症、肌萎缩、白内障、视网膜退化等。
目前，已成为人类疾病模型的有贫血（anemia）、白内障（cataract）、侏儒（dwarf）、无毛（hair-less）、色素性视网膜炎（retinitis pigmentosa）、各种神经麻痹（paralysis）、先天性畸形（congenital malformations）、肾异常（kidney anomalies）、椎骨脱臼症（slipped disease）、上腭裂（Harelip and cleftpalate）等突变系。
3、杂交群（Hybrid Colony）动物：两个没有关系的近交系动物之间，进行有计划的交配，其繁殖的第一代，称系统杂交动物或F1代。
4、封闭群（closed colony）动物：在不从外部引入新种的条件下，以非近亲交配的方式，至少连续繁殖4代以上（小鼠要求15代，5年）的一个种群动物，可称之为封闭群动物。
《实验动物学》重点
《实验动物学》复习题一、名词解释1．实验动物：不同于一般动物，是指经人工饲养、对其携带的微生物、寄生虫实行控制，遗传背景明确或来源清楚的，用于科学研究、教学、生产、鉴定、及其他科学研究的动物。
2．实验用动物：指一切用于实验研究的动物，包括实验动物、经济动物（家畜、家禽）、野生动物等。
实验动物是实验用动物的一部分，是最重要的一部分。
3．动物实验：是以实验动物为材料，采用各种方法进行实验，包括以实验动物整体水平的综合反应为评价指标的实验，以实验动物为对象的观测，以实验动物为材料来源的局部器官及系统的实验，以及以实验动物的各种表现参数作为权衡尺度的实验室工作。
4．近交系动物：是指至少经过20以上连续全同胞或亲子交配，品系内所有个体都可追溯到其源于第20代或以后代鼠的一对共同祖先的动物群。
近交动物的近交系数达98.6%,杂合基因小于1.4%。
5．近交衰退：即近交后代出现生长发育、成活、生育、抗病、适应环境等方面的能力的减退以及有害基因暴露、遗传病增加等。
6．F1动物：是根据需要在两个不同的近交系有计划交配所获得的第一代动物，称为杂交一代动物，也称系统杂交动物，简称F1（First filial generation）动物。
⒎杂交优势：杂交一代具有较强的生命力，对疾病的抵抗力强，寿命较长，容易饲养，在很大程度上克服了近交衰退现象。
8．封闭群动物：以非近亲交配方式进行繁殖生产的一个实验动物种群，在不从其外部引入新个体的条件下，至少连续繁殖4代以上，称为一个封闭群，或叫远交群。
9．突变系动物：是指正常染色体的基因发生了变异的，形成具有各种遗传缺陷的动物。
10．基因突变：基因突变也称点突变，指染色体上一个位点内的遗传物质的改变，即DNA 分子长链中碱基对的改变。
11．转基因动物：以实验方法将外源性目的基因或特定DNA片断，导入到动物的基因组内，进而改造原来动物的遗传学特性，而产生的遗传工程动物，能将其遗传给后代。
实验动物学复习备考笔记
第一章总论（主要考概念）一、实验动物和实验用动物1实验动物：是指经人工饲育，对其携带的微生物和寄生虫实行控制；遗传背景明确或者来源清楚，用于科学研究、教学、生产、检定及其他科学实验的动物。
2实验用动物：所有用于科学实验的动物统称为实验用动物。
包括实验动物、野生动物、经济动物和观赏动物。
二、实验动物学的定义和范围（一）定义实验动物学：是研究实验动物和动物实验的科学。
（二）范围1实验动物遗传育种学：是利用遗传调控的原理，控制动物的遗传特性，培育新的实验动物品种、品系和各种动物模型，达到实验动物化目的的科学。
2实验动物微生物学和寄生虫学：是研究实验动物的微生物和寄生虫的分类学、生物学特性以及与人类和动物之间相互关系的科学。
3实验动物环境生态学：是研究实验动物与外界环境相互关系的科学。
主要研究理化因素、营养因素、生物因素对实验动物的影响。
4实验动物营养学：研究各种实验动物、不同等级、各个发育时期的营养要求，制定营养配方，生产各种饲料，进行营养监测。
5实验动物饲养管理：对各种实验动物进行标准化和法制化饲养管理。
6实验动物医学：实验动物疾病的诊断、预防、治疗和在生物医学领域中的应用。
7比较医学：研究实验动物的疾病和人类的基本生命现象，与人类疾病进行类比研究、建立动物模型，研究人类相应疾病。
8动物实验：进行动物实验验，研究实验方法、实验技术、技术标准。
四、实验动物的分类（二）按实际用途分类1实验动物：如前2经济动物：是指作为人类社会生活需要而驯养、培育、繁殖的动物。
包括产业家畜和社会家畜。
3野生动物：是指为人类需要，从自然界捕获的动物，没有进行人工繁殖、饲养的动物。
4观赏动物：是指作为人类玩赏和公园里供游人观赏而饲养的动物。
（三）按遗传学控制分类1近交系动物：又叫纯系动物。
是采用同胞兄妹或亲子交配，连续繁殖20代以上所培育出来的遗传上达到高度一致的动物群。
基因纯合度可达98.6%。
2突变系动物：具有特殊突变基因的品系动物。
实验动物学完整重点
第一章1.实验动物（Laboratory Animals）特指的是人工培育，遗传背景明确或来源清楚，对其携带的微生物和寄生虫实行控制，用于生命科学研究、教学、药品与生物制品生产和检定以及其它科学研究的动物。
2.3.实验动物学的核心内容之一是实验动物的标准化，它包括实验动物的•遗传学控制标准•微生物学和寄生虫学控制标准•设施环境控制标准•饲料营养控制标准实验动物标准化的意义在于用符合标准的实验动物，在标准化饲养、实验环境条件下，所做的动物实验无论在时间的先后上，还是在世界的不同实验室里，其实验结果应该具有可重复性和可对比性。
4.生命科学研究所必需的四个基本条件：AEIRAnimal 实验动物Equipment 仪器设备Information 信息Reagent 试剂5.什么是动物福利？（选择，判断）动物福利是指动物在整个生命过程中应得到人类的保护，其基本原则是要善待动物，保证动物的健康和快乐。
6.“3R”原则：Replacement 替代-是指用其它实验方法替代用哺乳类动物进行实验研究。
Reduction 减少-是指某一研究必须要使用实验动物，而又没有可靠的替代方法时，应考虑把使用动物的数量减少到实验研究目的所必需的最少数量。
Refinement 优化-是指通过改进和完善实验程序、利用先进仪器设备，减轻或避免给动物造成痛苦和不安，提高动物福利的同时，获得可靠的实验结果。
第二章1.近交系(inbred strain）是指采用连续全同胞兄妹交配（brother-Sister inbreeding）20代以上而培育成的动物。
近交系动物的特点（1）基因的纯合性（近交系动物的每个个体）（2）遗传组成的同源性（一个近交系动物的所有个体）（3）遗传组成的独特性（不同近交系比较）（4）遗传特征的可辨别性（不同近交系比较）（5）遗传的稳定性（所有近交系）（6）表现型的一致性（同一近交系个体间）（7）背景资料的可查性（8）国际分布的广泛性（定义+特点=简答，分开是小题）2.封闭群（closed colony）是指以非近亲交配方式进行繁殖生产的一个种群，在不从外部引入新个体的条件下，至少连续繁殖4代以上的动物群体。
《实验动物学》复习提纲
《实验动物学》复习提纲实验动物学是研究动物在科学实验中的使用和保护的学科，涉及动物行为学、动物生理学、动物解剖学等多个方面知识。
下面是《实验动物学》的复习提纲：一、实验动物学概述1.实验动物的定义和分类2.实验动物在科学研究中的作用和意义3.实验动物在医学、农业、环境等领域的应用二、实验动物的伦理和保护1.动物实验的伦理原则2.动物实验的法律法规3.动物实验中的伦理审查和道德责任三、动物行为学1.动物行为学的基本概念2.动物的种类和特征3.动物行为的分类和调查方法4.动物行为的意义和影响四、动物生理学1.动物生理学的基本概念2.动物的生活活动和生理特征3.动物器官的功能和作用4.动物的生理反应和适应机制五、动物解剖学1.动物解剖学的基本概念2.动物的结构和组织3.动物的器官和系统4.动物解剖在实验中的应用六、实验动物的疾病模型1.实验动物常见的疾病模型2.疾病模型的建立和应用3.疾病模型对药物研发的意义和作用七、动物实验的方法和技术1.动物实验的基本原则和方法2.动物实验中常用的技术手段3.动物实验中的常见误差和控制方法八、实验动物的饲养管理1.实验动物的饲养环境和条件2.实验动物的饲养管理标准3.实验动物的健康监测和疾病防控措施九、实验动物的替代方法1.动物实验的替代方法和发展趋势2.人体细胞和组织培养技术3.计算机仿真和数学模型在实验中的应用十、实验动物的福利与道德1.实验动物的福利措施和标准2.动物福利与道德理念的冲突和统一3.动物保护组织和议题以上是《实验动物学》的复习提纲，希望能够帮助大家更系统地复习这门学科，提高对实验动物及其伦理保护的认识和理解。
祝大家学习进步！。
《实验动物学》复习重点
《实验动物学》复习重点《实验动物学》复习重点1、小鼠的给药途径有那些？请演示一下。
a.灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。
一般的给药量小鼠为0.1～0.3ml／10g，大鼠为1～2.0ml／100g。
b.皮下注射（sc）: 常在背部皮下注射。
一手固定动物，另一只手注射给药。
一般给药量小鼠为0.1～0.20ml／10g，大鼠为1ml／100g。
c.腹腔注射（ip）: 左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45度角刺入腹腔，进针约3～5mm，一般给药量小鼠为0.1～0.3ml／10g，大鼠1～2.0ml／100g。
d.肌内注射（im）：多注射后肢股部肌肉。
如一人单独操作，以左手拇指和食指抓住小鼠头部皮肤，小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢，右手持注射器刺入后肢肌肉给药。
一般小鼠每侧不超过0.1ml。
e.尾静脉注射（iv）：将动物固定，鼠尾巴露在外面，用70%～75%的酒精棉球擦尾部，或将鼠尾浸入45～50℃温水中。
待尾部左右静脉扩张后，左手拉着尾，右手进针。
小鼠一般的给药量为0.1～0.2ml／10g。
2、请演示一下大鼠、小鼠的捉持、固定及灌胃给药。
（1）小鼠的捉持：捉拿时可先用右手抓住并提起鼠尾，置于实验台或鼠笼上，并稍向后拉；用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳后颈背部的皮肤，将鼠置于左手心中，拉直后肢，以无名指及小指按住鼠尾或小鼠的左后肢即可。
（2）大鼠的捉持：大鼠的捉拿时，可戴上手套。
实验者可用右手捉住鼠尾，放在实验台或鼠笼上，并稍向后拉；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。
（3）灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。
3、大鼠的给药方法有那些？请演示一下常用的给药方法。
a.灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。
实验动物学重点总结版
实验动物学重点总结版1.实验动物的种类：实验动物种类繁多，常见的有小鼠、大鼠、兔子、猪、猴子等。
不同实验动物具有各自的特征和优势，选择适合的实验动物对于研究的结果具有重要影响。
2.实验动物的饲养：实验动物的饲养环境和条件对于研究结果的可靠性至关重要。
饲养环境应具备良好的卫生条件，控制噪音、温度和湿度等因素的稳定性。
动物的饲养还需要注意饮食的合理搭配和营养的充足。
3.实验动物的处理：在实验过程中，需要对实验动物进行处理，如给予药物、注射特定物质、实施手术等。
对于这些处理需要严格遵循伦理原则，确保动物的权益和福利。
同时，对于动物的疼痛和苦恼应该给予充分的关注和缓解。
4.实验动物的实验设计：实验动物的实验设计需要合理安排实验步骤和控制变量，确保实验结果的可复现性和可靠性。
实验时需要使用统计学方法进行数据分析，以检验实验结果的显著性和统计学意义。
5.实验动物的兽医护理：实验动物的健康状况对于实验结果具有重要影响，因此需要进行定期的兽医检查和护理。
兽医护理包括动物的疾病预防和治疗，保持动物的健康状态，确保实验动物不受不必要的疾病和伤害影响。
6.实验动物的伦理道德：实验动物研究应该遵循伦理原则，确保实验过程中动物权益和福利的保护。
研究者应该尽量减少使用动物数量，避免过度伤害和残害实验动物。
同时，应该选择合适的实验方法和替代技术，以减少对动物的使用。
7.实验动物的三大Rs原则：3Rs原则是指Replace（替代）、Reduce（减少）和Refine（改进）。
这是一种为了减少实验动物使用和改善实验过程的方法。
通过替代实验动物、减少使用动物数量和改进实验方法，可以达到提高研究效率的同时保护动物权益和福利的目的。
总结起来，实验动物学是一门关于实验动物的种类、饲养、处理和伦理等方面的学科。
实验动物的种类选择、饲养环境、实验处理、实验设计、兽医护理、伦理道德以及三大Rs原则都是该学科的重点内容。
在进行实验动物研究时，研究者应该关注动物权益和福利，合理设计实验和采取措施，以确保研究结果的可靠性和合理性。
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《实验动物学》复习重点1、小鼠的给药途径有那些？请演示一下。
a.灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。
一般的给药量小鼠为0.1～0.3ml／10g，大鼠为1～2.0ml／100g。
b.皮下注射（sc）: 常在背部皮下注射。
一手固定动物，另一只手注射给药。
一般给药量小鼠为0.1～0.20ml／10g，大鼠为1ml／100g。
c.腹腔注射（ip）: 左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45度角刺入腹腔，进针约3～5mm，一般给药量小鼠为0.1～0.3ml／10g，大鼠1～2.0ml／100g。
d.肌内注射（im）：多注射后肢股部肌肉。
如一人单独操作，以左手拇指和食指抓住小鼠头部皮肤，小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢，右手持注射器刺入后肢肌肉给药。
一般小鼠每侧不超过0.1ml。
e.尾静脉注射（iv）：将动物固定，鼠尾巴露在外面，用70%～75%的酒精棉球擦尾部，或将鼠尾浸入45～50℃温水中。
待尾部左右静脉扩张后，左手拉着尾，右手进针。
小鼠一般的给药量为0.1～0.2ml／10g。
2、请演示一下大鼠、小鼠的捉持、固定及灌胃给药。
（1）小鼠的捉持：捉拿时可先用右手抓住并提起鼠尾，置于实验台或鼠笼上，并稍向后拉；用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳后颈背部的皮肤，将鼠置于左手心中，拉直后肢，以无名指及小指按住鼠尾或小鼠的左后肢即可。
（2）大鼠的捉持：大鼠的捉拿时，可戴上手套。
实验者可用右手捉住鼠尾，放在实验台或鼠笼上，并稍向后拉；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。
（3）灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。
3、大鼠的给药方法有那些？请演示一下常用的给药方法。
a.灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。
一般的给药量小鼠为0.1～0.3ml／10g，大鼠为1～2.0ml／100g。
b.皮下注射（sc）: 常在背部皮下注射。
一手固定动物，另一只手注射给药。
一般给药量小鼠为0.1～0.20ml／10g，大鼠为1ml／100g。
c.腹腔注射（ip）: 左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45度角刺入腹腔，进针约3～5mm，一般给药量小鼠为0.1～0.3ml／10g，大鼠1～2.0ml／100g。
d.肌内注射（im）：多注射后肢股部肌肉。
如一人单独操作，以左手拇指和食指抓住小鼠头部皮肤，小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢，右手持注射器刺入后肢肌肉给药。
一般小鼠每侧不超过0.1ml。
e.尾静脉注射（iv）：将动物固定，鼠尾巴露在外面，用70%～75%的酒精棉球擦尾部，或将鼠尾浸入45～50℃温水中。
待尾部左右静脉扩张后，左手拉着尾，右手进针。
小鼠一般的给药量为0.1～0.2ml／10g。
4、血清和血浆有何不同？它们如何制备？答：血浆是由抗凝的血液中分离出来的液体，其中含有纤维蛋白原，不含游离的Ca2+；血清是由凝固的血中分离出来的液体，不含纤维蛋白原，但含有游离的Ca2+。
新鲜全血中加入抗凝剂为抗凝血,由抗凝血离心后的上清液是血浆；新鲜全血离心后的上清液为血清。
5、常用的麻醉药物有那些？请举出三种麻醉药及其用法。
答：a.挥发性麻醉剂如乙醚、氯仿。
b.非挥发性麻醉剂:(1)戊巴比妥钠：戊巴比妥钠麻醉时间不很长，一般可持续3～5小时，十分符合一般实验要求。
所以是最常用的麻醉剂。
(2)硫喷妥钠：麻醉诱导和苏醒时间短，一次用药仅可维持数分钟。
(3)水合氯醛：其麻醉量与中毒量很接近，故安全围小。
水合氯醛的常用浓度1％。
氨基甲酸乙酯(乌拉坦)：此药是比温和的麻醉药，安全度大。
乌拉坦常用浓度20～25％。
6、按微生物学的标准，国际上和我国的实验动物可以分为几类？它们具体名称是什么？答：a.国际标准：四类：无菌动物、悉生动物、SPF动物和普通动物。
b.国内按微生物学标准分类：普通级动物、清洁级动物、无特定病原体动物、无菌动物和悉生动物7、实验动物为何需要标记？如何标记？试举例说明。
答：大鼠和小鼠的编号一般都用不同颜料涂染皮毛的方法来标记，常用的涂染化学品如下①涂染黄色用3～5%苦味酸溶液;②涂红色用0.5%品红溶液等。
前者最常用。
在动物固定的不同部位涂上苦味酸斑点表示不同号码。
一般习惯在左前腿上为1，腰部为2，在左后腿上为3，在头部为4，在正中为5，在尾基部位6，在右前腿为7，在右侧腰部为8，在右后腿上为9，不涂染鼠为10。
如果试验时动物编号超过10，可在动物同一部位上再涂染另一种涂染剂。
8、小鼠采血可采用那些途径和方法？答：眶静脉丛（窦）采血、眶动脉和眶静脉取血、尾静脉采血、大血管采血9、小鼠和大鼠的雌雄如何鉴别？请演示一下。
答：哺乳类动物性别依据动物肛门与外生殖器(阴茎或阴道)之间的距离加以区分。
雄性要比雌性的距离更长。
10、小鼠的处死方法有那些？请具体演示一下。
a.颈椎脱臼法：本法常用于小鼠的处死。
左手拇指、食指用力向下按住鼠头，同时右手抓住鼠尾用力向后上方拉，将脊髓与脑髓拉断，鼠即死亡。
b.断头法：用剪刀将鼠头剪断，由于脑髓与脊髓断离且大量出血，动物很快死亡。
c.击打法：提起鼠尾，用力棒击头部，或用小木棰打击头部，鼠痉挛立即死亡。
11、家兔的给药方法有那些？请演示一下家兔的静脉给药。
答：给药方法：灌胃、皮下、肌内及腹腔注射、静脉注射。
静脉注射：将家兔置固定箱内，拔去耳克外缘的毛，选择一条比较明显的耳缘静脉，用酒精棉球涂擦皮肤，使血管暴露。
用左手拇指和中指捏住兔的耳尖，以食指垫在兔耳拟进针部位的下面，右手持注射器，从近耳尖处将针头刺入血管。
推注时如有阻力，局部出现肿胀，表明针头不在血管内，应立即拔针重新穿刺。
一般药液为0.2～2.0ml/kg，等渗药液可达10ml/kg。
12、如果你需要做一个药物的药理试验，你如何确定用药的剂量？(1)先用小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒量的剂量，或取致死量1/l0～1/5。
(2)化学药品可参考化学结构相似的已知药物，特别是结构和作用都相似的药物剂量。
(3)已有临床经验的药物（中药或西药）可按临床剂量推算。
(4)确定动物给药剂量时，要考虑给药动物的年龄大小和体质强弱。
(5)确定动物给药剂量时，要考虑因给药途径不同，所用剂量也不同，以口服量为l00时，灌肠量应为100～200，皮下注射量30～50，肌肉注射量为25～30，静脉注射量为25。
(6)确定剂量后，可根据与实验结果调整剂量。
13、已知戊巴比妥钠家大鼠腹腔注射时的适当剂量为50mg/kg，现有2.5％的药液，体重500g的大鼠应注射多少毫升?答：50mg/kg×0.5kg÷2.5g/100ml=25mg÷25mg/ml=1ml14、大鼠的处死方法有那些？请演示一下。
a.颈椎脱臼法：本法常用于小鼠的处死。
左手拇指、食指用力向下按住鼠头，同时右手抓住鼠尾用力向后上方拉，将脊髓与脑髓拉断，鼠即死亡。
b. 断头法：用剪刀将鼠头剪断，由于脑髓与脊髓断离且大量出血，动物很快死亡。
c. 击打法：提起鼠尾，用力棒击头部，或用小木棰打击头部，鼠痉挛立即死亡。
d.也可用过量麻醉药注入法等方法处死动物。
15、请对小鼠或大鼠进行尸检，辨认以下胃、十二指肠、盲肠、胆囊、胆总管和胰脏。
16、请对小鼠或大鼠进行尸检，辨认以下肾、肾上腺、膀胱、胸腺。
17、请辨认以下小鼠或大鼠的性别，并解剖，找出卵巢和子宫。
18、简述离体实验和整体实验各自的特点。
本课程的实验中，哪些为整体试验？那些为离体实验？答：离体实验是在体外影响因素较少实验结果准确但是有时不太全面，与实际有差异，整体实验在动物体内收到的干扰因素较多不宜控制但是更能真实反映药物对整体的作用。
离体蛙心实验为离体实验。
整体实验为药物的抗惊厥作用实验，药物的镇痛作用实验，奎尼丁对实验性心律失常的影响，家兔血压的测定为整体实验。
19、请简述生理溶液主要由那几部分组成，并举出一、两种常用的生理溶液。
答：组成：NaCl、KCl、MgSo4.H2o、NaH2Po4.h2o、KH2Po4、NaHCo3、CaCl2、葡萄糖常用生理溶液：任氏液、台氏液。
20、试举例说明何谓有效数字？0.0025 ，150.0 ，15.55分别为几位有效数字？如果缩小一位有效数字，其尾数如何取舍？如求三数之积，其积的有效数字应为几位？答：有效效字是指能反映出被测量实际大小的全部数字，包括几位可靠数字加上一位欠准数字。
它不包括数字前的零，但包括数字后的零，它与小数点的位置无关。
0.0025为2个有效数字，150.0为4个有效数字，15.55为4个有效数字“四舍六入，逢五化偶”的规则(不是四舍五入)当尾数是五时，如前一位数是偶数则将五舍去；如为奇数则进一，使末位数化为偶数。
积的有效数字为：得数的最大相对误差是各实测值相对误差之和。
亦可按实用简法计算，即乘除得数的有效位数等于或小于实测值中最小的有效位数。
21、根据药理实验的不同，药理实验结果资料可分为哪几类？试举例说明之。
答：计数资料：如扭体数、成活数、死亡数、产仔数等计量资料：如血压、体重、血糖、尿量、血细胞数等计时资料(时反应资料)：离体蛙心收缩强度、频率和节律等等级资料(半定量资料)：用药后疾病的变化可分为痊愈、显效、改善、无效和恶化；组织的病变程度可分为＋＋＋、＋＋、＋、±、－；疼痛的缓解可分为高度、中度、轻度、无效等。
22、试列举两种抗惊厥的实验方法？抗惊厥实验适用于那些药物的药理研究。
答：电刺激法和药物致惊法。
抗惊厥实验可用于抗癫痫药的研究。
23、试列举两种镇痛的实验方法？镇痛实验适用于那些药物的药理研究。
答：热板法和化学刺激法。
镇痛实验可用于神经系统的药。
24、在实验报告中对表格由哪些特殊要求？药物剂量如何表示？答：表格要求是三线表，动物实验药物剂量的表示方法：一般按mg/kg或g/kg体重计算。
25、计数资料和计量资料一般应采用何种检验的统计学处理？试举例说明。
答：计数资料用χ2检验，如镇痛实验中的动物扭体数。
计量资料用t 检验，如测血压实验。
26、实验设计的基本原则是什么？试举例说明之。
（1）对照性原则，如实验中设空白对照组阳性对照组。
（2）重复性原则，是指同一处理要设置多个样本例数。
一般估测的样本数：小动物(小鼠、大鼠)每组10-30例：计量资料每组不少于10例，计数资料每组不少于20例。
中等动物(豚鼠、家兔)每组8-20例；计量资料每组不少于8例，计数资料每组不少于20例。
大动物(犬、猫)每组6-20例；计量资料每组不少于6例，计数资料每组不少于20例。