浮游植物的定量分析
浮游植物定量
• 球形、园盘形、园锥形、带形等可按求体 积公式计算。 • 纤维形、多角形、新月形以及其他种种形 状可分割为几个部分计算。
• 由于在不同环境中生长的同一种藻类的细 胞体积差异很大，套用所谓的《标准生物 量表》提供的数值计算某一具体水体的生 物量有时会产生很大的误差。所以条件允 许应对优势种和亚优势种进行直接量算， 非优势种群查阅表格。
• 计数时优势种类尽可能鉴别到种，其余鉴 别到属。
• 计数中的浮游植物的数量, 最好用细胞数表 示。对不易用细胞数表示的种类可计算其 群体或丝状体数。
计数具体要求
• A、校正计数框容积， • B、定量用的盖玻片应以碱水或肥皂水洗净备用，用前可 浸于70％酒精中，用时取出以细绢拭干。 • C、滴取样品以后最好用液体石腊封好计数框四周，以防 计数过程中干燥。 • D、以目微尺测所用显微镜一定倍数下的视野直经。 • E、选好与计数框同样容积的吸管备用。 • F、定量时应将浓缩标本水样充分摇匀，快吸快滴。 • G、加上盖玻片后不应有气泡出现。 • H、计数后的定量样品应保存下来。
• （2）采水量及采样次数
卡盖式采水器
不锈钢采水器
有机玻璃采水器
• • • • •
采样次数可多可少， 有条件时可逐月采样一次， 一般情况可每季采样一次， 最低限度应在春季和夏末秋初各采样一次。 养殖池可随时进行采样。
• 每一采样点应采水1000毫升， • （1）系一般性调查，可将各层采水等量混 合，取1000毫升混合水样固定； • （2）分层采水，分别计数后取平均值。分 层采水可以了解每一采样点各层水中浮游 植物的数量和种类。 • 水样应立即加入15毫升碘液（即鲁哥氏液） 固定。
• 用内径为30毫米的橡皮乳胶管，接上 橡皮球，利用虹吸法将沉淀上层清液 缓慢吸出（切不可搅动底部，万一动 了应重新静置沉淀）。
浮游生物调查方法
七、数量计算： 1、定性 2、定量结果 浮游植物定量：
使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量 使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量 为0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2）和具有移 0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2 动台的显微镜。 经0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片， 0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片， 如果框内无气泡亦无水液溢出，即表示容量标准 适合，检查三次均适合，此半数框即可使用。每 次计数时用的盖玻片应用碱水或肥皂水洗净备用。 用前可浸入70%的酒精中，用时取出，用细绢拭 用前可浸入70%的酒精中，用时取出，用细绢拭 净，计数框用前以薄绸布拭净，用毕以水弄湿后 轻拭或用水冲净。
虹吸动作要十分仔细、小心。开始时虹吸管一端 放在沉淀器内约三分之二处，另一端套接在已经 用手挤压出空气的橡皮球上，然后轻轻松手并移 开橡皮球使清液流出，为了避免漂浮水面的一些 微小藻类进入虹吸管而被吸走，管吕应始终低于 水面。虹吸管内清液的活动不宜过快，可用手指 轻捏管壁以控制流量，当吸到原水样的3/5以上时， 轻捏管壁以控制流量，当吸到原水样的3/5以上时， 应使清淮一滴一滴地流下。吸出的清液要用一洁 净的器皿装盛，以便在浓缩过程在出故障时，可 重新倒入沉淀器中浓缩，不必新采水。
数横条，最少不少于5 数横条，最少不少于5条具体可自行掌握。 总之不论数视野还是数横条，每片计数到 的溪流植物总数应达到200个（低浓度时）的溪流植物总数应达到200个（低浓度时）500个（高浓度时）以上。 500个（高浓度时）以上。 同一样品的二片计数结果与其均数之差距 如果不大于其均数的10%，这两个相近的值 如果不大于其均数的10%，这两个相近的值 的均数即可视为计数结果。
浮游动物定量：
浮游植物采集与定性定量分析
第3行
第5行 第8行
总的物种数=
实际看到的物
种数×10/3
3. 水滴法
镜检：根据1毫升的水相当于20滴水，用移液管 取1滴水样，转移至计数框，全部计数。
总数量的计算：假如1升浮游植物水样定容至30 毫升，那么总数量=30÷（1÷20）×计算所得个数
样品采集：首先进行水平面设点和垂直分层，然后 用1升
采水器采集1升水样，加鲁格氏液15毫升，转移 至沉降器沉 淀 24～48小时，通过虹吸法获得浓缩的定 量样品，定容至
50毫升
样品固定：添加3～5毫升甲醛溶液
2. 定性分析 采集：用 25 号浮游生物网在水面以下呈 “∞” 来
回拖行，将所采集水样保存于小方瓶（50毫升）
浮游植物采集与定性定量分析 2019.03.18
蓝藻门 裸藻门 淡 水 种 类 绿藻门 隐藻门 硅藻门 黄藻门
甲藻门 轮藻门
金藻门
采集
分析
确定采样点
记录水体理化 指标
确定采样层次
（福尔马林/碘液）
样品固定
定性样品采集
（25#,64 μm）
定量样品采集
（1L+10L）
（定性、定量）
室内分析
1. 定量分析
固定：添加3-5毫升甲醛溶液保存。
定量计数方法 视野法 行格法 水滴法
0.1ml计数框
移液枪取样0.1毫升 均匀分布于计数框 对部分视野进行镜检 计数该部分框的面积是400 mm2，而显微镜的视野面 积是固定值。 显微镜视野面积的计算：某型号显微镜的视场 数 为 20 ， 那 么 在 高 倍 镜 下 的 实 际 视 场 直 径 为 20/40=0.5mm ， 高 倍 镜 下 的 视 野 面 积 为 3.14*0.25*0.25≈0.2 mm2。
浮游植物取样测定规范
水体浮游植物分析规范参考淡水生物资源调查技术规范DB43/T 432-2009➢水层设置水深小于3m时，只在中层采样，混合均匀水体，可以只采表层（0.5m）水样；水深3m～6m时，在表层、底层采样，其中表层水在离水面0.5m处，底层水在离泥面0.5m处；水深6m～10m时，在表层、中层、底层采样；水深大于10m时，在表层、5m、10m水深层采样，10m以下除特殊需要外一般不采样，对于深水湖泊，取样的水层可以将取样间隔加大，如0m,10m,20m,50m, 100m。
➢采样定量样品在定性采样之前用采水器采集，每个采样点取水样1L，贫营养型水体应酌情增加采水量。
泥沙多时需先在容器内沉淀后再取样。
分层采样时，取各层水样等量混匀后取水样1L。
大型浮游植物定性样品用25号浮游生物网在表层缓慢拖曳采集，注意网口与水面垂直，网口上端不要露出水面。
➢固定浮游植物样品立即用鲁哥氏液固定，用量为水样体积的1％～1.5％。
如样品需较长时间保存，则需加入37%～40％甲醛溶液，用量为水样体积的4％。
现行的一些规律性的方法为：取水样，500ml,加入5ml鲁格，虹吸到30-50ml,加入1ml甲醛。
➢水样的沉淀和浓缩固定后的浮游植物水样摇匀倒入固定在架子上的1L沉淀器中，2h后将沉淀器轻轻旋转，使沉淀器壁上尽量少附着浮游植物，再静置24h。
充分沉淀后，用虹吸管慢慢吸去上清液。
虹吸时管口要始终低于水面，流速、流量不能太大，沉淀和虹吸过程不可摇动，如搅动了底部应重新沉淀。
吸至澄清液的1/3时，应逐渐减缓流速，至留下含沉淀物的水样20mL～25（或30～40）mL，放入30（或50）mL的定量样品瓶中。
用吸出的少量上清液冲洗沉淀器2次～3次，一并放入样品瓶中，定容到30（或50）mL。
如样品的水量超过30（或50）mL，可静置24 h后，或到计数前再吸去超过定容刻度的余水量。
浓缩后的水量多少要视浮游植物浓度大小而定，正常情况下可用透明度作参考,依透明度确定水样浓缩体积见表3，浓缩标准以每个视野里有十几个藻类为宜。
浮游植物细胞质量分析报告
浮游植物细胞质量分析报告浮游植物广泛分布于海洋、淡水等水体中，是水生生态系统中重要的初级生产者。
它们的细胞构造和生长方式对水质和生态环境有重要影响。
本报告将对浮游植物的细胞质量进行分析和总结。
一、浮游植物的细胞质量指标1.细胞大小：浮游植物的细胞大小多种多样，从微米到毫米不等。
通常，细胞大小与浮游植物的种类和生长环境有关。
2.细胞形态：浮游植物的细胞形态多样，包括球形、椭圆形、链状和丝状等。
细胞形态可以通过光学显微镜观察和测量。
3.细胞结构：浮游植物的细胞结构主要包括细胞壁、质膜、质网、叶绿体等。
细胞结构的研究可以通过电子显微镜和组织切片等方法进行。
4.细胞生长：浮游植物的细胞生长包括细胞分裂和细胞扩张两个过程。
细胞生长的速率和方式可以通过实验室培养和野外观察来研究。
二、浮游植物细胞质量的影响因素1.光照条件：光照是浮游植物的主要能量来源，光照不足会限制浮游植物的生长和细胞分裂。
2.营养物质：浮游植物需要充足的营养物质供给，如无机盐、有机物和微量元素等。
不同种类的浮游植物对营养物质的需求量和种类有所差异。
3.温度：温度对浮游植物的生长和代谢活动有重要影响。
过高或过低的温度都会影响浮游植物的细胞质量。
4.酸碱度：水体酸碱度的变化会影响浮游植物的生长和存活。
过高或过低的酸碱度都会对浮游植物产生不利影响。
三、浮游植物细胞质量的研究方法1.显微观察：利用显微镜对浮游植物的细胞形态、大小和结构进行观察和测量。
2.组织切片：将浮游植物样品制成组织切片，利用电子显微镜进行细胞结构的观察和分析。
3.流式细胞仪：利用流式细胞仪对浮游植物的细胞大小、细胞周期和叶绿素含量等进行定量分析。
4.实验室培养：通过在实验室中模拟不同环境条件对浮游植物进行培养和观察，研究不同因素对浮游植物细胞质量的影响。
四、浮游植物细胞质量的意义和应用1.环境指示器：浮游植物细胞质量的研究可作为水体生态环境质量的评估指标之一，通过分析浮游植物的种类和数量可以判断水质的优劣。
陈纯-四种浮游植物生物量计算方法的比较分析_定稿
浮游植物是湖泊、水库和河流生态系统中重要的初级生产者，其现存量是指某一时间内单位体积
论文资助来源：广东省水利厅科技创新项目（ 2009-22 ）和国家自然科学基金重点项目（ U0733007 ） 第一作者 . 陈纯 , 女 , 1988 年 12 月生 , 从事淡水生态学研究 ; Email: ciara_2012@. 通迅作者：韩博平 , Email: tbphan@.
1.2 浮游植物群落种类组成概况 8 次采样共鉴定出浮游植物 64 种，隶属于 6 门[15] 。其中种类最多的是绿藻（38 种） ，其次是硅藻 （13 种）和蓝藻（8 种） ，其余种类 5 种。主要优势种类是 Discostella sp. 和微小多甲藻（Peridinium pusillum） 。 1.3 浮游植物种群生物量的计算 任一浮游植物种类的种群定量分析样品分别选自上述 8 次不同采样时间的不同围隔，即各浮游植 物种群均有 8 个定量分析样品， 每个定量分析样品均取 3 次 0.1mL 的浓缩样品进行镜检。 采用标准法、 细分法、 粗分法和资料法 4 种不同方法对每一浮游植物种类的种群生物量进行计算， 以 Discostella sp.、 微小多甲藻（Peridinium pusillum） 、月形单针藻（Monoraphidium lunare）和尖针杆藻（Synedra acus） 为例。4 种方法的具体步骤如下： 标准法，分别对 Discostella sp.、微小多甲藻、月形单针藻和尖针杆藻中不同大小的藻细胞的各参 数进行测量，求得各参数的平均值后根据相关公式计算出体积，再算出生物量。各种群的测量参数图 示及体积公式 见表 1。 细分法，较详细记录各种群的藻细胞体积测量值（表 2） ，按各种群记录的藻细胞体积测量值进行 细胞计数，最后算出生物量。 粗分法，将各种群的藻细胞体积测量值划分为 3 个等级（表 2） ，按各种群各等级的藻细胞体积测 量值进行细胞计数，再算出生物量。 [2、4、6-7] 找到 Discostella sp. 、微小多甲藻、月形单 资料法，对各种群进行细胞计数，查阅文献资料 3 3 针藻、尖针杆藻的平均细胞体积分别为 684μm 、4208μm 、56μm3、2475μm3，再计算出生物量。 表 1 Discostella sp. 、微小多甲藻、月形单针藻和尖针杆藻的测量参数图示及体积公式 Tab.1 Measured parameters and volume formulas of Discostella sp., Peridinium pusillum, Monoraphidium lunare and Synedra acus Discostella sp. 微小多甲藻 月形单针藻 尖针杆藻
浮游植物的采集 计数与定量方法
。如下面的不浓浓缩缩体积稀与释 水透明度（体现水的肥瘦）之间关系大致如下， 仅供参考。
瘦中 肥
透明度 >1m 老水 特老水
>50cm
>30cm
<30cm <20cm 浓2缩020/的3/27标准是以每个视野里有十几个藻类为宜。
三、计数方法
将浓缩沉淀后水样充分摇匀后，立即用0.1ml吸量管吸出0.1ml样品，注入
体积公式计算细胞体积。细胞体积的毫升数相当于细胞重量的克数。
这样体积值（μm-3）可直接换算为重量值（109μm-3）可直接换算
为重量值（109μm-3≈1毫克鲜藻重）。
下列体积公式，可供计算生物量时参考：
圆锥体：V=1/3лR2h
圆柱体：V=лR2h
球 体：V=4/3лR3
椭圆体：V＝4/3ab2л（a为长轴半径，b为短轴半径）
0 . 1 ml 计 数 框 内 （ 计 数 框 的 表 面 积 最 好 是 2 0 × 2 0 ㎜ 2 ） ， 小 心 盖 上 盖 玻 片 （
22×22㎜2），在盖盖玻片时，要求计数框内没有气泡，样品不溢出计数框。
然后在14×40或16×40倍显微镜下计数。即在400－600倍显微镜下计数。每
瓶标本计数两片取其平均值，每片大约计算50～100个视野，但视野数可按浮
入虹吸管内，管口应始终低于水面，虹吸时流速流量不可过大，吸至澄 清液1／3时，应控制流速，使其成滴缓慢留下为宜。
采水时，每瓶样品必须贴上标签，标签上药剂在采集的时间、地点、 采水体积等，其他详细内容应另行做好记录，以备查对，避免错误。
1000m浓l 缩30的ml 体5积0 m视l 浮100游ml 植物的多少而定。也可根据水的肥瘦确定浓缩体积
浮游植物采集与定性定量分析
0.1毫升样品的数量就是将实际看到的每个视野 物种数量乘以2000倍。
第3行
第5行 第8行
总的物种数=
实际看到的物
种数×10/3
3. 水滴法
镜检：根据1毫升的水相当于20滴水，用移液管 取1滴水样，转移至计数框，全部计数。
总数量的计算：假如1升浮游植物水样定容至30 毫升，那么总数量=30÷（1÷20）×计算所得个数
样品采集：首先进行水平面设点和垂直分层，然后 用1升
采水器采集1升水样，加鲁格氏液15毫升，转移 至沉降器沉 淀 24～48小时，通过虹吸法获得浓缩的定 量样品，定容至
50毫升
样品固定：添加3～5毫升甲醛溶液
2. 定性分析 采集：用 25 号浮游生物网在水面以下呈 “∞” 来
回拖行，将所采集水样保存于小方瓶（50毫升）
浮游植物采集与定性定量分析 2019.03.18
蓝藻门 裸藻门 淡 水 种 类 绿藻门 隐藻门 硅藻门 黄藻门
甲藻门 轮藻门
金录水体理化 指标
确定采样层次
（福尔马林/碘液）
样品固定
定性样品采集
（25#,64 μm）
定量样品采集
（1L+10L）
（定性、定量）
室内分析
1. 定量分析
固定：添加3-5毫升甲醛溶液保存。
定量计数方法 视野法 行格法 水滴法
0.1ml计数框
移液枪取样0.1毫升 均匀分布于计数框 对部分视野进行镜检 计数该部分视野的数量
换算整个计数框的数量
计数框的面积是400 mm2，而显微镜的视野面 积是固定值。 显微镜视野面积的计算：某型号显微镜的视场 数 为 20 ， 那 么 在 高 倍 镜 下 的 实 际 视 场 直 径 为 20/40=0.5mm ， 高 倍 镜 下 的 视 野 面 积 为 3.14*0.25*0.25≈0.2 mm2。
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4、注意事项： ①计算过程中常可碰到某些个体的一部分在 视野中，而另一部分在视野外，可规定出 在视野上半圈者计数，下半圈者不计数。 此外，数量最好用细胞数表示，对不易用 细胞数表示的群体或丝状体，可求出其平 均细胞数。 ②计算时优势种类尽可能鉴别到种，其余鉴 别到属。注意不要把微可用下列公式计算： N = (Cs × V ) / ( Fs × Fn ×U ) × Pn 式中：Cs——计数框的面积（mm2）； Fs——显微镜的视野面积（mm2） Fn——计数的视野数 V——1升水样浓缩后的体积（ml） U——计数框的体积（ml） Pn——计数出的浮游植物个数 如果计数框、显微镜固定不变，Fs、V、U也固定 不变，公式(Cs × V ) / ( Fs × Fn ×U )用 常数K代替，上述公式可简化为：N = K × Pn。
2、生物量的换算
★生物量较数量更能反应水体中浮游植物的现 存量，不同水体的数据也更具可比性，所以 计算出的数值应按湿重换算成生物量。 ★湿重通常按体积计算，由于不同水体的个体 差异较大，所以最好每个样品都能实测其优 势种的体积，但此项工作量相当大。
3、计数具体要求；
①校正计数框容积。 ②定量用的盖玻片应以碱水或肥皂水洗净备用，用前 可浸于70﹪酒精中，用时取出拭干。 ③滴取样品以后最好用液体石蜡封好计数框四周，以 防计数过程中干燥。 ④用台微尺测显微镜一定倍数下的视野直径。 ⑤选好与计数框同样容积的定量吸管。 ⑥定量时应将浓缩标本水样充分摇匀，快吸快滴 。 ⑦加上盖玻片后不应有气泡出现 。 ⑧计数后的定量样品应保存下来。
浮游植物的定量分析
1、计数：
★ 将浓缩沉淀后的水样充分摇匀，吸出 0.1 mL置计数框内 （表面积最好 20 ×20 mm），在400—600倍显微镜下观 察计数。 ★每瓶标本计数2片取其平均值，每片大约计算50个视野， 如果平均每个视野有5—6个时浮游植物就要数100个视野， 如平均每个视野不超过1—2个时，要数200个视野以上， ★ 同一样品的2片计算结果和平均数之差如不大于其均数的 ±15％，其均数可视为有效结果，否则还必须测第 3片， 直至 3片平均数与相近两数之差不超过均数的15％为止， 这两相近值的均数，即可视为计算结果。