生物测定法
生物利用度测定方法
生物利用度测定方法生物利用度测定是指评估生物种群资源的利用程度和生态系统的可持续利用能力的方法。
生物利用度测定的目的是为了科学合理地利用生物资源，保护生物多样性和生态环境。
下面将介绍几种常见的生物利用度测定方法。
一、物种多样性测定物种多样性是评估生物资源利用度的重要指标之一。
常用的物种多样性指标有物种丰富度、物种均匀度和物种多样性指数等。
物种丰富度反映了群落中不同物种的数量，物种均匀度反映了物种相对数量的均衡程度，物种多样性指数综合考虑了物种丰富度和均匀度的差异。
通过对不同生态系统的物种组成和特征进行调查和统计分析，可以评估不同区域或不同生态类型的生物资源的利用度。
二、种群数量测定种群数量是评估生物资源利用度和适应性的重要指标之一。
研究人员可以通过野外实地调查、捕捉和标记技术、DNA分析等方法测定不同生物种群的数量。
通过对种群数量的测定和动态变化的监测，可以评估生物种群资源的可持续利用能力和生态系统的稳定性。
三、生物估测方法生物估测是一种常用的生物利用度测定方法，通过对生物群落中个体数量、数量比例、种群密度等进行预测和估计，来评估生物资源利用度和适应性。
生物估测通常采用样方法、标记再捕法、适应性测量等方法。
通过对样方内个体数量和种群密度的测定，可以了解生物种群的状况和数量变化趋势，从而评估生物资源的利用度和适应性。
四、资源评估方法资源评估是一种综合性的生物利用度测定方法，通过对生态系统中各种生物资源的测定和调查，评估生态系统的物种组成和数量、生物种群的分布和数量、生物种群的生态功能和适应性等指标，来评估生物资源的利用程度。
资源评估可通过野外实地调查、样方法、生物标本的收集和鉴定等方法进行。
通过对生态系统的资源的测定和评估，可以全面地了解生物资源的利用度和生态系统的可持续利用能力。
以上介绍了几种常见的生物利用度测定方法，包括物种多样性测定、种群数量测定、生物估测方法和资源评估方法。
这些方法可以评估生物资源的利用程度和生态系统的可持续利用能力，为科学合理地利用生物资源和保护生态环境提供参考。
微生物量的测定方法
微生物量的测定方法
常见的微生物量测定方法包括：
1. 平皿计数法：将样品按一定稀释倍数加入琼脂平皿中，培养后通过计数器统计微生物在平皿上的数量，以此计算原样品中微生物的数量。
2. 滤膜计数法：将样品过滤后将滤膜放在富含营养的琼脂平板上培养，通过计数器统计滤膜上微生物的数量，以此计算原样品中微生物的数量。
3. 光密度法：利用菌落浑浊作用测定微生物规模大小的方法，称为“比色法”，并以光密度来表示菌落数量的多少。
4. 电极测定法：利用特定的氧化还原反应来测定微生物量，例如，生物化学需氧量（BOD）和化学需氧量（COD）。
5. 溶解氧测定法：利用溶解氧在水中的含量来推算微生物的存在量。
6. 分子生物学方法：利用PCR、DNA芯片等技术检测微生物数量，也可通过它们的遗传物质（如rRNA）来推算微生物的存在量。
生物活性测定法的原理
生物活性测定法的原理
生物活性测定法是一种通过观察或测量生物体对化学物质或其他环境因素的反应来评估其活性的方法。
常用的生物活性测定法包括细胞增殖或生长抑制实验、细胞毒性实验、酶活性实验、抗菌活性实验等。
生物活性测定法的原理主要基于以下几个方面：
1. 细胞反应原理：生物活性测定法常通过观察或测量细胞对化学物质的反应来评估其活性。
例如，通过在培养基中加入待测物质，观察细胞的增殖情况或生物学特征的改变，从而评估其对细胞的生长抑制或促进作用。
2. 酶反应原理：酶在生物体内发挥着极为重要的生物催化作用。
生物活性测定法中常通过测量酶的活性来评估待测物质的生物活性。
例如，通过添加待测物质到含有酶底物的体系中，观察酶反应的速率或生成产物的量来评估待测物质对酶的影响。
3. 细菌抗菌原理：生物活性测定法中常通过测量待测物质对细菌的抑制作用来评估其抗菌活性。
例如，利用平板扩散法或微量稀释法，将待测物质与细菌共同培养，观察细菌的生长情况或测量细菌的最小抑菌浓度，从而评估其抗菌活性。
4. 动物体内反应原理：一些药物或化学物质的生物活性往往需要通过动物体内实验来评估。
常见的方法包括动物行为观察、组织活检、毒性评估等。
通过观察
动物对待测物质的生理、行为或组织结构的变化，来评估其生物活性。
综上所述，生物活性测定法的原理主要是通过观察或测量生物体对待测物质的反应来评估其活性。
具体的原理可以根据不同实验方法和待测物质的性质来确定。
体外生物测定法
体外生物测定法
体外生物测定法是一种常见的实验方法，用于评估化学物质对生物体的影响。
这种方法不仅应用广泛，而且非常重要，可用于药物研发、毒性测试以及环境监测等领域。
体外生物测定法是指在实验室中，通过对细胞、组织或器官的体外实验，来模拟真实生物环境下的反应过程。
这种方法可以避免动物实验的使用，减少对动物的伤害，并且更加快速和经济高效。
同时，体外生物测定法还可以提供更多关于药物或化学物质对生物体的毒性和效应的信息。
在体外生物测定法中，常用的实验对象包括细胞系、人体组织片、人工器官等。
通过给予待测物质，观察其对细胞或组织的生长、代谢和功能的影响，可以获得对其毒性的初步评估。
此外，还可以运用不同的体外生物测定法，如MTT法、细胞周期分析、细胞凋亡检测等，来深入研究药物或化学物质的作用机制。
体外生物测定法在药物研发过程中起到了非常重要的作用。
通过对新药候选化合物在体外的活性和毒性进行评估，可以帮助研究人员筛选出具有潜力的药物，并在早期阶段排除有不良效应的化合物。
这不仅可以减少动物实验的数量，还可以节约时间和成本。
此外，体外生物测定法还广泛应用于环境监测领域。
通过将环境样品与细胞或组织接触，观察其对细胞或组织的影响，可以评估环境中的污染物对生物体的毒性和危害程度。
这有助于及时掌握环境质量，并采取相应的防治措施。
总体而言，体外生物测定法是一种重要的实验方法，广泛应用于药物研发、毒性测试和环境监测等领域。
它不仅可以减少对动物的伤害，还能提供快速、经济高效的评估手段。
随着科学技术的不断发展，相信体外生物测定法将在未来发展中发挥更加重要的作用。
实验十杀菌剂的生物测定生长速率法
五、实验数据及其处理
纯生长量=菌落平均直径-菌饼直径 抑菌率（%）=[(对照菌落纯生长量-处理菌落纯生长量/ 对照纯生长量]×100%
50%多菌灵对苹ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ腐烂病菌的抑制作用(生长速率法)
菌落直径（mm）
药 剂
浓度（mg/L）
浓度 对数
ⅠⅡ
ⅢⅣ
平均
抑制 （%）
机 率 值
6 y = 0.9624x + 2.8171
5
机率值
4
3
1
2
3
浓度对数
六、问题讨论
根据实验结果比较各种供试药剂之间对病原菌菌丝生长 的抑制作用
菌落生长速率的表示方法 菌落达到一个给定的大小所需要的时间（天或小时） 在单位时间内菌落直径的大小
生长速率法常用的菌种 苹果腐烂病菌（Valsa mali） 小麦纹枯病菌（Rhzoctonia solani ） 棉花枯萎病菌（Fusarium oxysporium） 葡萄白腐病菌（Coniothyrium diplodiella） 小麦全蚀病菌（Gaeumannomyces graminis） 辣椒疫霉病菌（Phytophthora capsici）
三、试剂和仪器设备 高压灭菌锅、超净工作台、酒精灯、接种针、纱布、吸 管、消毒培养皿、打孔器、无菌小烧杯 PDA培养基 病原菌（苹果腐烂病菌） 供试杀菌剂(多菌灵)
四、实验步骤
将培养基加热溶化，冷却至45-50℃，加入供试药液制成 含药液的培养基，并分别倒入培养皿中冷却
以无菌操作手续，用打孔器打取圆形菌块后用接种针挑至 培养皿中央，然后将培养皿置于培养箱（27℃）中培养即可
一、实验目的
学习并掌握杀菌剂的生物测定方法之一--生长速率法
测量农药的方法有哪些
测量农药的方法有哪些测量农药的方法有很多种，具体使用哪种方法需要根据实际情况和实验目的来确定。
下面将介绍一些常见的测量农药的方法。
1. 生物测定法：通过对生态系统中的生物（如鱼、昆虫、植物等）进行观察和分析，评估农药的毒性和影响。
这种方法可以确定农药对某些生物的致死浓度（LC50）或抑制浓度（EC50），从而衡量其毒性水平。
2. 化学分析法：通过使用化学试剂进行农药残留的分析和定量测定。
常用的化学分析方法包括气相色谱法（GC）、液相色谱法（HPLC）、质谱法（MS）等。
这些方法可以精确测定农药的含量，并且能够对多种农药进行同时检测。
3. 免疫分析法：采用免疫学原理，利用特异性抗体与农药结合，在免疫试纸、酶联免疫吸附法（ELISA）等平台上进行测定。
免疫分析法具有操作简便、快速、灵敏度高的特点，被广泛应用于农药残留检测领域。
4. 生物传感器法：利用生物传感器对特定生物分子进行检测与测量，从而实现对农药的分析。
常见的生物传感器包括酶传感器、细胞传感器和基因传感器等。
这些传感器具有快速、高灵敏度和选择性好的特点，对农药的监测具有较高的应用潜力。
5. 植物毒理学方法：通过研究不同植物对农药的反应和生长影响，评估其对环境的毒性和生态效应。
植物毒理学方法可以通过观察植物的种子发芽率、根长、叶片形态等指标来评判农药对植物生长的影响。
6. 土壤利用能力评价法：通过研究土壤中农药的吸附、降解等过程，评估土壤对农药的利用能力，并确定其在土壤中的残留量。
这种方法可以帮助我们了解农药在土壤环境中的去除和迁移情况，为环境保护和农作物生产提供依据。
7. 土壤有机质测定法：农药是常以残留物的形式存在于土壤中，利用土壤的有机质含量来测定其中的农药含量是一种常见的方法。
土壤中的有机质对农药有吸附作用，通过测量土壤中有机质的含量，可以推断其中的农药含量。
总结：测量农药的方法有生物测定法、化学分析法、免疫分析法、生物传感器法、植物毒理学方法、土壤利用能力评价法和土壤有机质测定法等。
生物量的测定方法
生物量的测定方法
有以下几种常见的生物量测定方法：
1. 直接测量法：直接将生物体进行称量或计数，如称重法、计数法等。
2. 尺度法：通过对生物体或其一部分的长度、体积、表面积等尺度进行测量，再根据预先建立的标准曲线或公式，计算出生物体的生物量。
3. 捕获回收法：对某一生境中的生物体进行捕获或采集，然后通过称重或计数等方法，估算该生境中所有生物体的生物量。
4. 化学分析法：通过将生物体或其部分进行化学处理，然后经过反应后生成的产物进行测量，从而计算出生物体的生物量。
5. 定标法：通过施加一定数量或浓度的标准物质于生物体，然后测量生物体与标准物质之间的关系，推算出实际生物体的生物量。
6. 间接测量法：通过测量与生物体生长或代谢有关的其他参数，如光合作用速率、呼吸速率等，再通过相关公式或模型计算出生物体的生物量。
需要注意的是，不同的生物体和研究目的可能需要采用不同的测量方法，以确保测量结果的准确性和可靠性。
土壤微生物测定方法
土壤微生物测定方法
目前常用的土壤微生物测定方法主要包括直接计数法、培养法、DNA
分析法和生化方法等。
1.直接计数法：直接计数法是指通过显微镜观察和计数土壤中微生物
的数量。
这种方法简单直观，可以快速测定土壤中微生物的数量。
但是，
由于土壤微生物数量庞大，直接计数方法需要大量的样品和时间，且对操
作者的要求较高。
2.培养法：培养法是指通过将土壤样品接种在富含营养物质的培养基上，并在一定温度和湿度下培养一段时间，通过观察和计数可见的菌落来
测定土壤中微生物的数量和种类。
这种方法可以有效地测定土壤中常见的
细菌和真菌等，但是对于无法培养的微生物种类相对有限。
3.DNA分析法：DNA分析法是指通过提取土壤中微生物的DNA，并通
过PCR扩增和DNA测序等技术来测定土壤中微生物的种类和多样性。
这种
方法可以检测到所有存在的微生物，无论是否可以培养。
因此，DNA分析
法可以更全面地测定土壤中微生物的多样性和种类。
但是，这种方法对实
验条件和技术要求较高。
4.生化方法：生化方法是指通过测定土壤中微生物代谢产物的含量或
活性来测定土壤中微生物的数量。
例如，通过测定脲酶、葡萄糖酶、氧化
还原酶等土壤微生物常见的酶活性来评估微生物的活性和数量。
生化方法
可以快速测定土壤微生物的数量和活性，但是受土壤理化性质的影响较大。
总之，以上所述的方法各有优缺点，可以根据实际情况选择合适的方
法或多种方法相结合来测定土壤微生物的数量和多样性。
此外，测定方法
的选择还要考虑实验所需的样品数量、可行性和经济性等因素。
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生物测定法一．卵泡刺激素（FSH）生物检定法——幼大鼠卵巢增重法1.实验材料及用具1.1天平精度0.01mg 供试品称量用精度0.1 mg 卵巢称重用精度0. 1g 大鼠称重用1.2实验用具注射器（1ml，精度0.01ml），吸管、移液管、烧杯、有塞玻璃瓶、玻璃棒、量筒、滤纸。
1.3手术用器械手术板、手术剪、直镊、眼科剪、眼科直镊、眼科弯镊。
1.4试剂氯化钠、牛血清白蛋白、氢氧化钠、绒促性素（HCG）。
2.溶液配制2.1生理盐水称取氯化钠适量，加水配成0.9%的溶液。
2.2氢氧化钠溶液称取氢氧化钠适量，加水配成1mol/L氢氧化钠溶液。
2.3牛血清白蛋白生理盐水称取牛血清白蛋白适量，加入到生理盐水中，配成1mg/ml的牛血清白蛋白溶液，并用1mol/L氢氧化钠溶液调节值至7.2±0.2。
2.4溶媒称取已知效价的HCG（粉末原料或粉针均可）加入到牛血请白蛋白生理盐水种，混匀，配成20u/ml的溶液。
2.5标准品溶液2.5.1取尿促性素标准品，放置至室温。
割开安瓿（注意勿使内容物损失）立即用溶媒将内容物洗出按FSH的标示效价配成10u/ml或20u/ml标准品溶液，亦可直接配成相当于高剂量d s3浓度的溶液。
2.6标准品溶液的稀释2.6.1根均动物品系、来源、季节按中国药典附录卵泡刺激素生物鉴定法的要求，选择标准品高、中、低3组剂量。
一般高剂量为2～4u/ml，剂距r不得大于1：0.5。
2.6.2分别精密量取10u/ml或20u/ml标准品溶液适量，各精密加入一定量溶媒，配制成高、中、低三组标准品稀释液。
2.6.3稀释液至4～8℃保存，供3日内使用。
2.7供试品溶液2.7.1按供试品FSH的标示效价或估计效价，同标准品溶液的配制。
2.7.1.1粉末放置至室温，迅速精密称取适量。
将称得的毫克数，乘以标示单位数或估计效价，得总单位数。
用溶媒配成10u/ml 或20u/ml的供试品溶液，亦可直接配成相当于高剂量d T3浓度的溶液。
2.7.1.2注射用粉针按标准品溶液配制方法操作，供试品溶液的稀释同标准品溶液的稀释、保存、使用。
3.实验动物同一来源、品系、出生19～23日，体重36～50g 健康的雌幼大鼠，一次实验所用动物出生日期相差不得超过3日，体重相差不得超过10g。
4.检定法4.1准备鼠盒，标明组别。
4.2实验当日按体重随机分组，每组不得少于8只动物，照常供给饲料和饮水，鼠盒应放置在通风、干燥、温度均匀的动物架上。
4.3将配好的标准品和供试品的稀释液在注射前，取出放置至室温。
4.4按组别分别给以标准品或供试品3种浓度稀释液，每鼠0.5ml，每天1次，连续3天，每天应安排在相同的时间内注射，或3次注射的间隔时间（约22小时）应相同。
注射后将稀释液放回4～8℃保存。
4.5皮下注射勿使药液溢出，每次注射要调换部位，如第一次给药自一侧背部皮下进针，第二、第三次在另一侧或中央进针，将药液注入不同部位。
4.6最后一次注射后24小时，处死大鼠。
4.6.1按给药次序用适宜方法处死大鼠称体重，记录。
4.6.2将已死亡的大鼠仰卧固定手术板上，剪开腹肌，推开肠管暴露卵巢。
，将二侧卵巢剪下取出，把卵巢置于用生理盐水湿润的滤纸上，剥离附着的脂肪组织，并去除输卵管，用滤纸片吸去附着的水分，立即称重，并记录在与体重相对应的栏中。
5.实验结果计算5.1以卵巢重（mg）为反应值（y）按中国药典附录生物检定统计法列表的格式整理。
5.2按量反应平行线测定（3·3）法或（3·3·3）法随机设计处理结果。
5.2.1进行可靠性测验，实验结果成立者，进行以下计算。
5.2.2计算M、R、P T、S M 、FL 、FL%。
以上计算也可编制程序，用计算机计算。
5.3实验结果中出现的特大、特小等特异反应值，按中国药典规定判断其是否可以剔除，个别剂量组缺失的数据，如符合该附录要求，按所规定的方法补足。
6.结果判断6.1FSH（3·3）或（3·3·3）法的可靠性测验应为剂间、回归变异非常显著，偏离平行、二次曲线、反向二次曲线不显著，否则实验结果不成立，对实验结果不成立者应做以下检查：6.1.1检查实验操作包括溶液配制、注射、实验动物的饲养等是否符合本法的实验要求。
6.1.2剂间、回归不显著，S、T或U的反应不在对数剂量—反应直线范围内，应根据反应结果重新调整剂量复试。
6.2可靠性测验通过，实验结果成立。
如试品间变异显著时，可根据S和T各剂量组的反应情况调整剂量以减小实验误差。
6.2.1 T或U各剂量组反应值明显低于高于S剂量组时，可调低T 或U的剂量，或提高T或U的估计效价。
6.2.2 T或U各剂量组反应值明显低于低于S剂量组时，可调高T 或U的剂量，或降低T或U的估计效价。
6.3实验误差（FL%）的判断按药典规定，FL%超过者，可做以下处理：6.3.1检查动物来源、实验操作、对动物的照顾等是否符合本法的实验要求。
6.3.2重复实验6.3.3按规定将几次实验结果合并计算，求得合并计算的效价及实验误差，应符合规定。
二．黄体生成素（LH）生物检定法——幼大鼠精囊增重法1.实验材料及用具1.1天平精度0.01mg 供试品称量用精度0.1 mg 精囊称重用精度0. 1g 大鼠称重用1.2实验用具注射器（1ml，精度0.01ml），吸管、移液管、烧杯、有塞玻璃瓶、玻璃棒、量筒、滤纸。
1.3手术用器械手术板、手术剪、直镊、眼科剪眼科直镊、眼科弯镊。
1.4试剂氯化钠、牛血清白蛋白、氢氧化钠。
2.溶液配制2.1生理盐水称取氯化钠适量，加水配成0.9%的溶液。
2.2氢氧化钠溶液称取氢氧化钠适量，加水配成1mol/L氢氧化钠溶液。
2.3溶媒的配制称取牛血清白蛋白适量，加入到生理盐水中，配成1mg/ml的牛血清白蛋白溶液，并用1mol/L氢氧化钠溶液调节值至7.2±0.2。
2.4标准品溶液取尿促性素标准品，放置至室温。
割开安瓿（注意勿使内容物损失）立即用溶媒将内容物洗出，按LH的标示效价配成适当浓度（高剂量d s3）的标准品溶液。
2.5标准品溶液的稀释2.5.1根均动物品系、来源、季节按中国药典附录黄体生成素生物鉴定法的要求，选择标准品高、中、低3组剂量。
一般高剂量为8～10u/ml，剂距r不得大于1：0.5。
2.5.2稀释液置4～8℃保存，供四日内使用。
2.6供试品溶液2.6.1按供试品LH的标示效价或估计效价，同标准品溶液的配制。
2.6.1.1粉末放置至室温，迅速精密称取适量。
将称得的毫克数，乘以标示单位数或估计效价，得总单位数。
用溶媒配成适当浓度（高剂量d T3）的供试品溶液。
2.6.1.2注射用粉针按标准品溶液配制方法操作，供试品溶液的稀释同标准品溶液的稀释、保存、使用。
3.实验动物同一来源、品系、出生19～23日，体重36～50g 健康的雄幼大鼠，一次实验所用动物出生日期相差不得超过3日，体重相差不得超过10g。
4.检定法4.1准备鼠盒，标明组别。
4.2实验当日按体重随机分组，每组不得少于6只动物，照常供给饲料和饮水，鼠盒应放置在通风、干燥、温度均匀的动物架上。
4.3将配好的标准品和供试品的稀释液在注射前取出，放置至室温。
4.4按组别分别给以标准品或供试品3种浓度稀释液，每鼠0.5ml，每天1次，连续4天，每天应安排在相同的时间内注射，或4次注射的间隔时间（约22小时）应相同。
注射后将稀释液放回4～8℃保存。
4.5皮下注射勿使药液溢出，每次注射要调换部位，如第一次给药自一侧背部皮下进针，第二、第三次在另一侧或中央进针，将药液注入不同部位。
4.6最后一次注射后24小时，处死大鼠。
4.6.1按给药次序用适宜方法处死大鼠，称体重，记录。
4.6.2将已死亡的大鼠仰卧固定于手术板上，剪开腹肌，摘取整个前列腺，由前叶和精囊交界处剥出精囊，用滤纸片吸去附着的水分，立即称重，并记录在与体重相对应的栏中。
5.实验结果计算5.1以精囊重（mg）为反应值（y）按中国药典附录生物检定统计法列表的格式整理。
5.2按量反应平行线测定（3·3）法或（3·3·3）法随机设计处理结果。
5.2.1进行可靠性测验，实验结果成立者，进行以下计算。
5.2.2计算M、R、P T、S M 、FL 、FL%。
以上计算也可编制程序，用计算机计算。
5.3实验结果中出现的特大、特小等特异反应值，按中国药典规定判断其是否可以剔除，个别剂量组缺失的数据，如符合该附录要求，按所规定的方法补足。
6.结果判断6.1 LH（3·3）法或（3·3·3）法的可靠性测验应为剂间、回归变异项非常显著，偏离平行、二次曲线、反向二次曲线不显著，否则实验结果不成立，对实验结果不成立者应做以下检查：6.1.1检查实验操作包括溶液配制、注射、实验动物的饲养等是否符合本法的实验要求。
6.1.2剂间、回归不显著，S、T或U的反应不在对数剂量—反应直线范围内，应根据反应结果重新调整剂量复试。
6.2可靠性测验通过，实验结果成立。
如试品间变异显著时，可根据S和T各剂量组的反应情况调整剂量以减小实验误差。
6.2.1 T或U各剂量组反应值明显低于高于S剂量组时，可调低T 或U的剂量，或提高T或U的估计效价。
6.2.2 T或U各剂量组反应值明显低于S剂量组时，可调高T或U 的剂量，或降低T或U的估计效价。
6.3实验误差（FL%）的判断按药典规定，FL%超过者，可做以下处理：6.3.1检查动物来源、实验操作、对动物的照顾等是否符合本法的实验要求。
6.3.2重复实验6.3.3按规定将几次实验结果合并计算，求得合并计算的效价及实验误差，应符合规定。
三．绒促性素生物检定法——小鼠子宫增重法1.实验材料及用具1.1天平精度0.01mg 供试品称量用精度0.1 mg 子宫称重用精度 1 mg 试剂称重用精度0. 1g 小鼠称重用1.2实验用具注射器（1ml，精度0.01ml），吸管、移液管、容量瓶、带塞玻璃小瓶、烧杯、玻璃棒、脱脂棉、脱脂纱布、滤纸。
1.3手术用器械手术板、手术剪、直镊、眼科剪、眼科直镊、眼科弯镊。
1.4试剂氯化钠、羧甲基纤维素钠（CMC-N a）、乙醚。
2.溶液配制2.1生理盐水称取氯化钠适量，加水配成0.9%的溶液。
2.2 0.5%羧甲基纤维素钠溶液。
2.2.1称取羧甲基纤维素钠适量，于合适的烧杯中，加入少量水湿润，搅拌至糊状，再边加水边搅拌至羧甲基纤维素钠分散均匀，加水至足量，使成0.5%溶液。
亦可量取一定量的水，置烧杯中，将羧甲基纤维素钠分散在上述烧杯中水面上，放置过夜（4～8℃），使其自然湿润。
次日补加水使成0.5%溶液，搅拌均匀。
2.2.2 使用前，用2～3层脱脂纱布过滤，即得。