第七章 离体授粉
胚培养和离体授粉

三、培养方法 1. 成熟胚培养 (1)外植体 果实或种子,进行表面消毒,然后剥离胚 A. 胚珠的培养 将果实洗净,在超净工作台上,进行消毒,先 用70%酒精消毒,用无菌水冲洗3次,再用0.1%升汞消 毒,无菌水冲洗3次,从果实中取出胚珠,放入三角瓶 中培养.
B. 胚珠横切培养 胚珠横切处理后,胚成苗速度也较快.接种6 -7天后胚芽从切口处萌发出两半白色子叶,并迅 速长大转绿,而后由珠孔端长出根.茎,叶,根同时生 长,幼苗健壮. 而接种裸胚4-5天后虽能萌发,但后期生长 缓慢,幼苗生长细弱.
取材
消毒及剥离胚胚发育阶段 Nhomakorabea 成苗炼 苗
移 栽
2. 原胚培养 原胚指未成熟的胚,一般胚龄越大,成功率越 高。 (1)基本培养基 降低硝酸盐浓度,提高K+、Ca2+浓度,可促进 胚生长 蔗糖作为碳源,调节渗透压,胚龄越小,要求 的渗透压(糖浓度)越高,可控制幼胚早熟萌发。 一般为8%~12%,随胚龄增长而降低。 (2) 生长调节剂及附加物 ABA与NH4+可以抑制早熟萌发,椰乳、胚乳提 取物、番茄汁可促进幼胚生长。
(二)胚培养的意义 1. 胚挽救:远缘杂交合子胚发育不良, 中途败育,胚培养可获得杂种植株。 2. 打破种子休眠:提高萌发成苗,缩短 育种周期,加速良种繁育。 3. 诱导次生胚状体及胚性愈伤组织。 4. 种子生活力快速测定:木本植物种子 后熟期长。
(三)离体胚的发育方式 1. 合子胚发育途径: 球形胚---心形胚---鱼雷胚---子叶胚 2. 脱分化形成愈伤组织,可分化出胚状体或不定 芽。 3. 早熟萌发,形成生活力很差的畸形苗 早熟萌发(early mature sprouting): 幼胚接种后, 离体胚不继续胚性生长,而是在培养基上迅速萌 发成幼苗, 通常称之为早熟萌发。
细胞工程第七章

第七章植物胚胎培养和人工种子胚胎培养(embryo culture)是织物组织培养的一个主要领域。
植物胚胎培养是指对植物的胚(种胚)及胚器官(如子房,胚珠)进行人工离体无菌培养,使其发育成幼苗的技术。
广义胚胎培养研究还包括胚乳培养和试管受精等技术。
即胚胎培养将植物的胚胎与母体分离,培养在人工的培养基上形成幼苗的过程,包括幼胚培养、成熟胚培养、胚乳培养、胚珠培养、子房培养和试管受精。
胚培养胚乳培养胚珠和子房培养本章内容试管受精人工种子一、胚胎培养概念(一)胚培养胚培养指采用人工的方法在无菌条件下将胚从种子、子房或胚珠中分离出来,置于培养基上进行离体培养的方法,让其进一步生长发育,以至形成幼苗的过程。
(二)胚乳培养胚乳培养指处于细胞期的胚乳组织,将胚乳从母体上分离出来,在无菌的环境条件下培养,使其生长发育形成幼苗的过程。
(三)胚珠培养胚株培养是指将胚珠从母体上分离出来,在无菌的人工环境条件下培养,使其生长发育形成幼苗的过程。
(四)子房培养子房培养是指将子房从母体上分离出来,在无菌的人工环境条件下培养,使其生长发育形成幼苗的过程。
二、胚胎培养的意义及应用1、克服远缘杂交的不育性,获稀有杂种植物2、打破种子休眠,提早结实,缩短育种年限3、使生活力低下或无生活力的种子萌发4、使柑橘类植物合子胚正常发育5、测定种子生活力6、获三倍体或单倍体植株7、快速繁殖特殊植物8、用于理论研究二、离体授粉方法(一)收集花粉一、基本概念离体授粉(in vitro pollination):指在无菌条件下培养未受精子房或胚珠和花粉,使花粉萌发进入胚珠,完成受精作用。
(二)剥取子房或胚珠做母本的花蕾在开花前数天去雄并套袋,开花前一天取花蕾在实验室进行常规表面消毒之后,在无菌条件下剥取胚珠或子房培养。
()收集花粉在开花前数天(因不同植物而异)套袋,开花前一天或当天取花蕾或花药,表面消毒后,无菌条件下收集花粉。
(三)离体受精方法子房试管授粉直接引入法:注射法:无菌用刀片将子房壁或子房顶端切小口,把花粉悬浮液直接滴入切口后进行培养。
第七章植物离体繁殖

这样的方法可大大降低成本。
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4、再生植株的锻炼和移栽
A、移栽前后培养条件发生改变:
试管苗:恒温、高湿、弱光、无菌、充足的营养。 自然条件下,变温、低湿、强光、有菌、缺乏营养。
B、移栽后植株死亡的原因: 1)根系结构不完善:不生根(木本植物)、根与芽的输导组织不相通(愈伤
五、黄化
是指试管苗整株失绿、叶片全部或部分发生黄化现象。 原因: ① 培养基成分:含铁量少、或矿质营养不平衡、激素配比失衡、糖分不
足。
② 培养条件:通气差、光温及酸碱度不适、抗生素的使用。 控制:调节培养基成分,调节温度
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实例:毛白杨的快速繁殖 (Populus tomentosa var.)
度等。 当移栽后的小苗能开始生长,说明已经能够在正常的环境下生长。
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营养钵移栽
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第三节 植物快繁过程中的关键问题
一、污染:
原因:培养基器具灭菌不彻底, 操作的人为带入,环境不清洁。
控制:
二、遗传稳定性:
① 基因型:变异频率不同; ② 继代次数:随着继代次数增加,变异系数增加。
殖速度慢的一些植物,尤其对一些珍、稀、濒危的植物
的繁殖有更重要的意义。
(3)作为培育新品种的有效手段,繁殖和保存育种材料。如 远缘杂种、多倍体、突变体。
(4)通过茎尖培养等技术脱毒,扩增脱毒苗,达到提纯复壮 良种的目的。
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第一节 植物快繁的器官形成方式
植物胚胎培养与离体授粉

二、影响胚乳培养的因素
1.培养基与培养条件
(1)培养基
在胚乳培养中,常用的基本培养基有White、LS、MS、MT等,
其中以MS使用最多。 生长调节剂:2,4-D、玉米素等;
天然提取物:20%番茄汁、葡萄汁、玉米汁、椰乳、水解酪蛋白、 酵母提取物 促进胚乳培养;
往往有重要的利用价值。
2)胚乳再生植株的倍性
胚乳愈伤组织及再生植株的染色体数常常发生变化。
如苹果(2n=34)胚乳植株根尖细胞染色体数的分布范围是
29-56条,多数是37-56条,3倍体细胞只占2%-3%。
同一植株是不同倍性细胞的嵌合体。
染色体倍性混乱在胚乳培养中是相当普遍的。
但有些植株胚乳培养,如核桃、檀香、橙和柚等,
受精前的障碍 如花粉在柱头上不能萌发; 花粉管生长受抑制而不能进入胚珠, 其原因是花柱太长或花粉管生长缓慢。
受精后的障碍
胚和胚乳之间的不亲和,
或胚乳发育不良,杂种发育不成熟。
离体授粉
将未授粉的胚珠或子房从母体上分离下来,进行无菌培养, 并以一定的方式授以无菌花粉,使之在试管内实现受精的技术, 所以又称离体受精(fertilization in vitro)。
提高发芽率、缩短育种周期或加速良种繁育。
3. 克服多胚品种珠心胚的干扰
仙人掌、柑橘等,除正常有性胚外,还配以从珠心组织发生多个不定胚。
这些不定胚常常侵入胚囊,使合子胚发育受阻,影响了育种效率。
4. 快速繁殖良种砧木
可以产生大量的次生胚,加速良种砧木的繁殖;
而且胚胎发生技术是人工种子的重要基础。
5. 诱导胚性愈伤组织
《细胞工程》名词解释

植物细胞全能性:植物体的每个细胞都携带有该物种的全部遗传信息,因而只要在适当的条件下,植物一切生活细胞都具有分化为一个完整植株的潜在能力,这就是细胞的全能性。
这是细胞工程的理论基础。
细胞分化:个体细胞发育过程中,后代细胞在形态、结构和生理功能上发生差异的过程。
脱分化:原已分化的细胞,失去原有的形态和机能,又回复到没有分化的无组织的细胞团或愈伤组织,这个过程称为脱分化。
再分化:由脱分化状态的细胞再度分化形成另一种或几种类型的细胞的过程,称为再分化愈伤组织:外植体在离体条件下,细胞经脱分化等一系列过程,转变为一种能迅速增殖的无特定结构和功能的细胞团,称为愈伤组织。
愈伤组织细胞大而不规则,高度液泡化、没有次生细胞壁和胞间连丝。
继代培养:对来自于外植体所增殖的培养物通过更新新鲜培养基及不断切割或分离,进行连续多代的培养.外植体:植物组织培养中用来进行离体无菌培养的材料,可以是器官、组织、细胞和原生质体。
器官发生:指离体培养条件下的组织或细胞团分化形成不定根、不定芽等器官过程。
体细胞胚:由外植体可直接形成胚状体,外植体也可以经脱分化先形成愈伤组织,再由愈伤组织形成胚状体。
胚状体是由体细胞发育而来人工种子:通过将植物组织培养中所产生的体细胞胚或珠芽等包埋在“人工胚乳”和“人工种皮”里,制成的具有播种功能、类似天然种子的颗粒就称为人工种子。
繁殖系数:也叫增殖系(倍)数或增殖率,是指繁殖材料在一个培养周期内增殖的倍数。
污染:指在组织培养过程中培养基和培养材料滋生杂菌,导致培养失败的现象。
褐变:指在组织培养中,由于材料被切割而使多酚氧化酶活化将组织中的酚类物质氧化形成棕褐色的醌类物质,并向培养基中扩散,抑制培养物生长甚至导致其死亡的现象。
玻璃化:指组织培养过程中的特有的一种生理失调或生理病变,试管苗呈半透明状外观形态异常的现象。
悬浮培养:将游离的单细胞或小的细胞团,按照一定的细胞密度,悬浮在液体培养基中进行培养的方法。
细胞工程

花粉萌发 授粉材料的生理状态 培养基 培养条件
谢谢聆听
THANK YOU FOR YOUR ATTENTION
方法一:
直接在胚珠表面授予无菌的花粉
方法二: 预先培养花粉,将花粉洒在培养基表面,再接种到带有胚
座的裸露的胚珠于花粉培养基上。
离体胚珠授粉兼顾了前述两种方法的优点,既克服了 子房早脱现象又解决了花粉—柱头和花粉管—花柱组织间 的不亲和性问题。但在试验过程中,由于剥离胚珠操作时 间长,所以容易污染,且易对胚珠造成机械创伤。因此获 得正常发育的胚珠及种子的成功率不一定比离体柱头授粉 和离体子房授粉的更高。
将花粉播撒到离体带完整或部分胎座/心皮的胚珠上。
此法使胚珠保持原来体内胎座上的排列状态,从而可避免 有不良影响的机械损伤;胎座组织可促进种子发育,弥补 培养基成分对离体培养胚珠生长发育造成的不足。
胚珠着生的心皮壁部位,往往形成肉质突起,称为胎座 (placenta) 。胎座一般位于心皮的腹缝线上。心皮数目与 联合状况的不同产生了多种类型的胎座。
材料的选择:子房较大,胚珠较裂及授粉时间
②去雄后将花蕾套袋隔离 ③制备无菌子房或胚珠 ④制备无菌花粉 ⑤胚珠或子房的试管内授粉
离体柱头授粉是指通过对离体培养的雌蕊柱头 授粉而得到含有能育种子的果实的过程。 但是此法仍然不能克服花粉—柱头、花粉管— 花柱组织间的不亲和障碍。
赵郭艳、陈媛、刘丽波、邱佑平
目
2
1 离体授粉的常用方法
离体柱头授粉
录
4 5
3
离体子房授粉
离体胚珠授粉
胎座/心皮授粉
6 影响植物离体授粉后结实的因素
离体授粉技术是通过花粉管将雄配子传送到
离体授粉
第七章离体授粉1离体授粉的概念和种类1.1离体授粉的概念离体授粉(pollination in vitro)是指将未授粉的胚珠或子房从母体上分离下来,进行无菌培养,并以一定的方法授以无菌花粉,使之在试管内实现受精的技术,又称为离体受精(fertilization in vitro)或试管受精(test tube fertilization)。
1.2离体授粉的种类根据无菌花粉授于离体雌蕊的位置,可将离体授粉分为离体柱头授粉、离体子房授粉、离体胚珠授粉三种方式(图7-1)。
进行离体授粉时,从花粉萌发到受精形成种子以及种子萌发和幼苗形成的整个过程一般均是在试管内完成。
图7-1 离体授粉3种方式示意图(引自Razdan,1993)离体柱头授粉是指通过雌蕊的离体培养,使无菌花粉授于柱头上,得到含有可育的种子和果实的技术(图7-1a)。
离体柱头授粉的方法通常是在花药尚未开裂时切取母本花蕾,消毒后,在无菌条件下用镊子剥去花瓣和雄蕊,保留萼片,将整个雌蕊接种于培养基上,当天或第二天在其柱头上授以无菌的父本花粉。
离体柱头授粉是一种接近于自然授粉的试管受精技术,先后在烟草、金鱼草、玉米、小麦等植物上获得了成功。
通过人工方法将花粉直接引入子房,使花粉粒在子房腔内萌发,并进行正常受精,最后获得具有生活力的种子,这一技术又称为子房内授粉(intraovarian pollination)。
把花粉直接送人子房,实现受精作用是克服受精前障碍的有效途径。
子房内授粉可分为两种类型,即活体子房内授粉和离体子房内授粉。
活体子房内授粉是指被授粉的子房并不离体,仍然在活体植株上,对其用花粉悬浮液进行授粉,使活体子房发育并形成成熟种子的过程。
整个操作步骤包括:①确定供试植物的开花和花药开裂时间;②对母本花蕾去雄并套袋;③采集父本花粉;④确定适于父本花粉萌发的溶液;⑤将花粉引入子房。
花蕾去雄后1~2d即可将父本花粉引入活体母本的子房中。
花粉粒引入子房中的方法有两种:一是直接引入法,即用锋利刀片在子房壁或子房顶端上开一切口,把花粉从切口处送进子房;二是注射法,即用lOOmg/L的硼酸将花粉粒配制成悬浮液,每滴悬浮液含100~300个花粉粒。
植物胚胎培养及离体授粉
第四节 植物离体授粉
• 离体授粉是指将未授粉的胚珠或子房从 母体上分离下来,进行无菌培养,并以 一定方式授以无菌花粉,使之在试管内 实现受精的技术。 • 三种方式
(一)离体柱头授粉 是指通过雌蕊的离体培养,使无菌花粉授 于柱头上,得到含有可育种子和果实的技术。 通常是在花药尚未开裂时切取母本花蕾, 消毒后,在无菌条件下用镊子剥去花瓣和雄 蕊,保留萼片,将整个雌蕊接种于培养基上, 当天或第二天在其柱头上授于无菌花粉。
2.1 按正常胚胎发育途径形成植株 •成熟胚 正常发育形成小苗
•未成熟胚
维持胚的生长,进行正常的胚胎发 育成熟,完成胚胎发育的全过程。
2.2 脱分化形成愈伤组织
离体胚愈伤ຫໍສະໝຸດ 织胚状体或不定芽小植株
激素浓度高
分化培养基
2.3 胚“ 早熟萌发”
离体的幼胚在培养基上不能长出成熟胚的各种 结构,越过正常胚胎发生过程中的若干阶段, 直接长成幼苗。
• 二、子房培养
• 子房培养是指丛母体上分离下来,置于 培养基上,使其进一步发育成幼苗的技 术。 • 意义:①使未受精胚囊中的单倍体细胞 诱导发育成单倍体植株。 • ②获得杂种植株 • ③为试管受精提供一项基础技术。
(一)培养方法 1、子房外植体的制备 2、子房培养的条件 3、培养子房的发育 (二)影响子房培养的因素
4.2 原胚(幼胚)的培养的条件
4.2.1 无机氮:
包括硝酸盐、亚硝酸盐或铵盐;
4.2.2 渗透压:
蔗糖,8%-10%,不同发育期,渗透压不一样, 初期高(WHY)。因为自然条件下,原胚被一 层高渗液体包围着。
4.2.3 复杂的天然提取物:
椰乳 CM有促进幼胚生长和分化的作用
4.2.4 活性炭: 吸附有毒物质
胚胎培养——离体授粉与离体受精
80年代,人工受精的显微操作以及受精作 用的体外模拟的产生。 90年代,用电融合法成功地进行了玉米雌 雄配子体外融合,并将受精产生的“人工 合子”培养成再生植株,这才是严格意义 上的离体受精。
基本操作技术
(一)离体授粉技术
将未授粉的离体胚珠(带胎座或不带 胎座)或子房接种在培养基上,然后在试 管内撒播花粉。花粉发芽后,花粉管长入 胚珠内受精。受精后的胚珠进一步发育成 种子。
当前热点问题
利用离体受精系统研究受精与早期胚胎发 生过程中的基因表达,是本领域研究由细胞 水平进入分子水平的新趋技术( Microinjection ) 来将外源基因导入卵和合子的实验。
Thank you!
3、授粉
将花粉在无菌条件下授予培养的胚珠、 胎座或雌蕊的柱头上。具体方法如下:
(1)子房试管授粉
1)直接引入法 在无菌条件下,用锋利 刀片将子房壁或顶端切开一个小口,把花 粉悬浮液直接滴入切口后进行培养。 2)注射法 用无菌注射器吸取花粉悬浮 液,从子房基部或上端切口注入子房(基 部切口可用凡士林封口),然后接种于培 养基上。
பைடு நூலகம்
影响因素
1、材料的选择及处理
子房较大胚珠较多,一般应切除柱头和花柱。
2、培养基
一般采用MS、Nitsch或B5培养基。
3、培养条件
研究意义
为受精生物学的重要理论问题的探索与解 决开辟了新的途径;
用于遗传育种中可以克服自交不亲和性, 进行作物改良。离体受精所能克服的是那 些以花粉—柱头或花粉—花柱相互作用为 基础的不亲和障碍,并不是万能的。
(2)胚珠试管授粉
1)哺育法 将胚珠表面蘸满有助于花粉 萌发的培养基后进行接种培养,然后在胚 珠上撒播花粉使之受精。 2)接近法 将花粉预先撒于培养基上培 养使之萌发或不萌发,然后接种胚珠或子 房培养。
第7章植物离体繁殖
第八章
植物脱毒技术
枣疯病
苹果锈果病
二、植物脱毒的意义
1、能够有效地保持优良品种的特性
任何一种优良品种均需有一个忠 实地保存其遗传性状的繁殖方法。
第七章 植物离体无性繁殖
二、培养基
基本培养基:MS、白糖 植物生长调节剂: 高浓度的细胞分裂素和低浓度的生长素促进 芽的形成和增殖;随着继代次数增加,阶段 Ⅲ降低细胞分裂素的浓度
第七章 植物离体无性繁殖
三、培养条件
• 光照 阶段Ⅰ、阶段Ⅱ:1000-3000lx 阶段Ⅲ: 3000-10000lx • 温度 • 湿度 • 气体
第七章 植物离体无性繁殖
四、胚状体发生型
• 外植体在适宜的培养环境中,经过诱 导产生体细胞胚的繁殖方法。 • 特点:不经过生根培养,直接形成小 植株。成苗数量大,速度快,结构完 整
第七章 植物离体无性繁殖
五、原球茎发生型
• 茎尖或腋芽外植体诱导成原球茎,切割 原球茎进行增殖,或停止切割使其继续 培养转绿,产生毛状假根的繁殖方法。 • 原球茎:短缩的、珠粒状的、胚性细胞、 类似幼茎的器官,可增殖、形成原球茎 丛。 应用:兰科植物快繁。
二、丛生芽发生型
植株
第七章 植物离体无性繁殖
三、不定芽发生型
• 外植体在适宜的培养环境中,经历两种途径: a.经过脱分化形成愈伤组织,然后经过再分化 产生不定芽-----器官发生型 b.外植体不形成愈伤组织而直接从其表面形成 不定芽----器官型 • 将芽苗转入生根培养基中,诱导生根成苗的繁 殖方法。 • 特点:增殖率高于丛生芽,但有变异发生。 • 应用:也是大多数植物试管苗的繁殖方式。
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第七章离体授粉1离体授粉的概念和种类1.1离体授粉的概念离体授粉(pollination in vitro)是指将未授粉的胚珠或子房从母体上分离下来,进行无菌培养,并以一定的方法授以无菌花粉,使之在试管内实现受精的技术,又称为离体受精(fertilization in vitro)或试管受精(test tube fertilization)。
1.2离体授粉的种类根据无菌花粉授于离体雌蕊的位置,可将离体授粉分为离体柱头授粉、离体子房授粉、离体胚珠授粉三种方式(图7-1)。
进行离体授粉时,从花粉萌发到受精形成种子以及种子萌发和幼苗形成的整个过程一般均是在试管内完成。
图7-1 离体授粉3种方式示意图(引自Razdan,1993)1.2.1离体柱头授粉离体柱头授粉是指通过雌蕊的离体培养,使无菌花粉授于柱头上,得到含有可育的种子和果实的技术(图7-1a)。
离体柱头授粉的方法通常是在花药尚未开裂时切取母本花蕾,消毒后,在无菌条件下用镊子剥去花瓣和雄蕊,保留萼片,将整个雌蕊接种于培养基上,当天或第二天在其柱头上授以无菌的父本花粉。
离体柱头授粉是一种接近于自然授粉的试管受精技术,先后在烟草、金鱼草、玉米、小麦等植物上获得了成功。
1.2.2离体子房授粉通过人工方法将花粉直接引入子房,使花粉粒在子房腔内萌发,并进行正常受精,最后获得具有生活力的种子,这一技术又称为子房内授粉(intraovarian pollination)。
把花粉直接送人子房,实现受精作用是克服受精前障碍的有效途径。
子房内授粉可分为两种类型,即活体子房内授粉和离体子房内授粉。
1.2.2.1活体子房内授粉活体子房内授粉是指被授粉的子房并不离体,仍然在活体植株上,对其用花粉悬浮液进行授粉,使活体子房发育并形成成熟种子的过程。
整个操作步骤包括:①确定供试植物的开花和花药开裂时间;②对母本花蕾去雄并套袋;③采集父本花粉;④确定适于父本花粉萌发的溶液;⑤将花粉引入子房。
花蕾去雄后1~2d即可将父本花粉引入活体母本的子房中。
花粉粒引入子房中的方法有两种:一是直接引入法,即用锋利刀片在子房壁或子房顶端上开一切口,把花粉从切口处送进子房;二是注射法,即用lOOmg/L的硼酸将花粉粒配制成悬浮液,每滴悬浮液含100~300个花粉粒。
母本开花后,将子房用酒精棉进行表面消毒。
在子房两侧彼此对应的位置上钻两个小孔,用注射器由一个小孔向子房内注入花粉悬浮液,子房内的空气则由另一个小孔排出,悬浮液要注满子房腔,直到开始由另一小孔中流出为止,注射完毕后,将两个小孔用凡士林封闭。
这种子房内授粉方法在虞美人、罂粟、花菱草等植物中已获得成功。
1.2.2.2离体子房内授粉离体子房内授粉是指用无菌花粉对离体培养的子房进行授粉,使其发育成为成熟种子的技术(图7-1b)。
取即将开花的花蕾,经过表面消毒,剥离花萼和花瓣,去掉柱头和花柱,在试管中将异种无菌花粉授于子房顶端的切口处,或将异种无菌花粉引入子房内(引入方法同活体子房内授粉),从而实现受精过程。
Inomata(1979)进行两性不亲和物种油菜和甘蓝的种间杂交中,利用离体子房内培养方法成功地获得了杂种。
1.2.3离体胚珠授粉离体胚珠授粉是指离体培养未受精的胚珠,并在胚珠上授粉,最终在试管内结出正常种子的技术(图7-1c)。
离体胚珠授粉既可以将胎座上切下的单个胚珠(裸露胚珠)接种在培养基上,然后撒播花粉于胚珠表面,实现受精;也可以将带有完整胎座或部分胎座的胚珠接种在培养基上,并撒播花粉进行受精。
在实际应用中,活体子房内授粉适用于子房较大的植物,因为这种方法能使花粉萌发后不需经过柱头和花柱组织进入子房,克服柱头和花柱组织上出现的两性不亲和性。
但这种方法仍然是在原植物体上进行的,对子房易脱落的植物不适用。
离体柱头授粉由于从授粉开始到果实成熟都是在试管内进行,同时培养基组成和培养条件也可控制,解决了子房脱落和因胚乳发育不良使胚败育等问题。
但由于整个受精过程仍然是通过柱头进行,所以不能克服因柱头和花柱组织造成的不亲和性的障碍。
离体子房和胚珠授粉具有较大的优越性,因这两种方法是将花粉直接授于子房或胚珠上,整个受精过程都是在人工控制的试管里进行的,所以它既可排除柱头和花柱组织对于受精的障碍,又可克服活体子房的脱落。
2离体授粉的意义有性杂交是常规育种的一个主要手段,通过这个手段,植物育种家不仅能把同一物种不同品种的性状结合在一起,而且还能把同一属不同种的性状结合在一起(远缘杂交),从而创造出优良的植物新品种或新类型。
有性杂交的做法是,在控制的条件下,用选定父本的花粉人工授给母本柱头。
在被子植物中,包含着卵细胞(雌配子)的雌配子体长在子房腔内,受到子房壁和珠被的严密保护。
正常情况下,花粉落在柱头上以后,与柱头相互作用而萌发,由萌发孔长出花粉管,花粉管穿越柱头和花柱组织进入胚珠以后,在卵细胞附近释放出2个精子,1个与卵细胞结合形成合子,另1个与2个极核融合形成初生胚乳核。
在自然界,一个柱头可能接受到各种各样的花粉,但并非所有落在柱头上的花粉都能参与受精作用。
柱头和花柱所具有的特殊机制,保证只有门当户对的花粉才能正常地发挥功能(亲和性),其他花粉则被拒之门外。
因而,当把一个亲本的有生活力的花粉授给另一个亲本的柱头时,并不一定就能受精。
造成受精障碍的因素包括:①花粉在柱头上不能萌发;②花粉管不能进入胚珠,造成这种现象的原因或是由于花柱太长,或是由于花粉管生长速度太慢,还没长到花柱基部子房已经脱落;③花粉管在花柱中破裂。
以上这些都属于受精前障碍(合子期前障碍)。
在另外一些情况下,即使受精能正常进行,但由于胚和胚乳之间的不亲合性或胚乳发育不良,杂种胚不能发育成熟。
这是属于受精后障碍。
因受精后障碍而导致远缘杂交的失败,可采用胚培养或子房培养或胚珠培养予以克服。
而远缘杂交的受精前障碍的克服,可采用消除柱头和花柱的障碍,把花粉粒直接送入子房,让花粉直接与胚珠接触,从而实现受精并使种子得到发育和成熟。
这就是离体授粉的意义。
为了达到这个目的,20世纪60年代初期,在完全人为控制的条件下进行了离体授粉(pollination in vitro)技术的研究,先后在许多植物上取得了成功。
3离体授粉的方法3.1试验材料的选择在进行离体授粉实验时,最好选用子房较大并有多个胚珠的植物,如茄科、罂粟科、石竹科的植物等。
在这些植物中,其胎座上着生成百个胚珠。
由于数量大,在分离过程中会有许多胚珠完好无损,授粉后容易进一步发育。
上述几科植物的花粉也易于在胚珠上萌发,花粉管能大量在胚珠和胎座上生长。
在单子叶植物中,最先获得成功的是玉米的离体子房授粉,后来离体胚珠授粉也获得成功。
由于剥除玉米子房壁获取裸露胚珠时,易造成胚珠损伤,可用刀片将未授粉玉米果穗上的子房上部1/3切除,使胚珠外露。
这种方法操作简便,在技术熟练情况下不易伤害胚珠,而且能在短时间内得到大量正常发育的玉米胚珠。
不论离体柱头授粉还是胚珠授粉,多保留母体花器官组织有利于离体授粉的成功。
如在小麦离体柱头授粉中,保留颖片有利于子粒发育;在水稻试管受精中,可用尚未开花的稻穗作温汤去雄(45℃,5min)后,将父本花药塞人母本的颖花中,然后将带有一段枝梗的颖花直插在培养基上,使花颖的基部和培养基接触。
实验表明,带枝梗的颖花受精率高。
3.2离体授粉的程序离体授粉的一般程序是:①确定开花、花药开裂、授粉、花粉管进入胚珠和受精的时间;②去雄后将花蕾套袋隔离;③制备无菌子房或胚珠;④制备无菌花粉;⑤胚珠(或子房)的试管内授粉。
为了避免非实验要求的授粉,用作母本的花蕾必须在开花之前去雄并套袋。
开花之后1~2d将花蕾取下,带回实验室进行无菌培养。
首先将花萼和花瓣去掉,在70%酒精中漂洗数秒后,再用适当的杀菌剂进行表面消毒,最后用无菌水冲洗3~4次,去掉柱头和花柱,剥去子房壁,使胚珠暴露出来。
接种时,可将长着胚珠的整个胎座进行培养,或把胎座切成数块,每块带有若干个胚珠,之后再进行离体授粉。
在离体柱头授粉时,需对雌蕊进行仔细的表面消毒,但不能使消毒液触及柱头,以免影响花粉在柱头上的萌发和生长。
单子叶植物的每一朵花为一个子房(胚珠),玉米可用授粉前子房(由于子房有若干层苞叶保护,不必进行表面消毒),可将果穗切成小块,每块带有2行共4~10个子房,获得的大量无菌胚珠可用来进行离体授粉。
为了在无菌条件下采集花粉,需要把尚未开裂的花药从花蕾中取出,置于无菌培养皿中直到花药开裂。
若从已开放的花中摘取花药,应将花药进行表面消毒,然后将其置于无菌培养皿中直到开裂。
将散出的花粉在无菌条件下授于培养的胚珠、胎座、子房、柱头上或其周围。
如果胚珠表面有水分,则常抑制胚珠上花粉管的生长,因此胚珠接种后,在培养基表面如果出现水层,则应用无菌滤纸吸干,然后再进行授粉。
据报道,把花粉授在胚珠或胎座上的效果,比撒在胚珠周围的培养基上效果好。
离体授粉成功的标志是授粉后能由胚珠或子房形成有生活力的种子。
一般来讲,授粉后胚珠(或子房)可以在适宜其生长的培养基上培养,培养条件也无特殊要求。
光照强度一般为1 0001x,光照时间10~12h/d。
受精后的胚,有的可发育成种子,如烟草、矮牵牛、康乃馨等;有的是胚原位萌发,即授粉5周后,子房上可直接长出植株。
4胚珠和子房培养4.1胚珠培养4.1.1胚珠培养的概念和意义胚珠培养是将胚珠从母株上分离出来,在人工控制的条件下,进行离体培养,使其生长发育形成幼苗的技术。
根据培养目的的不同,可将胚珠培养分为受精胚珠培养和未受精胚珠培养。
胚珠培养的意义为:①通过受精前胚珠培养以及未受精的胎座或子房培养,可以作为试管受精的基础;②利用胚珠培养技术,使杂种尽早培养,防止杂种胚早期败育,获得杂种植株;③未受精的胚珠培养能和花药培养一样,诱导出大孢子或卵细胞增殖,形成单倍体植株,用于单倍体育种。
4.1.2胚珠培养方法(1)材料的选择和灭菌培养受精胚珠,可根据培养的要求,由大田或温室取回授粉时间合适的子房;培养未受精胚珠,则应在授粉前适当时间摘取子房。
用70%的酒精表面消毒30s,5%的次氯酸钠溶液灭菌10min,无菌水冲洗4~5次,无菌条件下剥离。
用解剖刀沿纵轴切开子房,取出一个个胚珠,或者将带有胎座部分的胚珠一起取下接种。
(2)培养基培养基多为White、Nitsch、MS等,Nitsch使用更普遍。
培养授粉后不久的胚珠,要求附加椰子汁、酵母提取物、水解酪蛋白等,同时还可添加一些氨基酸,如亮氨酸、组氨酸、精氨酸等。
离体胚珠发育中,培养基的渗透压起着重要的作用,特别是对幼嫩的胚珠。
如矮牵牛授粉后7d,胚珠处于球形胚期,将其剥离置于蔗糖浓度为4%~10%的培养基上,即可发育为成熟的种子;若胚珠内含有合子和少数胚乳核,适宜的蔗糖浓度为5%~6%,而刚受精后的胚珠应为8%。