Western Blot实验(蛋白质印迹法)

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Western Blot 实验操作教程

Western Blot 实验操作教程

简介蛋白质印迹法(免疫印迹试验)即Western Blot,简称WB。

它是分子生物学、生物化学和免疫遗传学中常用的一种实验方法。

蛋白质免疫印迹(Western Blot)是将电泳后的细胞或组织总蛋白从凝胶电泳转移到固相支持物NC膜或PVDF膜上,利用抗原抗体反应,用特异性抗体检测某特定抗原的一种蛋白质检测技术,其基本原理是通过特异性抗体对凝胶电泳处理过的细胞或生物组织样品进行着色,通过分析着色的位置和着色深度获得特定蛋白质在所分析的细胞或组织中表达情况的信息。

现已广泛应用于基因在蛋白质水平的表达研究、抗体活性检测和疾病早期诊断等多个方面。

应用范围检测基因在蛋白质水平的表达,是一种对蛋白质表达水平半定量的检测方法。

使用实例1)如2015年发表在Cell Stem Cell(ChangHui Park et al., 2015, Cell Stem Cell)上的一篇文章(介绍神经精神疾病建模过程使用基因条件敲除,发现NRXN1中杂合突变引起突触传递缺陷现象,证明人类神经元中杂合NRXN1突变会伴随CASK蛋白表达上调),作者分析了mRNA 水平包括CASK mRNA(使用定量PCR方法,图A)和蛋白水平的变化(使用LI-COR Odyssey定量Western Blot方法,图B),文章显示cKO和cTr NRXN1突变体iN细胞中CASK蛋白水平增加60%-80%,定量PCR和定量Western Blot结果相辅相成,与其他方法共同揭示了NRXN1的杂合失活直接损害人类神经元突触功能。

A:总mRNA水平定量分析用qRT-PCR方法B:蛋白表达差异定量分析LI-COR Odyssey进行定量Western Blot成像分析2)2016年发表在Neuron(Rani et al l., 2016, Neuron)上的文章(介绍一个灵长类lncRNA-lncND 在神经元发育过程中调节Notch信号通路)中,内源性NOTCH-1和NOTCH-2 mRNA(定量PCR方法)和蛋白的表达(LI-COR Odyssey定量Western Blot方法)在miR-143-3p模拟物存在下显着下调(图D和F)。

蛋白质印迹分析(WesternBlotAnalysis)

蛋白质印迹分析(WesternBlotAnalysis)

蛋⽩质印迹分析(WesternBlotAnalysis)【实验⽬的】了解蛋⽩质印迹法的基本原理及其操作和应⽤。

【实验原理】蛋⽩质印迹法⼜称为免疫印迹法,这是⼀种可以检测固定在固相载体上蛋⽩质的免疫化学技术⽅法。

待测蛋⽩既可以是粗提物也可以经过⼀定的分离和纯化,另外这项技术的应⽤需要利⽤待测蛋⽩的单克隆或多克隆抗体进⾏识别。

如图所⽰,可溶性抗原,也就是待测蛋⽩⾸先要根据其性质,如分⼦量,分⼦⼤⼩,电荷以及其等电点等采⽤不同的电泳⽅法进⾏分离;通过电流将凝胶中的蛋⽩质转移到聚偏⼆氟⼄烯膜上;利⽤抗体(⼀抗)与抗原发⽣特异性结合的原理,以抗体作为探针钓取⽬的蛋⽩。

值得注意的是在加⼊⼀抗前应⾸先加⼊⾮特异性蛋⽩,如⽜⾎清⽩蛋⽩对膜进⾏“封阻”⽽防⽌抗体与膜的⾮特异性结合。

经电泳分离后的蛋⽩往往需再利⽤电泳⽅法将蛋⽩质转移到固相载体上,我们把这个过程称为电泳印迹。

常⽤的两种电转移⽅法分别为:1.半⼲法: 凝胶和固相载体被夹在⽤缓冲溶液浸湿的滤纸之间,通电时间为10分钟~30分钟。

2.湿法:凝胶和固相载体夹⼼浸放在转移缓冲溶液中,转移时间可从45分钟延长到过夜进⾏。

由于湿法的使⽤弹性更⼤并且没有明显浪费更多的时间和原料,因此我们在这⾥只描述湿法的基本操作过程。

对于⽬的蛋⽩的识别需要采⽤能够识别⼀抗的第⼆抗体。

该抗体往往是购买的成品,已经被结合或标记了特定的试剂,如辣根过氧化物酶。

这种标记是利⽤辣根过氧化物酶所催化的⼀个⽐⾊反应,该反应的产物有特定的颜⾊且固定在固相载体上,容易鉴别。

因此可通过对⼆抗的识别⽽识别⼀抗,进⽽判断出⽬标蛋⽩所在的位置。

其他的识别系统包括碱性磷酸酶系统和125I标记系统。

western blotting(蛋白免疫印迹)

western blotting(蛋白免疫印迹)

7
蛋白样品的制备
① SDS是一种很强的阴离子表面活性剂,它可以断开分子内和分
子间的氢键,破坏蛋白质分子的二级和三级结构。
② 强还原剂巯基乙醇(或二硫苏糖醇,DTT)可以断开 二硫键,破坏蛋白质的四级结构。使蛋白质分子被解 聚成肽链形成单链分子。解聚后的侧链与SDS充分结 合形成带负电荷的蛋白质-SDS 胶束。 ③ 蛋白质的电泳迁移率主要决定于亚基的相对分子质量 ,而与其形状及所带电荷的性质无关。
电泳缓冲液:pH8.3 Tris- 甘氨酸系统
12
PAGE:聚丙烯酰胺凝胶电泳
聚丙烯酰胺凝胶(polyacrylamide gel,简称PAG): 单体 丙烯酰胺(acrylamide,简称Acr) 交联剂 N,N-甲叉双丙烯酰胺 加速剂 N,N,N,N-四甲基乙二胺(TEMED) 催化剂 过硫酸铵 三维网状结构的凝胶,该凝胶化学惰性强,具有 一定的机械强度和透明度,是良好的电泳介质, 以此凝胶为支持物的电泳称为聚丙烯酰胺凝胶电 泳(polyacrylamide gel electrophoresis,简称 PAGE)。
对 策
5. 抗体浓度过高
35
Thanks!
36
压太高。转膜过程注意降温
34
四、SDS-PAGE常见问题
背景太高
原因
1. 2. 3. 4. 膜没有均匀浸湿 膜或者缓冲液污染 封闭不充分 抗体与封闭剂出现交叉 反应
1. 转膜前用100%甲醇将膜完 全浸湿 2. 拿取膜与吸水纸时要戴手 套,更换新鲜转膜缓冲液 3. 检测一抗、二抗与封闭剂 是否有交叉反应 4. 杂交前检测一抗、二抗的 工作浓度
蛋白质免疫印迹技术详解
1
主要内容
一、Western Blot 简介 二、Western Blot 一般流程

western blot 蛋白印迹法

western blot 蛋白印迹法

Western blot 蛋白印迹法原理:固相载体(硝酸纤维素膜)吸附蛋白质作为抗原,相应的一抗结合上蛋白质,再与同位素或荧光标记的二抗结合,经过底物显色或放射性自显影的方法,以检测电泳分离的目的蛋白。

既可定性,也可半定量检测蛋白质。

一、提取蛋白1、细胞数107,1*PBS洗涤细胞2遍(1500rmp 5min),转移到1.5ml EP管2、冰上操作,加入裂解液50-100ul混匀。

(蛋白裂解液:蛋白酶抑制剂=100:1)3、插入冰盒30min,每10分钟震荡混匀一次4、最高速离心,移上清至新的EP管中,记录液体体积数5、取2ul 4液体至58ul的PBS中,稀释30倍,Eppendorf biophotometer plus(爱普多夫核酸蛋白测量仪)测量蛋白浓度。

6、在4中加入1/4体积的5* loading buffer,混匀后99°C水浴变性10min(使之成为线性结构,暴露抗原),放-40度保存二、配胶1、玻璃板洗净:洗衣粉—自来水—双蒸水—烘箱烤干—齐、准、正向、上架子2、配胶加入TEMED充分混合后立即灌胶(边灌边摇晃枪头液体不要加完,防止进入空气)注意事项:灌分离胶时用1ml枪吸胶沿玻璃板放出,待胶面到绿带中间线高度即可(齿梳下缘1cm)处,封胶用水要慢,避免冲破胶。

30min,水胶分界清楚后胶凝。

胶凝后滤纸吸出水层,上浓缩胶,上胶后立即上梳子,梳子平行插入,避免产生气泡。

浓缩胶凝固后,将梳子竖直向上轻轻拔出(关键步骤,齿孔齐平!!)梳子两边加少量胶液,防止第一空变形。

3、用水冲洗浓缩胶,洗去孔内碎胶,将其放入电泳槽中。

加足够电泳液后准备上样(电泳液要浸没玻璃钢,外侧加到1/3)4、根据蛋白浓度,每孔蛋白30—100ug,上样约4—7ul,将枪头入孔加样,marker3—5ul。

5、接电源,80v起,蛋白跑到分离胶以后用100v 1h或90min,一直到溴酚蓝跑出胶即可终止电泳。

蛋白质免疫印迹(Western Blot )实验步骤和原理及注意事项

蛋白质免疫印迹(Western Blot )实验步骤和原理及注意事项

蛋白质免疫印迹(Western Blot )实验步骤和原理及注意事项1.收集蛋白样品(Protein sample preparation)可以使用适当的裂解液。

收集完蛋白样品后,为确保每个蛋白样品的上样量一致,需要测定每个蛋白样品的蛋白浓度。

根据所使用的裂解液的不同,需要采用适当的蛋白浓度测定方法。

因为不同的蛋白浓度测定方法对于一些去垢剂和还原剂等的兼容性差别很大。

BCA法。

2. 电泳(Electrophoresis)(1) SDS-PAGE凝胶配制(2) 样品处理在收集的蛋白样品中加入适量浓缩的SDS-PAGE蛋白上样缓冲液。

例如2X或5X的SDS-PAGE蛋白上样缓冲液。

使用5X的SDS-PAGE蛋白上样缓冲液可以减小上样体积,在相同体积的上样孔内可以上样更多的蛋白样品。

100℃或沸水浴加热3-5分钟,以充分变性蛋白(根据蛋白分子的大小,煮沸时间可适当变化,一般不低于5min。

煮沸只是变性蛋白,而不是分解,一般加了抑制酶不会分解。

煮沸对于SDS-PAGE凝胶电泳是必须的,只有煮沸,才能消除蛋白质的立体二级结构,伸展为一维线性结构,所以一般来讲二聚体都会解体,才能完全按照分子量跑电泳,加的蛋白Marker才有指示分子量的意义。

蛋白样品变性后与SDS充分结合,SDS使每个氨基酸带相同的电荷,使整个蛋白呈线性结构. 抗体因为要是线性表位结合的,100度煮10min 后13000,离心5分钟,取上清电泳,因为沉淀会导致拖尾.也可以取上清到另一管,4度可以放一周备再次电泳)。

(3)电泳i.清洗玻璃板:一只手扣紧玻璃板,另一只手蘸点洗衣粉轻轻擦洗。

两面都擦洗过后用自来水冲,再用蒸馏水冲洗干净后立在筐里晾干。

ii.灌胶与上样(1)玻璃板对齐后放入夹中卡紧。

然后垂直卡在架子上准备灌胶。

(操作时要使两玻璃对齐,以免漏胶。

)(2)配10%分离胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。

灌胶时,可用10 ml枪吸取5 ml胶沿玻璃放出,待胶面升到绿带中间线高度时即可。

WesternBlot蛋白免疫印迹法

WesternBlot蛋白免疫印迹法

3 Western blot3.1试剂配制1)30%聚丙烯酰胺储备液(Acr/Bis):丙烯酰胺(Acr), 29g;N,N-亚甲基双丙烯酰胺(Bis), 1g,去离子水溶解,37℃ 水浴助溶,定容至100mL。

0.45M m滤器过滤,棕色瓶4℃避光保存。

2)10%十二烷基硫酸钠(5口5):SDS,10g;H2O,80mL。

68℃加热溶解,浓HCl 调pH 至7.2,定容至100mL,室温保存。

3)10%过硫酸铵(AP):AP,1g;H2O,10mL。

避光,4℃保存。

(4℃2 周)4)分离胶缓冲液(1.5MTris-HCl pH8.8):Tris,18.17g;H2O 80mL。

用浓HCl 调pH 至8.8,定容至100mL,4℃保存。

5)浓缩胶缓冲液(1.0MTris-HCl pH6.8):Tris,12.11g;H2O 80mL。

用浓HCl 调pH 至 6.8,定容至100mL,4℃保存。

6)电泳缓冲液(10X):甘氨酸(Glycine),188g;Tris 30.2g;SDS,10g;H2O, 800mL。

调节pH 至8.3, 定容至1L,4℃保存(用时稀释为1义)。

7)5X SDS-PAGEloadingBuffer (5mL):1MTris-HCl(pH6.8),1.25mL;SDS,0.5g;澳酚蓝(BPB),25mg;甘油,2.5mL;加去离子水定容至5mL。

充分混匀,分装成500M L/份,室温保存。

使用前每份加入25M L p -巯基乙醇(2-ME),加入2-ME的loading buffer可在室温下保存一个月左右。

8)考马斯亮蓝染色固定液:40%双蒸水,10%醋酸,50%甲醇,室温保存9)考马斯亮蓝染色液:考马斯亮蓝R-250,250mg;甲醇,45ml;冰醋酸,10ml;H2O,定容至100ml。

室温保存。

10)考马斯亮蓝染色脱色液:醋酸,100ml;乙醇,50ml;dH2O 850ml,充分混合,室温保存11)膜转移缓冲液:甘氨酸,2.9g;Tris,5.8g;SDS,0.37g;力口H2O 600mL 充分溶解,加200mL 甲醇,混匀,定容至1匕,室温保存。

蛋白质印迹法westernblot应用介绍

蛋白质印迹法westernblot应用介绍
高通量Western Blot技术的应用范围广泛,包 括药物筛选、疾病诊断和治疗、蛋白质功能研 究等领域。
定量Western Blot技术
定量Western Blot技术能够准确定量蛋白质的表达水平,为比较不同样品之间的蛋白质表达差异提供 了可靠的工具。
该技术采用了同位素标记、荧光染料标记等方法,通过与标准品进行比较,计算出蛋白质的相对表达量。
该技术的应用范围广泛,包括药物靶点筛选、疾病标志物 发现、蛋白质相互作用研究等领域。
Western Blot与其他蛋白质分析技术的联用
Western Blot可以与其他蛋白质分析技术联用,如质 谱技术、免疫共沉淀等,以获得更全面的蛋白质信息。
通过将Western Blot与质谱技术联用,可以获得蛋白 质的氨基酸序列和修饰信息,有助于深入了解蛋白质
缺点
操作繁琐、耗时长、成本较高、对实验条件和操作技能要求较高。
02 Western Blot在科研中 的应用
验证抗体特异性
抗体特异性验证
通过Western Blot,可以验证抗体的 特异性,确保抗体只针对目标蛋白进 行反应,而不与其他非目标蛋白发生 交叉反应。
抗体稀释度测试
通过Western Blot,可以测试抗体的最 佳稀释度,以获得最佳的检测效果。
定量Western Blot技术的应用范围广泛,包括生物标志物发现、药物作用机制研究、疾病发病机制研究 等领域。
蛋白质组学与Western Blot的结合应用
蛋白质组学与Western Blot的结合应用能够实现大规模蛋 白质组学研究与特异性蛋白质检测的有机结合。
通过将Western Blot技术与蛋白质组学技术相结合,可以 同时获得蛋白质的特异性和丰度信息,为深入了解蛋白质 的功能和作用机制提供有力支持。

Western Blot实验(蛋白质印迹法)

Western Blot实验(蛋白质印迹法)

12% 20-55
3.3
15% 10-20
2.3
18% ≤10 1.3
学湘
中 雅30%丙烯酰胺(ml)
2
2.7
3.3
4.0
5.0
6.0
心 二 1.5MTris-HCl 医 (PH8.8)(ml)
2.5
2.5
2.5
2.5
2.5
2.5
院 10%SDS(ml)
0.1
0.1
0.1
0.1
0.1
0.1
10%AP(ml)

学湘
中雅
心二


一:蛋白定量(实验过程)
加标样+水(共10ul)

儿 童 医
南 大 学
样品5ul+水5ul
加入200ul(A+B)工作液,A液:B液=50:1
学湘 中雅
混匀放置37℃培养30min,测OD值,562nm
心二

院标样 0
12
46
8
10
(ul)
水(ul) 10
9
8
6
4
2
0
一:蛋白定量(数据处理)
儿 童 医
南用• 在当的浓甘Tr缩氨is胶酸-中到甘:达氨在分进酸离入胶缓分后冲离,系胶由统前于由。分于离等胶速的电pH泳8现.8象,而甘被氨浓酸缩离。解这度是加由大于,
大 学
在电电泳泳迁缓移冲速液度中变主大要超存过在蛋三白种质阴-离SD子S ,复C合l离物子,、甘甘氨氨酸酸和阴C离l离子子以的及界蛋面 白很质快-超S过D蛋S 复白合质物-,SD在S浓复缩合胶物的。p这H时6.8蛋下白,质甘-氨S酸DS只复有合少物量在的分电离离胶,
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甲醇能使SDS与蛋白分离,使蛋白充分转到膜上,甲醇浓度越高SDS 与蛋白分离越快,但高浓度的甲醇对蛋白会有固定作用,不利于蛋白 从胶里跑出来。一般来说甲醇的浓度为20% 甲醇的另一个作用是降温,电转液由于电解质的消耗和甲醇的挥发, 电转时电流或电压变化更快、温度升高也更快
三:转膜(PVDF膜)
• PVDF膜是用来吸附从各种凝胶中转印的蛋白质 的最佳用膜。这种疏水膜呈均一控制的孔结构, 具有极强的吸附生物分子的能力。与硝酸纤维素 膜相比,PVDF膜具有易于操作,染色性能好、 抗溶剂能力强和信噪比高的特点,提高了检测的 灵敏度。其开放的孔结构使其容易接近被吸收的 蛋白质,并去除背景上没有吸附的探针。可以说, 它是免疫检测理想的印迹膜。
作用:使蛋白样品浓缩 对于浓缩胶来说,pH6.8可以 通过甘氨酸和和氯离子的作 用产生压缩,从而使蛋白条 带压细。
总体积(ml)
3(两块胶的量)
二:聚丙烯酰胺凝胶电泳(配胶)
配胶过程要点: 灌制浓缩胶
插入梳子
• 制分离胶时10%AP加入后迅速混匀再加TEMED制胶,沿壁灌注,灌 注时尽量不要产生气泡,如有气泡,用移液器将气泡吸出,留出浓缩 胶所需空间(梳齿长再加1cm)。 • 覆盖水层于分离胶溶液上,夏天将制胶器放室温20min,冬天放37度 灌制分离胶 培养箱 20min-30min 隔绝空气 • 待分离胶和水层之间会出现清晰界面,表明分离胶充分聚合(可微微 倾斜模具,检测凝胶是否聚合),倒掉并用滤纸吸干水 • 在已聚合分离胶上直接灌注浓缩胶液体,立即插入加样梳(缓慢插入, 避免产生气泡)。将凝胶在室温或者37℃静置20-30min(视具体情 况而定),直到浓缩胶完全凝固。
二:聚丙烯酰胺凝胶电泳(电泳)
• 将电极插头与电源上对应的电极连接,电流应流向正极; • 将电压调至80V,预计20min后待染料迁移至分离胶时, 将电压调至100V,60min待溴酚蓝到达凝胶底部时,停止 电泳,关闭电源,从电源上拔掉电极插头,从平板中取出 凝胶。 • 电压可以根据具体情况作适当调整,但是不能电压过大, 电压过大易导致内槽因电泳液温度过高出现胶融或条带变 形。
10xTBS配方:Tris:24.2g
Nacl 80g PH调至7.6 配制成1* TBST时 100ml 10*TBS定容至1L加3ml Tween 20
加入200ul(A+B)工作液,A液:B液=50:1
• 混匀放置37℃培养30min,测OD值,562nm
标样 (ul)
水(ul)
0 10
1 2
10 0
一:蛋白定量(数据处理)
OD
蛋白浓度(ug/ul)
最大上样量为35ul
蛋白浓度30ug
保证每个孔蛋白量相同
二:聚丙烯酰胺凝胶电泳(配胶)
二:聚丙烯酰胺凝胶电泳(原理)
在SDS-PAGE不连续电泳中,制胶缓冲液使用的是Tris-HCL缓冲系统,浓缩胶是 pH6.8,分离胶pH8.8;而电泳缓冲液使用的Tris-甘氨酸缓冲系统。
• 在浓缩胶中:在进入分离胶前由于等速电泳现象而被浓缩。这是由于 当甘氨酸到达分离胶后,由于分离胶的pH 8.8,甘氨酸离解度加大, 在电泳缓冲液中主要存在三种阴离子, 电泳迁移速度变大超过蛋白质- SDS 复合物,甘氨酸和 Cl离子、甘氨酸阴离子以及蛋 Cl离子的界面 白质-SDS 复合物,在浓缩胶的 很快超过蛋白质- SDS 复合物。这时蛋白质- pH 6.8下,甘氨酸只有少量的电离, SDS 复合物在分离胶 所以其电泳迁移率最小,而Cl离子的电泳迁移率最大。在电场的作用 中以本身的电泳迁移速度进行电泳,向正极移动。由于蛋白质- SDS 下,Cl离子最初的迁移速度最快,这样在Cl离子后面形成低离子浓度 复合物在单位长度上带有相等的电荷,所以它们以相等的迁移速度从 区域,即低电导区,而低电导区会产生较高的电场强度,因此Cl离子 浓缩胶进入分离胶,进入分离胶后,由于聚丙烯酰胺的分子筛作用, 后面的离子在较高的电场强度作用下会加速移动。达到稳定状态后, 小分子的蛋白质可以容易的通过凝胶孔径,阻力小,迁移速度快;大 Cl离子和甘氨酸之间形成稳定移动的界面。而蛋白质-SDS 复合物由 分子蛋白质则受到较大的阻力而被滞后,这样蛋白质在电泳过程中就 于相对量较少,聚集在甘氨酸和Cl离子的界面附近而被浓缩成很窄的 会根据其各自分子量的大小而被分离。 Cl离子是快离子(前导 • 区带(可以被浓缩三百倍),所以在浓缩胶中 溴酚蓝指示剂是一个较小的分子,可以自由通过凝胶孔径,所以它显 离子),甘氨酸是慢离子(尾随离子)。 示着电泳的前沿位置。当指示剂到达凝胶底部时,停止电泳,从平板 中取出凝胶。
WB实验细节详述
时间:2016-05-07
一:蛋白定量(实验前处理)
• 组织:到手的组织状态:冰袋快递:组织腐烂,蛋白含量减少 干冰快递:基本无影响 甲醛处理:石蜡包埋组织蛋白提取试剂盒 需用匀浆器,液氮等方法加入1*PBS充分研磨 裂解液量:组织(g):裂解液(ml)=1:10 细胞:一般为细胞悬液实验前需确定细胞大概浓度 裂解液量: 107数量细胞加入1ml裂解液
二:聚丙烯酰胺凝胶电泳(原理)
• 聚丙烯酰胺凝胶由单体丙烯酰胺和甲叉双丙烯酰 主要依据蛋白质的分子量对其进行分离 • 胺聚合而成,聚合过程由自由基催化完成。催化 SDS与蛋白质的疏水部分相结合,破坏其折叠结 聚合的常用方法有两种:化学聚合法和光聚合法。 构,并使其稳定地存在于一个广泛均一的溶液中。 化学聚合以过硫酸铵( AP)为催化剂,以四甲基 SDS蛋白质复合物的长度与其分子量成正比。由 乙二胺( TEMED)为加速剂。在聚合过程中, 于在样品介质和聚丙烯酰胺凝胶中加入离子去污 TEMED 催化过硫酸铵产生自由基,后者引发丙烯 剂和强还原剂后,蛋白质亚基的电泳迁移率主要 酰胺单体聚合,同时甲叉双丙烯酰胺与丙烯酰胺 取决于亚基分子量的大小,而电荷因素可以被忽 链间产生甲叉键交联,从而形成三维网状结构。 略。
二:聚丙烯酰胺凝胶电泳(装胶)
• 取凝固好的SDS-PAGE胶,将凝胶放入电泳槽内,将电泳 缓冲液加入内外电泳槽中,使凝胶的上下端均能浸泡在缓 冲液中,小心拔出加样梳。
二:聚丙烯酰胺凝胶电泳(上样)
• 将处理好的蛋白样品按照预定的顺序用移液器加到SDS-PAGE胶上样 孔内,最后记得点上预染蛋白质分子量Marker。 • 对于10孔梳子1mm厚度凝胶,每孔上样量(蛋白质混合物)约30ug。
五:封闭(过程)
• 丽春红染色漂洗完成后。 • 清洗干净的膜放入盛有5%BSA的容器中,室温 封闭60-90min,或者4度过夜。
• 5%BSA:秤取2gBSA
加40ml 1xPBS(或TBST)
六:一抗孵育(查询抗体)
决定二抗属性 条带大小
适用实验
一抗稀释比例
六:一抗孵育(过程)
• 封闭完成前,参照说明书将一抗用5%BSA稀释到足够实验 需求的量(无特殊要求,一抗稀释液用封闭液)。 • 封闭完成后,从膜上剪下宽度为1.5cm左右相应蛋白大小 条带,倒掉封闭液,加入稀释好的一抗溶液,摇床上平缓 摇动,室温孵育120min或4℃孵育过夜。 • 一抗孵育完成后,倒掉一抗溶液(有回收要求的抗体,回 收一抗溶液4℃保存),用TBST漂洗膜4次,第一次漂洗 主要漂洗BSA,冲刷后便可倒去,TBST可以加至膜漂浮在 液体中,每次10min。
三:转膜(操作过程)
• 剥胶:用切胶板切去浓缩胶和多余的分离胶 • 准备滤纸和硝酸纤维素膜,切滤纸和膜时一定要戴手套,大小与胶一 致 • 镊子、切胶板、浸泡胶、滤纸和海绵垫用1x转膜液浸泡,PVDF膜用甲 醇浸泡开门通风 • 三明治的制作:按顺序在转移夹内放置海绵、3层滤纸、胶、膜、3层 滤纸、海绵,保证每层之间没有气泡。组装顺序:转膜夹黑色面(负 极)-海绵垫-滤纸-胶-膜-滤纸-海绵垫-红色面(正极)。 切记:每层之间将其中的气泡全部赶出,组装顺序和电极正确。 • 转膜:100v 60min (冰上电转) 转膜时间:根据目的蛋白的大小来调整转膜时间(1KD/1min)
一:蛋白定量(裂解液详述)
裂解液使用时加入 PMSF:1ml裂解液加 1ulPMSF ( 100ml体系) RIPA 裂解液:
试剂名称
Tris 乳蛋白酶,凝血酶)和巯基蛋白酶(如木瓜蛋白酶) (pH 7.4) 50mM 生物缓冲液 Triton X-100中性去垢剂 sodium deoxycholate(脱 氧胆酸钠)阴离子去垢剂 SDS阴离子去垢剂 1% 1% 0.1%
一:蛋白定量(原理)
• 在碱性环境下蛋白质与Cu2+络合并将Cu2+还原成Cu1+。BCA 与Cu1+结合形成稳定的紫蓝色复合物,在562 nm处有高的 光吸收值并与蛋白质浓度成正比,据此制作标准曲线做对 比,即可计算待测蛋白的浓度。
一:蛋白定量(实验过程)
• 加标样+水(共10ul) 样品5ul+水5ul
• 分离胶
分离胶浓度 试剂 6% 分子量(kDa) 去离子水(ml) 30%丙烯酰胺(ml) 1.5MTris-HCl (PH8.8)(ml) 10%SDS(ml) 10%AP(ml) TEMED(ul) 总体积(ml) ≥94 5.3 2 2.5 0.1 0.1 0.008 8% 70-94 4.6 2.7 2.5 0.1 0.1 0.006 10% 55-70 4.0 3.3 2.5 0.1 0.1 0.004 12% 20-55 3.3 4.0 2.5 0.1 0.1 0.004 15% 10-20 2.3 5.0 2.5 0.1 0.1 0.004 18% ≤10 1.3 6.0 2.5 0.1 0.1 0.004
10ml(两块胶的量)
作用:使蛋白样品分离 对于分离胶来说,pH8.8与甘氨酸的pka接近,从而使不同分子量的蛋白产生不 同的泳动速度,从而使不同分子量的蛋白分开。
二:聚丙烯酰胺凝胶电泳(配胶)
• 浓缩胶
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