单细胞凝胶电泳——彗星实验方法的建立、改良与应用

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彗星试验步骤

彗星试验步骤

彗星试验步骤1.5.4 彗星试验(单细胞凝胶电泳试验):参照文献[i],略加改动,进行碱性单细胞凝胶电泳,具体如下。

1.5.4.1 制片将0.6%的NMPA(用PBS配制)于微波炉中加热融化后,浸泡磨砂玻片,用吸水纸将玻片滑面及四周吸干,自然晾干备用。

1.5.4.2 铺胶取1.5.3中所备细胞悬液10μl,向其中加入70μl 37℃0.7%LMPA(用PBS配制),混匀后迅速滴于37℃预热的玻片上,立即盖上盖玻片,4℃固化10min。

1.5.4.3 裂解轻轻取下盖玻片,将玻片浸于新鲜配制并预冷的细胞裂解液中,4℃避光裂解1h。

1.5.4.4 解旋从裂解液中取出载玻片,用PBS浸泡玻片3×3min。

用纸巾吸去玻片上残留的液体,置于水平电泳槽中,加新鲜配制的碱性电泳缓冲液至高于玻片表面3mm 以上,避光解旋30min。

1.5.4.5 电泳电压25V,调整液面高度使电流达到300mA,电泳25min。

1.5.4.6 漂洗及染色电泳完毕,取出玻片,用PBS浸泡2×15min,以中和强碱。

用纸巾吸去玻片上残留的液体,然后滴加20μg/ml的EB20μl,盖上盖玻片,立即置荧光显微镜下观察。

以上步骤尽量在黄光下或暗处进行,避免其他原因所致的DNA损伤。

每一剂量水平制片2张。

1.5.4.7 结果观察荧光显微镜下200倍观察,激发波长515~560nm,发射波长590nm。

每一剂量水平随机观察100个细胞,记录拖尾细胞数。

计算拖尾细胞率(以下简称拖尾率),拖尾率=(拖尾细胞数/100)×100%。

每一剂量水平用目镜测微尺测量30个拖尾细胞的全长和头长,拖尾细胞尾长(以下简称尾长,tail length,TL)=全长-头长,计算各剂量组的平均尾长。

表1.1 MMS、MMC和NaN3的WTK1细胞彗星试验结果Table 1.1 Comet assay of MMS, MMC and NaN3 with WTK1 cell lineChemicalConc.(μg/ml)0h 20hRG a (%)Cometcell (%)TL(x±s, μm)RG a(%)Cometcell (%)TL(x±s, μm)MMS 0 100.0 6.0 3.50±1.69 100.0 3.0 3.67±3.130.625 97.2 10.0 10.38±2.92** 98.8 8.0 6.50±3.05**1.25 100.4 18.0* 24.25±4.88** 97.7 11.0 8.90±3.52**2.5 96.4 33.0** 32.08±7.40** 88.3 15.0** 18.62±4.04**5 94.8 60.0** 52.33±5.68** 86.8 44.0** 46.00±5.36** K2Cr2O7147 92.4 100.0** 78.70±4.39** ---MMC 0 100.0 6.0 2.57±1.76 100.0 5.0 1.75±1.760.0625 100.4 6.0 3.70±1.86 96.2 9.0 3.62±1.920.125 108.1 10.0 4.04±1.52 54.6 19.0** 5.50±1.81**0.25 104.5 11.0 3.92±1.42 52.7 50.0** 22.87±3.95**0.5 87.8 17.0* 4.93±3.63 48.8 64.0** 50.17±5.80** K2Cr2O7147 105.4 100.0** 68.19±5.15** ---NaN30 100.0 8.0 3.12±1.69 100.0 9.0 2.15±1.67 250 90.0 7.0 3.03±1.48 99.0 6.0 2.85±1.58500 102.5 8.0 3.35±1.16 97.7 9.0 3.10±1.831000 89.4 14.0 4.09±1.57 88.3 11.0 3.16±1.292000 92.2 56.0** 14.93±4.54** 86.8 52.0** 11.25±1.38** K2Cr2O7147 92.5 100.0** 72.33±6.12** ---a Relative growth compared with corresponding solvent control*P<0.05 **P<0.01, compared with corresponding solvent control。

单细胞凝胶电泳(SCGE)检测锰损伤神经元DNA

单细胞凝胶电泳(SCGE)检测锰损伤神经元DNA

单细胞凝胶电泳(SCGE)检测锰损伤神经元DNA1陆彩玲,郭松超,鲁力,陈维平,邝晓聪广西医科大学公共卫生学院,广西南宁(530021)E-mail:lcling78@摘要:目的建立体外染锰细胞模型,探讨锰神经毒性的作用机制。

方法:以原代培养的成熟皮层神经元为靶,据本室前期试验结果确定低中高不同浓度的锰液(分别为0.2mmol/L,0.6mmol/L,1.0mmol/L),与神经细胞共孵育。

显微镜观察各组神经细胞形态学的变化,用单细胞凝胶电泳试验(SCGE)检测神经细胞的DNA损伤,以彗星细胞尾长及彗星样细胞百分率为评价损伤的指标。

结果:光镜下可见不同浓度锰孵育后神经细胞形态学发生改变,单细胞凝胶电泳试验显示神经细胞DNA出现不同程度的损伤,彗星尾长及彗星样细胞百分率较对照组明显增加(P<0.01)。

尤以高浓度锰组损伤组严重,显著高于中低浓度组(P<0.01)。

结论:锰不但能引起体外培养的神经细胞外在的形态学损伤,还可导致神经细胞DNA的损伤。

关键词:锰,单细胞凝胶电泳 (SCGE),DNA损伤目前,随着生产工艺的改进和预防措施的加强,严重的职业性锰中毒已很少发生,但长期低剂量的锰暴露依然存在,并对接触者的潜在影响仍不可低估。

慢性锰中毒是进行性的、不可逆的病变,并且锰对接触者的危害正由临床型向亚临床型转变,因而更为敏感、特异的效应指标,以早期筛检出亚临床中毒者及高危人群,是今后锰神经毒性研究中重点解决的问题。

DNA损伤是遗传毒理学的一个重要研究领域,长期不可逆转的DNA损伤累积可诱导细胞突变、畸变。

单细胞凝胶电泳(Singl cells gel eletrophoresis,SCGE)又称彗星试验(comet assay),由Ostling等(1984)首创,后经Singh等(1988)进一步完善并逐渐发展起来的一种快速检测单细胞 DNA损伤的实验方法,适用于多种细胞,广泛应用于检测诱变剂、射线等对DNA的损伤、监测环境污染物对机体的遗传损害、研究毒物致癌机制等方面,具有经济、简捷、灵敏等优点,日益广泛地应用在各种诱变剂的遗传毒性检测上。

单细胞凝胶电泳技术应用进展

单细胞凝胶电泳技术应用进展

又被称为“ 彗星电泳” ] 细胞的生物膜在细胞裂解液的作用下被破坏, [. 7 使细胞内的 D A 蛋白质及其 N 、 他成分进入凝胶, 继而扩散到裂解液中, 惟有核 D A仍 附着在剩余的核骨架上而 留在原位 . N 如果细胞 未受损伤, 电泳中核 D A停留在核基质中, N 经荧光染色后呈现 圆形 的荧光团, 无拖尾现象 . 若细胞受
到损伤, 在碱性电泳液(H>1) D A双链解螺旋且碱变性为单链, p 3 中, N 单链断裂的碎片离开核 D A向 N 阳极迁移, 形成拖尾 . 细胞核 D A受损伤越严重, N 产生的断链或碱变性碎片就越多, 片断也越小, 电泳 表现为彗星尾越长和彗尾越亮[ . 8 通过荧光显微镜观察有无彗星及彗尾的长度、 】 亮度、 出尾率等, 判断
以研究活细胞 D A的损伤, N 还可以研究死细胞的 D A损伤, N 从而避免了只能用活细胞 ( 如染色体畸 变、 微核、 姐妹染色单体互换等) 的限制, 因而其对于建立动物模型深入探讨运动性氧应激与 D A损伤 N 的分子生物学机制仍不失为一种优越的研究方法 . 同时,C E技术也将为运动性疾病和运动性疲劳的早期诊断提供更有效 的实验方法和手段 . SG 在 使用单细胞凝胶电泳技术在运动医学中的应用得 出结论 :C E技术 由于需样品量少, D A损伤检 SG 对 N 出的灵敏性高, 无需同位素标记, 技术简单、 费用低, 能够快速、 准确检测有害物质存在场所中各类人群 的 D A损伤及筛检对 D A损伤因素敏感的高危人群 . N N
速、 低耗 等优 点 , 因此被 广泛应 用在 D NA的损 伤与 修复 、 传 毒理 、 境监 测 以及氧 化 应 激和 细胞 凋亡 遗 环
等研 究中[1 6.
1 单细胞凝胶电泳技术原理

彗星实验方法学的改进用于DNA损伤检测

彗星实验方法学的改进用于DNA损伤检测
【Keywords】 Singlecellgelelectrophoresis;Classicalcometassay;DNAdamage;Aalkalineelectrophoresis
彗星实验如 Ostling和 Johanson(1984)所描述的, 并且代表性地应用于双链 DNA断裂的检测[2,3];而碱性
【Abstract】 Objective Toimprovetheclassicalandwidely-recognizedcometassay(TheSinglecellgelelectrophoresisassay)andmake itmoresuitableforclinicalandresearchpurposes.Methods Bloodsamplesfrom fiveFanconianemiapatientswereselectedaspositivecontrols andcordbloodsamplesfrom30newbornbabiesasnegativecontrolstoconductcometassaysinordertocomparetheaccuracyandconcordancebe tweentheclassicalandimprovedcometassays.Inaddition,15clinicalsampleswerecollectedtocomparetheaccuracyandeffectivenessofthe comettestingresultsperformedbyimprovedassaywiththatconductedattheInstituteofRadiationMedicineintheChineseAcademyofMedical Sciences.Results Improvedassayshowedtheresultsof100% ofaccuracyandconcordancewiththatobtainedwiththeclassiccometassay.Con clusion Incomparisonwiththeclassicalcometassay,improvedcometassayiseasiertoperform withshorterprocessingtime,andcangenerate objective,reproducible,andreliabletestingresultswithclearerandmoreinformativeimages;inaddition,improvedassayislowercost,saferto perform,andmoreenvironmentallyprotective.ImprovedcometassaycanberecommendedasaconventionalmethodtodetectDNA damagefor clinicalandresearchpurposes.

彗星实验

彗星实验

彗星实验(Comet assay),又称单细胞凝胶电泳(Single cell gel electrophoresis,SCGE),各种理化因子作用细胞后引起的DNA链的断裂可用该方法检测[1~3],并在统计学基础上对损伤程度做出评估[4]。

本实验对Singh 等[5]建立的碱性彗星实验的一些步骤作了改良。

用超净工作台上的紫外消毒灯[可发射波长为254 nm的紫外线(Ultraviolet,UV),属于UVC波段范围]作为DNA损伤的诱导因子[7~9],诱导K562细胞DNA损伤,用改良彗星实验检测损伤程度,验证改良的实验系统是否可靠,同时筛选并评价DNA损伤的分析指标。

1 材料与方法1.1 细胞K562细胞,来源于第四军医大学免疫学教研室,37 ℃、5% CO2培养箱中培养,取对数期细胞进行实验。

1.2 紫外线照射装置紫外消毒灯(ZSZ-20型,20 W,天津市紫晶特种光源有限公司)。

1.3 主要试剂和仪器培养基:10%新生牛血清(杭州四季青公司),90%RPMI-1640培养液(Hyclone公司);双抗(青、链霉素,100 UI/ml);TritonX-100(Genview分装);二甲基亚砜、肌苷酸钠(Sigma分装);低熔点琼脂糖(FMC 分装);常熔点琼脂糖(Spanish分装)。

其余生化试剂均为分析纯。

电泳仪:由西北大学物理系提供;电泳槽:DYC33A型(北京市六一仪器厂);显微镜:Leica DM LB 2 (Leica 公司);彗星图象分析软件:CASP软件(casp-1.2.21.4 实验分组及UV处理收集对数生长的K562细胞,台盼蓝染色计数,细胞活力大于95%,用Hank's(pH7.4)调整细胞密度至1×105/ml,接种于塑料培养皿中(ф=35 mm,2 ml/plate),然后进行紫外线照射(0.3 mW/cm2)。

实验分为对照组和8个照射组,各照射组分别照射3、5、10、40,60、120、180、240 s,对照组不进行紫外线照射,之后进行彗星实验。

单细胞凝胶电泳技术

单细胞凝胶电泳技术

单细胞凝胶电泳技术的试验步骤试剂及材料:1)0.01M PBS pH7.3:8g NaCl、0.2g KCl、1.44g Na2HPO4和0.24g KH2PO4,溶于800ml蒸馏水中,用HCl调节溶液的pH值至7.3,最后加蒸馏水定容至1L即可。

保存存于室温或4℃冰箱中。

2)0.8%正常熔点凝胶(PBS配制)3)0.6%低熔点凝胶(PBS配制)4)毛玻璃片5)盖玻片6)碱性裂解液(2.5mol/L NaCl;100mmol/L Na2EDTA;10mmol/L Tris;1%肌氨酸钠),临用前加10%DNMSO,1%Triton X-1007)电泳缓冲液(1mmol/L Na2EDTA;300mmol/L NaOH;Tris.Cl,pH7.5)8)EB(2ug/ml)步骤:1.制备第一层胶:100ml 0.8%正常熔点胶,加盖盖玻片,4℃固化10min;2.制备第二层胶:轻轻地去除盖玻片,在第一层胶上滴加75ul含1×10000个细胞的0.6%低熔点胶(cell 与凝胶比例为1:5),加盖盖玻片,4℃固化10min;3.裂解:去掉盖玻片,将凝胶浸入冰冷的碱性裂解液内(临用前加10%DMAO,1%Triton X-100),4℃裂解1h;4.取出玻片,用PBS缓冲液漂洗3次后置于水平电泳槽内,加入pH13的电泳缓冲液(没过玻片2-3min),放置20min(黑闭)。

5.电泳:电压20V,300mA,30min6.取出玻片,用PBS或Tris.Cl,pH7.5漂洗3次,每次3min;或双蒸水漂洗2次,每次5~15min,7.染色:胶上滴加3ulEB,加盖盖玻片,24h检测。

或者4℃,潮湿,闭光的条件下保有胶片,观察时再染色,镜检。

1.2.5 改良彗星试验操作步骤为节省实验时间,本研究将铺三层胶法改为铺一层胶法,同时在中和及染色等步骤进行了改良,具体操作如下:将已染毒的淋巴细胞悬液与40℃的1%低溶点琼脂糖等浓度混匀后,取70μl混合液直接滴加在磨毛玻片上,加盖玻片,4℃冷凝,20min后揭盖片;4℃于碱性裂解液中裂解1h;解旋20min;4℃电泳(25V,300mA)30min;中和5min;加碘化丙啶,暗处染色10min,加盖片;于莹光显微镜下镜检,照像。

彗星试验

彗星试验

单细胞凝胶电泳分析法单细胞凝胶电泳分析法(彗星分析法)治愈癌症是一个难题,长期以来科学家们一直在苦苦探索.我们目前知道,致癌的过程与许多因素有关,但如果我们能阻止其中的任何一个步骤,癌细胞便无法形成。

因此,探测致癌物质的技术与癌细胞的及时发现就显得尤其重要!然而截至目前为止,科学家们仍无法研究出一种简易基因测试法或综合的方法来检测出可能的致癌物。

因此,致癌物对DNA的作用仍是癌症研究的一个重要课题。

遗传毒物学为一专门研究化学及各类物质对人体遗传基因影响的科学。

人体每天暴露在大量的化学物质当中,为了诊测这些物质对人体DNA的影响,科学家们发明了多种测定方法,然而,多年来人们所使用的这些测试方法却不能准确与快速的辨识出会使人体致癌的物质。

为了解决这些问题,单细胞凝胶电泳法(Single Cell Gel Assay)应运而生,通常亦称之彗星分析法(Comet Assay)。

它之所以称为彗星分析法是因为被破坏的DNA形似彗星,此方法已被证实是最具敏感性又最具快速性的方法。

研究人员使用这种方法可在24小时内获得初步结果,在十天之内能得到结论性的证据。

此种测定方法速度远快于其它方法,不仅可以测出某种物质是否是致癌物,而且还可测出被破坏细胞的损害程度。

彗星分析法是用来判别某种物质是否是致癌物,并衡量其对人体DNA修补的影响程度,这一分析过程是将健康的人体白血球接触于被测试的物质后,然后再用彗星分析法来进行测试,如果被测试的物质是致癌物质,那么DNA将被破坏,而被损坏的DNA将开始游离细胞核,形成彗星形状。

DNA受到致癌物质的损坏愈大,DNA碎段就愈多,愈小的DNA碎段游离的速度就愈快,也游离愈远,因而形成了彗星的尾部,而较大的一些碎段位置则靠近细胞核,因而形成彗星的头部。

DNA碎段的游动的程度不同 使它呈现出彗星状,使研究人员能很容易看清细胞的损害程,彗星的长度与DNA的损害程度有关,此长度是指从细胞核到彗星尾端的距离,也就是说,彗星尾端愈长,细胞的损害程度愈大。

彗星实验

彗星实验

彗星实验(Comet assay),又称单细胞凝胶电泳(Single cell gel electrophoresis,SCGE),各种理化因子作用细胞后引起的DNA链的断裂可用该方法检测[1~3],并在统计学基础上对损伤程度做出评估[4]。

本实验对Singh 等[5]建立的碱性彗星实验的一些步骤作了改良。

用超净工作台上的紫外消毒灯[可发射波长为254 nm的紫外线(Ultraviolet,UV),属于UVC波段范围]作为DNA损伤的诱导因子[7~9],诱导K562细胞DNA损伤,用改良彗星实验检测损伤程度,验证改良的实验系统是否可靠,同时筛选并评价DNA损伤的分析指标。

1 材料与方法1.1 细胞K562细胞,来源于第四军医大学免疫学教研室,37 ℃、5% CO2培养箱中培养,取对数期细胞进行实验。

1.2 紫外线照射装置紫外消毒灯(ZSZ-20型,20 W,天津市紫晶特种光源有限公司)。

1.3 主要试剂和仪器培养基:10%新生牛血清(杭州四季青公司),90%RPMI-1640培养液(Hyclone公司);双抗(青、链霉素,100 UI/ml);TritonX-100(Genview分装);二甲基亚砜、肌苷酸钠(Sigma分装);低熔点琼脂糖(FMC 分装);常熔点琼脂糖(Spanish分装)。

其余生化试剂均为分析纯。

电泳仪:由西北大学物理系提供;电泳槽:DYC33A型(北京市六一仪器厂);显微镜:Leica DM LB 2 (Leica 公司);彗星图象分析软件:CASP软件(casp-1.2.2,/index.php下载);CO2培养箱:BB16HF型(上海力申科学仪器有限公司);环地牌紫外辐照计(北京师范大学光电仪器厂)。

1.4 实验分组及UV处理收集对数生长的K562细胞,台盼蓝染色计数,细胞活力大于95%,用Hank's(pH7.4)调整细胞密度至1×105/ml,接种于塑料培养皿中(ф=35 mm,2 ml/plate),然后进行紫外线照射(0.3 mW/cm2)。

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陕西师范大学硕士学位论文单细胞凝胶电泳——彗星实验方法的建立、改良与应用姓名:罗明志申请学位级别:硕士专业:动物学指导教师:齐浩20050501单细胞凝胶电泳——彗星实验方法的建立、改良与应用罗明志摘要单细胞凝胶电泳(singlecellgelelectrosis,SCGE),又称彗星实验(cometassay),是一种在单细胞水平进行DNA损伤的检测方法,具有简便、灵敏、快捷、样品用量小等优点,广泛用于遗传毒性检测、环境毒性检测、分子流行病学和DNA损伤与修复等研究领域。

我们在本实验室建立了单细胞凝胶电泳技术,并对部分操作流程进行了改良,包括(1)制胶方法改良;(2)增加水洗;(3)进行梯度酒精脱水。

在上述改良过程中,我们用“灌胶”法在载玻片上制胶,替代了传统的使用磨砂载玻片上“三明治”制胶,解决了彗星实验中常见的脱胶现象,脱水后有利于获得平整胶面:在裂解后增加了水洗步骤,以消除裂解液中的高盐和去垢剂对后续实验操作的影响;采用直流稳压电源进行单细胞电泳,保证了实验结果的可重复性;对染色的条件进行了筛选,确定了使用EB作为细胞DNA的荧光染料;以CASP(免费)作为彗星图像的分析软件,建立了图像分析的方法。

这些实验步骤的改良以及实验流程的优化或标准化.简化了操作程序,节省了时间,并使结果分析更加简便。

为了验证上述改良后的实验系统是否可靠,我们用紫外线作为损伤因子处理细胞,诱导细胞DNA损伤,然后用彗星实验检测这一损伤。

从这~阳性模型的结果分析来看,发现细胞损伤呈现出很好的时间依赖性,表明该实验系统的可靠性。

我们同时筛选并评价了彗星实验中有关的DNA损伤分析指标,发现TailLength,CometLength,TailMoment和OliveTailMoment作为DNA损伤的评价指标比较可靠。

我们建立了肝细胞的组织块原代培养系统。

在建立肝细胞组织块原代培养实验流程中,我们对实验的各个步骤,例如组织块贴壁需要的时间、细胞生长所需的培养基种类、培养基添加剂以及动物组织供体年龄等进行了筛选,建立了小鼠肝细胞组织块的原代培养系统。

我们用单细胞凝胶电泳方法对磁场和抗癌药物对人自血病细胞K562以及小鼠原代肝细胞的DNA损伤进行了检测。

结果发现,K562细胞在9mT稳恒磁场中处理12h即可引起细胞的DNA损伤,这一损伤随处理时间的延长而增加,具有时间依赖效应;同样条件下对原代肝细胞的处理以及更长时间的处理(36h、48h、72h)均未发现细胞的DNA损伤。

在使用较低浓度紫杉醇(50ng/mL)处理K562细胞12h后,即可导致细胞DNA损伤,并表现出时间依赖效应,而仅在高浓度长时阳J的紫杉醇(800ng/mL,24h)处理下才会引起肝细胞的DNA损伤。

80099/mL环磷酰胺处理K562细胞12h即可引起细胞的DNA损伤,而在120099/mL时方才引起肝细胞的DNA损伤。

关键词:单细胞凝胶电泳;DNA损伤:UV;细胞培养;磁场;抗癌药物Singlecellgelelectrophoresis--modificationandapplicationofthecometassayLuoMingzhiAbstractThecometassay,alsocalledsinglecellgelelectrophoresis(SCGE),isasensitive,quickandcheapmicroscopicmethodtodetectandquantitateDNAdamageineukaryoticcells.ItwasfirstdescribedbyOsttirtgandJohan。

sonin1984andWaslatermodifiedbySingh,Thecometassayhasbeenusedindifferentfields,includingaging,clinicalinvestigations,genetictoxicologyandmolecularepidemiologyinthepastfewyears.Weestablishedtheprocedureofalkalinecometassayinourlaboratory.Westandardizedtheprotocolofalkalinecometassaystepbystep,andmodifiedsomestepsincludinggelslidepreparation,waterwashinganddehydrationInordertostrengthentheadhesionbetweenthinlayersoflowmeltingtemperatureagaroseandamicroscopeslide,acleanslideneedtobedippedinnomalmeltingtemperatureagaroseforlrainandthendriedat37℃overnight.ThusanewmethodoP‘pouring'’gelhasbeenusedtosubstitutethetraditional“sandwich"’methodInthisway,gel’stakingofffromtheslideswasavoided.Toavoidthethesaltanddetergentofthelysissolutionwhichinterferetheelectricfield,theslideshavetobewashedbytridistilledwaterthreetimes.Aftertheslidesdehydratedbygradsalcohol,mostcellsinthegelwaslocatedatasimilarplane;EB(Ethdiumbromide)wasselectedasthebestdyeforDNAstainingtoavoidthefluorescentbleaching.WeintroducedtheCASPsoftware(free)forthequantificationimageanalysis.Thus,anoptimizedandstandardmethodhasbeenestablished,theprocedurepredigestedandthetimesaved.Inordertoverifythereliabilityofthemethod,aswellasthefeasibilityandthereliabilityoftheCASPsoftware,weestablishedapositivemodel:theDNAdamageofK562cellsinducedbyUVindifferenttimesmeasuredbycometassay.Agooddose—dependenteffectwasfound,showedthemethodhasagoodreliability.Theresultalsosuggestedthatfourparameters.Taiilength,CometLengdl,1硪fMomentandOlive11ailMoment.haveagooddose—dependenteffect・whichshowedthattheCASPsoftwareandthefourparametershaveagoodreliability.Throughdiscussingtheprimarycultureprotocolsstepbystep,involvingtheprocessofthetissueadhereingtothematrix,thekindsofthemediumandtheageofanimals,wcalsoestablishedthehepatocyteprimarycultureprocedure.ThenwetestedDNAdamageofK562andhepatocytesinducedbymagneticfieldIIandanticancerdrugs.Theresultshowedthatthemagneticfield(9roT,12h)CallinduceDNAdamageonK562cells,andwiththeexposureextended,DNAdamageincreased;ButwhenthehepatocyteWRSexposedtomagneticfield(9roT)evenmorethan12h(36,48,72h),noDNAdamagewasdetected.Atalowconcentration(50ng/mL),TaxolcaninduceDNAdamageonK562cellsafter12htreatment.Thedamagewasadamagecanonlybedectctedwhenthedose—dependentpattern.Butinhepatocyte,theconcentrationandtreatmenttimeofTaxolwas800ng/mLand24hrespectively.DNAdamageinducedbycyclophosphamide(800¨g/mL,12h)couldbedetectedOilK562cells.Whileinhepatocyte,theconcentrationandtreatmenttimeofcyclophosphamideWaS1200Ug/mLand12h.Keywords:singlecellgelelectrophoresis;DNAdamage;Ultraviolet;cellculture;magneticfield;anticancerdrugsIII学位论文独创性声明本人声明所呈交的学位论文是我在导师的指导下进行的研究工作及取得的研究成果。

尽我所知,除文中已经注明引用的内容外,论文中不包含其他个人已经发表或撰写过的研究成果,也不包含为获得陕西师范大学或其它教育机构的学位或证书而使用过的材料。

对本文的研究做出重要贡献的个人和集体,均已在文中作了明确说明并表示谢意。

作者签名:——日期学位论文使用授权声明本人同意研究生在校攻读学位期间论文工作的知识产权单位属陕西师范大学。

本人保证毕业离校后,发表本论文或使用本论文成果时署名单位仍为陕西师范大学。

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