细胞复苏、传代、冻存过程
细胞培养基本步骤
细胞培养基本步骤细胞培养是一项重要的生物技术，涉及到多个步骤。
以下是细胞培养的基本步骤：1. 准备细胞培养环境：细胞培养需要在无菌的环境中进行，因此需要准备无菌操作台、培养箱、显微镜、细胞计数器等设备，确保培养环境符合要求。
2. 细胞复苏：从液氮或-80℃冰箱中取出冻存的细胞，快速转移到37℃水浴中解冻。
然后将细胞移至培养瓶中，加入适量培养基，轻轻摇动培养瓶，使细胞均匀分布。
3. 细胞传代：当细胞密度达到80%-90%时，可以进行传代。
将原培养瓶中的培养基吸出，加入适量胰蛋白酶，轻轻摇动培养瓶，使胰蛋白酶与细胞接触。
等待几分钟，待细胞变圆并从瓶底脱落，将胰蛋白酶吸出。
然后加入新配置的培养基，用吸管吹打细胞团块，使其分散成单个细胞。
最后将细胞悬液移至新的培养瓶中，放在培养箱中继续培养。
4. 细胞冻存：当需要进行长期保存时，可以将细胞冻存。
将细胞从培养箱中取出，离心收集，用适量细胞冻存液重悬细胞。
然后将细胞悬液分装到冻存管中，放入-80℃冰箱或液氮中保存。
5. 细胞观察：在细胞培养过程中，需要定期观察细胞的生长情况。
通过显微镜观察细胞的形态、密度等指标，判断细胞的生长状态和是否发生异常。
如发现异常情况，应及时采取措施处理。
6. 细胞计数和活力检测：采用细胞计数器或血球计数板进行细胞计数，同时检测细胞的活力。
一般采用台盼蓝染色法或荧光染色法进行检测。
7. 细胞换液和传代：根据需要，定期更换新鲜的培养基，以保证细胞的营养需求。
同时，在传代过程中要注意细胞的消化程度和生长情况，避免过度生长或未充分消化导致细胞状态不佳。
总之，细胞培养是一项技术性很强的工作，需要严格的操作规程和细致的观察。
通过不断实践和总结经验，可以提高细胞培养的成功率和稳定性。
细胞培养传代冻存复苏操作规程自编
细胞培养传代冻存复苏操作规程自编.doc细胞培养传代、冻存、复苏操作规程第一章总则第一条目的为规范细胞培养实验室的操作流程，确保细胞培养的质量和安全，特制定本操作规程。
第二条适用范围本规程适用于所有进行细胞培养、传代、冻存和复苏的实验室人员。
第三条安全与健康实验室人员在操作过程中必须遵守生物安全和个人防护的相关规范。
第二章细胞培养传代第四条传代前的准备检查细胞培养基、血清、胰蛋白酶等消耗品的质量和数量。
确保无菌操作台、培养箱、显微镜等设备正常运行。
第五条传代操作步骤细胞观察：在显微镜下观察细胞形态，确认细胞健康状况。
培养基更换：使用无菌操作吸去旧培养基，加入适量的胰蛋白酶。
细胞分离：待细胞变圆后，轻敲培养瓶，使细胞脱落。
细胞计数：使用血细胞计数板或自动细胞计数仪进行细胞计数。
细胞传代：根据细胞密度和传代比例，将细胞加入新的培养基中。
第六条传代后的观察观察细胞在新培养基中的附着情况。
定期检查细胞的形态和生长状态。
第三章细胞冻存第七条冻存前的准备准备冻存管、冻存液（含DMSO）、标签等。
确保液氮罐或程序降温仪处于良好状态。
第八条冻存操作步骤细胞计数：确保细胞密度和活力符合冻存要求。
冻存液配制：按照比例加入DMSO至冻存液中。
细胞悬液制备：将细胞与冻存液混合均匀。
细胞冻存：将细胞悬液分装至冻存管中，标记信息。
降温过程：将冻存管放入程序降温仪或直接浸入液氮中。
第九条冻存后的管理将冻存管放入液氮罐中，记录存放位置。
定期检查液氮罐的液位和温度。
第四章细胞复苏第十条复苏前的准备准备培养基、胰蛋白酶、无菌操作台等。
检查培养箱、显微镜等设备是否正常。
第十一条复苏操作步骤取出冻存管：从液氮罐中取出所需冻存管。
快速解冻：将冻存管置于37°C水浴中快速解冻。
细胞悬液制备：将解冻后的细胞迅速转移到含有培养基的离心管中。
离心去除DMSO：低速离心以去除DMSO。
细胞培养：将细胞重悬于新鲜培养基中，转入培养瓶中培养。
细胞传代、铺板 、冻存、复苏等细胞培养相关操作步骤和注意事项
细胞传代的步骤（贴壁细胞为例）
首先，镜下观察细胞密度，90%以上即可传代培养（为了细胞的稳定，距离上 一次传代至少间隔一天。）。
准备工作：无菌枪头、培养瓶、离心管、废液桶等所需物品，培养基、血清、 PBS、胰酶等试剂类，可根据情况，提前放入生物安全柜，进行紫外灭菌；
细胞传代的步骤（贴壁细胞为例）
培养液量 （ml）
0.1 0.2 0.5 1 2 2 5 10 5 15-30
100%细胞量（105） （约） 1 2.5 5 10 25 20 52 137 50 200
培养板需要加入的细胞量
细胞培养板中加入细胞的数量，需要考虑一下几点： 1. 常规实验的设计：转染siRNA（约30%-50%），转染质粒（约70%-
结合镜下观察，调整浓度。 ❖2. 计数细胞：参考前文中各种规格中100%满时细胞的大概数量，再根据实验的
要求，计算加入的细胞的数量。（使用计数板）
细胞计数板的使用
细胞计数板
0.1ul
干净的盖玻片
细胞计数板的使用
10-20 ul 细胞悬液 注意: 避免有气泡！
数上不数下，数左不数右
计算公式： n/4 x104 （个/ml）
4.其他：轻轻移动他人的细胞，轻轻关闭培养箱的门等
细胞冻存
准备工作：FBS，完全培养基，DMSO，或无血清冻存液，冻存管，冻存盒。 常规的细胞传代步骤，至细胞消化后离心完毕，根据细胞的量以及需要冻存的管
数配制冻存液； 冻存液： 10%DMSO+90%FBS/完全培养基（A），或者无血清冻存液（B）。 冻存程序： A ： 1. 使用冻存盒：可直接放入-80℃冰箱，第二天转移入液氮罐中。
把细胞转移到生物安全柜中，吸去培养基，加入无菌PBS（只要没过即 可），轻轻摇动清洗细胞，尽量弃尽PBS。
细胞原代培养、传代培养、冻存和复苏
细胞原代培养、传代培养、冻存和复苏细胞培养是指将生物体内分离出的细胞种植在培养基中，供其生长和繁殖的实验过程。
细胞培养已成为生命科学和医学研究中不可或缺的基础工具。
在细胞培养中，常见的术语有原代培养、传代培养、冻存和复苏。
原代培养原代培养是将从组织中分离出的细胞直接进行培养，即首次培养。
通常将组织切割成小段或分散成单细胞悬液，加入培养基中，使其中的细胞粘附在培养基表面上生长。
原代培养中所得细胞经常受到组织来源、细胞类型和培养条件等因素的影响，因此可能表现出较高的细胞异质性。
传代培养传代培养是将进行了原代培养的细胞进行维持和扩增的过程。
在细胞生长到足够数量时，将细胞分散到更大容量的培养器中，以继续扩增细胞数量。
传代培养次数过多时可能导致细胞老化并失去功能。
在细胞传代培养过程中，注意以下几点：•选择合适的培养基和培养条件；•周期性检测细胞的形态、生长状态和细胞数目；•保持细胞复合度和细胞同型性。
冻存为了保存细胞株，通常会将细胞用特殊培养基和添加剂冻存。
冻存过程中，细胞首先保护在保护剂中，然后在液氮的温度下迅速冷冻，以避免细胞深受冰晶形成的伤害。
冻存后的细胞可保存数年，并可进行后续的实验研究。
## 复苏冻存后，需要将细胞复苏。
推荐以下步骤：•用生长培养基预热，将细胞移植到生长培养基中，尽量使样品在细胞数目、时间和温度上保持一致；•在细胞培养箱中培养，控制CO2浓度（通常为5％）和口袋气体混合在空气中的湿度；•更换完整的生长培养基，加入所需的辅助剂，如血清或其它所需的生长因子。
如上所述，细胞培养是生物学和医学研究中不可或缺的基础工具。
正确地进行细胞培养和细胞处理很重要，因为不同的操作条件将影响最终培养出的细胞的数量和质量。
在实验中进行细胞培养和处理时，应该遵守正式的安全和操作规程。
细胞的培养-传代-计数-冻存-复苏
一、细胞复苏（1）提前20分钟打开生物安全柜紫外灯消毒待用；10%的FBS-高糖DMEM，青/链霉素,D-Hanks溶液放在37℃水浴锅中预热备用。
（2）快速从液氮罐中取出细胞冻存管，即刻放入37℃水浴锅中解冻，1000r/min 离心5分钟。
（3）吸取弃去上清液，在冻存管中加入培养基混悬细胞，移液器转移至细胞培养皿中，反复两次用培养液清洗冻存管，清洗液也移入培养瓶中。
（4）加入足量的培养液，放在CO培养箱中细胞培养，第二天换液。
2二、细胞冻存（1）提前20分钟打开生物安全柜紫外灯消毒待用；10%的FBS-高糖DMEM，青/链霉素,D-Hanks溶液，DMSO放在37℃水浴锅中预热备用。
生长状态良好的细胞铺满培养瓶底的约80%时，换液后 12～24h 换液培养。
吸去培养液，D-Hanks溶液冲洗瓶底一次再吸弃。
加入 0.25％胰酶到培养瓶，覆盖瓶底，来回转动培养瓶，观察等待细胞消化至多数细胞形状变圆或从瓶底脱落下来。
（2）加入 5ml 含血清的培养液中止消化。
反复吸取瓶内培养液吹打细胞，形成细胞悬液。
进行细胞计数，细胞悬液移植15ml离心管中，3500r/min 离心 5 min。
（3）静置吸弃上清液，然后加入冻存液（73% DMEM 培养液，20％FBS，最后添加 7％DMSO 二甲基亚砜），细胞计数达到2×106/ml 以上。
细胞混匀后加入冻存管中，每管 1ml。
注明细胞种类、代数、冻存时间、名字，检查密封性。
降温程序：冷冻管置于4℃ 10 分钟→-80℃ 16～18 小时（或隔夜）→液氮槽（-196℃）长期储存。
三、细胞传代（1）提前20分钟打开生物安全柜紫外灯消毒待用；10%的FBS-高糖DMEM，青/链霉素,D-Hanks溶液放在37℃水浴锅中预热备用。
当细胞长满培养瓶底的约80%时，吸弃原先的培养液。
（2）加D-Hanks溶液洗涤一次瓶底，吸弃。
加入 0.25％胰酶到培养瓶，覆盖瓶底，来回转动培养瓶，观察等待细胞消化至多数细胞形状变圆或从瓶底脱落下来。
细胞培养基本方法(复苏、换液、传代、冻存)
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换液
1.把细胞培养瓶从培养箱中拿出, 拧紧盖子; 2.观察瓶内培养基的颜色, 是否浑浊等;
放在倒置显微镜下观察细胞生长状况。 3. 放入超净工作台内,点燃酒精灯,拿培养瓶
口在酒精灯火焰上转两圈以上,至少三秒. 4. 取下盖子,烧瓶口;倒掉培养基,烧瓶口; 5. 拿出PBS液瓶子,烧瓶口和镊子;用镊子将
注意：
1.打开培养箱时尽量不要说话； 2.步骤9中培养瓶放入培养箱时，应把盖子拧开少许。
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传代
1.把细胞培养瓶从培养箱中拿出，拧紧盖子； 2.观察瓶内培养基的颜色，是否浑浊等；放在
倒置显微镜下观察细胞生长状况。 3.放入超净工作台内，点燃酒精灯，拿培养瓶
口在酒精灯火焰上转两圈以上，至少三秒。 4.取下盖子，烧瓶口；倒掉培养基，烧瓶口； 5.拿出PBS瓶子，烧瓶口和镊子；用镊子将塞
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6. 用吸管吸取3ml的PBS，打入培养瓶内。烧培养 瓶口，来回晃动PBS100次后到掉PBS。重复此 操作一次。
7. 拿出胰酶瓶子，烧瓶口和镊子；用镊子将塞子 取出，烧瓶口（至少10圈）。
8. 用吸管吸取1ml的胰酶，打入培养瓶内，烧培养 瓶口和盖子，盖上盖子；
9. 拿出工作台外，在倒置显微镜下观察细胞，然 后用酒精棉球擦瓶口及瓶身，放入培养箱内；5 分钟后取出；
14.用吸管将细胞悬液移至5ml离心管中，盖上盖 子，在离心机内离心，1500转/分钟，时间为15 分钟。
15.离心结束后，拿至工作台内，烧离心管口。去掉 塞子，烧管口。
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16.弃上清液，加冻存液2ml 吹打，使细胞均匀混在 冻存液中，再加3ml冻存液，用吸管吸出打入多 个冻存管中，每管1.5ml。
细胞传代冻存复苏步骤
细胞传代冻存复苏步骤细胞的传代冻存技术是生物医学研究中的一个重要方式。
该技术可以将细胞批量保存并长期维持其活性，以便进行进一步的研究。
细胞传代冻存的过程可以简单地概括为以下几个步骤：从培养皿中收集细胞，处理和停滞细胞增殖，添加冻存保护剂，将细胞悬液冷冻存储，最后进行复苏。
下面我们就详细描述一下这个具体步骤：1. 收集细胞收集细胞需要注意细胞的龄期，通常在细胞的对数生长期收集更好。
另外要注意细胞的数量不能过少或过多。
2. 停滞细胞增殖为了将细胞传代，减少增值周期并停滞细胞增殖是必要的。
对于一些高度增殖性的细胞，可以通过干预细胞内基因表达、添加生长因子等方式来实现。
一般可以使用过量的培养基，并将细胞保存在低吸附的容器中来停滞细胞增殖。
这样可以防止细胞形成多层，而保证单层生长。
3. 添加冻存保护剂添加冻存保护剂是细胞传代冻存的关键步骤之一。
冻存保护剂可以有效地保护细胞免受冻结脱水、冰晶形成和低温应力等因素的损害。
最常用的冻存保护剂是一些有机溶剂，例如DMSO（二甲基亚砜）、甘油等。
这些保护剂可以在细胞冷冻存储的过程中降低溶液的结冰点，防止冰晶的形成。
4. 冷冻存储在添加了冻存保护剂后，可以将细胞悬液装入冷冻管中，使用缓慢冷冻和液氮快速冷冻两种方法将细胞冷冻存储；液氮快速冷冻的方式冷冻效率高，但是会对细胞产生更大的应激，可能会降低细胞的复苏率。
缓慢冷冻是比较安全的方式，可以使用-80度的冰箱进行冷冻，时间从数小时到数日不等。
5. 复苏细胞冻存后，想要复苏它们，需要将细胞迅速退回到正常培养条件下。
此时需要谨慎地处理，以免破坏细胞结构和细胞膜等。
复苏的过程需要按照以下步骤：- 缓慢加热：将冻存细胞悬液从液氮中取出，快速将冻存管放入37度的水浴中，缓慢加热，让细胞悬浮在解冻液中的DMSO等有机溶剂逐渐被稀释。
- 洗涤：用无血清的培养基或PBS等洗涤一遍细胞，约10分钟，以去除有机溶剂。
- 均匀吸附：将无血清培养基或PBS加入细胞悬液中，让细胞吸附于培养皿上，约30分钟。
体细胞培养标准
体细胞培养标准
体细胞培养标准操作主要包括细胞复苏、细胞传代和细胞冻存等步骤。
一、细胞复苏
1.从冻存管中取出细胞，放入37℃水浴中迅速解冻。
2.将解冻后的细胞悬液转移至培养瓶中，用PBS清洗两次，以去除残留的冻存液。
3.加入适量新鲜培养基，将细胞悬液浓度调整至适当水平。
4.将培养瓶放入37℃、5% CO₂的恒温培养箱中，进行细胞培养。
二、细胞传代
1.当细胞融合率达到80%时，用胰酶或胶原酶消化细胞，分散成单个细胞。
2.将消化后的细胞悬液转移至新的培养瓶中，加入适量新鲜培养基，将细胞悬液浓度调整至适当水平。
3.将培养瓶放入37℃、5% CO₂的恒温培养箱中，继续进行细胞培养。
三、细胞冻存
1.将细胞沉淀至离心管中，用PBS清洗两次，去除残留的培养基。
2.加入冻存液（10% DMSO +90%胎牛血清），轻轻混匀。
3.将离心管放入-80℃的冰箱中，进行慢速冻存。
4.当细胞悬液完全冻实后，将其转移至液氮中，长期保存。
四、体细胞培养的特点
1.严格的无菌操作：为避免细胞污染，需在无菌环境下进行细胞培养。
2.适宜的培养条件：细胞生长需要适宜的温度（37℃）、湿度（5% CO₂）
和营养环境（培养基）。
3.细胞数量控制：细胞传代前融合率应达到80%，冻存时每管细胞量应达到规定数量。
4.质量控制：监测细胞数量、活率、表面标记、支原体和内毒素等指标，以确保实验结果的准确性和可靠性。
5.应用广泛：体细胞培养技术在生物学、医学、生物工程等领域具有广泛的应用价值，可用于研究细胞生长、分化、信号传导等生物学过程。
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一、细胞培养（复苏、换液、传代、冻存）（已正）
进行细胞培养前，将所用物品放入超净台中，打开紫外开关，照射20-30分钟。
紫外结束后，打开鼓风，使超净台自净5-10分钟左右后开始操作。
1.细胞培养液的配制：
配制50ml培养液(45ml基础培养液+5ml的胎牛血清+500ul的青霉素/链霉素)（如果基础培养基中自带青/链霉素就无需添加）
2.细胞复苏：
将细胞冻存管从液氮或者-80℃取出后迅速置于37℃水浴箱中水浴，不停地晃动使其迅速溶解，大约1min。
将溶解好的细胞冻存管喷上75%的乙醇消毒后拿到超净台中，用1ml的无菌大枪头将其混匀后转移至无菌的15ml离心管中，这时向其中缓慢滴加配好的培养液2ml，混匀，1000rpm, 3分钟。
然后弃掉上清，加入1ml配制好的培基使沉淀的细胞重悬。
在T25的培养瓶中加入4ml配好的培养基，然后用1ml无菌的大枪头将重悬好的细胞转移至T25瓶内，使用十字混匀的方法将瓶内的细胞铺匀，从超净台中将T25取出，拿到倒置显微镜下观察细胞是否铺匀，如铺匀了喷上75%的乙醇，放入37℃ 5%CO2的孵箱内。
（将细胞冻存管从液氮或者-80℃取出后迅速置于37℃水浴箱中水浴，不停地晃动使其迅速溶解。
1000rpm, 离心3分钟。
弃掉上清，然后加入1ml配置好的培养基使沉淀的细胞重悬。
此时将其转移到T25瓶内，再加入4ml配好的培养基，使用十字混匀的方法将瓶内的细胞铺匀，从超净台中将T25取出，拿到倒置显微镜下观察细胞是否铺匀，如铺匀了喷上75%的乙醇，放入37℃ 5%CO2的孵箱内。
）
3.细胞换液：
复苏的细胞在37℃ 5%CO2的孵箱内孵育4-6个小时后就应该给细胞换液，去除未贴壁的死细胞（贴壁生长的细胞）。
贴壁生长的细胞具体过程如下：将原培养基弃去，然后用高压无菌的PBS冲洗1-2次，每次3-5ml，最后一次洗完后倒掉瓶内残余的PBS，小心的用1ml无菌的大枪头加入5ml新鲜培养基，喷上75%的乙醇，放入37℃ 5%CO2的孵箱内。
悬浮生长的细胞具体过程如下:将培养瓶内的培养液混匀，用1ml无菌的大枪头将培养液小心的转移至15ml 无菌的离心管中，1000rpm,3分钟去上清，加入1ml配制好的培基使沉淀的细胞重悬。
在T25的培养瓶中加入4ml配好的培养基，然后用1ml无菌的大枪头将重悬好的细胞转移至T25瓶内，使用十字混匀的方法将瓶内的细胞铺匀，从超净台中将T25取出，拿到倒置显微镜下观察细胞是否铺匀，如铺匀了喷上75%的乙醇，放入37℃ 5%CO2的孵箱内。
4.细胞传代：
当细胞生长到80%-90%时，其的生长状态和细胞形态都比较好时，即只要判断细胞处于生长对数期，这时就可以进行细胞传代了。
贴壁生长的细胞具体过程如下：将原培养基弃去，然后用高压无菌的PBS冲洗1-2次，每次3-5ml，最后一次洗完后倒掉瓶内残余的PBS，小心的用1ml无菌的大枪头加入1ml %胰酶消化，放入孵箱，1-2分钟后取出，在倒置显微镜下观察细胞形态变化，如果观察到细胞开始由长梭形变成圆球形时，喷上75%的乙醇，拿到超净台里，加入2ml培养基终止消化，用1ml无菌的大枪头或无菌的塑料吸管反复吹打，尽量使
更多的细胞掉下来，吹打数次后转入15ml无菌的离心管，1000rpm,3分钟，然后弃去上清，一般细胞的传代比例为1传2或者1传3，如果要是1传2就用2ml新鲜培养基重悬，分别将重悬好的细胞分到2个T25瓶内，然后各取4ml新鲜培养基补齐。
如果是1传3就用3ml 新鲜培养基重悬，分别将重悬好的细胞分到3个T25瓶内，然后各取4ml新鲜培养基补齐。
喷上75%的乙醇，放入37℃ 5%CO2的孵箱内。
悬浮生长的细胞具体过程如下：将培养瓶内的培养液混匀，用1ml无菌的大枪头将培养液小心的转移至15ml无菌的离心管中，1000rpm,3分钟去上清，加入2ml或者3ml配制好的培基使沉淀的细胞重悬，分别将重悬好的细胞分到2个或3个T25瓶内，然后各取4ml新鲜培养基补齐，喷上75%的乙醇，放入37℃5%CO2的孵箱内。
5.细胞冻存
当细胞生长到80%-90%时，其的生长状态和细胞形态都比较好时，即只要判断细胞处于生长对数期，这时就可以进行细胞冻存了。
先按胎牛血清和二甲基亚砜（DMSO）为9:1的比例配细胞冻存液。
贴壁生长的细胞具体过程如下：将原培养基弃去，然后用高压无菌的PBS 冲洗1-2次，每次3-5ml，最后一次洗完后倒掉瓶内残余的PBS，小心的用1ml无菌的大枪头加入1ml %胰酶消化，放入孵箱，1-2分钟后取出，在倒置显微镜下观察细胞形态变化，如果观察到细胞开始由长梭形变成圆球形时，喷上75%的乙醇，拿到超净台里，加入2ml培养基终止消化，用1ml无菌的大枪头或无菌的塑料吸管反复吹打，尽量使更多的细胞掉下来，吹打数次后转入15ml无菌的离心管，1000rpm,3分钟，然后弃去上清，一般细胞的冻存比例为1冻1或者1冻2，如果要是1传1就用1ml新鲜配制的细胞冻存液重悬，将重悬好的细胞转移至准备好无菌的细胞冻存管内，然后用封口膜和美仑纸将瓶口包好。
如果是1传2就用2ml 新鲜配制的细胞冻存液重悬，分别将重悬好的细胞分到2个准备好无菌的细胞冻存管内，然后用封口膜和美仑纸将瓶口包好。
4℃ 30分钟，-20℃ 1小时，-80℃过夜然后转入液氮保存。
悬浮生长的细胞具体过程如下：将培养瓶内的培养液混匀，用1ml无菌的大枪头将培养液小心的转移至15ml无菌的离心管中，1000rpm,3分钟去上清，加入1ml或者2ml新鲜配制的细胞冻存液使沉淀的细胞重悬，分别将重悬好的细胞转移至到1个或2个准备好无菌的细胞冻存管内，然后用封口膜和美仑纸将瓶口包好。
4℃ 30分钟，-20℃ 1小时，-80℃过夜然后转入液氮保存。