汉恒生物-慢病毒生产及使用操作手册第二版
慢病毒使用操作指南

慢使用操作指南慢使用操作指南1.慢简介1.1 定义:慢是一种特殊的,能够在细胞中长期存活并进行复制。
1.2 用途:慢广泛应用于基因转导、基因敲除和基因表达等实验研究中。
2.慢使用前准备工作2.1 实验室准备工作2.1.1 实验室空间准备:确保实验室内有足够的操作空间和合适的消毒设备。
2.1.2 材料准备:准备好所需的培养基、细胞培养物、慢载体等。
2.1.3 设备准备:确保离心机、冰箱等设备正常工作,并准备好相关的仪器和器材。
2.2 人员准备工作2.2.1 人员培训:对参与慢操作的人员进行培训,了解操作步骤和安全风险。
2.2.2 个人防护:提供必要的防护装备,如实验服、手套、面罩等。
3.慢操作步骤3.1 细胞培养3.1.1 细胞培养物准备:根据实验需求选择合适的细胞培养物,并进行细胞的预处理和培养。
3.1.2 细胞密度调整:根据实验要求,调整细胞培养物的密度,以保证细胞的正常生长。
3.2 慢感染3.2.1 慢载体注射:将慢载体注射到培养好的细胞中。
3.2.2 感染条件控制:根据实验需求,控制慢感染的时间、浓度和温度等条件。
3.3 细胞培养和检测3.3.1 细胞培养:将感染好的细胞进行培养,并观察细胞的生长状态。
3.3.2 细胞检测:使用相关实验方法,对感染细胞进行检测和分析。
4.实验安全措施4.1 操作环境控制:确保实验室内通风良好,避免慢的扩散和污染。
4.2 废液处理:将产生的废液经过正确处理,避免对环境和人体造成污染和伤害。
4.3 事故应急处理:在发生事故或意外情况时,立即采取应急措施,并及时报告相关人员。
5.附件本文档所涉及的附件,包括但不限于实验记录表格、实验数据文件等。
6.法律名词及注释6.1 慢:指一种具有长周期和潜伏期的。
7.结束语感谢您阅读本文档,如有任何疑问或意见,请随时与我们联系。
逆转录病毒试用装操作手册

汉恒逆转录病毒操作手册一、逆转录病毒的试用装分装与储存1.收到汉恒生物逆转录病毒产品后,请先对逆转录病毒产品进行分装处理,建议20-50μl/管。
如1-2天内使用,则留足够量病毒4℃保存,余下逆转录病毒置于-80℃长期保存。
2.病毒可以存放于-80℃ 6个月以上;但如果病毒储存时间超过6个月,建议在使用前重新测定病毒滴度。
3.反复冻融会降低逆转录病毒滴度:逆转录病毒滴度越低,冻融对滴度的影响越大,108IU/ml的逆转录病毒冻融2次滴度没有显著性差异,第3次冻融开始,每冻融一次滴度降低约10%;滴度107IU/ml滴度逆转录病毒,从第2次冻融开始,每次冻融病毒滴度下降10%-15%。
二、逆转录病毒试用装实验策略与关键知识点1.逆转录病毒感染策略:逆转录病毒本身的病毒滴度不高,感染细胞时病毒消耗量较大,试用装体积较小,建议使用96孔板进行MOI梯度感染测试。
逆转录病毒感染细胞后会反转录并插入基因组形成稳转,因此逆转录病毒感染一般采用感染少量细胞,然后将细胞放大化培养。
而不是直接大量感染。
注意:对于一些传代能力较差的原代细胞,比如BMSC等,建议采用腺病毒感染。
2.逆转录病毒感染关键知识点1)细胞准备:由于试用装体积有限,请使用96孔板准备细胞,逆转录病毒感染细胞前,请确保目的细胞状态良好、无支原体污染。
逆转录病毒感染的时候细胞汇合率为40%~60%间为宜。
2)感染细胞最佳MOI的测定:MOI(感染复数)是指每个细胞感染的病毒数。
逆转录病毒对于不同种类不同来源的细胞,其最适MOI各有差别,原则上最适MOI是感染效率较好的最低MOI。
MOI一般以3:10:30:100的比例递增进行梯度摸索,一般的细胞基础逆转录病毒感染MOI 可从3为开始,即设立4个常规的MOI摸索,即3,10,30,100。
3)助转剂polybrene的选择:实验证明,polybrene可提高逆转录病毒对大部分细胞的感染效率,但polybrene 有一定的细胞毒性,不同细胞对polybrene的敏感度不同,polybrene最常用的工作浓度为5~8μg/ml。
慢病毒感染细胞 操作手册

慢病毒感染细胞实验方法一、实验概述培养生长状态良好的目的细胞,根据慢病毒感染预实验结果设计各组实验条件,进行正式感染。
若为荧光标记的慢病毒感染,参照预实验确定的感染时间点,于荧光显微镜下观察GFP表达情况,荧光率达70-80%左右,细胞汇合度达80%左右,收集细胞进入下游实验。
若为抗性基因(如Puromycin)标记的慢病毒感染,感染48 h-72h后,使用抗生素筛选48h,收集细胞汇合度70%-80%左右的生长状态良好的细胞进行下游实验。
二、实验材料1.主要试剂试剂名称试剂来源cat.No.胎牛血清Ausbian VS500TDMEM Corning 10-013-CVR胰酶生工生物工程(上海)股份有限公司T0458-50G Puromycin Clontech 631305D-Hanks 上海吉凯基因技术有限公司配制2.主要仪器仪器名称仪器来源cat.No.荧光显微镜奥林帕斯IX71CO2培养箱日本三洋SANYO MCO-175倒置显微镜上海蔡康光学仪器有限公司XDS-100离心机赛默飞世尔科技(中国)有限公司Fresco 21生物安全柜上海振样创空气净化设备有限公司Bio 1200-Ⅱ-A2三、实验步骤1.准备目的细胞(1)从液氮罐中取出细胞冻存管,迅速放入37℃水浴中,并不时摇动使其尽快解冻。
(2)完全解冻后,1300 rpm,离心3 min,75%酒精擦拭冻存管消毒后,移至生物安全柜。
(3)吸去冻存液上清,加入1 mL新鲜的完全培养基重悬细胞,将细胞悬液接种至含有3 mL完全培养基的6-cm dish 中,轻轻晃匀后置于37℃、5% CO2培养箱。
(4)24 h后更换一次培养液继续培养,待细胞汇合度达80%左右传代培养,保持细胞良好的生长状态。
2.目的细胞慢病毒感染(1)贴壁细胞:a.处于对数生长期的细胞胰酶消化,完全培养基制成3-5×104个/mL细胞悬液,并根据表1接种相应的细胞数到培养板中,继续培养保证感染时铺板量达到15-30%左右。
汉恒生物-病毒载体操作安全手册

病毒载体操作安全手册引言根据W HO生物安全手册对感染性微生物的相对危害程度制订的危险度等级的划分标准。
病毒的危险度为 4 级,它对个体和群体的危险均高,通常能引起人或动物的严重疾病,并且很容易发生个体之间的直接或间接传播,对感染一般没有有效的预防和治疗措施。
所以我们需要制定一定的安全注意事项,包括设备的要求、操作人员的防护、操作的规范性以及废弃物的处理等,以避免潜在的危险。
一、病毒房设备要求我们知道细胞培养技术与其他一般实验室工作的主要区别在于要求保持无菌操作,避免微生物及其他有害因素的影响。
目前超净工作台的广泛使用,很大程度上方便了组织细胞培养工作,并使一些常规实验室有可能用于进行细胞培养。
细胞培养实验室应能进行六方面的工作:无菌操作、孵育、制备、清洗、消毒灭菌处理、储藏。
病毒房的设备在普通细胞房的基础上要求更高,尤其是其无菌操作设备。
(一)无菌操作区1、无菌操作室:无菌操作区只限于细胞培养及其他无菌操作的区域,最好能与外界隔离,不能穿行或受其他干扰。
理想的无菌操作室应划为三部分:1(1)更衣室—―供更换衣服、鞋子及穿戴帽子和口罩。
(2)缓冲间—―位于更衣间与操作间之间,目的是为了保证操作间的无菌环境,同时可放置恒温培养箱及某些必需的小型仪器。
(3) 无菌操作间—―专用于无菌操作、细胞培养。
无菌操作间的空气消毒:紫外线灯。
2、二级生物安全柜:生物安全柜是为操作原代培养物、菌毒株以及诊断性标本等具有感染性的实验材料时,用来保护操作者本人、实验室环境以及实验材料,使其避免暴露于上述操作过程中可能产生的感染性气溶胶和溅出物而设计的。
(二)孵育区本区对无菌的要求虽不比无菌区严格,但仍需清洁无尘,因此也应设置在干扰少而非来往穿行的区域。
孵育一般可在恒温培养箱内进行。
(三)制备区在该区主要进行培养液及有关培养用的液体等的制备,如条件有限,可以在操作区进行。
(四)储藏区主要存放各类冰箱、干燥箱、液氮罐、无菌培养液、培养瓶等,此环境也需要清洁无尘。
慢病毒使用手册

培养基(DMEM+10% FBS,高糖); C. 取待测定的病毒原液 11 µl 加入到第一个管中,混匀后,取 11 µl 加入到第
二个管中。继续相同的操作直到最后一管;
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Lentiviral Vector Particle 使用操作手册
Lentiviral Vector Particle 使用操作手册
上海吉凯基因化学技术有限公司
二○一一年七月
Partner in gene function and drug target validation
Lentiviral Vector Particle 使用操作手册
手册内容
一.Lentivirus 的储存与稀释 二.Lentivirus 使用安全注意事项 三.Lentivirus 在体外培养原代细胞和细胞系水平的使用 四.常见问题 五.细胞 MOI 值列表
义为感染时病毒和细胞数量的比值。在我们实验中将某个细胞达到 80%感 染时所需的 MOI 值定义为这个细胞的 MOI 值。 Polybrene:是常用的感染添加剂,使用浓度为 5-10 µg/ml,polybrene 能显著
提高病毒对细胞的接触并提高病毒的感染效率,在一般细胞上有 3-4 倍的作用,对有些细胞可以提高 10-20 倍;吉凯基因提供的 Polybrene 储液浓度为 10 mg/ml,如有需要,使用过程中也可以 用 D-hanks,PBS 或培养基进行稀释。 ENi.S.:Enhanced Infection Solution(ENi.S.)是吉凯开发的感染增强溶液,使用 时需将培养基弃去,替换为 ENi.S.,然后加入病毒,也可以同时加入 polybrene。ENi.S.亦可以显著提高病毒对细胞的感染能力。
慢病毒专用转染试剂说明书

慢病毒专用转染试剂LentiFit TM使用说明书产品简介:LentiFit TM脂质体转染试剂是一种高效的阳离子脂质体转染试剂。
与其他脂质体转染试剂相比,汉恒生物独立研发的LentiFit TM脂质体转染试剂具有转染效率高,重复性好,操作简单,无明显细胞毒性,抗血清干扰等优点。
对于大多数细胞,用LentiFit TM转染后72小时内不更换培养液无明显细胞毒性。
同时,血清的存在不影响LentiFit TM的转染效率,这样可以减小无血清对细胞的损伤。
基于以上优点,LentiFit TM常用做慢病毒包装的转染试剂。
包装清单以及储存条件:试剂名货号储存条件规格有效期LentiFit TM转染试剂Let10004℃保存 1 mL12个月使用方法:1.细胞培养:以1个10 cm培养皿转染293T细胞为例,转染前一天接种细胞(20-24小时),接种细胞约3.5×106,接种体积10 mL,确保第二天转染时细胞汇合度(confluent)能达到约50%~70%。
2.在进行转染步骤前,把10 cm培养皿中的培养液更换成新鲜细胞培养液,培养液的体积为5 mL,放回培养箱中继续培养,并准备转染体系(步骤3-6)。
3. 把LentiFit TM脂质体转染试剂轻轻混匀。
4. 对于待转染的10 cm培养皿中的细胞,取一只洁净无菌离心管,加入24 µg质粒(目的质粒和辅助质粒的比例根据不同包装系统进行调整)到500 µL DMEM溶液,用枪轻轻吹打混匀。
5. 取另一只洁净无菌离心管,加入500 µL DMEM溶液,再加入40 µL LentiFit TM,用枪轻轻吹打混匀,室温放置5分钟。
6. 将步骤4与5中的质粒溶液与LentiFit TM溶液混合,用枪轻轻吹打混匀。
不可V ortex 或离心。
室温孵育20分钟。
有可能出现絮状沉淀物,属正常现象,不会影响转染效率。
7. 将转染复合物逐滴加入到培养皿中,轻轻“8”字形摇晃混匀后,放回培养箱继续培养。
汉恒生物CRISPR protocol-2质粒构建和建系

---基于lentiCRISPR v2应用指南-载体构建和建系
汉恒生物提供CRISPR/Cas9载体的快速构建试剂盒,同时也提供各 种载体构建和病毒包装(慢病毒、腺病毒和AAV)、建系服务
说明
lentiCRISPR v2载体是张锋实验室发布一个慢 病毒载体,cas9和sgRNA表达框在同一各载 体上。而且Cas9的C端带有FLAG融合标签, 载体包含Puromycin抗性基因,适合建系。 验证sgRNA活性的时候也适合顺转;包装成 慢病毒适合常规细胞系的建系。构建非常 方便。
oligo就需要加磷处理!!!(红色框内是FengZhang提供的protocol,设计脱磷,可以参考) )
仅作参考
病毒包装体系
包装病毒使用的包装体系如下(for 100 mm dish, 6x106 293T)
4 μg 3 μg 1 μg lentiCRISPR v2-gDNA plasmid psPAX2 packaging plasmid pMD2.G envelope plasmid
单克隆的挑取---单克隆可以有限稀释到96-well plate(~30 cells/plate)
(293T、HeLa、MEF等细胞系推荐使用)。如果编辑效率50%,推荐分两 块plate即可,最终拿到20-30个单克隆一般可以得到成功KO的细胞系;或 者铺到100 mm dish里,一周后挑取单克隆(这种方法适合单细胞不容易成 活的细胞系如,但是挑取的单克隆偶尔不纯,有时需要重新亚克隆)。
目的细胞系的感染/转染
转染 (2 g plasmid/60 mm dish,细胞密度60-80%)
【v2=lentiCRISPR v2,下同】
慢病毒载体构建及包装操作手册

慢病毒载体构建及包装操作手册目录慢病毒收到后的注意事项一、整体实验流程二、实验材料三、慢病毒包装和浓缩四、感染目的细胞附1. 汉恒生物慢病毒质粒列表附2. 慢病毒滴度测定方法简介附3. 慢病毒MOI感染参数附4. 汉恒生物各病毒载体感染目的细胞比较慢病毒安全使用和注意事项➢慢病毒安全使用注意事项(*非常重要!!!*)1)慢病毒相关实验请在生物安全柜(BL-2级别)内操作。
2)操作病毒时请穿实验服,佩戴口罩和手套,尽量不要裸露双手及手臂的皮肤。
3)操作病毒时特别小心病毒溅出。
如果操作时超净工作台有病毒污染,请立即用70%乙醇加1%的SDS溶液擦拭干净。
接触过病毒的枪头,离心管,培养板,培养液请于84消毒液浸泡后统一处理。
4)如需要离心,应使用密封性好的离心管,如有必要请用封口膜封口后离心。
5)病毒相关的废弃物需要特殊收集,统一经高温灭菌处理。
6)实验完毕用香皂清洗双手。
➢慢病毒收到后的注意事项1)慢病毒的储存用户收到病毒液后在短期内即使用慢病毒进行实验,可以将病毒暂时放置于4 ℃保存(尽量一周内用完);如需长期保存请分装后放置于-80℃。
注:a.反复冻融会降低病毒滴度(每次冻融会降低病毒滴度10%-50%);在病毒使用过程中应尽量避免反复冻融,所以我们前期对病毒进行了分装(200 l/tube),收到后直接放置-80℃保存即可。
b.如果病毒储存时间超过6个月,我们建议在使用前重新测定病毒滴度。
2)慢病毒的稀释用户需要稀释病毒时,请将病毒取出置于冰浴融解后,使用培养目的细胞用PBS或无血清培养基(含血清或含双抗不影响病毒感染)混匀分装后置于4℃保存(请尽量一周内用完)。
一、整体实验流程二、实验材料(一)慢病毒载体、包装细胞和菌株该病毒包装系统为三质粒系统,组成为psPAX2, pMD2.G, pHBLV TM系列质粒。
1、载体信息(见附表1)2、细胞株:我们采用293T作为慢病毒的包装细胞。
该细胞系为贴壁依赖型成上皮样细胞,生长培养基为DMEM+10% FBS+双抗。
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2. 感染细胞最佳 MOI 的测定 MOI(Multiplicity of Infection,感染复数)是指每个细胞感染的病毒
数,通常 MOI 越高,病毒整合到染色体的数量以及目的蛋白的表达量越高。 对于分裂活跃的细胞,比如 Hela、293 细胞,MOI=1~3 时,80%以上的细胞均表 达目的基因。而对于非分裂细胞,比如原代细胞,感染效率较低。需要进行 MOI 梯度摸索实验,选择适合的 MOI 进行实验。
四、慢病毒包装和浓缩 (一)质粒扩增
构建好的慢病毒载体和辅助质粒需经过大量抽提,浓度大于 1ug/ul,A260/280 在 1.7-1.8 间方可用以包毒。推荐使用 Qiagen 大抽试剂盒进 行质粒的大量去内毒素抽提。 (二)传 293T 细胞
将培养 293T 细胞 T75 瓶中的培养基吸净,加入 2mL 4 度冰箱取出的 0.25% 胰酶,使其均匀覆盖瓶底,置于 37 度培养箱中 3-5min,取出,摇晃可发现细胞 于底部脱离,将其全部晃下,加入 3mL 37 度水浴中预热的 10% DMEM,移液枪 用 10mL 移液管进行吹打,较大力吹打 6-8 次即可,不留死角,瓶口处较难吹打 可将移液管对准培口,小力将培养基打出即可覆盖到接近瓶口的细胞。之后,将 所有细胞吸出,置于 15mL 离心管中,取 50ul 混匀后的细胞于 1.5mL eppendorf
当细胞传代次数过多,细胞状态变差时,或者细胞出现污染事故时,需要丢 弃并对最初冻存的细胞进行复苏。
1、设置温度为 37~42℃的水浴。 2、查看细胞库记录,根据记录从液氮罐中取出冻存的细胞(需戴上棉手套, 防止被冻伤),迅速丢入水浴锅中并快速晃动,尽量在 1~2min 内使细胞溶液完全 溶解。 3、将细胞溶液转移到 15ml 离心管中,并在其中加上 1ml 新鲜的完全培养 基,混匀后离心,1000rpm,5min。 4、去掉上清,加入 5ml 新鲜的完全培养基,混匀沉淀后,转入 6cm 培养皿。 5、将培养皿平稳放入 37℃、5%CO2 和 95%相对湿度的培养箱中培养。 6、第二天观察细胞存活率。给细胞换一下培养基。以后每天观察细胞生长 情况。
(二)病毒感染
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慢病毒载体构建及包装操作手册
1.polybrene 的选择: Polybrene:是带正电的小分子,与细胞表面的阴离子结合,提高慢病毒对细
胞的感染效率,通常加入 polybrene 能提高感染效率 2~10 倍。 Polybrene 有一定的细胞毒性,有的细胞对 polybrene 的毒理反应明显,因
此细胞感染时是否适合 polybrene 需要摸索;不同细胞对 polybrene 的敏感度不 同,可以用 1~10μg/ml 的范围筛选合适的浓度,以 24h 内细胞无明显毒性反应 为佳,可参考文献并进行预实验摸索,polybrene 最常用的工作浓度为 6~ 8μg/ml。
(一) 293T 细胞的冻存 随着传代的次数增加,293T 细胞会出现生长状态下降、突变等。为了防止
此类现象的出现,我们需要在开始就对细胞进行大量冻存,以保证实验的稳定性 和持续性。在细胞对数生长期进行冻存,增加细胞复苏成活率。
1、去掉上清液,加入 PBS 洗去残留的培养基; 2、加入 0.25%的胰酶,消化 1~2min 后,镜下观察细胞变圆,细胞间间隙加 大时,去除胰酶,加入新鲜培养基吹打混匀,移入离心管中。 3、细胞计数,将细胞全部晃下,加入 3mL 37 ℃ 预热的 10% DMEM, 用 10mL 移液管进行吹打,较大力吹打 6-8 次即可,不留死角,之后,将所有 细胞吸出,置于 15mL 离心管中,取 50ul 混匀后的细胞于 1.5mL eppendorf 管 中,加 入 450ul 10% DMEM,即为 10 倍稀释,混匀,取 10ul 细胞于计数板 中计数。计数板上共 4 大格,每大格 16 小格。计数时,4 大格均计 数,总数 除以 4(得每大格细胞数),再乘以 10(10 倍稀释),即 为实际 n 万/mL 细胞 浓度。 4、细胞离心,1000rpm,5min。去掉上清。 5、根据细胞计数结果加入细胞冻存液(70%完全培养基 +20%FBS+10%DMSO),重悬细胞,密度为 3 x 106 个/ml。 6、分装进细胞冻存管,放入冻存盒中,放入-80℃超低温冰箱。 7、第二天将细胞放于液氮罐中长久保存,并作记录。保存过程中,要不时 复苏细胞检测细胞存活率,观察细胞状态等。 (二)293T 细胞的传代 当细胞生长到汇合率达到 80%~90%时需要对细胞进行传代操作,以扩大细 胞数量,维持细胞良好的生长状态。 1、消化细胞,方法同细胞冻存。 2、细胞离心结束后,加入完全培养基重悬。 3、根据具体情况,将细胞分到 10cm 培养皿中,每个培养皿补足到 10ml 培 养基。
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管中,加入 450ul 10% DMEM,即为 10 倍稀释,混匀,取 10ul 细胞于计数板中
注: 1)汉恒生物的自产的 Polybrene 产品,用户可用以进行辅助感染。提供的 Polybrene 母液保存在-20℃(可保存 1 年以上),避免反复冻融 3 次以上,否则活性 受影响。4℃可保存 2 周。
2)Polybrene 预实验请先以对照病毒进行摸索,部分细胞系 MOI 及 Polybrene 的 使用参见附表 2。
80-90%满即可进行转染。转染前无需换培养基。
(三)做脂转 complex
Opti MEM 需在 37 度水浴中预热,LipofiterTM 转染试剂需恢复至室温方可使
用,使用前需摇匀。
转染每瓶 T75 的 complex 成分如下:
pspax
10μg
PMD2G
10μg
pHBLVTM 系列载体
10μg
注意: 溶化的 shRNA 慢病毒颗粒置于冰上。反复冻溶或长时间将病毒颗粒暴露于常温 可使病毒效价降低。
4.Puromycin 抗性筛选: Puromycin 标准的施加终浓度范围为 1~10μg/ml,不同细胞 puromycin 的
工作浓度不同,请查找相关文献(部分细胞参考用量见下图),另外请设不感染 筛选对照(未经过病毒感染的野生型细胞),加入等量等浓度的 puromycin。
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慢病毒载体 pHBLV-CMVIE-IRES-ZsGreen、 pHBLV CMVIE-Puro pHBLV-U6-ZsGreen、 pHBLV-U6-puro 还有其他荧光标记和启动子混搭载体,以及 tet-on 系统高表达/干扰系列载体,详情可咨询公 司分子生物学技术工程师。
慢病毒载体构建及包装操作手册
慢病毒生产及使用操作手册
一、实验流程 制备慢病毒穿梭质粒及其辅助包装原件载体质粒,三种质粒载体分别进行高
纯度无内毒素抽提,共转染 293T 细胞,转染后 6 h 更换为完全培养基,培养 48 和 72h 后,分别收集富含慢病毒颗粒的细胞上清液,病毒上清液通过超离心浓缩 病毒。
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4、将培养皿平稳放回 37℃、5%CO2 和 95%相对湿度的培养箱中培养。 (三)293T 细胞的复苏
转染后 6h 换新鲜培液。
注:LipofiterTM 转染试剂为汉恒生物产品,使用说明参考 LipofiterTM 说明书。
(四)病毒收集
转染后 48 和 72h 分别两次收集病毒上清(24h 收集后置换新鲜培液),收集
后以 0.45 μm 滤器过滤,于 40 mL 超速离心管中,4℃,72000g/min 离心 120 分
钟;
(五)病毒重悬和保存
500ul 新鲜培养液重悬病毒沉淀,置于-80 度甚至液氮保存。
五、感染目的细胞
(一)细胞准备
将状态良好的目的细胞接种到 24 孔板,使细胞浓度为 1×105/ml 细胞,接
种细胞数量因细胞的生长速度而略有不同,一般是保证第二天进行病毒感染的时
候细胞汇合率介于 50%至 70%直接。
3.感染步骤 按实验需要将细胞铺板(比如 12 孔板)。细胞数以第 2 天密度约 50%为宜。
37℃ 培养过夜。 对于 Polybrene 可施加的细胞:准备完全培养基和 Polybrene 混合物,
Polybrene 终 浓 度 为 摸 索 得 到 的 最 适 终 浓 度 。 移 去 培 养 基 并 添 加 0.5 ml Polybrene/培养基混合物于每孔中(适用于 24 孔板,其他孔板请相应调整体
三、包装细胞 293T 细胞的培养
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