胡萝卜素含量的测定(精)
高效液相色谱法测定15种蔬菜中的胡萝卜素

2、重复性和精密度
此外,该方法具有较好的重复性和精密度,能够满足实际测定的要求。通过 本研究的开展,为准确评估蔬菜的营养价值提供了科学依据。
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2、样品中胡萝卜素的测定结果
表1 15种蔬菜中胡萝卜素的含量(mg/100g)
3、样品中水分含量的测定结果
3、样品中水分含量的测定结果
采用烘干法测定了15种蔬菜中的水分含量,结果如表2所示。由表可知,不同 蔬菜中的水分含量也存在显著差异。其中,生菜和芹菜中的水分含量较高,分别 为94.7%和92.5%;红薯和土豆中的水分含量较低,分别为79.3%和78.6%。其他 蔬菜中的水分含量介于上述两者之间。
采用高效液相色谱法测定蔬菜中类胡萝卜素,需对方法进行重复性和精密度 评估。实验结果表明,该方法的重复性和精密度均较好,能够满足实际测定的要 求。
2、重复性和精密度
结论 本次演示介绍了高效液相色谱法测定蔬菜中类胡萝卜素的方法及注意事项。 该方法具有分离效果好、分析速度快、灵敏度高等优点,能够准确测定蔬菜中类 胡萝卜素的含量。通过对不同种类蔬菜中类胡萝卜素含量的测定,发现叶菜类蔬 菜中类胡萝卜素含量较高,而根茎类蔬菜中类胡萝卜素含量较低。
2、实验方法
(2)色谱条件:采用高效液相色谱仪进行分离分析,色谱柱为C18柱(5μm, 4.6mm×250mm),流动相为甲醇-丙酮(1:1),流速为1ml/min,检测波长为 450nm,柱温为30℃。
2、实验方法
(3)标准曲线绘制:精确称取适量胡萝卜素标准品,用甲醇-丙酮(1:1)混 合溶剂配制成不同浓度的标准溶液。分别进样分析,以峰面积(A)对胡萝卜素 浓度(C)绘制标准曲线。
3、高效液相色谱法测定类胡萝 卜素
3、高效液相色谱法测定类胡萝卜素
水果蔬菜汁类胡萝卜素含量的测定

水果、蔬菜汁类胡萝卜素含量的测定1 主题内容与适用范围本标准规定了水果、蔬菜汁中类胡萝卜素的分离提取方法及提取物中类胡萝卜素总量的测定方法。
本标准适用于水果、蔬菜汁中类胡萝卜素总量的测定。
2 原理果蔬滤液通过溶剂萃取,分离提取类胡萝卜素,在特定波长下用分光光度法测其吸光度。
该吸光度与类胡萝卜素含量成线性关系,通过换算即可得知类胡萝卜素之含量。
3 试剂和溶液本标准所用试剂除特殊规定外,均使用符合国家标准的分析纯试剂,均采用蒸馏水。
3.1 石英砂(Q/HG 22--467);3.2 萃取剂,2/1(v/v)氯仿(GB 682)-甲醇(GB 683)混合。
4 仪器设备4.1 抽滤器;4.2 无灰分滤纸;4.3 分液漏斗:250mL;4.4 容量瓶,100mL;4.5 移液管,20mL;4.6 烧杯,50mL;4.7 分光光度计,使用的测量波长为440±10nm。
5 分析步骤注:由于类胡萝卜素本身性状的不稳定性,即见光易氧化分解,建议所有操作应避光进行。
5.1 试样的制备5.1.1 液体样品:混合均匀后取样。
5.1.2 固体样品:捣碎机捣碎后,纱布挤汁。
5.2 用移液管吸取20mL样液置50mL烧杯中。
5.3 过滤:在烧杯(5.2)中加入3g石英砂,摇动后用布氏漏斗过滤(布氏漏斗预先铺有无灰滤纸,纸上铺有2g石英砂),然后再用5mL水冲洗滤渣3次。
5.4 萃取:在250mL的分液漏斗中倒入滤液(5.3),再加入20mL萃取剂(3.2),振摇后静置,收集下部分有机相,再用20mL萃取剂提取两次,将三次萃取所得有机相合并,用萃取剂定容为100mL。
注:对果胶含量大的果蔬,萃取时,将三次合并的有机相重新倒回原分液漏斗,继续用20mL萃取洗涤一次,然后用萃取剂定容至100mL。
5.5 测定:在440±10nm波长下测定提取液的最大吸光度A。
6 结果的计算和表示类胡萝卜素总量用mg/L表示,按下式计算:类胡萝卜素(mg/L)=A×20式中:A——测定的最大吸光度;20——换算系数。
生物实验报告胡萝卜

一、实验目的1. 学习胡萝卜素的提取方法。
2. 掌握胡萝卜素含量的测定方法。
3. 了解胡萝卜的营养价值。
二、实验原理胡萝卜素是一种脂溶性色素,广泛存在于胡萝卜、菠菜、甘蓝等植物中。
胡萝卜素具有丰富的营养价值,对人体健康具有重要作用。
本实验采用有机溶剂提取胡萝卜素,并通过比色法测定胡萝卜素的含量。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:新鲜胡萝卜、无水乙醇、蒸馏水、三氯甲烷、无水硫酸钠、硅胶、标准胡萝卜素溶液等。
2. 实验仪器:电子天平、离心机、分光光度计、研钵、烧杯、试管、漏斗、滤纸等。
四、实验步骤1. 胡萝卜素的提取(1)将新鲜胡萝卜洗净,去皮,切成小块,放入研钵中。
(2)加入适量无水乙醇,研磨成匀浆。
(3)将匀浆倒入漏斗中,用滤纸过滤,收集滤液。
(4)将滤液倒入烧杯中,加入适量无水硫酸钠,搅拌均匀,静置。
(5)待滤液分层后,取出上层清液,用分液漏斗分离。
(6)将分离出的上层清液倒入试管中,加入适量硅胶,搅拌均匀,静置。
(7)待硅胶沉淀后,取出上层清液,用分光光度计测定其吸光度。
2. 胡萝卜素含量的测定(1)将标准胡萝卜素溶液稀释成一系列浓度,分别测定其吸光度。
(2)以吸光度为纵坐标,浓度为横坐标,绘制标准曲线。
(3)根据实验测得的胡萝卜素吸光度,从标准曲线上查得胡萝卜素含量。
五、实验结果与分析1. 胡萝卜素的提取通过实验,成功提取了胡萝卜素,提取率为(此处填写提取率)。
2. 胡萝卜素含量的测定根据标准曲线,计算出实验样品中胡萝卜素的含量为(此处填写含量)mg/g。
六、实验结论1. 本实验成功提取了胡萝卜素,提取率为(此处填写提取率)。
2. 通过比色法测定,实验样品中胡萝卜素的含量为(此处填写含量)mg/g。
3. 胡萝卜中含有丰富的胡萝卜素,具有很高的营养价值。
七、实验讨论1. 实验过程中,提取胡萝卜素的关键步骤是研磨、过滤和分离。
在研磨过程中,要注意研磨时间不宜过长,以免胡萝卜素氧化降解。
2. 在分离过程中,要注意分液漏斗的使用,避免混合液分离不完全。
新鲜蔬菜中β-胡萝卜素的提取、分离、测定

新鲜蔬菜中β-胡萝卜素的提取、分离和测定
班级:临五一班(2小班)姓名:任依梦学号:5117119051
【实验目的】
●掌握从新鲜胡萝卜中提取、分离β-胡萝卜素的方法
●掌握应用紫外-可见吸收光谱法测定β-胡萝卜素的紫外光谱图
●了解共轭多烯化合物π→π*跃迁吸收波长的计算方法及共轭多烯化合物的紫
外吸收光谱特征
【实验原理】
简介胡萝卜素是维生素A的前体,具有类似维生素A的活性,有α、β、γ异构体,其中以β-胡萝卜素生理活性最强。
β-胡萝卜素的结构如下:
β-胡萝卜素是长链多烯化合物,它的π-π*跃迁吸收带处于可见光区,因此纯β-胡萝卜素是橘红色晶体。
提取胡萝卜素不溶于水,可溶于有机溶剂,故可用有机溶剂来提取。
分离采用柱层析法将提取液中β-胡萝卜素分离出来。
测定经分离提纯的β-胡萝卜素含量可以直接用紫外-可见分光光度法测定。
【实验步骤】
1.β-胡萝卜素的提取
20g新鲜胡萝卜+40mL1:1丙酮-石油醚混合溶剂研磨5min(研钵)萃取(分液漏斗)
2.柱层析
在层析柱中加入少许浸有石油醚的脱脂棉→加入一半层析柱高的石油醚→加入20g中性氧化铝→在氧化铝上面加一圆形滤纸→加入β-胡萝卜素提取液→用9:1(体积比)石油醚-丙酮溶液洗脱,进行层析
3.β-胡萝卜素的紫外-可见吸收光谱的测定
将层析分离得到的橙黄色试样稀释后加到1cm的比色皿中,以石油醚作空白试剂,用分光光度计测定400~600nm范围内的吸收
【实验结果】
β-胡萝卜素的吸收曲线。
食品中β-胡萝卜素的测定 标准文本(食品安全国家标准)

食品安全国家标准食品中β-胡萝卜素的测定1范围本标准规定了食品中β-胡萝卜素的测定方法。
本标准适用于食品中β-胡萝卜素的测定。
2原理试样经皂化后,使β-胡萝卜素完全变为游离态。
用石油醚萃取后,反相色谱法分离,外标法定量。
3试剂和材料注:除非另有规定,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T 6682 规定的一级水。
3.1试剂3.1.1α-淀粉酶:酶活力≥1.5 U/mg。
3.1.2氢氧化钾(KOH)。
3.1.3无水硫酸钠(Na2SO4)。
3.1.4抗坏血酸(C6H8O6)。
3.1.5石油醚:沸程30 ℃~60 ℃。
3.1.6甲醇(CH4O):色谱纯。
3.1.7乙腈(C2H3N):色谱纯。
3.1.8三氯甲烷(CHCl3):色谱纯。
3.1.9正己烷(C6H14):色谱纯。
3.1.10甲基叔丁基醚[CH3OC(CH3)3]:色谱纯。
3.1.11乙醇:体积分数为95 %。
3.2试剂配制3.2.1氢氧化钾溶液:称固体氢氧化钾250 g,加入200 mL 水溶解。
临用前配制。
3.3标准品3.3.1β-胡萝卜素标准品,CAS:7235-40-7。
3.3.2α-胡萝卜素标准品,CAS:7488-99-5。
3.4标准溶液的配制3.4.1β-胡萝卜素标准储备液(500 g/mL):准确称取β-胡萝卜素标准品50 mg(精确到0.1mg),用正己烷定容至100 mL 棕色容量瓶中。
注:β-胡萝卜素标准储备液需要-10 ℃以下避光储存,使用期限不超过3个月。
标准储备液用前需校正,具体操作见附录A。
3.4.2β-胡萝卜素标准中间液(100 μg/mL):从β-胡萝卜素标准储备液中准确移取10.0 mL 溶液于50 mL 棕色容量瓶中,用正己烷定容至刻度。
3.4.3β-胡萝卜素标准工作液:从β-胡萝卜素标准中间液中分别准确移取0.50 mL、1.00 mL、2.00 mL、3.00 mL、4.00 mL 溶液至5 个100 mL 棕色容量瓶。
类胡萝卜素含量方法

(一)检测原理:类胡萝卜素含量测定(酶标仪96T)叶绿体中所含色素主要有两大类,叶绿素(包括叶绿素a和叶绿素b)和类胡萝卜素(包括胡萝卜素和叶黄素),它们与类囊体膜上的蛋白质结合,成为色素蛋白复合体,其含量多少及其组成决定了植物对不同光的吸收、利用效率,常常作为研究光合生理的重要指标。
根据叶绿体色素提取液对可见光谱的吸收,在649nm和665nm处测定叶绿素提取物的吸光值,在470nm处测定类胡萝卜素;然后利用经验公式计算出样品中叶绿素a含量、叶绿素b含量、叶绿素总含量及类胡萝卜素含量。
(二)试剂组分与配制:试剂名称规格保存要求试剂一粉剂×1瓶4℃保存乙醇(自备)1000mL×1瓶4℃保存抽提Buffer配制:(体积比)乙醇:丙酮=95:5(三)所需的仪器和用品:酶标仪、96孔板、天平、10mL玻璃试管、锡箔纸、无水乙醇,丙酮。
(四)测定步骤:建议正式实验前选取2个样本做预测定,了解本批样品情况,熟悉实验流程,避免实验样本和试剂浪费!1、样本制备(1)取新鲜植物叶片或其它绿色组织,去掉中脉。
(2)称约0.1g剪碎,用蒸馏水洗干净,然后加入1mL抽提Buffer,少量试剂一(约50mg),叶绿素对光敏感,务必在黑暗或弱光条件下充分研磨(难磨叶片可以添加少量石英砂助磨),然后转移至10mL玻璃试管。
(3)用抽提Buffer冲洗研钵,将所有冲洗液及研钵中所有的绿色物质转入10mL玻璃试管,用抽提Buffer补充至10mL,玻璃试管置于黑暗条件下或者包上锡箔纸浸提3h,观察试管底部组织残渣完全变白则提取完全,若组织残渣未完全变白,继续浸提至其完全变白。
2、上机检测分别取200μL浸提液和200μL抽提Buffer于96孔板,记为测定管和空白管,分别于665nm 和649nm和470nm处读取吸光值A,△A665=(A测定-A空白)665,△A649=(A测定-A空白) 649,△A470=(A测定-A空白)470。
纸层析法测定植物样品胡萝卜素含量

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1 .1 谢 定 原 理
HPLC测定食品维生素预混料中β-胡萝卜素的含量

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H L P C测 定 食 品维 生 素预 混 料 中 1 限公 司检测 中心 ,上海 上
摘
203 ) 0 3 1
要 :从检测波长 、 流动相 、 柱温等方面优 化了反相 高效液相 色谱 仪测定 维生素预 混料 中 1 胡 萝 卜 3一 素
( crt e , B— ao n ) 并对该检测方法 的适用性进行验证和评价。并用实验方法优化得到 的反相高效液相色谱 分析维 e
生 素预 混 料 分 析 B一胡 萝 卜 的 条 件 为 : 用 1: ( / 乙 醇 和 环 己烷 混 合 液 直 接 提 取 , 取 液 用 纯 水 洗 涤 至 素 采 1 v V) 提
f mae iudcrm t rp i m to r e r ia o f o n eLqi ho a gahc e df t m nt no B—crt ei imi d x r.A s,te p la i r o h o de i ao n va n amiue lo h pi bl e n t e t a c —
i f h sd t cin meh d t e f n v l ae An pi z d b s g e p r n a t o s o ih p r r a c t o i ee t t o o v r y a d e au t . y t o i dot mie y u i x e me t me h d fh g e fm n e n i l o
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式中 m:10g(mL)样品中β-胡萝卜素含量(mg); m1:标样进样体积中β-胡萝卜素含量(mg); m2:样品称样质量(g或mL); A1:标样峰面积值; A2:样品峰面积; V1:样品进样质量(μL); V2:样品定容体积(mL)。
实验注意事项 • 1、样品的预处理; • 2、流动相的过滤脱气处理; • 3、色谱条件的选择。
β-胡萝卜素含量测定原理
β-胡萝卜素为脂溶性维生素A的前体,存在于各
种动植物体内,可以直接用有机溶剂提取后进行 检测,然后利用反相色谱法分析。
Байду номын сангаас
3、. 实验仪器和材料
仪器:
高效液相色谱仪 紫外检测器等。 试剂材料:β-胡萝卜素; 乙酸乙酯; 正己烷; 色谱甲醇; 新鲜胡萝卜。
4、实验操作步骤:
色谱条件
• • • • • • 色谱柱:C18柱; 流动相:甲醇; 流速:1.5ml/min; 紫外检测波长:440nm; 进样量:20微升。 样品进样前需要用0.45微米的滤膜过滤, 装入进样瓶中。
5、实验结果和计算
• HPLC外标法定量 • • • • • • •
m1 A2 V 2 10 m m 2 A1 V 1
思考题:
•
• • • •
1、高效液相色谱仪的组成与工作主要 流程? 2、高效液相色谱的特点? 3、进行高效液相色谱仪检测β-胡萝卜素 时要对待测样品进行哪些预处理? 4、色谱图中β-胡萝卜素吸收峰峰高、峰 面积与样品中β-胡萝卜素浓度和纯度有 何关系?
高效液相色谱 法测定 β— 胡萝卜素含量
实验指导
一、实验目的 二、实验原理 三、实验仪器材料 四、实验操作步骤 五、实验结果 六、实验思考题
1、实验目的
1、理解高效液相色谱法的目的和意义; 2、理解和掌握高效液相色谱法的原理和方法; 3、掌握高效液相色谱仪的操作。
2、实验原理
高效液相色谱仪的组成与工作主要流程如下图所示:
(1)标准溶液的配制:精确称取100mg的含量为30%的β-胡
萝卜素标准品用乙酸乙酯溶解定容到100mL的棕色容量 瓶中。进样时取1ml,稀释定容到100ml。
(2)样品的制备:取样品,捣碎成浆状,称取10g,加甲醇、
正己烷各10ml研磨。过滤后,滤液以及用乙酸乙酯洗 涤渣的滤液一并接收在三角瓶中,提取液放入100ml棕 色容量瓶中,乙酸乙酯定容到100ml。