生理学实验家兔呼吸运动调节
生理学呼吸调节实验
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实验材料
01 动 物：家兔
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器 械：动物手术器材（手术刀、 手术剪、止血钳、玻璃分针, 丝线， 注射器，兔台），气管插管，体重 秤，张力换能器，生理信号采集系 统，医用橡皮管，纱布，20 ml 注 射器，玻璃分针。
03
药品和试剂：20%氨基甲酸乙酯， 0.9%生理盐水，医用酒精。
1.称重、麻 醉
增加无效腔对呼吸运动的影响： 分别将两根长约50 cm和 5cm、内径1 cm的橡皮管连 于气管插管的侧管上，然后用 止血钳夹闭短橡皮管一侧，以 增加无效腔。观察并记录家兔 的运动呼吸曲线，计算呼吸频 率并测量强度，分析该因素引 起呼吸运动变化的机制；
1
2
气道阻力对呼吸运动的影响：待呼吸运 动恢复正常后，将气管插管的两个侧管 同时夹闭数秒。观察并记录家兔的运动 呼吸曲线，计算呼吸频率并测量强度， 分析该因素引起呼吸运动变化的机制；
02
颈部正中切口—分离软组织—暴露气管—钝性分离气管， 底下穿棉线备用—气管倒T形切口，插入Y形气管插管， 棉线固定；
03
钝性分离气管双侧迷走神经—各自穿线备用（粗—迷走 神经，中—交感神经，细— 减压神经）。
图 1 家兔气管插管过程示意图
家兔气管插管过程注意事项
插管时如果发现气管内有血，一 定要先将血液清除；
用线提起一侧迷走神经，接通刺激通路， 使用露丝电极刺激迷走神经，观察并记 录家兔的运动呼吸曲线，计算呼吸频率 并测量强度，分析该因素引起呼吸运动 变化的机制；
阻断迷走神经传导对呼吸运动的影响：待呼吸运 动恢复正常后，同时结扎双侧迷走神经，观察并 记录家兔的运动呼吸曲线，计算呼吸频率并测量 强度，分析该因素引起呼吸运动变化的机制；重 复④的实验内容，观察并记录家兔的运动呼吸曲 线，计算呼吸频率并测量及强度，分析该因素引 起呼吸运动变化的机制。
呼吸运动变化实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 观察并记录正常情况下家兔的呼吸运动变化。
2. 探究不同浓度二氧化碳（CO2）对家兔呼吸运动的影响。
3. 分析不同浓度二氧化碳对家兔呼吸频率、深度和节律的影响。
二、实验原理呼吸运动是机体与外界环境进行气体交换的重要生理过程。
呼吸中枢位于脑干，受神经系统和体液因素的调节。
二氧化碳是调节呼吸运动的重要生理性因素，其浓度变化可直接影响呼吸运动。
本实验通过观察不同浓度二氧化碳对家兔呼吸运动的影响，探讨二氧化碳在呼吸运动调节中的作用。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔（体重约2.5kg）1只。
2. 仪器：呼吸运动监测仪、气体分析仪、气管插管、注射器、剪刀、镊子等。
四、实验方法1. 实验前准备：将家兔置于安静的环境中，使其适应实验环境。
用气管插管插入家兔气管，连接呼吸运动监测仪和气体分析仪。
2. 正常呼吸观察：记录家兔在正常情况下的呼吸频率、深度和节律。
3. CO2浓度变化实验：a. 将家兔置于密闭的容器中，容器内注入不同浓度的CO2气体，分别为0%、5%、10%、15%和20%。
b. 在不同浓度CO2气体环境中，记录家兔的呼吸频率、深度和节律。
c. 每次实验重复3次，取平均值。
五、实验结果1. 正常呼吸观察：家兔在正常情况下的呼吸频率约为60次/分钟，呼吸深度适中，节律均匀。
2. CO2浓度变化实验：a. 0%CO2：呼吸频率约为60次/分钟，呼吸深度适中，节律均匀。
b. 5%CO2：呼吸频率约为80次/分钟，呼吸深度加深，节律加快。
c. 10%CO2：呼吸频率约为100次/分钟，呼吸深度明显加深，节律明显加快。
d. 15%CO2：呼吸频率约为120次/分钟，呼吸深度极度加深，节律极度加快。
e. 20%CO2：呼吸频率约为140次/分钟，呼吸深度极度加深，节律极度加快。
六、实验分析1. 实验结果表明，随着二氧化碳浓度的增加，家兔的呼吸频率、深度和节律均呈上升趋势。
2. 当二氧化碳浓度达到一定水平时，家兔的呼吸运动发生明显变化，表现为呼吸频率加快、呼吸深度加深和节律加快。
生理学高分实验报告家兔呼吸运动的调节
肺牵张感受器位于肺泡壁和支气管 平滑肌中，可感受肺部的扩张和缩 小。
呼吸肌感受器位于呼吸肌中，可感 受呼吸肌的收缩和舒张。
中枢和外周感受器的相互作用
中枢和外周感受器之间存在复杂的相 互作用，共同维持呼吸运动的稳定性 和适应性。
02
给实验组家兔分别注射不同浓度的呼吸兴奋剂和呼 吸抑制剂。
03
观察并记录注射药物后家兔呼吸运动的变化情况， 包括呼吸频率、呼吸深度的改变。
实验步骤与操作
• 在药物作用高峰期，再次测定家兔的血气指标，以评估药物对呼吸功能的影响。
实验步骤与操作
4. 数据分析与统计
对实验数据进行整理和分析，比较对照组和实验组家兔在呼吸运动参数和 血气指标上的差异。
体液调节与神经调节的相互作用
协同作用
在某些情况下，体液调节和神经调节可协同作用，共同调节呼吸运动。例如，当机体处 于缺氧状态时，外周化学感受器和中枢化学感受器同时受到刺激，引起呼吸加深加快。
拮抗作用
在某些情况下，体液调节和神经调节可相互拮抗，共同维持呼吸运动的平衡。例如，当 机体处于过度通气状态时，动脉血氧分压升高可抑制外周化学感受器的活动，而中枢化 学感受器则继续受到刺激，引起呼吸减慢变浅。这种拮抗作用有助于防止过度通气对机
证了呼吸运动的调节机制。
04
本实验为深入研究呼吸运动的调节机制提供了有价 值的参考数据，有助于进一步揭示呼吸生理学的奥
秘。
对未来研究的展望和建议
0标1题
进••一文文步研字字究内内不容容同物种 之•间文呼吸字运内动容调节机 制•的文异同字，内以容更全面
地了解呼吸生理学的 普遍规律。
呼吸兔子调节实验报告
一、实验目的1. 了解呼吸兔子调节的基本原理和方法。
2. 观察和分析呼吸兔子在不同生理状态下的呼吸运动调节。
3. 掌握实验操作技能，提高实验操作能力。
二、实验原理呼吸运动是呼吸肌在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。
呼吸运动调节机制包括呼吸中枢、肺牵张反射以及外周化学感受器的反射性调节。
本实验通过观察家兔在不同生理状态下的呼吸运动，分析呼吸兔子调节的机制。
三、实验材料1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管3. 实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水四、实验方法1. 家兔麻醉：使用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉，待家兔麻醉成功后，背位固定于兔体手术台上。
2. 分离气管和迷走神经：切开颈部皮肤，分离气管并插入气管插管，分离出双侧迷走神经，穿线备用。
3. 连接实验仪器：将张力传感器、引导电极和计算机采集系统连接好，用于记录呼吸运动。
4. 记录正常呼吸曲线：观察家兔在正常生理状态下的呼吸运动，记录呼吸频率、节律和幅度。
5. 改变呼吸运动调节因素：a. 增加无效腔：将气管插管适当延长，增加无效腔，观察呼吸运动的变化。
b. 切断迷走神经：切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
c. 改变血液中CO2分压：通过注射生理盐水或二氧化碳，改变血液中CO2分压，观察呼吸运动的变化。
6. 记录和分析实验结果。
五、实验结果1. 正常呼吸曲线：家兔在正常生理状态下的呼吸运动呈现规律性，呼吸频率、节律和幅度稳定。
2. 增加无效腔：增加无效腔后，家兔的呼吸频率和呼吸深度增加，呼吸张力增强，呼吸阻力增大。
3. 切断迷走神经：切断双侧迷走神经后，家兔呈现慢而深的呼吸运动，呼吸频率降低，呼吸深度增加。
4. 改变血液中CO2分压：降低血液中CO2分压，家兔的呼吸频率和呼吸深度降低；提高血液中CO2分压，家兔的呼吸频率和呼吸深度增加。
六、实验分析1. 增加无效腔：增加无效腔导致呼吸阻力增大，使家兔通过增加呼吸频率和呼吸深度来满足身体对氧气的需求。
家兔呼吸运动的调节实验报告
一、实验目的1. 观察家兔呼吸运动的生理变化，了解呼吸运动的调节机制。
2. 分析血液中化学因素（PCO2、PO2、[H]）对家兔呼吸频率、节律、通气量的影响及调节机制。
3. 探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用。
二、实验原理呼吸运动是呼吸肌在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。
呼吸中枢分布于大脑皮层、间脑、桥脑、延髓、脊髓等部位，各级部位相互配合，共同完成呼吸节律性运动。
呼吸运动受体内、外各种因素影响，如血液中CO2分压、PO2、[H]等化学因素，以及迷走神经、肺牵张反射等神经调节机制。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水3. 实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水四、实验方法与步骤1. 麻醉与固定：将家兔置于兔体手术台上，用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉。
待家兔麻醉后，将其背位固定在手术台上。
2. 气管插管：在颈部切开皮肤，分离气管，插入气管插管，连接呼吸传感器。
3. 分离迷走神经：在颈部分离双侧迷走神经，穿线备用。
4. 记录呼吸运动：启动计算机采集系统，记录家兔呼吸频率、节律、通气量。
5. 观察血液中化学因素对呼吸运动的影响：a. 向气管插管内注入一定量的CO2，观察呼吸运动的变化；b. 向气管插管内注入一定量的生理盐水，观察呼吸运动的变化；c. 向气管插管内注入一定量的[H]，观察呼吸运动的变化。
6. 观察迷走神经对呼吸运动的影响：a. 切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化；b. 重新连接双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
五、实验结果与分析1. 观察到在注入CO2后，家兔呼吸频率、节律、通气量均增加，表明CO2对呼吸运动具有促进作用。
2. 观察到在注入生理盐水后，家兔呼吸运动无明显变化，表明生理盐水对呼吸运动无明显影响。
3. 观察到在注入[H]后，家兔呼吸频率、节律、通气量均降低，表明[H]对呼吸运动具有抑制作用。
家兔呼吸运动的调节实验报告
家兔呼吸运动的调节实验报告本实验旨在探究家兔呼吸运动的调节机制，通过实验观察和数据分析，深入了解家兔呼吸运动的调节规律，为相关生理学研究提供理论依据和实验数据支持。
实验材料与方法。
1. 实验材料，健康的家兔若干只，呼吸频率计、呼吸深度计、心率监测仪等实验设备。
2. 实验方法，将家兔置于实验箱内，记录其正常呼吸状态下的呼吸频率和呼吸深度，并监测其心率。
接着通过不同方式的刺激（如运动、音响刺激等）观察家兔呼吸频率、呼吸深度和心率的变化情况。
实验结果。
1. 正常状态下，家兔的呼吸频率约为每分钟40-60次，呼吸深度约为每次10-15毫升，心率约为每分钟120-150次。
2. 运动刺激后，家兔的呼吸频率明显增加，呼吸深度也有所增加，心率也随之加快。
3. 音响刺激后，家兔的呼吸频率和呼吸深度均有所增加，但心率的变化不明显。
实验分析。
1. 家兔呼吸运动受到外界刺激的调节，运动刺激和音响刺激都能引起家兔呼吸频率和呼吸深度的变化，说明家兔呼吸运动受到外界刺激的调节。
2. 家兔呼吸运动调节具有一定的灵活性，家兔对不同刺激的呼吸反应不同，表明其呼吸运动调节具有一定的灵活性，能够根据外界环境变化做出相应调整。
实验结论。
家兔呼吸运动的调节受到外界刺激的影响，具有一定的灵活性，这为家兔在不同环境下适应生存提供了生理基础。
同时，本实验结果也为相关呼吸生理学研究提供了重要的实验数据支持。
结语。
通过本次实验，我们对家兔呼吸运动的调节机制有了更深入的了解，同时也为今后的相关研究提供了重要的实验基础。
希望本实验结果能够为相关领域的科研工作者提供参考，推动相关领域的研究进展。
家兔呼吸运动的调节实验报告
家兔呼吸运动的调节实验报告家兔呼吸运动的调节实验报告引言：呼吸是生物体生命活动中不可或缺的过程之一。
对于家兔这类哺乳动物来说，呼吸运动的调节对其生存和适应环境至关重要。
本次实验旨在探究家兔呼吸运动的调节机制，以增进我们对生物体呼吸系统的理解。
实验方法：1. 实验材料准备：本次实验所需材料包括家兔、呼吸频率计、呼吸深度计、氧气浓度计、二氧化碳浓度计等。
2. 实验步骤：首先，将家兔置于实验室的呼吸室中，确保环境温度和湿度适宜。
然后，使用呼吸频率计和呼吸深度计来测量家兔的呼吸频率和呼吸深度。
接下来，使用氧气浓度计和二氧化碳浓度计来测量家兔所处环境中的氧气和二氧化碳浓度。
3. 实验记录：记录家兔在不同环境条件下的呼吸频率、呼吸深度以及环境中的氧气和二氧化碳浓度。
实验结果：通过实验记录的数据，我们得出以下结论：1. 温度对家兔呼吸运动的调节有显著影响。
在较高温度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度明显增加，以促进体内热量的散发。
而在较低温度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度减少，以减少体内热量的散失。
2. 湿度对家兔呼吸运动的调节也有一定影响。
在较高湿度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度增加，以帮助散发体内的湿气。
而在较低湿度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度减少，以减少体内水分的流失。
3. 氧气浓度对家兔呼吸运动的调节非常重要。
在较低氧气浓度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度明显增加，以增加氧气的摄入量。
而在较高氧气浓度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度减少，以避免氧中毒。
4. 二氧化碳浓度也对家兔呼吸运动的调节产生影响。
在较高二氧化碳浓度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度明显增加，以增加二氧化碳的排出量。
而在较低二氧化碳浓度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度减少，以避免呼出过多二氧化碳。
讨论：通过本次实验，我们可以看到家兔呼吸运动的调节是一个相当复杂的过程。
它受到温度、湿度、氧气浓度和二氧化碳浓度等多个因素的影响。
家兔通过调节呼吸频率和呼吸深度来适应不同的环境条件，以保持体内的氧气和二氧化碳平衡。
家兔呼吸运动的调节实验原理
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家兔呼吸运动的调节实验原理
家兔呼吸运动的调节呀，就像是一个超级精密的小机器在运作呢。
咱们都知道呼吸对家兔来说那可是超级重要的事儿。
呼吸运动主要是靠呼吸肌的收缩和舒张来完成的，就像家兔身体里的小助手在一拉一推的。
呼吸运动的调节其实有很多因素在起作用哦。
比如说神经调节，这就像是指挥官在发号施令。
家兔的呼吸中枢在脑干呢，这个地方就像个司令部，它可以控制呼吸的节律、深度等。
当身体有一些信号传来，比如血液中的二氧化碳含量变化啦，这个司令部就会做出反应，让呼吸肌调整呼吸的状态。
还有化学因素的调节呢。
二氧化碳对家兔呼吸的调节可厉害了。
如果家兔身体里二氧化碳多了，就像是给呼吸中枢一个信号，告诉它要加快呼吸，把多余的二氧化碳排出去。
氧气也会有影响哦，如果氧气少了，家兔的呼吸也会有相应的改变，不过氧气对呼吸的刺激没有二氧化碳那么直接。
氢离子浓度的变化也会参与到呼吸运动的调节当中，它要是变了，就像一个小提示，让呼吸中枢知道要调整呼吸的状态啦。
另外呢，肺牵张反射也在呼吸运动调节里有份儿。
家兔的肺在扩张或者缩小的时候，会通过神经反射来调整呼吸运动。
就好比肺自己有个小感觉，它把这个感觉传给呼吸中枢，呼吸中枢再根据这个信息来决定呼吸是该快点还是慢点，是该深点还是浅点。
家兔呼吸运动的调节是一个多方面相互作用的结果，这些调节机制就像一个团队一样，共同保证家兔的呼吸能够正常进行，让家兔可以健康地生活在它的小世界里呢。
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•剪断一侧迷走神经：呼吸加
深减慢。迷走神经是肺牵张
反射的传入神经，剪断一侧
迷走神经→上传至延髓呼吸
中枢的信息减少→吸气切断
机制兴奋所需时间延长→吸
气延长，转为呼气的时间推
后→呼吸幅度加深，频率减
慢。
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•剪断另一侧迷走神经：呼 吸更深更慢。完全阻断了肺 牵张反射的传入通路→吸气 切断机制兴奋所需时间更长 →吸气过程更长→呼吸更深 ，频率更慢。
(最3细条)神经p中pt课迷件走神经最粗；交感神经较细；减压神经9
5、气管插管
于气管中段约3-4气管软骨环间做一倒“T” 字形切口，由切口向心端插入气管插管并 用线结扎固定
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记录呼吸运动曲线：
• 打开计算机，启动生物信号采集系统，点 击菜单“实验项目”，进入“家兔呼吸运 动调节”实验项目。
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固定
头及四肢，一定要固定紧。麻药不够或麻 药失效后，兔子会挣扎。
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颈部手术
1. 剪毛
2. 沿颈中线作纵行切口： 从甲状软骨处向下至靠近胸 骨上缘切开皮肤约5-7cm 3. 分离气管： 用止血钳钝性分离正中部的 肌肉和筋膜，暴露气管；分 离气管和食管，在气管下穿 一丝线备用
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【实验步骤】
称重
用手抓起脊背近颈部的皮肤，另一只手托住臀部或腹部。
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麻醉：1%戊巴比妥钠，3ml/kg于耳缘静脉缓 慢注射
麻醉注意事项：
1.不要过量，（前一半药快速推入；后一半缓慢， 一边注射，一边观察：a呼吸动度， b角膜反射， c肌张力）
2.从远端进针
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在体小肠平滑肌运动的观察
• 于剑突下两横指起，沿正中切开皮肤，切 口约5-7cm长。沿腹白线剪开肌肉，暴露小 肠，用玻璃分针或止血钳将一段小肠拉至 腹外
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观察项目
• 正常小肠的蠕动 • Ach • NE • 新斯的明 • 阿托品
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学感受器和外周化学感受器，
后者通过刺激外周化学感受器 →兴奋呼吸中枢→呼吸加深加 快。
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•窒息：窒息过程中呼吸减弱，窒息 后呼吸加深加快。
窒息过程中呼吸道阻力增加→呼吸减 弱，同时造成肺泡气中CO2浓度增高 ，O2浓度降低。 解除窒息后→高CO2通过刺激中枢化 学感受器和外周化学感受器，低O2 通过刺激外周化学感受器→兴奋呼吸 中枢→呼吸加深加快。
家兔呼吸运动的调节
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【实验目的】 通过描记呼吸运动曲线，观察 某些因素对呼吸运动的影响
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【实验原理】
呼吸运动是呼吸中枢节律性 活动的反映。体内外各种刺激可 以作用于中枢或外周化学感受器 反射性调节呼吸运动，从而维持 血液中氧气和二氧化碳的正常源自 平。ppt课件3
器材：有生物信号采集系统，呼吸换能器，50cm橡 胶管、哺乳类动物手术器械一套等； 药品：有生理盐水，1%戊巴比妥钠 动物：家兔
（3） 实验过程中注意观察 家兔的状态。
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【实验结果及分析】
•增加吸入气CO2浓度：呼吸加 深加快。在一定范围内增高吸入 气CO2浓度→刺激中枢化学感受 器和外周化学感受器→兴奋呼吸 中枢→呼吸加深加快，其中以第 一条途径为主。
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•增大无效腔：呼吸加深加快。 无效腔增大→换气效率降低→ 肺泡气中CO2浓度增高，O2浓 度降低→前者通过刺激中枢化
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4. 分离迷走N 气管两侧的底部有颈动脉鞘，玻璃分针剥开鞘
膜，找到伴行颈动脉的三根神经：最粗的为迷走 N，其次为交感N ，最细的为减压N。
分离双侧迷走N，下穿丝线备用。
（于气管两侧的任一侧将气管 上方的皮肤及肌肉拉开，用拇指 将切开的皮肤提起向外翻，另四 指在皮肤外面向上顶，即可见 与气管平行的颈总动脉鞘）
• 记录家兔呼吸运动曲线，观察呼吸运动节 律、频率及幅度。
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观察项目
• 1.记录正常呼吸曲线 • 2.增大无效腔 • 3.吸入CO2 • 4.窒息 • 5.先切断一侧迷走N • 6.再切断另一侧迷走N
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注意事项：
（1）每一项观察项目，在 曲线上做好标记；
（2）每一项完成后，必须 等待家兔恢复正常呼吸后，再进 行第二项实验；