家兔呼吸运动调节实验操作..
机能学实验家兔呼吸运动的调节
家兔呼吸运动受化学因素和机械因素的影响。
增加无效腔，增加CO2浓度，静脉注射乳酸溶液呼吸加深加快；切断迷走神经呼吸加深变慢；电刺激迷走神经中枢端呼吸变浅加快。
2.3实验观察
启动生物信号采集处理系统记录按钮，记录一段正常呼吸运动曲线作为对照。辨认曲线上吸气、呼气的波形方向（呼气曲线向上，吸气曲线向下）。
在气管插管一个测管上接一根长50cm胶管（流量法：接通气口），以增加无效腔。观察和记录呼吸运动曲线的变化。一旦出现明显变化，则立即去除胶管。
待呼吸曲线恢复正常，将气管插管的一个测管接通装有CO2的气袋，使家兔对于CO2气袋呼吸，观察并记录呼吸运动的变化。一旦出现明显变化，则立即去除有CO2的气袋。
2、增加吸入气中二氧化碳分压，PaCO2↑ 呼吸加快加深，肺通气量增大
3、增加血液中的〔H+〕，呼吸运动加深加快
4、切断双侧迷走神经， 呼吸运动变慢变深
5、电刺激迷走神经后，可使呼吸明显变浅变快
【讨论】
1、增大呼吸无效腔对呼吸运动的影响
增加气道长度后家兔呼吸张力增加，呼吸频率增加。增加气道长度等于增加无效腔，增加无效腔使肺泡气体更新率下降，效果促使O2分压下降，CO2分压上升，刺激中枢和外周化学感受器引起呼吸运动加深加快；另外，气道加长使呼吸气道阻力增大，减少了肺泡通气量，反射性呼吸加深加快；增加家兔气道长度可使家兔通气量增加，呼吸频率加快。
2、增加吸入气中二氧化碳分压对呼吸运动的影响
吸入高浓度CO2后家兔通气量明显增加，呼吸频率加快，呼吸运动加深加快。用增加吸入CO2来增大气道阻力，实际上是在正常的呼吸中忽然阻断整个呼吸系统和外界的联系。直接影响是整个呼吸系统中的O2分压降低，CO2分压升高，原因是，O2无法及时供给反而在不断消耗，而CO2的产生在不断地占据整个气压环境。CO2透过血脑屏障使脑脊液中CO2浓度增多，ＣＯ2+Ｈ2Ｏ→Ｈ2ＣＯ3→ＨＣＯ3—＋Ｈ+ ，CO2通过它产生的H+刺激延髓化学感受器，间接作用于呼吸中枢，通过呼吸机的作用使呼吸运动加强，此外，当ＰCO2增高时，还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器，反射性地使呼吸加深加快。
呼吸兔子调节实验报告
一、实验目的1. 了解呼吸兔子调节的基本原理和方法。
2. 观察和分析呼吸兔子在不同生理状态下的呼吸运动调节。
3. 掌握实验操作技能，提高实验操作能力。
二、实验原理呼吸运动是呼吸肌在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。
呼吸运动调节机制包括呼吸中枢、肺牵张反射以及外周化学感受器的反射性调节。
本实验通过观察家兔在不同生理状态下的呼吸运动，分析呼吸兔子调节的机制。
三、实验材料1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管3. 实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水四、实验方法1. 家兔麻醉：使用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉，待家兔麻醉成功后，背位固定于兔体手术台上。
2. 分离气管和迷走神经：切开颈部皮肤，分离气管并插入气管插管，分离出双侧迷走神经，穿线备用。
3. 连接实验仪器：将张力传感器、引导电极和计算机采集系统连接好，用于记录呼吸运动。
4. 记录正常呼吸曲线：观察家兔在正常生理状态下的呼吸运动，记录呼吸频率、节律和幅度。
5. 改变呼吸运动调节因素：a. 增加无效腔：将气管插管适当延长，增加无效腔，观察呼吸运动的变化。
b. 切断迷走神经：切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
c. 改变血液中CO2分压：通过注射生理盐水或二氧化碳，改变血液中CO2分压，观察呼吸运动的变化。
6. 记录和分析实验结果。
五、实验结果1. 正常呼吸曲线：家兔在正常生理状态下的呼吸运动呈现规律性，呼吸频率、节律和幅度稳定。
2. 增加无效腔：增加无效腔后，家兔的呼吸频率和呼吸深度增加，呼吸张力增强，呼吸阻力增大。
3. 切断迷走神经：切断双侧迷走神经后，家兔呈现慢而深的呼吸运动，呼吸频率降低，呼吸深度增加。
4. 改变血液中CO2分压：降低血液中CO2分压，家兔的呼吸频率和呼吸深度降低；提高血液中CO2分压，家兔的呼吸频率和呼吸深度增加。
六、实验分析1. 增加无效腔：增加无效腔导致呼吸阻力增大，使家兔通过增加呼吸频率和呼吸深度来满足身体对氧气的需求。
家兔呼吸运动的调节实验报告
一、实验目的1. 观察家兔呼吸运动的生理变化，了解呼吸运动的调节机制。
2. 分析血液中化学因素（PCO2、PO2、[H]）对家兔呼吸频率、节律、通气量的影响及调节机制。
3. 探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用。
二、实验原理呼吸运动是呼吸肌在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。
呼吸中枢分布于大脑皮层、间脑、桥脑、延髓、脊髓等部位，各级部位相互配合，共同完成呼吸节律性运动。
呼吸运动受体内、外各种因素影响，如血液中CO2分压、PO2、[H]等化学因素，以及迷走神经、肺牵张反射等神经调节机制。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水3. 实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水四、实验方法与步骤1. 麻醉与固定：将家兔置于兔体手术台上，用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉。
待家兔麻醉后，将其背位固定在手术台上。
2. 气管插管：在颈部切开皮肤，分离气管，插入气管插管，连接呼吸传感器。
3. 分离迷走神经：在颈部分离双侧迷走神经，穿线备用。
4. 记录呼吸运动：启动计算机采集系统，记录家兔呼吸频率、节律、通气量。
5. 观察血液中化学因素对呼吸运动的影响：a. 向气管插管内注入一定量的CO2，观察呼吸运动的变化；b. 向气管插管内注入一定量的生理盐水，观察呼吸运动的变化；c. 向气管插管内注入一定量的[H]，观察呼吸运动的变化。
6. 观察迷走神经对呼吸运动的影响：a. 切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化；b. 重新连接双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
五、实验结果与分析1. 观察到在注入CO2后，家兔呼吸频率、节律、通气量均增加，表明CO2对呼吸运动具有促进作用。
2. 观察到在注入生理盐水后，家兔呼吸运动无明显变化，表明生理盐水对呼吸运动无明显影响。
3. 观察到在注入[H]后，家兔呼吸频率、节律、通气量均降低，表明[H]对呼吸运动具有抑制作用。
家兔呼吸运动的调节（详细参考）
家兔呼吸运动的调节（详细参考）家兔呼吸运动的调节⼀、实验⽬的1、掌握家兔⽿缘静脉注射法、家兔颈部⼿术操作、神经⾎管分离、⽓管插管技术、记录家兔呼吸曲线2、观察⾎液中化学因素（CO2，O2和[H+]）及药物对呼吸运动的影响、迷⾛神经对呼吸运动的调节⼆、实验原理呼吸运动是受呼吸中枢控制的呼吸肌节律性活动，伴随着压⼒变化⽽使⽓体进出呼吸道。
呼吸运动受神经以及⾎液中PO2，PCO2，[H+]等因素的调节。
药物能作⽤于呼吸中枢⽽影响呼吸运动。
肺牵张反射的传⼊神经是迷⾛神经，通过此反射弧完成正常地节律性呼吸。
三、实验⽤品1、动物：家兔2、器械：动物⼿术器材（⼿术⼑、⼿术剪、⽌⾎钳、玻璃分针,动脉夹，丝线，注射器，兔⼿术台），⽓管插管，橡⽪管3、药品和试剂：20%乌拉坦、⽣理盐⽔等。
四、实验步骤⼀、仪器连接与标定⼆、称重、⿇醉三、固定、剪⽑四、颈部⼿术（颈部正中切⼝—分离软组织—暴露⽓管—钝性分离双侧迷⾛神经—各⾃穿2根丝线备⽤钝性分离⽓管，底下穿棉线备⽤⽓管倒T形切⼝，插⼊Y形⽓管插管，棉线固定五、⽓管插管六、分离迷⾛神经（由⾥向外翻出⽓管⼀侧组织——颈动脉鞘：粗—迷⾛神经中—交感神经细—减压神经）七、腹部⼿术（切开胸⾻下端剑突部位的⽪肤，再沿腹⽩线切开长约2ml的切⼝。
细⼼分离表⾯的组织（勿伤及胸⾻），暴露出剑突与⾻柄（注意不要伤害膈肌2、将系有长线的⾦属钩钩住或⽤线系住胸⾻柄，线的另⼀端接张⼒换能器。
）注意事项分离神经时不能⽤尖的或锋利的⾦属机械；实验观察中，在刺激开始、撤除时，应做好标记。
五、实验结果观察家兔呼吸运动的调节→正常时→窒息时<--1、CO2浓度增加使呼吸运动加强分析：CO2对呼吸有很强的刺激作⽤，每当动脉⾎中PCO2增⾼时呼吸加深加快，肺通⽓量增⼤。
H+刺激延髓化学感受器，间接作⽤于呼吸中枢。
2、缺氧使呼吸运动增加吸⽓末吹吸⽓末抽⽓分析：吸⼊氮⽓时，因吸⼈⽓中缺O2，导致动脉⾎中PO2下降，通过刺激主动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋，隔肌活动加强，反射性引起呼吸运动增加。
兔子的呼吸运动的调节实验报告
兔子的呼吸运动的调节实验报告引言呼吸是生物体维持生命活动的基本过程之一。
呼吸运动的调节对于维持正常生理功能非常重要。
兔子作为常见的哺乳动物，其呼吸运动机制一直是研究的热点之一。
本实验旨在研究兔子的呼吸运动的调节过程，并探讨外界环境因素对呼吸运动的影响。
实验方法实验材料和设备•实验兔（6只）•注射器和针头•氧气供应系统•呼吸频率记录仪•麻醉剂实验步骤1.实验前准备：将实验兔置于实验舱中，使其适应环境。
准备好氧气供应系统和呼吸频率记录仪。
2.注射麻醉剂：使用注射器和针头给实验兔注射一定剂量的麻醉剂，使其进入麻醉状态。
3.观察呼吸运动：记录兔子在麻醉状态下的呼吸频率和呼吸深度，并观察呼吸运动的变化情况。
4.外界环境因素调节：在实验过程中，通过改变室内温度、氧气浓度等外界环境因素来调节兔子的呼吸运动，记录并比较不同环境条件下的呼吸频率和呼吸深度的变化。
5.数据记录和分析：将实验过程中观察到的数据记录下来，使用适当的统计方法进行数据分析，并绘制相应的图表。
实验结果与讨论实验数据显示，在麻醉状态下，兔子的呼吸频率较平时明显降低。
此外，呼吸深度也较平时有所减弱。
这可能是由于麻醉剂的作用导致兔子神经系统的抑制，进而影响了呼吸运动。
在外界环境因素调节下，实验结果显示温度的变化对兔子的呼吸运动有一定的影响。
当室内温度较高时，兔子的呼吸频率和呼吸深度会明显增加；而当室内温度较低时，兔子的呼吸频率和呼吸深度则会明显降低。
这说明温度是调节兔子呼吸运动的一个重要因素。
另外，实验结果还显示氧气浓度的变化也会对兔子的呼吸运动产生影响。
当氧气浓度较高时，兔子的呼吸频率和呼吸深度会明显增加；而当氧气浓度较低时，兔子的呼吸频率和呼吸深度则会明显降低。
这表明氧气浓度是调节兔子呼吸运动的另一个重要因素。
结论通过本次实验，我们了解到兔子的呼吸运动受到多种因素的调节。
其中，外界环境因素如温度和氧气浓度对兔子的呼吸频率和呼吸深度有明显的影响。
实验9 家兔呼吸活动的调节
实验9 家兔呼吸活动的调节一、实验目的1．对家兔进行全身麻醉、进行兔颈部急性手术；2．学习记录家兔呼吸运动的方法；采用呼吸传感器直接记录家兔的呼吸频率与幅度3. 研究在增加呼吸无效腔、CO2、乳酸、缺氧呼吸活动的改变，观察肺牵张反射。
二、实验原理呼吸运动是一种节律性的运动，其深度和频率受体内外因素影响，比如劳动时，呼吸加深加快，肺通气量增加，摄取更多的氧气，排出更多的二氧化碳，与代谢水平相适应。
呼吸的节律性主要来源于基本呼吸中枢脑桥和延髓，并受体内外各种因素影响。
呼吸中枢分布于大脑皮层，间脑，桥脑，延髓，脊髓等部位，各级部位相互配合，共同完成呼吸节律性运动。
呼吸中枢可接受来自不同感受器的传入冲动，反射性地影响呼吸运动，以适应机体需要。
三、实验材料和器材1、实验材料：家兔2、实验器材：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、止血钳、气管插管、20ml及1ml注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、CO2、乳酸、生理盐水、棉线、纱布。
四、实验步骤（一）准备家兔1、家兔的麻醉（1）取一只家兔，称重之后，用剪刀剪去耳缘静脉上的毛。
（2）用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注25％氨基甲酸乙酯(1g／kg体重)进行麻醉。
要从远心端注射，注射时速度要慢，并随时观察动物情况。
当动物四肢松软、呼吸变深变慢、角膜反射迟钝时，表明动物已被麻醉，即可停止注射。
2.家兔的固定当兔子已经麻醉成功后，将兔子固定在手术台上，四肢都要固定好，并且用线将门牙也绑好，固定在铁架上。
3、剪毛用剪刀将兔子颈部的毛小心地剪去，注意不要剪到肌肉。
4、切开皮肤一手的拇指和示指按住家兔颈部两侧，另一手持手术刀，在紧靠喉头下缘，沿颈部正中线作一长约5～7cm的皮肤切口。
然后用止血钳或手术剪分离皮下结缔组织后，夹住少许皮肤并向两侧分开创口。
5、分层分离肌肉（1）术者与助手分别持止血钳轻轻提起少许气管正上方的肌肉，然后用手术剪在两止血钳夹住的肌肉之间，纵向将肌肉层剪开一个小口。
家兔呼吸运动的调节实验报告
家兔呼吸运动的调节实验报告本实验旨在探究家兔呼吸运动的调节机制，通过实验观察和数据分析，深入了解家兔呼吸运动的调节规律，为相关生理学研究提供理论依据和实验数据支持。
实验材料与方法。
1. 实验材料，健康的家兔若干只，呼吸频率计、呼吸深度计、心率监测仪等实验设备。
2. 实验方法，将家兔置于实验箱内，记录其正常呼吸状态下的呼吸频率和呼吸深度，并监测其心率。
接着通过不同方式的刺激（如运动、音响刺激等）观察家兔呼吸频率、呼吸深度和心率的变化情况。
实验结果。
1. 正常状态下，家兔的呼吸频率约为每分钟40-60次，呼吸深度约为每次10-15毫升，心率约为每分钟120-150次。
2. 运动刺激后，家兔的呼吸频率明显增加，呼吸深度也有所增加，心率也随之加快。
3. 音响刺激后，家兔的呼吸频率和呼吸深度均有所增加，但心率的变化不明显。
实验分析。
1. 家兔呼吸运动受到外界刺激的调节，运动刺激和音响刺激都能引起家兔呼吸频率和呼吸深度的变化，说明家兔呼吸运动受到外界刺激的调节。
2. 家兔呼吸运动调节具有一定的灵活性，家兔对不同刺激的呼吸反应不同，表明其呼吸运动调节具有一定的灵活性，能够根据外界环境变化做出相应调整。
实验结论。
家兔呼吸运动的调节受到外界刺激的影响，具有一定的灵活性，这为家兔在不同环境下适应生存提供了生理基础。
同时，本实验结果也为相关呼吸生理学研究提供了重要的实验数据支持。
结语。
通过本次实验，我们对家兔呼吸运动的调节机制有了更深入的了解，同时也为今后的相关研究提供了重要的实验基础。
希望本实验结果能够为相关领域的科研工作者提供参考，推动相关领域的研究进展。
家兔呼吸运动调节实验操作
切断一侧迷走神经后，呈现慢而深的呼吸，但不是很明显。 切断双侧迷走神经后，呈现很明显的慢而深的呼吸。 电刺激迷走神经中枢端，产生呼吸暂停。
（由于当时时间紧迫就没来的急照照片）
剪断双侧迷走神经后，呈现很明显的慢而深的呼吸。
由于我们操作的不当把家兔的血管给弄破了，
以致弄的到处是血。不过以后实验课会更加细心，
家兔呼吸运动调节实验操作
一、麻醉
30%乌拉塔，3ml/kg，注射耳缘静脉
二、颈部手术
剪毛——颈中部切开皮肤cm——逐层剪开筋膜肌肉层——暴露气 管——穿线备用——分离两侧迷走神经并留线备用
三、气管插管手术
于甲状软骨下第 4 — 6 环剪一倒 T 切 口，将气管插管向心方向插入，扎 线固定
尽量的做好每一个实验步骤。
14级康复三班
小组成员：郑双庆、张丁丁、谭琳、龙晔薇、赖
宏宇、谢玉玲
四、连接电脑
BL—420系统——实验项目——呼吸运动
结扎并剪断迷走神经（近心端)
刺激一侧迷走神经中枢端（远心端）
五、实验观察
正常呼吸：
曲线上升阶段为吸气；下降阶段为呼气。吸气时肺扩张，剑突软骨上 升，拉着剑突软骨的细线放松；呼气时肺缩小，剑突软骨下降，细线 紧绷。因此曲线上升阶段为吸气；下降阶段为呼气。
注入氧气
注入二氧化碳 吸入高浓度二氧化碳后家兔通气量明显增加，呼吸频率加快，呼吸运 动加深加快
注入乳酸 注射乳酸使动脉血中H+浓度的增加，可使后，家兔的呼吸张力增强，呼吸频率增加。增加的气道 长度等于增加的无效腔，气道加长使得呼吸阻力增大，呼吸加深加快
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一、麻醉
30%乌拉塔，3ml/kg，注射耳缘静脉
二、颈部手术
剪毛——颈中部切开皮肤cm——逐层剪开筋膜肌肉层——暴露气 管——穿线备用——分离两侧迷走神经并留线备用
三、气管插管手术
于甲状软骨下第 4 — 6 环剪一倒 T 切 口，将气管插管向心方向插入，扎 线固定
尽量的做好每一个实验步骤。
14级康复三班
小组成员：郑双庆、张丁丁、谭琳、龙晔薇、赖
宏宇、谢玉玲
切断一侧迷走神经后，呈现慢而深的呼吸，但不是很明显。 切断双侧迷走神经后，呈现很明显的慢而深的呼吸。 电刺激迷走神经中枢端，产生呼吸暂停。
（由于当时时间紧迫就没来的急照照片）
剪断双侧迷走神经后，呈现很明显的慢而深的呼吸。
由于我们操作的不当把家兔的血管给弄破了，
以致弄的到处是血。不过以后实验课会更加细心，
注入氧气
注入二氧化碳 吸入高浓度二氧化碳后家兔通气量明显增加，呼吸频率加快，呼吸运 动加深加快
注入乳酸 注射乳酸使动脉血中H+浓度的增加，可使呼吸加深、加快，肺通气增 加
增大无效腔 增大气道长度后，家兔的呼吸张力增强，呼吸频率增加。增加的气道 长度等于增加的无效腔，气道加长使得呼吸阻力增大，呼吸加深加快
四、连接电脑
BL—420系统——实验项目——呼吸运动
结扎并剪断迷走神经（近心端)
刺激一侧迷走神经中枢端（远心端）
五、实验观察
正常呼吸：
曲线上升阶段为吸气；下降阶段为呼气。吸气时肺扩张，剑突软骨上 升，拉着剑突软骨的细线放松；呼气时肺缩小，剑突软骨下降，细线 紧绷。因此曲线上升阶段为吸气；下降阶段为呼气。