神经导管修复大鼠坐骨神经缺损实验研究

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股神经分支基膜管修复大鼠坐骨神经缺损的实验研究

股神经分支基膜管修复大鼠坐骨神经缺损的实验研究股神经分支基膜管修复大鼠坐骨神经缺损的实验研究引言：坐骨神经是人体最大的一条神经，起始于腰部，沿着骨盆后缘向下延伸，负责供应下肢的运动和感觉功能。

然而，由于外界伤害、手术或疾病等原因，坐骨神经缺损导致的运动和感觉功能丧失给患者带来巨大的生活困扰。

因此，对于坐骨神经缺损的修复方法的研究变得尤为重要。

股神经分支基膜管修复在神经再生领域备受关注，该方法通过被损坏的神经间产生桥梁的形成来促进神经细胞的再生和重建。

因此，本实验研究旨在探究股神经分支基膜管修复对大鼠坐骨神经缺损的可行性和疗效。

材料与方法：本实验采用50只健康成年大鼠作为实验对象，随机分为实验组和对照组。

实验组大鼠坐骨神经缺损后接受股神经分支基膜管修复；对照组大鼠接受传统的坐骨神经吻合修复。

两组大鼠在手术后分别进行行为学和电生理学测试，并进行神经组织学分析。

结果：在行为学测试中，实验组大鼠在恢复运动功能方面表现出更好的结果，能够更早地行走和跑动。

而对照组大鼠在恢复运动功能上进展较慢。

电生理学测试结果也显示，实验组大鼠在康复过程中产生的神经冲动频率更高，相应的神经传导速度更快。

此外，神经组织学分析结果显示，实验组大鼠坐骨神经缺损区域内的神经再生比对照组更为显著。

讨论：本实验结果表明，股神经分支基膜管修复可以促进大鼠坐骨神经缺损的恢复，显著提高运动功能和神经组织再生。

与传统的坐骨神经吻合修复相比，股神经分支基膜管修复更具有潜力。

结论：股神经分支基膜管修复是一种可行且有效的方法，可用于大鼠坐骨神经缺损的修复。

本实验研究为进一步探究股神经分支基膜管修复在临床应用中的潜力提供了依据，并为坐骨神经缺损的治疗提供了新思路。

然而，该研究仍存在一些限制，需要进一步的研究完善和验证综合实验结果显示，股神经分支基膜管修复相比传统的坐骨神经吻合修复在大鼠坐骨神经缺损的恢复中具有更好的效果。

股神经分支基膜管修复可显著提高大鼠的运动功能恢复和神经组织再生，并促进神经冲动频率和传导速度的提高。

神经导管修复大鼠坐骨神经缺损实验研究

神经导管修复大鼠坐骨神经缺损实验研究（作者:___________单位: ___________邮编: ___________）作者：张凤久赵志英刘启黄丽华【摘要】目的：采用一种自行研制的具有良好生物相容性的壳聚糖构建人工神经来修复大鼠坐骨神经缺损,研究证实其修复效果。

方法：选用30只健康雄性Wistar大鼠,随机分为正常对照组（A组）、原位神经移植组（B组）、壳聚糖神经导管桥接组（C组)3组，分别切断坐骨神经后做相应处理，12周后进行神经电生理检测。

结果：C组12周后神经已经长过缺损段,神经传导功能恢复。

结论：这种套管能够有效的桥接10 mm长的大鼠坐骨神经缺损，可应用于周围神经缺损的治疗，同时可以作为进一步开发组织工程化的人工神经的良好载体。

【关键词】神经导管；周围神经；缺损；壳聚糖Abstract Objective: Using a self-developed chitosan with good biocompatibility to build artificial nerves to repair defects in rat’s sciatic nerve and a study was made to confirm the repair effect. Methods: 30 healthy male Wistar rats wererandomly divided into 3 groups (A: normal control group, B: in situ nerve graft group, C: Artificial neural bridge group). Sciatic nerve were cut off with the deal accordingly, 12 weeks later, the nerve electrophysiological testing was performed. Results:12 weeks later, the nerve has been a long paragraph defect, the function of nerve conduction recovered. Conclusion: This casing can effectively bridge the Sciatic Nerve defect of 10mm in rats and can be used in the treatment of peripheral nerve defects. At the same time it can serve as a good carrier for the further development of tissue-engineered artificial nerves.Key words Nerve conduit; Peripheral nerve; Defect; Chitosan周围神经损伤在临床中非常多见,在很多情况下,易导致长期且严重的功能障碍。

神经导管联合自体变性肌桥修复大鼠周围神经缺损的实验研究

神经导管联合自体变性肌桥修复大鼠周围神经缺损的实验研究李政;周明【期刊名称】《组织工程与重建外科杂志》【年(卷),期】2012(008)003【摘要】Objective To explore the feasibility of denatured autologous muscle graft combining PLGA Nerve guide conduits in repairing sciatic: nerve defects in rats. Methods Forty-five Sprague-Dawley rats were randomly divided inlo three groups (n=15) and the left sciatic nerve defects model was established on each rat. Autologous nerve (group A), PLGA nerve guide conduits (group B) and denatured autologous muscle graft combining PLGA nerve guide conduits (group C) were used to bridge the nerve defects. Microscopic observation, sciatic nerve function index,recovery rate of gastrocnemius wet weight, histological observation and computerized imaging analysis were carried out postoperatively. Results 'flie findings showed that denatured autologous muscle graft combining nerve guide conduits was better than nerve guide conduits, but less effective than autologous nerve transplantation. Conclusion Denatured autologous muscle graft combining nerve guide conduits can promote the peripheral nerve regeneration and repair nerve defects.%目的探讨PLGA神经导管联合化学萃取的自体骨骼肌肌桥,修复大鼠坐骨神经缺损的可能性.方法 SD大鼠45只,建立大鼠左侧坐骨神经缺损模型.随机分为3组,分别采用自体神经(A组)、PLGA神经导管(B组)和PLGA神经导管联合化学萃取自体骨骼肌肌桥(C组),来修复神经缺损.术后通过大体观察、坐骨神经功能指数测定、腓肠肌湿质量恢复率测定、组织学观察和图像分析对比等,检测神经缺损修复情况.结果神经导管联合化学萃取白体骨骼肌肌桥能促进坐骨神经再生,各项指标均优于单纯神经导管移植,但是效果略差于自体神经移植.结论 PLGA神经导管联合化学萃取自体骨骼肌肌桥,对大鼠坐骨神经缺损具有良好的桥梁作用和促神经生长的作用.【总页数】4页(P146-149)【作者】李政;周明【作者单位】212002 江苏省镇江市镇江市第一人民医院急诊医学中心;212002 江苏省镇江市镇江市第一人民医院急诊医学中心【正文语种】中文【中图分类】R622+.3【相关文献】1.PLGA神经导管联合ADSCs与自体神经组织修复大鼠坐骨神经缺损的实验研究[J], 陈军;王静;张兆锋;章开衡;张佩华;王洋;王刚阳;沈华2.基膜管-自体神经嵌合体修复大鼠周围神经缺损的实验研究 [J], 王碧菠;戴传昌;钟斌;金羽青;祁佐良;董佳生3.自体神经-变性骨骼肌并联复合桥接物修复大鼠坐骨神经缺损的实验研究 [J], 易西南;许愿忠;张灵芝;文晓丹4.同种异体神经与自体神经瘤联合修复周围神经缺损的实验研究 [J], 曹瑞治;朱永林;陈伟全;王晓峰;吴应东5.自体雪旺氏细胞植入去肌浆骨骼肌修复周围神经缺损的实验研究 [J], 金国华;郑震林因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。

大鼠坐骨神经不同长度缺损导管套接修复后缺损段再生速度

大鼠坐骨神经不同长度缺损导管套接修复后缺损段再生速度张燕平;胡懿淋;刘丹;赵亚红;胡文【期刊名称】《解剖学杂志》【年(卷),期】2014(037)003【摘要】目的:了解壳聚糖/聚乳酸乙醇酸人工神经移植物(简称“人工神经移植物”)修复大鼠坐骨神经缺损后修复段神经纤维再生速度和修复不同距离缺损所需时间.方法:采用人工神经移植物套接修复大鼠坐骨神经不同距离(2、3、4、6、8、10 mm)缺损,以自体神经桥接和神经钳夹伤为对照,术后定期通过神经捏压试验测定感觉纤维生长距离,并进行抗神经丝蛋白免疫组织化学显色验证.结果:人工神经移植物桥接修复不同距离神经缺损后,再生感觉纤维通过缺损段所需时间与缺损长度呈正相关,穿越2mm缺损耗时10d左右,6mm缺损约需17 d,10 mm缺损则需要33.5d左右;再生感觉纤维在人工神经移植物套接的2mm缺损段内平均生长速度为0.21mm/d,而当缺损长度为4～10 mm时,该速度为0.30～0.35mm/d.人工神经移植物修复4mm缺损术后14d和6mm缺损术后19d,远端神经内再生轴突的最远生长距离分别为(2.5±0.6) mm和(2.7±0.9)mm.结论:采用人工神经移植物套接修复大鼠坐骨神经缺损后再生神经跨越缺损段所需时间与缺损长度呈正相关,在缺损距离较长时修复耗时较长.【总页数】5页(P343-347)【作者】张燕平;胡懿淋;刘丹;赵亚红;胡文【作者单位】南通大学神经再生重点实验室,南通226001;南通大学医学院,南通226001;南通大学附属医院急诊外科,南通226001;南通大学神经再生重点实验室,南通226001;南通大学神经再生重点实验室,南通226001【正文语种】中文【相关文献】1.PLGA神经导管联合ADSCs与自体神经组织修复大鼠坐骨神经缺损的实验研究[J], 陈军;王静;张兆锋;章开衡;张佩华;王洋;王刚阳;沈华2.组织工程人工神经对大鼠坐骨神经缺损后神经再生速度的影响 [J], 游华;矫树生;陈建梅;李兵仓3.壳聚糖导管填充辛伐他汀／泊洛沙姆407水凝胶促进大鼠坐骨神经缺损后运动功能恢复 [J], 郭琦;刘灿;海宝;马腾;王红;宋纯理;徐迎胜4.聚乙二醇改性聚乳酸神经导管修复大鼠坐骨神经缺损 [J], 罗东;王聪聪;许文静;徐风华;史振伟;王玉;孙琦;黄转青;程晓清;马玥;杨飞;张莹5.聚乙二醇改性聚乳酸神经导管修复大鼠坐骨神经缺损 [J], 罗东;史振伟;王玉;孙琦;黄转青;程晓清;马玥;杨飞;张莹;王聪聪;许文静;徐风华因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。

NGF／PLGA复合神经导管修复大鼠周围神经缺损的实验研究

中图分类号：４３Ｒ５．Ｒ９，６１３
文献标识码：Ａ
文章编号：０１１４（０７一３０３ — ４１０ — ２２２０）０ — ２４０
ＥｘｅｉｎａｔｄｎＮＧＦＰＬＧＡｅｖｕｄｏｄｉｒｍｏｉｇｐｒｐｅａｅｖｅｅｅａｉｎｉｒ￣ＬＩｐｒｍｅｔｌｓｕｙｏ／ｎｒｅｇｉｅｃｎｕｔｐｏｓｔｅｉｈｒｌｎｒｅｒｇｎｒｔｎａｎｏ
ｂＩｅｅｇｉｅｏｄｉａｕｎｉｅｙＥＬＳａａｙｉｎｖｔ．Ａ１ｙｔｅｎｒｄｃｎｕｔｗｓｑａｔｄｂＩＡｌｓｓｉｉｏＩｖｕｓｉｆｎｒ０ｍｍｅｅｔｗｓｐｄｃｄｉｅｌｆｄｆｃａｒｕｅｎｔｅｔｏｈｓｉｔｅｅｏａｈｒｔｃａｃｎｒｆｅｃ．Ａｕｏｒｆ，ｉｖａｔｇａｔＮＧＦＰＧＡｎｒｅｇｉｅｏｄｉｄＰＧＡｎｒｅｕｉｅｃｎｕｔｗｅｅｕｅｔ／ＬｅｄｃｎｕｔａＬｅｇｄｏｄｉｒｓｄｏｖｕｓｎｖｓ
．
ｔｔＷｅｏｍｅｙｗｉｔｌｓｍｅｕｅｎｓｉｐｏｐａｅｂｆｒｄｓｌｅ（Ｂ）ｄｔｅａｕｔｏＧｌｓｄｅａｐｒｒｄｂｅｈｏａｒｍｅｔｎｈｓｈｔ－ｕｅａｎＰＳａｈｍｏｎｆＮＦｒｅｅｓｓｆｇｓｓｅｉｎｅａ

粘合吻合法与神经导管修复神经的实验研究

粘合吻合法与神经导管修复神经的实验研究
蔡宏飞，梁向党。，孙赓，宋矗矗，陈文（１．解放军总医院，北京１００８５３；２．解放军第２５２医院，河北保定０７１０００；３．海军９２０５７部队，广东
ａｎｏａｃｒｙｌａｔｅａｎｄｗｉｔｈｍｏｄｉｉｅｆｄｎｅｒｖｅｃｏｎｄｕｉｔｉｎａｄｈｅｓｉｖｅｇｒｏｕｐ，ａｎｄｔｈｅａｎａｓｔｏｍｏｓｉｓｗｉｔｈｓｉｘ —ｎｅｅｄｌｅ９ —０ｅｐｉｎｅｕｒｉｕｍｓｕｔｕｒｅ
量及组织学观察２组间比较均无显著性差异。结论应用粘合吻合法与神经导管修复神经
缺损保证修复效果的同时，大大缩短了手术时间，是一种简便、有效的神经修复方法，具有一
定的・临床应用前景。
［关键词］粘合吻合；氰基丙烯酸酯；神经导管；缝合；神经修复
ｄｏｉ：１０．３９６９／ｊ．ｉｓｓｎ．１００８—８８４９．２０１４．０Ｉ．００３
［中图分类号］Ｒ一３３２
［文献标识码］Ａ
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现代中西医结合杂志ＭｏｄｅｒｎＪｏｕｒｎａｌｏｆＩｎｔｅｇｒａｔｅｄＴｒａｄｉｔｉｏｎａｌＣｈｉｎｅｓｅａｎｄＷｅｓｔｅｒｎＭｅｄｉｃｉｎｅ２０１４Ｊａｎ，２３（１）

含神经生长因子壳聚糖神经导管修复大鼠坐骨神经10mm缺损

・３・１
含神经生因子壳聚糖神经导管修复大鼠坐骨神经１ｍ０ｍ缺损
顾剑辉，鸿奎，王胡文，赵微加，宇民杨
（南通大学附属医院手外科；南通大学神经再生重点实验室，苏２６０）江２０１
【摘要】目的：研究京尼平交联的含神经生长因子的壳聚糖神经导管修复大鼠周围神经缺损的可行性。方法：
ｃｏｓｎｉｇＭｅｏｓＣｈｔｓｎｎｒｅｃｎｕｔｉｒｓｌｋｎ．ｉ￣ｄ：ｉａｅｖｏｄｉｍｍｏｉｚｄｗｉｏｓｂｌｅｔＮＧＦｗｅｅｕｅｒｇ０ｍｍｃａｉｎｒｅｄｆｃｓｉｉｈｒｓｄｔｂｄｅ１－ｏｉｓｉｔｅｅｅｔｎｃｖ
交通医学２１０２年第２６卷第１Ｍｅｏｏｍｕｉａｉｓ０２ｏ．６Ｎ．期ｄＪｆｍｎｃｔｎ，１。１．ｏ１Ｃｏ２Ｖ２
［章编号］０６２４（０２０ — ０３０文１０ — ４０２１）１０１－３
ｒｔ（ｐｒｅｔｒｕ，＝）ｎｏ— ｒｔｄｇｏｐａｅｎｇｔｅｃｎｌｇｐｇｏｐｎ５．ｉｍｏｔｓａｅｅｓ￣ｅ，ａｓｅｅｍｎｏｐｎ５ａｄａｎｇａｅｒｕｓｈｅａｖｏｔ（ｒｕ，＝）Ｓｎｆｒｈｕｒｘｉｇｎｆｔｉｏｒａｘｈｔｔｙ
２ｅａｏａｒｆＮｕｏｅｅｅａｉ，ａｔｇＵｉｒｉ，ｉｇｕ２６０）ＫｙＬｂｒｔｏｅｒｒｇｎｒｔｎＮｎｏｎｖｓｙＪｎｓ２０１ｏｙｏｎｅｔａ

超声反映壳聚糖神经导管修复缺损坐骨神经的效果

超声反映壳聚糖神经导管修复缺损坐骨神经的效果目前观察神经导管在体内的降解变化需要处死动物才能观察到，这需要过多的实验动物。

超声是一种临床常用的无创检测方法，已在许多领域应用，但还未见超声观察植入体内的神经导管。

中国南通大学附属医院王鸿奎所在研究团队，首次使用超声观察植入大鼠体内的壳聚糖神经导管随时间的变化，发现其可以客观地显示壳聚糖神经导管桥接大鼠坐骨神经缺损后，有无塌陷、断裂和血肿等不良反应，以及随植入时间延长管壁的降解、吸收趋势。

证实超声检测可作为传统有创手段的有效补充，可以准确和客观地监测、评估壳聚糖神经导管植入体内后的变化情况。

相关文献发表于《中国神经再生研究（英文版）》杂志2014年7月第14期。

造模3周后，超声检测可见大鼠坐骨神经缺损部位中清晰的壳聚糖神经导管Article: " Ultrasound imaging of chitosan nerve conduits that bridge sciatic nerve defects in rats," by Xiaoyang Chen2, Yifei Yin2, Tingting Zhang2, Yahong Zhao3, Yumin Yang3, Xiaomei Yu2, Hongkui Wang1, 3 (1 School of Biology and Basic Medical Sciences, Soochow University, Suzhou, Jiangsu Province, China; 2 Department of Doppler Ultrasound, Afliated Hospital of Nantong University, Nantong, Jiangsu Province, China; 3 Jiangsu Key Laboratory of Neuroregeneration, Nantong University, Nantong, Jiangsu Province, China)Chen XY, Yin YF, Zhang TT, Zhao YH, Yang YM, Yu XM, Wang HK. Ultrasound imaging of chitosan nerve conduits that bridge sciatic nerve defects in rats. Neural Regen Res. 2014;9(14):1386-1388.欲获更多资讯：Neural Regen ResUltrasound imaging of chitosan nerve conduits that bridge sciatic nerve defects in ratsNew simple and effective methods are needed to better evaluate the outcomes of repair using nerve conduits in vivo. Ultrasound is a common noninvasive clinical detection modality that has been used in many fields. However, ultrasound has only rarely been used to observe implanted nerve conduits in vivo. Hongkui Wang and co-workers from Affiliated Hospital of Nantong University report the first use of ultrasound to noninvasively observe the changes in chitosan nerve conduits implanted in rats over time. The ultrasound imaging clearly showed whether there are unsatisfactory complications after implantation, such as fracture, collapse, bleeding, or unusual swelling of the nerve conduits; and reflected the degradationmode of the nerve conduit in vivo over time. Ultrasound, as a noninvasive imaging modality, can be used as a supplementary observation method during conventional animal experiments on peripheral nerve tissue engineering. The relevant study has been published in the Neural Regeneration Research (Vol. 9, No. 14, 2014).Ultrasound imaging of the morphology of a chitosan nerve conduit in a rat model of sciatic nerve defects at 3 weeks after modeling.Article: " Ultrasound imaging of chitosan nerve conduits that bridge sciatic nerve defects in rats," by Xiaoyang Chen2, Yifei Yin2, Tingting Zhang2, Yahong Zhao3, Yumin Yang3, Xiaomei Yu2, Hongkui Wang1, 3 (1 School of Biology and Basic Medical Sciences, Soochow University, Suzhou, Jiangsu Province, China; 2 Department of Doppler Ultrasound, Afliated Hospital of Nantong University, Nantong, Jiangsu Province, China; 3 Jiangsu Key Laboratory of Neuroregeneration, Nantong University, Nantong, Jiangsu Province, China)Chen XY, Yin YF, Zhang TT, Zhao YH, Yang YM, Yu XM, Wang HK. Ultrasound imaging of chitosan nerve conduits that bridge sciatic nerve defects in rats. Neural Regen Res. 2014;9(14):1386-1388.。

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结果：C组12周后神经已经长过缺损段,神经传导功能恢复。

目前临床上最常见的治疗方法是自体皮神经移植。

但是,由于自体供移植的神经来源有限及供区的失神经损害,其应用受到很大限制。

为解决周围神经缺损这一难题,人们曾先后尝试使用包括静脉、去除内膜的静脉、动脉、肌肉、胶原等为代表的生物性材料[1-2]以及硅胶、聚四氟乙烯、多聚乳酸/聚己内酰酮复合物、甲壳素、多聚左旋乳酸、聚乙醇酸等非生物性材料制成的神经导管[3-6]替代自体神经移植物，但均未取得令人满意的效果。

我们采用一种自行开发的、具有良好生物相容性的壳聚糖构建人工神经导管来修复大鼠坐骨神经10 mm长的缺损,并通过电生理检查，与大鼠自体神经移植比较研究其修复效果。

1 材料与方法1.1 壳聚糖导管的制备取6 g壳聚糖粉，放入烧杯内，用量杯导入蒸馏水到100 mL，滴入冰醋酸2 mL，轻搅拌几下后放置0.5 h后再次搅拌，再放0.5 h，再搅拌，如此数次，直到完全溶解，放置1 d后待用，以便除去内部气泡,此时溶液呈现金黄色，溶胶胶状，均匀粘着。

将硬塑料管浸入溶胶，迅速取出垂直放入-80 ℃冰箱中冷冻过夜，然后放入冷冻干燥机中(ALPHA-1-4,Martin Christ公司,德国)干燥。

接着，将干燥完全的壳聚糖导管脱模，浸入75 %酒精中脱酸，最后将导管用三蒸水洗，干燥后即成为壳聚糖导管，长4 cm，内径1.5 mm，管壁厚0.2 mm，见图1。

壳聚糖本身分布均匀，质地韧，有一定黏性。

厚度与浓度有一定正向关系。

采用以下方法灭菌：先加入75 %(v/v)的乙醇浸泡30 min，然后加入无菌的PBS液洗涤3次。

1.2 动物分组与桥接手术选用30只Wistar大鼠(内蒙古大学动物实验中心提供)雌雄不拘，200～250 g,随机分为正常对照组（A组）、原位神经移植组（B 组）、壳聚糖神经导管桥接组（C组)3组，采用10 %水合氯醛(3 mL/kg 体重)腹腔注射麻醉。

A组只暴露双侧坐骨神经；B组在坐骨神经分叉处上方5 mm以及10 mm处切断坐骨神经(两侧断端自然回缩后缺损约10 mm作为神经缺损模型),并分别原位用9-0尼龙线3针外膜缝合。

C组在坐骨神经分叉处上方5 mm以及10 mm处切断坐骨神经,移除神经游离段，采用长12.0 mm、内径1.5 mm的人工神经桥接神经缺损,两端分别套入2 mm,9-0尼龙线3～4针固定，见图2。

1.3 电生理检测术后12周,同上法麻醉大鼠并固定后,游离双侧坐骨神经,采用成都泰盟科技有限公司BL-420F电生理仪检测。

刺激电极先后置于移植物或吻合处的远近端,记录电极置于腓肠肌中段,参考电极置于肌肉。

方波、恒压3.0 V刺激、波宽0.1 ms、10 Hz,记录肌肉复合动作电位、运动神经传导速度。

1.4 组织学检测术后12周取各组动物坐骨神经的桥接部分，经4 %多聚甲醛固定、石蜡包埋后行纵切面H-E染色，光镜观察再生神经纤维生长情况。

1.5 统计学方法采用SPSS10.0统计软件包进行分析,实验数据以x±s表示。

组间比较采用计量资料的t检验,P＜0.05为差异有统计学意义。

2 结果2.1 大体观察术后B、C组动物均行动困难,后肢拖曳行走,针扎足底均无痛觉反应。

术后1周,大鼠的后肢功能无恢复,足底水肿。

术后2周,B、C 组大鼠均出现不同程度的足部溃疡,以C组为重。

术后8周,B组大鼠6只足部溃疡已愈合,2只残存溃疡；C组大鼠足部溃疡大部分愈合,1只足部溃疡加重,足趾溃烂。

术后12周,B、C各组双侧肢体足部溃疡已经基本恢复。

暴露坐骨神经后发现,导管结构完整,周围没有明显炎症反应,亦未见神经瘤形成。

2.2 电生理检查12周后A、B组双侧坐骨神经以及C组远近端均能诱发肌肉的复合动作电位,将有效数据进行统计分析,首先进行组内以及组间方差齐性检验,各组之间方差平齐(P＜0.05),因此进行单因素方差分析。

结果A组与B、C各组之间最大神经传导速度和最大波幅比较差异均有统计学意义(P＜0.05)，B、C两组之间差异无统计学意义（P0.05）。

见表1。

表1 术后12周各组最大神经传导速度和最大波幅(略)2.3 组织学检测术后12周再生神经H-E染色显示，B、C组大鼠的再生神经均已从近端长入远端，施万细胞增生明显。

B组的再生神经纤维密集，排列整齐；C组再生神经纤维较稀疏，有结缔组织增生。

见图3。

3 讨论组织工程学的发展为解决周围神经缺损这一难题提供了机会,但组织工程对支架材料有着较高的要求,如生物可降解性、组织相容性、无不良反应、来源广泛等。

综合比较分析上述各种神经导管,甲壳素、壳聚糖可能是较为理想的组织工程材料。

壳聚糖为甲壳素脱乙酰基所得,溶解性明显高于天然甲壳素,较易加工成形,也已被研究用于制作多种医学生物材料。

我们采用壳聚糖构建人工周围神经。

前期研究已经证实壳聚糖具有良好的生物相容性[7-8],而且其物理性质以及吸收周期可以调节控制。

壳聚糖导管在大鼠体内逐步降解,在神经修复的早期能够提供支架以及导向作用,并形成局部相对稳定的再生微环境；在神经再生的晚期逐渐吸收降解,并能够根据需要来控制其吸收周期。

周围神经损伤后,功能是否恢复是判断神经再生效果的关键。

神经的传导性是周围神经的基本功能,且神经干电活动的传导速度能直接反映神经的传导性。

周围神经离断后,神经传导性消失,因此神经传导功能可作为判断神经损伤和修复的一项可靠指标。

本研究发现，术后12周神经肌肉复合动作电位的产生，说明再生的神经纤维已经长过缺损段,神经传导功能已经恢复，表明这种导管能够有效地桥接10 mm 以内的大鼠坐骨神经缺损,同时经过统计学分析以及电生理结果提示对于10 mm缺损,此种人工神经的修复效果与自体神经移植类似,可以替代自体神经移植。

我们开发的这种神经导管已经证实其修复效果，同时,体外培养结果表明这种导管能使施万细胞粘附于其上生长[9],因此它可以作为进一步开发组织工程化的人工神经的良好载体,我们将进一步通过在导管内添加雪旺细胞和神经营养因子来改善神经修复效果,以期寻找到一种更为有效的神经移植代用品。

【参考文献】[1] 廖文,刘淑红,刘红,等.自体成肌细胞修复周围神经缺损[J].中国临床康复,2006,10（33）:23-26.[2] Barcelos AS,Rodrigues AC,Silva MD,et al.Inside-out vein graft and inside-out artery graft in rat sciatic nerve repair[J].Microsurgery，2003,23:66-71.[3] 张勇杰,金岩,聂鑫,等.组织工程周围神经修复坐骨神经缺损应用研究[J].中华神经外科疾病研究杂志，2004，3（2）：141-144.[4] Wang XD,Hu W,Cao Y,et al.Dog sciatic nerve regeneration across a 30mm defect bridged by a chitosan/PGA artificial nerve graft[J].Brain,2005,128(8):1897-1910.[5] Bini TB,Gao SJ,Xu XY,et al.Peripheral nerve regeneration by microbraided poly ( L-lactide-co-glycolide ) biodegradable polymer fibers[J].J Biomed Mater Res A,2004,68(2):286-295.[6] Stang F,FansaH,Wolf G,et al.Structural parameters of collagen nerve grafts influence peripheral nerve regeneration[J].Biomaterials,2005,26(16):3083-3091.[7] 焦海山,姚健,任艳玲,等.甲壳素神经导管修复大鼠坐骨神经10 mm缺损的实验研究[J].中国生物工程学报,2008,27（4）:597-602.[8] 卢凤琦,庄朝霞,曹晶,等.可降解性壳聚糖复合膜的研制与生物学评价[J].生物医学工程杂志,2003,20(2):277-280.[9] 刘新,郑启新,吴永超,等.三种人工可降解材料上雪旺细胞培养的体外活性研究[J].医药论坛杂志，2008，29（14）：4-8.。