2.病理组织的取材、保存与送检讲义解析
病理标本采集 处理与保存注意事项
病理标本采集处理与保存注意事项病理标本采集、处理与保存注意事项病理标本的采集、处理与保存是医学领域中非常重要的环节，它直接关系到疾病的准确诊断与治疗。
本文将为大家介绍病理标本采集、处理与保存的注意事项，以确保标本的质量和可靠性。
一、病理标本的采集病理标本的采集是疾病诊断的首要环节，它要求精确和细致。
以下是一些常见标本的采集注意事项：1. 细胞学标本采集：细胞学标本采集主要涉及细胞涂片、细针穿刺等，操作时要注意消毒措施，避免污染。
采集时要尽量避免血液干扰，以免干扰细胞学的评估。
2. 组织学标本采集：组织学标本采集一般使用外科手术取材，术前要进行相关的检查，确保完全取得病变组织。
取材时要注意操作规范，避免病理背景的污染或变形。
3. 液体标本采集：液体标本采集主要包括腹水、胸水和尿液等。
采集时要注意收集足够量的标本，并避免采集时的交叉污染。
二、病理标本的处理与保存病理标本的处理与保存是确保标本质量的重要环节。
以下是一些常见标本的处理与保存注意事项：1. 标本加工处理：组织学标本一般需要进行固定、脱水、包埋等加工处理，以确保组织的形态结构不变。
加工过程中要注意时间和温度，避免过长时间的固定或超低温的保存。
2. 标本保存条件：病理标本的保存温度要根据标本的性质进行调整。
常规组织学标本可以保存在室温下，而冷冻切片等需要保存在低温环境下。
保存过程中要注意标本的编号与记录，避免混淆。
3. 标本的保存周期：不同类型的标本在保存周期上有所差异。
通常，组织学标本可以保存数年，而液体标本则需要较短的保存时间。
标本在保存前要制作好包装材料，并注明保存日期与保存人员。
4. 标本运输条件：标本在运输过程中要避免剧烈震动和温度的变化，以免引起标本的变性或损坏。
运输过程中要注意标本的密封性，防止泄漏造成交叉污染。
三、病理标本的质量控制为了保证病理标本的质量和可靠性，需要进行一系列的质量控制措施。
以下是一些常见的病理标本质量控制措施：1. 标本的鉴定与编号：在采集标本的同时，要对标本进行鉴定与编号，确保与病人的信息相符合，并与相关记录相对应。
病理标本采集及送检培训ppt课件
病理标本采集及送检
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常规标本送检制度：
2.检材标本应置于敞口容器内，固定液不少于标本体积的7-10倍。
3.送检科室应建立送检标本登记本，每次送检标本应病理科人员签收， 以避免丢失标本。 4.标本切取、固定后应尽快送往病理科，以便于及时取材、制片和诊断， 及时发出病理报告。
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玻片借阅制度：
4.阴道不规则流血者，用无菌棉棒轻轻拭净出血，再取材；
病理标本采集及送检
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5.白带过多者，用无菌棉棒轻轻拭净粘液，再取材；
6.将刮下细胞立即一次涂在干净玻片上，顺同一方向，轻轻均匀 推平于玻片的右侧2/3，切忌来回涂抹；
7.在玻片磨砂端清楚写上病人姓名/编号； 8.立即将涂片置95%酒精固定至少15分钟；
10.冰冻切片检查的标本切取后应保持新鲜，不要加任何液体，立即送到病 理科，以免影响制片和诊断。
病理标本采集及送检
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采集、送检及固定要求：
11.标本送检时应和填写详细的病理申请单一起送到病理科，原 则上不接受口头申请的标本，特殊情况下，可按流程接收和处理 标本，但需要在限定的时间内(12小时)补充书面病理申请单， 否则不出具书面病例报告。
6.空腔标本和大的实质性脏器标本必须按操作规程及时剖开，充分固定，时 间应大于6小时(或过夜)。
病理标本采集及送检
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采集、送检及固定要求：
7.住院病人的标本由科室安排专人送检，门诊病人的标本由安排 专人送检。
8.有标本采集时间、标本送达病理科时间、标本固定时间(时间 精确到分钟)。
9.需要做冰冻切片检查的需要提前一天预约，与患者签署知情同意书，并将 填写的“冰冻病理检查预约申请单”送达病理科，以便病理科工作人员在手术 当日提前开机等候。一般不接受电话预约。
病理组织学检测
病理组织学检测收集检测病料，各种典型病变的组织器官，用10%福尔马林溶液固定，常规石蜡切片，HE染色，光镜观察。
具体操作步骤如下：（1）取材：选择刚死的新鲜的组织；采取样品的时候要注意，将动物剖检之后，要尽快的的采取相关组织的材料；采样的刀片一定要锋利，切取组织块时避免前后过度的拉动或用力挤压，以防止造成组织结构变形或人为损伤。
（2）固定：将采集好组织样品固定于10%的中性福尔马林溶液中，过夜固定或者至少固定24h。
（市场技术人员只需采集病料，并用10%的中性福尔马林固定后，室温存放，直接送检。
注：用封闭好的瓶子存放样品，防止福尔马林外流。
）（3）组织修块及水冲：将福尔马林溶液固定好的组织进行修整，选好病变部位组织的切面，尽量修的薄一些，将修整好的组织块放在流动的自来水下冲洗10-16h，以便去掉组织中的甲醛。
（4）脱水：将修好的组织块依次放入70%、80%、85%、90%、95%以及100%（一和二）梯度酒精中进行脱水处理。
脱水的具体程序及时间为：70%酒精2h→80%酒精2h→85%酒精2h→90%酒精1h→95%酒精30min→无水乙醇（100%）I 45min→无水乙醇（100%）II 45min。
（5）透明及浸蜡：组织块完全脱水后，将其分别浸入二甲苯中进行透明，具体透明时间因组织块厚薄而异。
将透明好的组织块，放在55℃左右的恒温箱中，进行浸蜡2-4h。
（6）包埋：将70℃融过的石蜡倒入铁制的包埋框内，整齐的摆放组织块，一段时间后再进行修切。
（7）切片：先将切片机调至3mm厚度，开始切片。
（8）展片及粘片：将切好的组织片取下放到40℃的温水中，利用酒精将之展开。
（9）烤片：将捞出的组织切片放于37℃培养箱中烤片2h或者过夜。
（10）HE染色：按照下面的时间及顺序进行。
首先二甲苯Ⅰ15min→二甲苯Ⅱ10-15min→酒精/二甲苯3-5min→无水乙醇3-5min→95%酒精3-5min→85%酒精3-5min→75%酒精3-5min→蒸馏水4-6min→苏木素染色液3-5min→自来水冲洗约1min→1%盐酸酒精4～5s→流动的自来水冲洗10-15min→90%酒精2-4s →1%伊红染色液3-6s→95%酒精Ⅰ3s→95%酒精Ⅱ1-2min→无水乙醇Ⅰ2-4min→无水乙醇Ⅱ5min→二甲苯Ⅰ20-30min。
病理取材规范PPT课件
准备取材工具
医生需准备适当的取材工 具，如手术刀、取材钳、 镊子等，确保取材过程的 顺利进行。
取材的基本原则
全面性原则
规范性原则
医生需对病变组织进行全面取材，确 保取材的完整性，避免漏诊或误诊。
医生需遵循规范的取材程序，确保取 材的质量和效率。
代表性原则
医生需选取具有代表性的病变组织， 以确保病理诊断的准确性。
取材规范规定了取材的部位、数量和质量，确保病理医生 能够获取足够且符合要求的组织样本，从而提高诊断的准 确性。
降低漏诊和误诊风险
通过遵循取材规范，可以减少因组织样本不足或质量不佳 导致的漏诊和误诊，为患者提供更可靠的病理诊断。
促进临床与病理医生的沟通
取材规范可以作为临床医生和病理医生之间沟通的桥梁， 确保双方对取材要求和诊断期望有明确的认识，减少误解 和沟通障碍。
推动病理学科的发展
取材规范的制定和应用有助于推动病理学科的发展，提高病理医生的专业素养和技术水平 ，为患者提供更好的医疗服务。
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02 不同部位病理取材规范
脑部取材规范
总结词
脑部取材需注意部位、大小和深度，确保取到病变组织，同时避免损伤重要结 构。
详细描述
在脑部取材时，应根据病变部位选择合适的切口，注意避开重要的脑功能区和 大血管。取材大小和深度应适度，以足够诊断为宜，避免过度损伤脑组织。
肺部取材规范
总结词
肺部取材需注意病变部位、取材方法和送检方式，确保获取到高质量的病理组织 。
取材规范在科学研究中的应用
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标准化研究流程
在科学研究领域，取材规范的应用有助于确保实 验材料的可靠性和一致性，为实验结果的准确性 和可重复性提供保障。
《病理检验技术》课件——病理组织的处理
病理组织的接收、取材
4．将病人姓名、性别、年龄、病历 号、科别、临床诊断、部位、标本 来源、标本例数等逐项录入电脑保 存。 5．作为病理资料除做好计算机录入 工作，还应进行文字登记，以便病 理档案长期保存。
病理组织的接收、取材
病理标本的接收
取材
是将送检标本进行客观描 述并将病变部位组织切成 厚薄适度的小片装入小盒 (进入组织脱水程序)。
适宜的化学试剂,而这种化学试剂能使组织或
细胞内的蛋白质凝固、沉淀成不溶性。
并使组织和细胞尽可能保持原有的形态结 构和所含的各种物质成分。
病理组织的固定
一、病理组织固定的目的
破坏细胞内的 溶酶体酶：防 止细胞自溶
01
杀死外来细菌： 防止组织腐败
02
尽可能保持细胞 活体时的原状
凝固、沉淀细胞内 原有产物：如蛋白 质、糖、脂类、各种
病理检验技术
病理组织的脱水
病理组织的脱水
二、目的：
有利于下一步组织的浸蜡。水与石蜡不 可混溶，组织内只要存留少量水分,就 会阻碍石蜡的浸透。
一、概念：
利用某些能与水相混合的化学试剂浸泡 组织，通过置换作用，使组织内的水分 逐步被置换出来，最后使组织内的水分 被完全脱除，称为组织脱水。
病理组织的脱水
职业教育医学检验技术专业教学资源库
病理检验技术
病理病检理验组技织术的接收、取材 病理组织的包埋
病理组织的接收、取材
病理组织的接收、取材
病理组织的接收、取材
病理标本的接收
病理标本的接收是临床与病理科交 接的一个重要环节，它为开展病理 学检查、病理档案的保存奠定了基 础。
病理组织的接收、取材
病理标本接收程序
（2）病理医师在肉眼观察和取材时，记录人员根据 申请单向医师报告病人基本情况、术中所见、送检医 师特殊要求等，并如实清楚地将病理医师口头描述记 录于记录单上，必要时绘制简图显示大体所见及标本 取材部位。 （3）病理医师取材完毕后，与其共同核实取材内容， 确保组织块及其编号标签准确置人脱水盒内，并在记 录单和取材工作单签上姓名和日期。
病理标本采集、运送、接收、取材、保存制度（合集五篇）
病理标本采集、运送、接收、取材、保存制度（合集五篇）第一篇：病理标本采集、运送、接收、取材、保存制度病理标本采集、运送、接收、取材、保存制度第三军医大学第二附属医院病理标本采集、运送、接收、取材、保存制度第一章总则第一条为进一步规范病理标本运送流程，提高病理诊断质量，保证医疗质量和医疗安全，根据等级医院评审及有关规范要求，结合医院实际，制订本制度。
第二条病理标本包括手术前活检、手术中取样冰冻组织、手术后切除组织以及穿刺、脱落细胞学标本。
第三条本制度适用于全院各科室医务人员。
第二章病理标本采集第四条采取标本时，勿用有齿镊或钳夹取，勿挤压，以免发生变形。
手术标本送检前勿自行剖取，应保持原形全部送检。
必须剖取时，最好邀请病理医师在场；或在病理检查申请单中详细描述剖取前后情况。
临床科室对手术标本有特殊要求时（如照相等），应提前通知病理科，以免病理科取材时破坏其完整性。
第五条标本应置于敞口容器内，固定液不少于标本体积的7－10倍，标本从离体到固定的时间不宜超过半小时。
第六条冰冻切片的手术标本应保持新鲜，不得加用固定液或用含水溶液清洗，以免影响制片和诊断。
第七条痰液细胞学检查的标本必须新鲜，从呼吸道深部咯出。
咯痰前先漱口，痰中不应含食物碎渣和唾液，一般连续送检三天。
第八条胸、腹水等体液细胞学检查应保持标本新鲜、及时送检。
第九条宫颈刮/涂片及穿刺液应及时做成涂片送检。
第三章送检病理申请第十条病理申请单上各项内容均应逐项填写，字迹清晰可辨，并由申请医师签名确认。
痰液细胞学检查、体液细胞学检查、涂片检查的申请单填写参照病理检查申请单的要求，并在“标本来源”一项中注明标本的类别：“痰”、“胸水”、“涂片”等。
第十一条凡需行术中冰冻病理检查者，临床医师应在手术前一天通知病理科，并与患者（或家属）签订《手术中冰冻切片快速病理检查知情同意书》。
第十二条冰冻标本申请单除填写病人一般情况外，还应填写影像学、同位素及腔镜检查等相关结果，并注明手术部位，重点部位应做标记或加以说明，同时注明手术科室医师所在的手术间及手术医师、巡回护士电话，以便病理科与手术医师取得联系。
2.病理组织的取材、保存与送检讲义解析
⑵ 50％甘油缓冲盐水溶液：
氯化钠 酸性磷酸钠 2.5g 0.46g 溶于100ml中性蒸馏水内
碱性磷酸钠
纯中性甘油 中性蒸馏水
10.74g
150ml 50ml
混合后在15磅高压灭菌 30mins
⑶ 鸡蛋生理盐水溶液：
鸡蛋表面消毒 破壳 搅匀后加灭菌生 理盐水（9份蛋浆＋1份灭菌生理盐水） 摇匀过滤 加热56℃～58℃30mins，于第二、 三天再按上述过程加热一次，冷却备用。
肠段和肠内容物 250左右 粪便 实质赃器 血液 尿液 250左右 每个脏器100250克 50-100毫升 200-50毫升
2.保存
⑴ 保存容器：用干净，未盛装过化学药品的玻璃或
陶瓷器皿，勿用金属制品。
⑵ 干物质：可用干净的塑料袋、纸袋。
⑶ 检查材料中不可用防腐剂，非用时可用酒精，但要用
同种酒精作对照。
2. 病料的保存（固定）
⑴ 固定的作用：使细胞内的物质尽量接近生 活状态时的形态，结构和位置，并便于切片和 观察。 ⑵ 固定液的选择：用于组织固定的固定液种 类繁多，根据切片观察的目的而定（形态结构、 组织内抗原、组织内脂肪、糖原）
⑶ 固定液的量：10倍于组织的体积。 ⑷ 固定的时间：数小时～24小时，不同种 类不一样（固定液种类、组织大小……） ⑸ 固定温度：常温20～25℃，低温4℃时 间要延长。 ⑹ 固定用容器：玻璃容器为好，禁用金属 容器，底部最好垫纱布或棉花，防组织贴 壁而固定不良。
6.动物实验方法学. 孙敬方编，人民卫生出版社， 2001.
※ 固定方法：
⑴浸泡法：要固定的组织浸入固定液中，是最常用的
方法。
⑵注射、灌流固定法：用于体积过大，固定液 又难
进入肉尸的组织或整个器官、动物体进行固定。
病理取材规范的关键要素与流程解析
病理取材规范的关键要素与流程解析病理取材是病理学诊断的重要环节之一，它对于确诊和鉴定疾病起着至关重要的作用。
在进行病理取材过程中，遵循规范的关键要素和流程是十分必要的，可以保证取得准确、可靠的检查结果。
以下将对病理取材规范的关键要素与流程进行解析。
1. 患者信息及标本标识：病理报告的准确性和可靠性与患者信息及标本标识密切相关。
在进行病理取材前，应仔细核对患者姓名、性别、年龄等基本信息，确保与病例资料一致。
同时，在取材时要在标本容器上正确标明标本来源部位、日期和取材序号，防止混淆或丢失。
2. 取材工具的选择与使用：取材时应选择合适的取材工具，例如手术刀、剪刀、刮刀、穿刺针等。
不同标本需要使用不同工具进行取材，同时要保证工具的清洁和无菌。
在使用过程中，应注意持握力度，避免损伤标本组织结构和破坏细胞形态。
3. 取材方法的正确性：取材方法的正确与否直接影响到标本的质量和检查结果的准确性。
常用的取材方法包括切割、刮取、刺取、穿刺等。
在选择取材方法时，要结合患者的具体情况、临床表现和病变部位进行综合考虑。
在取材过程中应尽量将异常组织区域纳入标本范围，同时避免损伤周围正常组织。
4. 取材时的注意事项：在进行病理取材时，还需注意以下几个方面：- 温和取材：避免过度刮擦、太强力度地取材，以免对标本造成损伤。
- 快速取材：尽量缩短取材时间，防止标本变性、坏死等影响结果的情况发生。
- 避免空气干燥：取材后要立即放入盛有生理盐水或固定液的容器中，避免标本在空气中干燥变形。
- 避免冷冻破坏：取材时要避免接触冷冻组织或器械，以免破坏细胞结构。
- 避免污染：避免其他组织或标本污染正在取材的组织，以免影响结果的准确性。
5. 标本保存与传送：取材后的标本保存和传送是确保病理诊断准确性的关键环节。
在保存标本时，应根据需要选择适当的保存方法，如冷藏、冷冻或固定等，确保标本的组织学形态不受损害。
在传送过程中，应妥善包装标本，避免标本破损或变形，并标明送检的紧急情况以及需要的特殊检查。
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※ 固定方法：
⑴浸泡法：要固定的组织浸入固定液中，是最常用的
方法。
⑵注射、灌流固定法：用于体积过大，固定液 又难
进入肉尸的组织或整个器官、动物体进行固定。
※电镜取材
※眼球固定
活体固定
※动物整体浸渍标本制作
⑶蒸气固定法：固定组织中的可溶性物质，甲醛或锇 酸固定。
石蜡切片常用固定液
⑴ 10％福尔马林固定液
病料的采集、保存与送检
一、概述
（一）病料的含义 （二）确采集、保存与送检病料的重要性 （三）病料的采集、保存与送检三者之间的关系
（一）病料的含义
狭义：用于疾病诊断的材Байду номын сангаас。
广义：用于动物科学研究、实验等各方面的 实验室检查材料。如：动物研究中的重要内 容——形态学和生理机能的变化。涉及到病 理学、组织胚胎、药物毒理、动物营养、动 物生化、生化等学科
⑷ Bouin氏固定液（用于组织学和免疫组织化学固定） 苦味酸饱和水溶液 甲醛 冰醋酸 75ml 25ml 5ml
⑸ Carnoy氏固定液（使用于染色体、DNA、RNA、糖 原的固定） 纯酒精 6份
冰醋酸
三氯甲烷
1份
3份
3. 病料的送检
⑴ 及时送检
新鲜病料：2h以内能送到的，气温高时要加冰冷藏。
（二）正确采集、保存与送检病料的重要
性
1.关系到疾病诊断的准确性：病变材料反应了疾病
的本质变化。
2.关系到科研和实验结果正确与否： 科研试验：设计 实施 结果。 获取数据 动物 形态变
实施（实验） 的过程
化、机能（生理生化指标）。
（三）病料的采集、保存与送检三者之间的关系
1. 正确的采集病料是获得正确结果的关键。 2. 正确的保存病料是获得正确结果的保证。
甲醛溶液 1份
自来水
9份
⑵ 10％中性福尔马林固定液（PH 7.0）
甲醛溶液
NaH2PO4· H2 O Na2HPO4 蒸 馏 水
120ml
4g 13g 880ml
⑶ 4％多聚甲醛固定液（用于免疫组织化学）
多聚甲醛
0.1mol/L PB （PH 7.4）
4g
100ml
※多聚甲醛＋PB ，于磁力搅拌器上，加热到 60℃左 右 完 全 溶 解 ， 溶 液 变 清 （ 有 时 需 加 几 滴 1mol/L NaOH ） ， 最后PB补足至100ml。
1. 病料的采集（取材）
⑴ 取材应目的准确，有病变的组织必须取，有疑问 处重点取，变化不明现时全面取。
⑵ 取材部位要准确，所取组织块应含有病变、正常 和两者相交过度结构 ; 组织结构要完整 , 如肠（外 膜层、肌层、粘膜层）、肾（皮质、髓质）。
⑶ 取材时间尽量早。病死动物夏季不超过 6h ，冬季 不超过24h。（相对）
⑷ 取材大小及数量。一般 1.5×2.0×0.3 ～ 0.5cm 为 好，不同的变化均取。
⑸ 特殊组织取材
壁薄的囊腔脏器（肠、胆囊）。
体积微小的组织（小鼠的肾上腺、垂体、
甲状腺等）。
液状病料、渗出液。
柔软与变形的组织（肠系膜、神经干）。
⑹ 防人为变化：取材刀具要 快，动作要轻， 防挤压。
⑷ 肠内容物：烧烙表面，吸取内容 物于灭菌容器内。
⑸ 皮肤及皮屑：刀刮至真皮层收集
皮屑，作真菌、疥癣检查。
⑹ 脑、脊髓：常作病毒检查。
2.病料的保存
⑴ 细菌学检查材料：
A .组织块：一般用灭菌的液体石蜡、30％甘油
缓冲盐水或饱和氯化钠溶液。
B .液体材料：保存于灭菌的密封性好的试管内，
可用石蜡或密封胶封口。
⑴ 所有取材的用具（刀、剪 、盛装容器等）事先要 严格消毒、灭菌，取材环境尽量做到无菌。 ⑵ 尸检时应首先采取用于微生物检查的病料。 ⑶取材时间尽量早，动物死后肠道内微生物大量繁 殖造成污染。 ⑷ 必要时将整个脏器、尸体送检。
1.病料的采集（取材）
⑴实质脏器的取材：先用烧热的刀片烧烙脏器表
面，再用消毒的刀、剪取深部组织，同时作触片。
2. 病料的保存（固定）
⑴ 固定的作用：使细胞内的物质尽量接近生 活状态时的形态，结构和位置，并便于切片和 观察。 ⑵ 固定液的选择：用于组织固定的固定液种 类繁多，根据切片观察的目的而定（形态结构、 组织内抗原、组织内脂肪、糖原）
⑶ 固定液的量：10倍于组织的体积。 ⑷ 固定的时间：数小时～24小时，不同种 类不一样（固定液种类、组织大小……） ⑸ 固定温度：常温20～25℃，低温4℃时 间要延长。 ⑹ 固定用容器：玻璃容器为好，禁用金属 容器，底部最好垫纱布或棉花，防组织贴 壁而固定不良。
⑵ 50％甘油缓冲盐水溶液：
氯化钠 酸性磷酸钠 2.5g 0.46g 溶于100ml中性蒸馏水内
已固定的病料：用塑料袋或瓶密封包装。
⑵ 附送检说明：检查的目的与要求，基本情况介绍
（病史、发病、死亡及剖检、取材的组织种类、数量
等） ⑶ 专人送检：人畜共患的烈性传染病（炭疽），国家 规定的一类动物疫病（口蹄疫、高致病性禽流感、 牛海绵状脑病等）。
（二）微生物学检查的材料的采集保存与送检
要求在没有其它微生物污染情况下进行，因此 必须做到以下几点：
3. 正确的送检病料是获得正确结果的必要条件。
※ 三者均能影响结果！！！
二、实用举例
（一）用于病理组织学检查病料的采集、 保存与送检 （二）微生物学检查的材料的采集、保存 与送检 (三)用于毒物分析材料的收集保存与送检
（一）用于病理组织学检查病料的采
集、保存与送检
1. 病料的采集（取材） 2. 病料的保存（固定） 3. 病料的送检
※最好一种组织用一套刀具
⑵液体病料（血液、胆汁、渗出物、脓汁等）表 面 烧烙后，用灭菌注射器吸取保存。 ⑶全血
抗凝剂
⑴ 4％枸橼酸钠 0.1ml，可抗凝血 1ml。
⑵ 20％枸橼酸钠2～3滴可抗凝血 5ml。
⑶10％乙二胺四醋酸钠2～3滴可抗凝血5ml。
⑷肝素：1mg可抗凝1ml，多用于病毒学检
查的抗凝血。
C .各种涂片、触片、抹片, 自然干燥后装盒冷 藏。
⑵ 病毒学检查材料：
A 组织块：浸入50％甘油缓冲盐水或鸡蛋生
理盐水。
B 液体材料：灭菌试管严密封口低温保存。
在4℃时可保存数小时，若长期保存应在
-70℃条件下。
※ 保存液的配制
⑴ 30％甘油缓冲盐水：
纯甘油 氯化钠 碱性磷酸钠 0.02%酚红液 中性蒸馏水加至 混合后在15磅高压灭菌 30ml 0.5g 1g 1.5ml 100ml 30mins