传出神经系统药物对离体家兔肠管平滑肌的影响解读
药物对兔离体回肠平滑肌的作用
药物对兔离体回肠平滑肌的作用实验目的1•学习离体平滑肌器官的试验方法。
2•观察药物对兔离体回肠平滑肌的作用，并初步分析其机制。
实验原理多种动物的离体肠管在适宜的环境中，可以较长时间保持其自动节律性运动功能。
根据受体在肠平滑肌中的分布的特点，可观察药物的作用，并借助工具分析其作用机制。
实验器材和药品1. 实验动物家兔，体重2~3kg，雌雄不拘。
2. 实验器材木锤，小剪刀，小镊子，培养皿，HE-400S恒温平滑肌槽，张力传感器，电脑及记录装置。
3. 实验药品和试剂台式(Tyrode's )液，0.01%氯化乙酰胆碱，0.1% 硫酸阿托品，1%氯化钡。
实验步骤和方法1. 取家兔1只，以木槌击其枕骨部处死，迅速剖开腹腔，找到回盲部，剪取回肠，置盛有冷台式液的培养皿中，沿肠壁分离并减去肠系膜，将肠管剪成数段，轻轻压出场内容物，用冷台式液冲洗肠管，再换冷台式液，最后将肠管剪成若干2~3cm的小段置于4C台式液中备用。
2. HW-400S恒温平滑肌槽的操作方法①将恒温平滑肌槽右侧面的排液口和排水口均置于关闭状态。
②在恒温平滑肌槽内添加足够量的清水，水量达到建议水平线。
在预热筒内加入适量营养液。
③确保电源已经连接良好。
④打开机器电源。
⑤此时数码管和加热指示灯快速闪烁，表明系统还没有处于加热状态，当确认水浴槽内加水后，轻按温度设定旋钮，系统进入加热状态。
⑥设定实验温度(38士0.5 )C。
⑦营养液先在预热筒中预热，然后通过按下自动加液按钮让其自动流到实验药筒。
⑧温度达到试验温度后加入实验样本。
试验样本通过随机配件中的实验片固定在试验药筒中，用滴管向实验药筒中滴入药液来进行实验。
用过的营养液可通过打开设备侧板的放液阀向外排放，排放后请用预热筒中营养液将其冲洗数遍，实验效果更佳。
⑨调节气量调节阀。
⑩实验时将随机标配的支架杆固定座上，将张力传感器固定在支架杆上，然后将实验样本一端吊在张力传感器上，一端固定在实验钩上，将实验钩牢挂在试验药筒边沿即可开始试验。
药物对家兔离体肠管的作用
药物可以通过激活或抑制信号传导通路来调节肠管的生理功能。例如，
某些药物可以激活腺苷酸环化酶，从而促进肠管收缩，而另一些药物则
可以抑制该酶的活性，从而抑制肠管收缩。
03
ห้องสมุดไป่ตู้
信号传导通路与药物作用关系
药物对信号传导通路的影响可以解释其对肠管生理功能的调节作用。例
如，某些药物可以通过影响信号传导通路中的关键酶或受体的活性来调
药物剂量与效应关系的研究有助于确定药物的最佳使用剂 量和范围，避免药物过量或不足对实验结果的影响。同时 ，也有助于深入了解药物的作用机制和靶点，为药物的优 化设计和临床应用提供理论依据。
06
实验结果讨论与结论
实验结果讨论
药物对家兔离体肠管张力的影响
实验结果显示，不同药物对家兔离体肠管张力的影响不同。有些药物能够显著增加肠管张 力，有些药物则对肠管张力没有明显影响。这表明药物对家兔离体肠管的作用具有多样性 。
实验方法与步骤
离体肠管制备
实验装置
将家兔处死后，迅速取出肠管，置于冰冷 的Krebs液中，去除肠系膜和脂肪组织，剪 成2-3cm长的肠段备用。
将离体肠管置于恒温浴槽中，一端连接张 力换能器，另一端固定于浴槽底部，通过 生物信号采集系统记录肠管张力变化。
药物处理
数据处理与分析
向浴槽中加入不同浓度的药物溶液，观察 并记录药物对离体肠管张力的影响。同时 设立对照组，加入等体积的生理盐水。
恢复运动节律
另一些药物如普鲁卡因等，能降低肠管平滑肌的兴奋性，使 因各种原因引起的肠管运动节律失常得以恢复。
04
药物作用机制探讨
药物与受体结合情况分析
药物与肠管受体结合的特 性
药物与家兔离体肠管上的受体结合具有特异 性、饱和性、可逆性和敏感性的特点。
药物对离体平滑肌的作用
药物对离体平滑肌的作用药物对离体平滑肌受体的作用[适用对象适用对象适用对象适用对象] 中药学、药学、药物制剂专业实验目的：利用兔十二指肠或上段空肠，观察乙酰胆碱，阿托品及氯化钡对离体兔肠平滑肌的作用。
实验原理：离体兔肠平滑肌在适当的条件下可以保持较长时间的自动节律性收缩。
根据受体在肠道平滑肌中分布的特点，可观察药物的作用，并可借助工具药分析其作用原理。
仪器设备：（动物与药品试剂）1、动物：家兔2.5kg左右2、药品与试剂：0.001%氯化乙酰胆碱溶液，0.1%硝酸毛果芸香碱溶液0.1%硫酸阿品托溶液0.05%溴化新斯的明溶液1%氯化钡溶液台氏液3、仪器设备：BL-420E生物机能实验系统，张力换能器，HW-300型恒温平滑肌槽，多用电源插座，铁支架，双凹夹，L 型钩，培养皿，缝线，1ML注射器，10ML注射器，手术器械一套。
四、相关知识1、由于肠肌上分布有M受体，当向营养液加入Ach（N 、M）受体激动药、阿品托（M受体阻断药）、毛果芸香碱（M受体激动药）、新斯的明（抗胆碱酯酶药）等药物时，可与相应的受体结合，激动或阻断M受体，引起肠肌收缩或松弛。
2、氯化钡是一种非受体作用的有毒化合物，对肠肌有直接的兴奋收缩作用，常用于药理实验中、五、实验步骤（一）仪器连接1、打开HW－300型恒温平滑肌，恒温37-38摄氏度。
2、启动电脑，确认USB接口已经连通，打开BL－420E 生物机能实验系统软件，在“实验项目”下拉菜单中选择“消化道平滑肌活动”，或在“输入信号”下拉菜单中选择“1通道”的“张力”，在“1通道”连接张力换能器。
（二）制备标本取家兔1只，击头致死，剖腹，取出空肠或十二指肠，放入台氏液的器皿中，用吸管吸取台氏液将肠内空物冲净，剥离肠系膜。
将肠管煎成2cm的肠段备用。
肠管两端对角穿线，将其安放在有台氏液的平滑肌槽中，上端连接拉力换能器，下端系于L型钩上，通入空气供氧。
（三）药物对离体兔肠平滑肌的作用1、加药：待肠肌稳定10min后，描记正常收缩曲线，然后依次加药并记录收缩曲线的变化，顺序如下：（1）0.001%Ach溶液0.2ml，当肠肌活动曲线降至基线时，台氏液连续冲洗3次；（2）重复（1），作用达到最高点时再加0.1%阿品托0.2ml，记录曲线变化后，台氏液连续冲洗3次；（3）1%氯化钡1.0ml作用达到最高峰时立即加入0.1%阿品托1.0ml，记录曲线变化；（4）待肠肌活动稳定后加入0.1%毛果芸香碱0.5ml观察描记肠肌活动曲线后，台氏液连续冲洗3次；（5）加0.1%阿品托0.5ml，作用明显时再加0.1%毛果芸香碱0.5ml, 观察描记肠肌活动曲线后，台氏液连续冲洗3次；（6）加0.05%新斯的明溶液0.5ml，描记肠肌活动曲线变化。
离体小肠平滑肌的生理特性及药物作用观察实验报告
离体小肠平滑肌的生理特性及药物作用观察一、实验目的: ①进一步熟悉BL-410/420多媒体生物信号记录分析系统；②学习离体肠肌的实验装置和使用方法；③观察并记录传出神经系统药物以及酸碱对离体小肠平滑肌收缩的影响二、实验对象：家兔离体小肠肠管。
三、实验原理：消化道平滑肌具有自动节律性运动的特性，其产生机理源于其肌肉细胞本身的自发缓慢放电并受中枢神经系统及体液因素的调节，所以可以取离体的小肠肠管并放置于人工创造的正常生理环境下，利用BL-410/420多媒体生物信号记录分析系统和换能器系统分别研究传出神经系统药物以及酸碱对小肠平滑肌收缩的影响。
四、实验记录与分析㈠图（一）图（一)表示小肠由38度台氏液到室温下其平滑肌收缩曲线变化情况从图（一)可以看出小肠所处温度降到室温时明显减弱，因为平滑肌收缩需要酶催化，而温度在一定范围内下降时钠钾泵及离子通道的酶的催化活性也会降低，这就可以影响钠钾钙等离子的转运，继而影响去极化和复极化的速度，进而动作电位的产生速率和幅度就会下降，所以平滑肌的收缩程度会减弱。
㈡图（二）图（二）表示在38度台氏液加入肾上腺素后小肠平滑肌收缩曲线的变化情况由图（二）可知加入肾上腺素后小肠平滑肌收缩明显减弱，这是因为肾上腺素与小肠平滑肌肌膜上的β肾上腺素能受体结合，可导致使膜超极化，从而使膜去极化达到阈电位的幅度增加，所以其动作电位的产生频率下降，所以小肠平滑肌的收缩幅度减弱。
㈢图（三）图（三)表示在正常38度台氏液里滴加乙酰胆碱的小肠平滑肌收缩曲线变化情况由图（三）可知在正常38度台氏液里滴加乙酰胆碱后小肠平滑肌收缩明显增强，这是应为乙酰胆碱与小肠平滑肌肌膜上的M受体结合后，可以在膜去极化未达到一定的电位时提前激活更多的慢钙通道，使大量的钙离子内流，进而使动作电位产生的频率增加，所以小肠的平滑肌收缩增强。
㈣图（四）图（四)表示在正常38度台氏液先滴加阿托品，三十秒后再加乙酰胆碱的小肠收缩变化情况由图（四）可知小肠平滑肌的收缩无明显的变化，这是因为阿托品作为平滑肌肌膜上M受体抗结剂与M受体结合了，在滴加阿托品三十秒后再滴加乙酰胆碱，乙酰胆碱不能与小肠平滑肌肌膜上的M受体结合，就不能引起小肠平滑肌的兴奋性效应，所以其收缩没什么明显改变。
实验四家兔离体小肠平滑肌生理特性及药物作用的观察
目录
• 实验目的 • 实验材料 • 实验方法 • 实验结果 • 结论
01
CATALOGUE
实验目的
了解家兔离体小肠平滑肌的生理特性
观察家兔离体小肠平 滑肌的自主节律性收 缩
分析家兔离体小肠平 滑肌的生理功能和特 点
记录家兔离体小肠平 滑肌对不同刺激的生 理反应
药物
药物种类
包括生理盐水、不同浓度的药物溶液 等。
药物浓度
根据实验需要，配制不同浓度的药物 溶液，确保药物浓度准确。
03
CATALOGUE
实验方法
离体小肠平滑肌的制备
01
选取健康家兔
选择体重相近、健康的家兔作为实 验对象。
取小肠组织
迅速取出小肠组织，并分离出平滑 肌部分。
03
02
麻醉与处死
对家兔进行麻醉，然后处死，以获 取小肠组织。
实验结论
总结实验结果，得出关于家兔离 体小肠平滑肌生理特性及药物作 用的观察结论。
05
CATALOGUE
结论
对家兔离体小肠平滑肌生理特性的认识
生理特性
家兔离体小肠平滑肌具有自主节律性、紧张性、 兴奋性和伸展性等生理特性。
影响因素
离体小肠平滑肌的生理特性受到多种因素的影响 ，如神经、激素、离子通道等。
生理意义
家兔离体小肠平滑肌的生理特性对于维持肠道功 能、消化和吸收具有重要意义。
对药物作用的理解与评价
药物作用机制
实验中观察到的药物作用机制主要包括抑制平滑肌细胞膜离子通道 、影响平滑肌细胞内钙离子浓度等。
药物效果评价
通过对药物作用效果的观察，可以对药物的疗效和安全性进行评价 。
理化因素和药物对家兔离体肠肌的作用
理化因素和药物对家兔离体肠肌的作用引言：离体器官实验是一种常见的研究方法，它可以帮助我们更好地了解不同理化因素和药物对离体器官（如肠肌）的作用。
离体肠肌实验通常用于研究肠道平滑肌的收缩和松弛机制，以及肠肌对不同药物的反应。
本文将探讨理化因素（如温度、pH值和浓度）和药物对家兔离体肠肌的作用。
1.温度对离体肠肌的影响温度是一个重要的理化因素，它可以直接影响肌肉的收缩和松弛。
实验显示，提高温度可以增加肠肌的收缩能力，而降低温度则会降低肠肌的收缩力。
这是因为温度的变化可以直接改变平滑肌细胞内的钙离子浓度，从而影响肌肉的收缩反应。
此外，温度的改变还可以影响神经传导和神经-肌肉接头的功能，进而影响肠肌的收缩能力。
2.pH值对离体肠肌的影响pH值是一个反映酸碱性的指标，它也可以对离体肠肌的功能产生影响。
实验表明，酸性环境（低pH值）可以引起肠肌的收缩，而碱性环境（高pH值）则会导致肠肌的松弛。
这是因为pH值的改变可以影响细胞内的酶活性和代谢过程，对钙离子浓度和肌肉收缩机制产生影响。
3.浓度对离体肠肌的影响药物浓度是影响药物作用的重要因素之一、在离体肠肌实验中，通过改变药物浓度可以研究药物在不同浓度下对肠肌的作用机制。
实验表明，药物的浓度变化可以直接影响肠肌的收缩能力和松弛程度。
通常情况下，药物浓度越高，药作用越强。
但是，对于一些药物来说，浓度超过一定阈值后，其作用可能会饱和或逆转。
离体肠肌实验可以用于研究不同药物对肠肌的作用机制。
根据药物类型的不同，其作用机制也有所差异。
例如，去甲肾上腺素是一种常用的药物，它可以通过与肠道平滑肌细胞上的α-肾上腺素受体结合，引起肌肉收缩。
而酚妥拉明是一种抗胆碱能药物，它可以抑制胆碱能神经传导，从而引起肌肉的松弛。
通过研究不同药物的作用机制，可以更好地理解肠肌的生理功能和病理改变。
结论：理化因素和药物可以直接或间接地影响离体肠肌的收缩和松弛能力。
温度、pH值和浓度的改变可以改变调节平滑肌细胞功能的方式，从而影响肌肉的收缩和松弛反应。
药物对离体肠肌运动的影响
药物对离体肠肌运动的影响X X X（浙江中医药大学XXX（专业）XX（班级）XX（几组）XX（学号））摘要目的：观察NaOH、HCl、乙酰胆碱、肾上腺素、25℃的台氏液以及氧气对离体家兔肠肌运动的影响。
方法：采用微机生物信号采集处理系统和离体家兔肠肌标本制备方法，观察并记录到不同理化因素对离体家兔肠肌刺激之后其肠肌收缩情况，在每次刺激出现明显现象之后，要用换液冲洗。
结果：得到了NaOH、HCl、乙酰胆碱、肾上腺素、25℃的台氏液以及氧气这几个因素对离体家兔肠肌分别刺激之后其肠肌的收缩张力曲线。
结论：一定浓度的NaOH和乙酰胆碱促进肠肌的运动，一定浓度的HCl和肾上腺素能抑制肠肌的运动，温度降低先促进肠肌的运动，但马上又抑制肠肌的运动，缺氧能抑制肠肌的运动，但是在一定时间范围内复氧又能使肠肌运动水平恢复正常甚至高于正常关键词：离体肠肌；HCl; NaOH; 乙酰胆碱；肾上腺素；台氏液；缺氧；复氧。
1.材料和方法1.1 实验动物：家兔（由浙江中医药大学动物实验中心提供）1.2 实验器械：实验仪器麦氏浴槽、超级恒温器、张力换能器、微机生物信号采集处理系统、空气泵、固定器、铁支架、家兔手术器械。
1.3 药品和试剂：台氏液、一定浓度的乙酰胆碱、一定浓度的肾上腺素、一定浓度的NaOH、一定浓度的HCl。
1.4实验系统连接和参数设置把台式液加在恒温器中加热并保持到37℃左右，然后在麦氏浴槽中加入一定量的37℃左右的台式液。
通气管接95%O2+5%CO2混合气体。
用换能器输出线接微机生物信号处理系统第一通道，然后在电脑上进入RM6240系统，选择“实验”菜单中的“不同药物对家兔离体肠肌运动的影响”。
1.5离体家兔肠肌制备：取家兔1只，用木槌击其头部，立即剖开腹腔，找到十二指肠，剪取十二指肠空肠约20cm，置于台氏液中，沿肠壁除去肠系膜，用注射器吸取台氏液将肠内容物冲洗干净，然后穿线结扎2cm左右肠肌两端。
1.6标本固定：肠肌一端连线系于浴槽固定钩上，然后放入38℃麦氏浴槽中。
药物对离体平滑肌的作用
药物对离体平滑肌受体的作用[适用对象适用对象适用对象适用对象] 中药学、药学、药物制剂专业实验目的：利用兔十二指肠或上段空肠，观察乙酰胆碱，阿托品及氯化钡对离体兔肠平滑肌的作用。
实验原理：离体兔肠平滑肌在适当的条件下可以保持较长时间的自动节律性收缩。
根据受体在肠道平滑肌中分布的特点，可观察药物的作用，并可借助工具药分析其作用原理。
仪器设备：（动物和药品试剂）1、动物：家兔2.5kg左右2、药品和试剂：0.001%氯化乙酰胆碱溶液，0.1%硝酸毛果芸香碱溶液0.1%硫酸阿品托溶液0.05%溴化新斯的明溶液1%氯化钡溶液台氏液3、仪器设备：BL-420E生物机能实验系统，张力换能器，HW-300型恒温平滑肌槽，多用电源插座，铁支架，双凹夹，L 型钩，培养皿，缝线，1ML注射器，10ML注射器，手术器械一套。
四、相关知识1、由于肠肌上分布有M受体，当向营养液加入Ach（N 、M）受体激动药、阿品托（M受体阻断药）、毛果芸香碱（M受体激动药）、新斯的明（抗胆碱酯酶药）等药物时，可和相应的受体结合，激动或阻断M受体，引起肠肌收缩或松弛。
2、氯化钡是一种非受体作用的有毒化合物，对肠肌有直接的兴奋收缩作用，常用于药理实验中、五、实验步骤（一）仪器连接1、打开HW－300型恒温平滑肌，恒温37-38摄氏度。
2、启动电脑，确认USB接口已经连通，打开BL－420E 生物机能实验系统软件，在“实验项目”下拉菜单中选择“消化道平滑肌活动”，或在“输入信号”下拉菜单中选择“1通道”的“张力”，在“1通道”连接张力换能器。
（二）制备标本取家兔1只，击头致死，剖腹，取出空肠或十二指肠，放入台氏液的器皿中，用吸管吸取台氏液将肠内空物冲净，剥离肠系膜。
将肠管煎成2cm的肠段备用。
肠管两端对角穿线，将其安放在有台氏液的平滑肌槽中，上端连接拉力换能器，下端系于L型钩上，通入空气供氧。
（三）药物对离体兔肠平滑肌的作用1、加药：待肠肌稳定10min 后，描记正常收缩曲线，然后依次加药并记录收缩曲线的变化，顺序如下：（1）0.001%Ach溶液0.2ml，当肠肌活动曲线降至基线时，台氏液连续冲洗3次；（2）重复（1），作用达到最高点时再加0.1%阿品托0.2ml，记录曲线变化后，台氏液连续冲洗3次；（3）1%氯化钡1.0ml作用达到最高峰时立即加入0.1%阿品托1.0ml，记录曲线变化；（4）待肠肌活动稳定后加入0.1%毛果芸香碱0.5ml观察描记肠肌活动曲线后，台氏液连续冲洗3次；（5）加0.1%阿品托0.5ml，作用明显时再加0.1%毛果芸香碱0.5ml, 观察描记肠肌活动曲线后，台氏液连续冲洗3次；（6）加0.05%新斯的明溶液0.5ml，描记肠肌活动曲线变化。
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实验五传出神经系统药物对离体家兔肠管平滑肌的影响
【目的和原理】家兔小肠平滑肌上存在α、β、Ｍ受体。
α、β受体兴奋可使小肠平滑肌抑制而舒张；Ｍ受体兴奋可使小肠平滑肌兴奋而收缩。
观察乙酰胆碱、阿托品、肾上腺素等传出神经系统药物对离体家兔小肠平滑肌的作用并掌握离体平滑肌的实验方法。
【实验对象】离体小肠（家兔由来）
【实验药品】① 5×10-4氯化乙酰胆碱（ACh）
② 0.5% 硫酸阿托品（Atropine）
③ 0.1% 盐酸肾上腺素（Adr）
④ 20% 氯化钡
【实验器材】 RM6240多媒体生物信号记录分析系统、PC80586计算机、张力传感器、麦氏浴槽、超级恒温水浴、氧气瓶、通气钩、高位吊瓶、量筒、烧杯、滴管、培养皿、注射器、外科剪刀、眼科镊子、缝衣针、棉线
【实验方法】
一.调试RM6240系统，使进入肌张力测定状态
1.打开计算机并打开RM6240多媒体化生物信号记录分析系统开关。
确定张力换能器与通道1连接。
2.进入RM6240菜单。
选择通道1，在界面右侧控制参数区选择<张力>, 选择<3g>, 扫描速度1.0 s/div，确定信号输入。
在工具菜单选择快速归零。
3.在主菜单中选择 <示波>, 进入示波状态。
4.在主菜单中工具栏选择 <网格切换> 将背景网格切换为细格, 并在选项中选择波形颜色为红色。
此时肌张力测试调试完毕。
二.调节仪器
将超级恒温水浴温度调节至38.5±0.5℃，向麦氏浴槽中加30 ml台式液，通入氧气（1～2个气泡/秒）。
三.制备肠管标本
取家兔一只，以左手提其髂骨上部，右手执木棒击其后头部至昏后，迅速剪开腹腔，剪取整段空、回肠置于冷的台式液中，除去肠系膜，将肠内容物冲洗干净，剪成2 cm小段肠管备用。
四.装入麦氏浴槽及给药
将肠管标本两端用缝针各穿一线。
一端打一空结（约1 cm小套），另一端穿上长线打结，用眼科镊钳住空结固定于通气钩上，放入麦氏浴槽中，将另端长线的近端打一空结，挂在张力换能器的小钩上，调节换能器高度，使前负荷为1 g，稳定标本20 min。
在主菜单下选择<纪录状态>，先描记一段正常曲线，然后按下列顺序给药。
1.向麦氏浴槽中加入5×10-4M ACh 0.2 ml 同时用标记框在屏幕上作给药标记，观察肠段反应。
当反应最明显时，用暂停键，将计算机转入“示波状态”。
用台氏液冲洗肠管3遍，稳定标本15 min，加入下列药物。
2.将系统重新转入“纪录状态”，描记一段正常曲线后，向麦氏浴槽中加入0.5% Atropine 0.2 ml并作标记，观察曲线变化，1 min后加5×10-4M ACh 0.2 ml 并标记,观察肠段反应。
将肠段反应。
然后将计算机转入“示波”状态后，用台氏液冲洗肠管3遍，至标本稳定。
3.将系统重新转入“纪录状态”，描记一段正常曲线后，向麦氏浴槽中加入0.01% Adr 0.1 ml并作标记，观察曲线变化。
将计算机转入“示波”状态后，用台氏液冲洗肠管3遍，至标本稳定。
4.将系统重新转入“纪录状态”，描记一段正常曲线后，向麦氏浴槽中加入20% 氯化钡0.2 ml并作标记，观察曲线变化。
在主菜单下选择“结束实验”，储存实验结果，激活工具栏，系统进入分析状态。
【实验结果】
在主菜单下选择“数据编辑”命令，然后通过剪切，选择剪切区域,将4次记录结果编辑在一个屏幕中。
在主菜单下打印项进行打印模式设置，记入测量、学生及实验信息后，预览、打印。
以描图及文字记述分析正常离体肠管的张力和舒缩情况，加入药物后的反应，并对结果进行适当的讨论。
【注意事项】
1.操作时应避免牵拉肠管，造成肠管活性不好。
2.穿肠段时，应十字交叉穿线，并用单线。
3.保护张力换能器，切不可牵拉过度
4.给药时将药液直接加入麦氏浴槽内，既不要碰线也不要碰壁。