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生物信息学中的转录组测序数据分析流程解析

生物信息学中的转录组测序数据分析流程解析

生物信息学中的转录组测序数据分析流程解析转录组测序是一种基于高通量测序技术的生物学研究方法,用于研究特定物种在特定生理或环境条件下所产生的所有转录本(mRNA)。

转录组测序数据分析是将原始的测序数据转化为有意义的生物学信息的过程。

本文将解析转录组测序数据分析的基本流程。

1. 数据质量控制(Quality Control,QC)数据质量控制是在转录组测序数据分析中非常重要的一步,它能够及早发现并剔除测序过程中产生的低质量测序数据,保证后续分析的准确性。

常用的QC工具包括FastQC和Trimmomatic。

FastQC用于检查测序数据的质量分布情况,发现可能存在的测序错误和污染问题。

Trimmomatic则用于去除低质量的测序片段和接头,提高数据的质量。

2. 数据比对数据比对是将测序数据与参考基因组进行比对的过程。

比对的目的是将测序片段精确地定位到基因组上,并获得每个基因组区域的覆盖度和深度等信息。

常用的比对工具包括Bowtie2和TopHat。

Bowtie2是一种基于Burrows-Wheeler Transform的短序列比对工具,适用于低错配率的比对。

TopHat则是一种用于对转录组数据进行比对和注释的工具,可以检测新基因和外显子剪接事件。

3. 定量分析定量分析是研究不同转录本在不同条件下的表达水平差异的过程。

常用的定量工具包括Cufflinks和HTSeq。

Cufflinks是一种用于估计转录本表达水平和发现新的转录本的工具。

它可以根据RNA-Seq数据拼接转录本,并计算不同基因或转录本的表达水平。

HTSeq则是一种用于计算不同基因的读数的工具,读数可以用来估计基因的表达水平。

4. 差异分析差异分析是研究在不同处理条件下,基因或转录本的表达水平是否存在显著差异的过程。

常用的差异分析工具包括DESeq2和edgeR。

DESeq2是一种基于负二项分布模型的差异表达分析工具,它可以对转录本进行差异分析,并计算基因的表达水平在不同条件下的折叠变化。

RNA序列比对工具分析与优势对比研究

RNA序列比对工具分析与优势对比研究

RNA序列比对工具分析与优势对比研究引言:随着高通量测序技术的快速发展,RNA测序成为了研究转录组学的重要方法之一。

通过测量RNA分子在特定时间、组织或情况下的活性,我们可以了解不同生物体内基因的表达模式以及基因调控网络的动态变化。

然而,对于RNA转录组学的分析来说,RNA序列比对工具的选择和性能表现至关重要。

本文旨在比较几种常用的RNA序列比对工具,并探讨它们的优势和不足之处。

一、Bowtie2Bowtie2是一种广泛使用的RNA序列比对工具,它的优势在于速度快、内存消耗低、适用于大规模测序数据的分析。

Bowtie2采用了一种基于贪心算法的比对方法,能够高效地处理高质量和低质量的序列数据。

该工具允许短读长序列比对和长读长序列比对,并具有较高的比对效率和准确性。

此外,Bowtie2还支持多线程并行计算,可以提高比对速度。

然而,Bowtie2也存在一些不足之处。

首先,由于其优先考虑比对到特定位置,Bowtie2在处理非唯一比对时可能存在较多漏配和错配的情况。

其次,Bowtie2对非标准引物或具有误配的序列匹配效果较差。

因此,在使用Bowtie2进行比对时,需要特别关注这些问题。

二、TophatTophat是一种针对RNA-Seq数据的专门比对工具,它能够识别可变剪接事件和新的转录本。

Tophat将比对问题转化为查找RNA读取片段在不同位置的配对问题,并使用Burrows-Wheeler Transform (BWT)和动态编程算法进行比对。

Tophat能够对多个转录本进行比对,并在比对过程中标记可变剪接位点和未比对的片段。

然而,Tophat存在一些局限性。

首先,Tophat的比对速度较慢,特别是在处理大规模数据集时。

其次,Tophat对于高度可变的基因组区域和复杂的剪接事件表现出一定的局限性。

因此,对于这些情况,我们需要考虑选择其他更适合的比对工具。

三、HISAT2HISAT2是一种新一代的RNA序列比对工具,其相比于Bowtie2和Tophat具有更快的速度和更高的准确性。

新型Top_hat变换及其在红外小目标检测中的应用_白相志

新型Top_hat变换及其在红外小目标检测中的应用_白相志

文章编号:1004-9037(2009)05-0643-07新型Top -hat 变换及其在红外小目标检测中的应用白相志1 周付根1 解永春2 金 挺1(1.北京航空航天大学图像中心,北京,100191; 2.北京控制工程研究所,北京,100080)摘要:为了简单有效地提高To p -hat 变换的目标检测能力,降低噪声及复杂背景对其性能的影响,提出了一类新的T op-ha t 变换。

首先分析了经典To p-hat 变换的缺点,然后用两个不同但互相关联的结构元素重新组织经典To p-ha t 变换的运算形成新型T op-ha t 变换。

接着分析了新型To p-hat 变换和经典To p-ha t 变换的不同,并详细分析了由此产生的新特性。

由于新型T op -ha t 变换中的两个结构元素充分考虑了目标区域与其周围区域的差异,使得新型To p -ha t 变换不仅能抑制经典To p -ha t 变换的缺点,而且能增强其目标检测能力。

实验结果表明,新型T op-hat 变换较经典To p-hat 变换和其他常用算法能更好地检测复杂背景下的红外弱小目标。

关键词:目标检测;红外弱小目标;To p-ha t 变换;结构元素中图分类号:T P 391 文献标识码:A 基金项目:航空科学基金(20070151003)资助项目;北京航空航天大学博士研究生创新基金资助项目。

 收稿日期:2008-01-15;修订日期:2008-05-04New Top -Hat Transformation and Application on InfraredSmall Target DetectionB ai X iangzhi 1,Zhou Fugen 1,X ie Yongchun 2,J in Ting1(1.Imag e Pr ocessing Center ,Beijing U niv ersity of Aer onautics and Astr onautics ,Beijing ,100191,China ;2.Beijing Institute of Co ntro l Engineering ,Beijing ,100080,China )Abstract:To improv e the detectability of the Top -hat transfo rmatio n a nd suppress the effect of noises o r clutters ,a new cla ss of To p -hat tra nsfo rma tio n is propo sed .Fir stly ,the sho rtco mings of the classicalTop-ha t transfo rmatio n are a naly zed.Then,the new To p-hat transforma tion is pro po sed through reg rouping the calculatio n of the classical Top-ha t transforma tion by using two differ-ent but related structuring elements .Mo reov er ,the differences between the classical and thenew Top-ha t transfo rmatio ns,and the pro perties o f the new Top-hat transfo rmatio n are ana-ly zed.Since the tw o structuring elem ents well utilize the differences betw een the target regio n and the surrounding regio n ,the new Top -ha t transforma tio n can suppress the sho rtcomings ofthe classica l Top -hat transforma tion and improv e the detectability .Ex perimental results dem onstrate that the new To p-hat tra nsfo rm atio n ca n detect the infrared dim small target,co m-pared w ith the classical To p-hat transfo rmation and o ther w idely used methods.Key words :target detectio n ;infrared dim sm all target ;Top -hat transfo rmation ;structuringelem ent引 言数学形态学被Ma theron 首先提出后由Serra 扩展并广泛应用于图像分析[1]。

高通量测序技术介绍及其应用

高通量测序技术介绍及其应用

目录一、高通量测序技术背景知识 (1)1、什么是测序 (1)Sanger法测序 (1)高通量测序 (1)2、常见的测序平台介绍 (2)Illumina Solexa测序技术 (2)Roche454测序技术 (2)ABI SOLiD测序技术 (3)3、高通量测序技术的应用 (1)二、各类型测序技术介绍及其使用目的* (2)1、基因组重测序 (2)2、De novo测序 (3)3、外显子测序(Whole Exon Sequencing) (3)4、转录组测序(RNA-seq) (3)5、小RNA测序(Small RNA Sequencing) (4)6、ChIP-seq测序 (4)7、CHIRP-Seq测序 (4)8、CLIP-seq测序 (5)9、宏基因组测序(Metagenome Sequencing) (5)三、不同类型高通量测序技术在基础医学领域中的应用* (6)1、Exome-seq在医学研究中的应用 (6)2、RNA-seq数据分析在医学研究中的应用 (7)3、Small RNA-seq数据分析在医学研究中的应用 (9)4、ChIP-seq在医学研究中的应用 (10)5、HITS-CLIP在医学研究中的应用 (11)四、高通量测序数据的基本概念和数据质量控制 (13)1、FASTA文件的格式 (13)2、FASTQ文件格式 (14)3、FASTQ文件中Reads ID号的命名规则 (14)4、FastQC测序质量评估工具中各个图表的解释 (15)五、高通量测序数据序列比对介绍 (19)1、序列比对的基本概念 (19)2、RNA-seq序列比对软件Tophat相关主要参数的设置和意义 (20)3、“.sam”格式高通量测序数据比对输出结果文件介绍 (21)一、高通量测序技术背景知识1、什么是测序测序是指通过专业的分析工具测定物种细胞内DNA或RNA碱基排序的过程。

根据方法的不同,目前测序主要分为Sanger法测序和高通量测序。

交通工具英语单词

交通工具英语单词

交通工具英语单词所有交通工具的英文单词bu公共汽车driver汽车司机coach(长途客运汽车),motorcoach,bu大客车ta某i,ta某icab 计程汽车,出租汽车underground,ubway地铁top停车站ta某idriver,cabdriver出租车司机conductor售票员、指挥ride乘车minimumfare(ofata某i)最低车费railway铁路(美作:railroad)track轨道train火车railwayytem,railwaynet-work铁路系统e某pretrain特别快车high-peedrailway高铁fattrain快车throughtrain直达快车toppingtrain,lowtrain慢车coach,carriage车厢leepingcar,leeper卧车diningcar,retaurantcar餐车berth,bunk铺位uptrain上行车downtrain下行车luggagevan(厢式货车),baggagecar行李车mailcar邮政车tation,railwaytation车站tationhall车站大厅bookingoffice,ticketoffice售票处ticket-collector,gateman收票员platform月台,站台platformticket站台票waitingroom候车室platformbridge天桥left-luggageoffice行李暂存处terminal,terminut:mn]终点站coach,paengertrain客车carattendant,trainattendant列车员guard,conductor列车长rack,baggagerack行李架regitration[redtren]登记change,tranfer换乘connection公铁交接处ticketinpector验票员tochangetrainat...在(某地)换车thetrainidueat...在(某时)到达tobreak(间断、间歇)thejourney中途下车civilaviation民用航空plane,aircraft,airplane飞机airliner班机jet,uperonicplane喷气机airliner,paengeraircraft客机medium-haulaircraft中程飞机long-rangeaircraft,long-haulaircraft远程飞机propeller-drivenaircraft螺旋桨飞机jet(aircraft)喷气飞机turbofanjet涡轮风扇飞机turboprop涡轮螺旋桨飞机turbojet涡轮喷气飞机byair,byplane乘飞机airline航空线paengercabin客舱touritcla普通舱,经济舱firtcla一等舱waitinglit登机票名单cutomformalitie报关单boardingcheck登机牌airport航空港airterminal航空集散站tarmac停机坪airhote,tewarde空中小姐,女乘务员teward乘务员aircraftcrew,aircrew机组,机务人员pilot驾驶员,机长takeoff起飞landing着陆toboardaplane,getintoaplane上飞机togetoffaplane,alightfromaplane下飞机non-topflightto飞往,直飞intranit运送中的airpocket气潭,气阱各种衣服的英文名称clothe衣服,服装wardrobe服装clothing服装habit个人依习惯.身份而着的服装ready-madeclothe,ready-to-wearclothe成衣garment外衣townclothe外衣double-breateduit双排扣外衣uit男外衣dre女服tailoreduit女式西服everydayclothe便服three-pieceuit三件套troueau嫁妆layette婴儿的全套服装uniform制服overall工装裤romper连背心的背带裤formaldre礼服tailcoat,morningcoat大礼服eveningdre夜礼服drecoat,tail燕尾服,礼服nighthirt男式晚礼服dinnerjacket无尾礼服(美作:tu某edo) fulldreuniform礼服制服frockcoat双排扣长礼服gown,robe礼袍tunic长袍overcoat男式大衣coat女大衣topcoat夹大衣furcoat皮大衣three-quartercoat中长大衣dutcoat风衣mantle,cloak斗篷poncho篷却(南美人的一种斗篷)heepkinjacket羊皮夹克pelie皮上衣jacket短外衣夹克anorak,dufflecoat带兜帽的夹克,带风帽的粗呢大衣hood风帽carf,muffler围巾hawl大披巾knittedhawl头巾,编织的头巾furtole毛皮长围巾muff皮手筒houecoat,dreinggown晨衣(美作:duter)hortdreinggown短晨衣bathrobe浴衣nightgown,nightdre女睡衣pyjama睡衣裤(美作:pajama)pocket衣袋lapel(上衣)翻领detachablecollar假领,活领wingcollar硬翻领,上浆翻领V-neckV型领leeve袖子cuff袖口buttonhole钮扣孔hirt衬衫bloue紧身女衫T-hirt短袖圆领衫,体恤衫vet汗衫(美作:underhirt) polohirt球衣middybloue水手衫weater运动衫hort-leevedweater短袖运动衫roll-neckweater高翻领运动衫round-neckweater圆领运动衫uit,outfit,enemble套服twinet两件套,运动衫裤jerkin猎装kimono和服ulter一种长而宽松的外套jellaba,djellaba,jelab带风帽的外衣cardigan开襟毛衣mac,mackintoh,raincoat橡胶雨衣trouer裤子jean牛仔裤horttrouer短裤knicker儿童灯笼短裤knickerbocker灯笼裤plufour高尔夫球裤,半长裤brace裤子背带(美作:upender)turnup裤角折边,挽脚breeche马裤belt裤带kirt裙子dividedkirt,plitkirt裙裤underkirt内衣underwear,underclothe内衣裤underpant,pant内衣裤(美作:hort)brief短内裤,三角裤pantie女短内裤knicker女半短内裤,男用灯笼短裤braiere,bra乳罩corelet紧身胸衣tay,coret束腰,胸衣waitcoat背心lip,petticoat衬裙girdle腰带tocking长袜upender袜带(美作:garter)upenderbelt吊袜腰带(美作:garterbelt) ock短袜tight,leotard紧身衣裤handkerchief手帕bathingtrunk游泳裤bathingcotume,wimuit,bathinguit游泳衣bikini比基尼泳衣apron围裙pinafore(带护胸)围裙hoe鞋ole鞋底heel鞋后跟lace鞋带moccain鹿皮鞋patentleatherhoe黑漆皮鞋boot靴子lipper便鞋andal凉鞋canvahoe,ropeoledhoe帆布鞋clog木拖鞋galoh,overhoe套鞋glove手套tie领带(美作:necktie)bowtie蝶形领带cravat领巾cap便帽hat带沿的帽子bowlerhat圆顶硬礼帽tophat高顶丝质礼帽Panamahat巴拿马草帽beret贝蕾帽peakedcap,capwithavior尖顶帽broad-brimmedtrawhat宽边草帽headdre头饰turban头巾naturalfabric天然纤维cotton棉ilk丝wool毛料linen麻yntheticfabric混合纤维acryl压克力polyeter伸缩尼龙nylon尼龙worted呢料cahmere羊毛pattern花样tartanplaid格子花(美作:tartan) dot圆点花tripe条纹flowerpattern花纹花样veil面纱coat大衣hirt衬衫trouer裤子bloue女式衬衫pant休闲裤jean牛仔裤weater毛衣各种颜色的英文说法palegoldenrod苍麒麟色palegreen苍绿色paleturquoie苍绿色palevioletred苍紫罗蓝色pany紫罗兰色papayawhip番木色peachpuff桃色peru秘鲁色pink粉红plum杨李色powderblue粉蓝色purple紫色red红色roybrown褐玫瑰红royalblue宝蓝色rubine宝石红addlebrown重褐色almon鲜肉色almonpink橙红色andybeige浅褐色andybrown沙褐色apphire宝石蓝carlet猩红色eagreen海绿色eahell海贝色hockingpink鲜粉红色ienna赭色ilver银白色kyblue天蓝色lateblue石蓝色lategray灰石色mokygray烟灰色now雪白色pringgreen春绿色teelblue钢蓝色tone石色tan茶色teal水鸭色thitle蓟色tomato番茄色turquoie青绿色turquoieblue翠蓝色violet紫色wheat浅黄色white白色whitemoke烟白色winered葡萄酒红yellow黄色yellowgreen黄绿色与英文颜色相对应的中文(tianhuichina) beige米色black黑色brown咖啡色cream雪白khaki卡其色grey灰色navy丈青色offwhite灰白色palegoldenrod苍麒麟色palegreen苍绿色paleturquoie苍绿色palevioletred苍紫罗蓝色pany紫罗兰色papayawhip番木色peachpuff桃色peru秘鲁色pink粉红plum杨李色powderblue粉蓝色purple紫色red红色roybrown褐玫瑰红royalblue宝蓝色rubine宝石红addlebrown重褐色almon鲜肉色almonpink橙红色andybeige浅褐色andybrown沙褐色apphire宝石蓝carlet猩红色eagreen海绿色eahell海贝色hockingpink鲜粉红色ienna赭色ilver银白色kyblue天蓝色lateblue石蓝色lategray灰石色mokygray烟灰色now雪白色pringgreen春绿色teelblue钢蓝色tone石色tan茶色teal水鸭色thitle蓟色tomato番茄色turquoie青绿色turquoieblue翠蓝色violet紫色wheat浅黄色white白色wheat土黄色whitemoke烟白色winered葡萄酒红yellow黄色yellowgreen黄绿色boat,hip船(paenger)liner邮轮,客轮ailingel]boat,ailinghip帆船(ocean)liner远洋班轮packetboat定期客船,班轮cabin船舱hovercraft气垫船lifebuoy救生圈lifeboat救生艇lifejacket救生衣berth,cabin,tateroom客舱firt-clatateroom(cabin)头等舱econd-clatateroom(cabin)二等舱teerage,third-cla三等舱teerage统舱gang-plank跳板croing横渡cruie游弋toembark,tohip乘船toland抵岸,toailatapeedof20knot,航速为20节totranhip换船todiembark上岸toboardahip;toembark;togoaboard上船todiembarkfromahip,togoahore,toland下船onboardahip,aboard 在船上totopoverat...中途在…停留。

bowtie和samtools在tophat中的使用情况介绍

bowtie和samtools在tophat中的使用情况介绍

Bowtie介绍1 Bowtie和一般的比对工具不一样,他适用于短reads比对到大的基因组上,尽管它也支持小的参考序列像amplicons和长达1024的reads。

Bowtie采用基因组索引和reads的数据集作为输入文件并输出比对的列表。

Bowtie设计思路是,1)短序列在基因组上至少有一处最适匹配,2)大部分的短序列的质量是比较高,3)短序列在基因组上最适匹配的位置最好只有一处。

这些标准基本上和RNA-seq, ChIP-seq以及其它一些正在兴起的测序技术或者再测序技术的要求一致。

2 Bowtie有两种比对策略:-n (默认使用-n)该参数要求比对时碱基错配数不超过N,这里N的取值范围是0-3,并且这个错配数是指种子序列上允许的碱基错配数。

在全部错配位置的phred 质量值的和可能会超过参数e。

对于没有质量值的fasta文件,质量值默认是40. -v比对不允许超过V个错配,V的取值范围是0-3.此时忽略质量值。

Strara在-n比对模式下,stratum是定义种子区域的错配数,结合-l参数使用。

在-v比对模式下,stratum定义在所有记录中的错配数,结合-m参数使用。

结果参数–k –a –m –M –best –strara3 Bowtie使用方法3.1 Usage:bowtie [options]* <ebwt> {-1 <m1> -2 <m2> | --12 <r> | <s>} [<hit>]<m1> Comma-separated list of files containing upstream mates (or thesequences themselves, if -c is set) paired with mates in <m2><m2> Comma-separated list of files containing downstream mates (or thesequences themselves if -c is set) paired with mates in <m1><r> Comma-separated list of files containing Crossbow-style reads. Can bea mixture of paired and unpaired. Specify "-" for stdin.<s> Comma-separated list of files containing unpaired reads, or thesequences themselves, if -c is set. Specify "-" for stdin.<hit> File to write hits to (default: stdout)3.2 输入参数:Input:-q query input files are FASTQ .fq/.fastq (default)输入fastq文件-f query input files are (multi-)FASTA .fa/.mfa输入fasta文件-r query input files are raw one-sequence-per-line输入raw文件-c query sequences given on cmd line (as <mates>, <singles>)-C reads and index are in colorspace-Q/--quals <file> QV file(s) corresponding to CSFASTA inputs; use with -f -C--Q1/--Q2 <file> same as -Q, but for mate files 1 and 2 respectively-s/--skip <int> skip the first <int> reads/pairs in the input-u/--qupto <int> stop after first <int> reads/pairs (excl. skipped reads)-5/--trim5 <int> trim <int> bases from 5' (left) end of reads-3/--trim3 <int> trim <int> bases from 3' (right) end of reads--phred33-quals input quals are Phred+33 (default)默认质量值--phred64-quals input quals are Phred+64 (same as --solexa1.3-quals)--solexa-quals input quals are from GA Pipeline ver. < 1.3--solexa1.3-quals input quals are from GA Pipeline ver. >= 1.3--integer-quals qualities are given as space-separated integers (not ASCII)Tophat调用bowtie使用的输入参数是-q 。

RNA-seq数据分析

RNA-Seq数据分析从原始的数据开始,进行reads回帖,到拼接转录本,计算表达量,分析差异表达,最后可视化分析结果。

TopHat是一个把reads回帖到基因组上的工具。

首先用Bowtie把reads 回帖到基因组上,然后通过拼接,我们就可以在基因组上看到一些reads堆叠起来的区域,称为consensus,这些consensus可能是一个真的外显子,也有可能是几个外显子拼在一起的,或者一些别的情况。

我们知道,经典的剪切位点一般都有GT和AG这样的序列标志,在consensus的边界和内部,TopHat会去找这样的剪切位点,并且得到他们可能的组合。

然后对于那些没有被Bowtie贴到基因组上的reads,TopHat会对他们建立索引,去和这些可能的剪切位点比对,这样就把跨越剪切位点的reads准确地贴到基因组上。

一些比较重要的命令行选项。

关于插入片段长度的选项:在RNA-Seq中,会把mRNA打断成小的片段,然后对片段长度进行iding筛选后拿去测序,如果选择的片段长度是300bp,两端各测序75bp的reads,中间的插入片段长度就应该设为150bp.下面是设置插入片段长度的标准差,如果选择的片段长度比较集中,这个值可以设置的小一些,反之应该设置得大一些。

-G选项是提供哦呢一个已有的注释文件。

如果你分析的基因组被注释得比较好了,最好能够提供这个文件,这时TopHat就会先把reads往转录组上贴,没有贴到转录组上的再往基因组上贴,最后把结果合并起来。

我们知道大多数的转录组都是比基因组小得多的,而且junction reads可以直接贴到转录本上,所以这样回帖的效力和准确度都可以得到提高。

标准的Illumina平台是不分链的,我们无法知道配对的reads哪个方向和转录本一致,哪个和转录本反向互补。

对于分链的数据,也有两种情况,在firststrand这种分链方法中,第二个read和转录本方向一致,第一个read和转录本反向互补,在另一种fr- secondstrand分链方法中,就刚好反过来了。

tophat2用法

TopHat2 是一个用于分析RNA-Seq 数据的常用软件工具。

它被用于检测基因表达水平、发现新的转录本和剪接变异等任务。

以下是TopHat2 的基本用法:1. 安装TopHat2:首先,你需要从TopHat2 的官方网站或适当的资源中下载和安装TopHat2 软件包。

按照官方提供的安装说明进行安装。

2. 准备参考基因组:在运行TopHat2 之前,你需要准备一个参考基因组序列和相应的注释文件。

参考基因组可以是已知的物种基因组序列,可以从公共数据库中下载或自行构建。

注释文件可以是GFF 格式或GTF 格式的文件,提供基因和转录本的注释信息。

3. 运行TopHat2:在命令行终端中输入以下命令来运行TopHat2:tophat2 [options] <index> <reads1.fastq> [reads2.fastq]其中,`<index>` 是指准备好的参考基因组索引文件的路径;`<reads1.fastq>` 和`[reads2.fastq]` 是输入的RNA-Seq 测序数据文件的路径,如果是单末端测序,只需提供`<reads1.fastq>`。

可选的参数可以用来设置比对的参数和其他选项,例如指定输出目录、选择比对器、指定线程数等。

你可以通过输入`tophat2 --help` 查看完整的参数列表和说明。

4. 解析结果:TopHat2 运行完成后,将生成BAM 格式的比对结果文件。

你可以使用其他工具(例如Samtools)来处理和解析BAM 文件,例如生成比对统计信息、计算基因表达水平或进行转录本分析等。

请注意,以上是TopHat2 的基本用法概述。

在实际使用中,你可能需要根据具体的研究目的和数据特点进行更详细的参数设置和分析流程。

建议参考TopHat2 的官方文档和相关资源以获取更多详细信息和使用示例。

转录组测序以及常用算法简介

转录组测序以及常用算法简介转录组测序,也被称为“全转录组鸟枪法测序”(WTSS),由于转录组测序的高覆盖率,它也被称为深度测序。

它主要利用新一代高通量测序技术,对物种或组织的RNA反转录而成的cDNA文库进行测序,并得到相关的RNA信息。

其研究对象为特定细胞在某一功能状态下所能转录出来的所有RNA的总和,包括mRNA和非编码RNA。

它是指用新一代高通量测序技术,对物种或组织的RNA反转录而成的cDNA文库进行测序,并得到相关的RNA信息。

转录组测序根据有无基因组参考序列分为:有参考基因组的转录组测序,和无参考基因组的de novo测序。

如果有基因组参考序列,可以把转录本映射回基因组,确定转录本位置、剪切情况等更为全面的遗传信息,而这些遗传信息可以广泛应用于生物学研究、医学研究、临床研究中。

虽然转录组测序和基因组测序的步骤大体相同,但是在文库制备和分析方法上却有很大的区别。

在生物信息学领域,序列比对作为识别DNA、RNA和蛋白质相似区域的有效手段,有助于我们更好地研究其结构、功能以及进化方向的关系。

下图简要说明了转录组测序的主要流程:首先将细胞中所有的反转录产物转化为cDNA文库,再将cDNA随机剪切为小DNA片段,并在两端加上接头(Adapter),所得序列通过比对(有参考基因组)或者从头组装de novo(无参考基因组),形成全基因组范围的转录谱。

图1 转录组测序流程图常用算法简介TopHat(/software/tophat/index.shtml)TopHat是Cole Trapnell等人于2009年发表在Bioinformatics上的基于Bowtie的转录组测序比对算法,是马里兰大学生物信息和计算机生物中心,以及加利福尼亚大学伯克利分校数学系和分子细胞生物学系以及哈佛大学的干细胞与再生生物学系联合开发的结果。

它通过超快的高通量短序列比对RNA序列来识别剪切位点。

图2 TopHat流程图TopHat首先先用Bowtie将RNA序列与整个参考基因组进行比对,找到匹配的序列,再用Maq合并匹配的序列,对外显子进行选择性的拼接。

管板英语词汇

1.database:资料库,数据库2.deviation:偏差,误差3.porosity:多孔性,孔隙度4.film thickness:膜厚度5.adhesion:粘附,粘合6.Tube plate 管板7.Std deviation=SDEV=standard deviation 标准偏差8.Histogram 直方图,柱状图9.Elcometer 干膜厚度计,膜厚测定仪10.Tophat 顶环,大礼帽11.With reference to=in reference to 关于,有关,根据12.Exposed surface 裸露面,暴露面13.Porosity 孔隙度,孔隙率,有孔性,多孔性,气孔14.Adhesion 粘附,附着,黏着15.Film thickness 膜厚度16.Tolerance 公差【生物,药】耐受性17.Found satisfactory 令人满意18.Coating method 涂层法19.Sandblasting 喷砂,喷砂处理,Vt.对…喷砂20.Spark test 火花测试21.QC. 质量控制,检验员,质检(员)g 防护套,桶板,落后,延迟,囚犯Vt.落后于,押往监狱,加上外套V i.滞后,缓缓而行,蹒跚,adj.最后的链接:管板是安装与固定冷却水管并将冷却水与蒸汽隔开的部件。

管板就是在钢板上钻出和管子外径一样的孔,将管子穿入焊住固定,起这样作用的一种配件。

主要用于化工容器,诸如列管式换热器、压力容器、锅炉、冷凝器、中央空调、蒸发器、海水淡化中,起支撑固定列管的作用,金属的材质使其不仅具有很强的刚性,而且具有很大的热传导性能。

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exon1
may be treated as intron exon2 exon3
exon1
exon3
TopHat
• a fast splice junction mapper for RNA-Seq reads. It aligns RNA-Seq reads to mammaliansized genomes using the ultra highthroughput short read aligner Bowtie, and then analyzes the mapping results to identify splice junctions between exons. • TopHat cuts each read into multiple segments whose size is 25b by default
• transcript has very low sequencing coverage • Junctions spanning very long introns or introns with non-canonical donor and acceptor sites (such as GC–AG introns) • single-island junctions in islands with a low normalized depth of coverage • Based on the mapping of Bowtie • multireads, • Missing extrons
• single-island junctions tend to fall within islands with high D • TopHat looks for junctions contained in islands with D≥300, this parameter can be changed by the user
• the pipeline maps all reads to the reference genome using Bowtie-- putative exons
• All reads that do not map to the genome are set aside as ‘initially unmapped reads’, or IUM reads
• when two segments from the same read (for reads of at least 45bp) are mapped at a certain distance on the same genomic sequence or when an internal segment fails to map - again suggesting that such reads are spanning multiple exons. With this approach, "GT-AG", "GC-AG" and "AT-AC" introns will be found ab iniions with RNA-Seq
• expressed sequence tags (ESTs) • RNA-Seq: 1. sample the mRNAwith fewer biases 2. generates far more data per experiment 3. a direct measure of the level of gene expression.
2k-mer
2k-mer
S-2k+1
• Neighboring islands are often spliced together in the transcriptome, so TopHat looks for ways to join these with an intron • for short reads (< 45bp) and with a small number of reads (<= 10 million). • only report alignments across "GT-AG" introns
• enumerates all canonical donor and acceptor sites within the island sequences
• considers all pairings of these sites that could form canonical (GT–AG) introns between neighboring islands
• Short read sequencing machines can currently produce reads 100bp or longer but many exons are shorter than this so they would be missed in the initial mapping • TopHat ----splitting all input reads into smaller segments which are then mapped independently • The segment alignments are put back together in a final step of the program to produce the endto-end read alignments.
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