单克隆抗体的制备流程
单克隆抗体制备的主要技术
单克隆抗体制备的主要技术单克隆抗体制备的主要技术_______________________________单克隆抗体（Monoclonal Antibody，简称mAb）是一种特殊的抗体，它们可以特异性地识别抗原，并且具有极高的特异性和稳定性。
它们已经在临床治疗和诊断方面发挥了重要作用，因此单克隆抗体制备技术已成为生物医学研究的重要手段。
一、单克隆抗体制备的基本原理单克隆抗体制备的基本原理是将一种特定的抗原分子和一种抗原特异性的抗体分子连接起来，从而产生一种特定的单克隆抗体。
这种联合物可以由一种具有抗原特异性的单克隆抗体分子或多克隆抗体分子所表示。
单克隆抗体制备的基本过程可分为四个步骤：选择抗原；制备抗原；选择和培养单克隆抗体产生细胞；制备和纯化单克隆抗体。
1、选择抗原在进行单克隆抗体制备时，首先必须选择一种特定的抗原，以便于产生特异性的单克隆抗体。
常用的抗原来源有蛋白质、多肽、核酸、糖蛋白和合成化学物质。
2、制备抗原根据所选用的抗原，可采用不同的方法对其进行制备。
例如，蛋白质通常可以采用蛋白质表达或免疫原制备方法；多肽可以采用合成方法或者从天然蛋白质中分离出来；核酸可以采用合成方法或者从样品中分离出来；糖蛋白可以采用表达方法或者从天然蛋白质中分离出来；而合成化学物质可以直接合成。
3、选择和培养单克隆抗体产生细胞在单克隆抗体制备中，必须使用能够产生特异性单克隆抗体的产生细胞。
目前常用的单克隆抗体产生细胞包括B细胞、T细胞和流感株融合细胞。
在这些产生细胞中，B细胞是最常用的，因为它能够快速、有效地产生大量的特异性单克隆抗体。
4、制备和纯化单克隆抗体当B细胞产生了足够数量的单克隆抗体之后，就可以采用不同的方法将它们制备和纯化出来。
常用的方法包括浸出法、寡核苷酸酶切法、蛋白酶浸出法、杂交法和Ion-exchange chromatography。
这些方法可以帮助我们得到高度纯化的单克隆抗体。
二、单克隆抗体制备的优势单克隆抗体制备是一种高效、可靠的方法，它可以用来高通量地产生大量特异性的单克隆抗体。
单克隆抗体制备流程图
单抗制备流程19７5年，Ｋｏｈｌer和Milｓtein发现将小鼠骨髓瘤细胞和绵羊红细胞免疫的小鼠脾细胞进行融合，形成的杂交细胞既可产生抗体，又可无限增殖，从而创立了单克隆抗体杂交瘤技术.这一技术上的突破不仅为医学与生物学基础研究开创了新纪元,也为临床疾病的诊、防、治提供了新的工具。
制备单克隆抗体包括动物免疫、细胞融合、选择杂交瘤、检测抗体、杂交瘤细胞的克隆化、冻存以及单克隆抗体的大量生产，要经过几个月的一系列实验步骤，下面按照制备单克隆抗体的流程顺序,逐一介绍其实验方法。
一、细胞融合前准备(一）免疫方案选择合适的免疫方案对于细胞融合杂交的成功，获得高质量的ＭcＡb至关重要。
一般要在融合前两个月左右确立免疫方案开始初次免疫，免疫方案应根据抗原的特性不同而定。
1.颗粒性抗原免疫性较强,不加佐剂就可获得很好的免疫效果。
下面以细胞性抗原为例的免疫方案:初次免疫1×107/0.5ml ｉp （腹腔内注射)↓ 2～3周后第二次免疫 1×10７/0。
５ml ip↓ 3周后加强免疫（融合前三天）１×１07/0。
5ml ip或iv（静脉内注射）↓取脾融合2。
可溶性抗原免疫原性弱，一般要加佐剂,常用佐剂：福氏完全佐剂,福氏不完全佐剂.要求抗原和佐剂等体积混合在一起，研磨成油包水的乳糜状,放一滴在水面上不易马上扩散呈小滴状表明已达到油包水的状态．商品化福氏完全佐剂在使用前须振摇，使沉淀的分枝杆菌充分混匀.初次免疫Ag 1~50μg 加福氏完全佐剂皮下多点注射│（一般0.８～１ml 0。
2mｌ/点）↓３周后第二次免疫剂量同上,加福氏不完全佐剂皮下或ｉp│(ip剂量不宜超过０．5ｍl)↓3周后第三次免疫剂量同上，不加佐剂,ｉp│(5～7天后采血测其效价，检测免疫效果）↓2~3周后加强免疫,剂量50～５０0μg为宜，ip或ｉv↓3天后取脾融合目前，用于可溶性抗原（特别是一些弱抗原）的免疫方案也不断有所更新,如①将可溶性抗原颗粒化或固相化,一方面增强了抗原的免疫原性,另一方面可降低抗原的使用量。
多克隆抗体单克隆抗体的制备流程
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单克隆抗体的制备流程
单克隆抗体的制备流程介绍在免疫学领域，单克隆抗体制备是一项重要的研究工作。
通过制备单克隆抗体，可以获得对特定抗原高度特异性的抗体，具有广泛的应用价值。
本文将详细介绍单克隆抗体的制备流程。
单克隆抗体制备的基本原理单克隆抗体的制备基于B细胞免疫学的原理。
B细胞是免疫系统中的一类淋巴细胞，具有抗体分泌的能力。
当机体暴露于外来抗原后，B细胞会被激活，并分化为两种类型的细胞：浆细胞和记忆B细胞。
浆细胞能够产生大量的抗体，但其分泌的抗体种类较为杂乱，无法特异性地与目标抗原结合。
而记忆B细胞则保存了对特定抗原的记忆，并可以长期存活。
单克隆抗体的制备即是利用记忆B细胞的特性，将其从免疫动物中分离出来，并通过细胞融合等技术手段获得对特定抗原高度特异的抗体克隆株。
单克隆抗体制备流程1. 免疫动物的免疫与抗原刺激•选择适当的免疫动物，如小鼠、大鼠、兔子等。
•将免疫动物注射所需抗原，通常包括纯化的蛋白质或抗原表位含有的多肽片段。
•观察免疫动物的免疫反应，收集其血样。
2. 浆细胞的分离与筛选•从免疫动物的血样中分离出含有浆细胞的细胞组分。
•利用细胞表面特定抗原分子，如CD138等，通过细胞分选技术选择性地富集浆细胞。
3. B细胞的分离与筛选•从免疫动物的脾脏等淋巴组织中分离出B细胞。
•利用B细胞特异的抗原表面标记物，如CD19等，进行细胞分选，选择性地获取B细胞群体。
4. B细胞与浆细胞的细胞融合•将B细胞和浆细胞以特定比例混合。
•利用细胞融合剂（如聚乙二醇）促使B细胞与浆细胞融合，形成受体细胞。
5. 杂交瘤细胞的筛选与生长•将融合后的受体细胞接种在富含肿瘤细胞的培养基中。
•利用培养基中肿瘤细胞的恶性增殖特性，筛选出杂交瘤细胞。
•杂交瘤细胞具有稳定的细胞倍体数和持久的增殖能力，适合大规模抗体的制备。
6. 单克隆抗体的筛选与鉴定•将杂交瘤细胞进行分离和延养，获得单个克隆细胞系。
•通过酶联免疫吸附试验（ELISA）、免疫组化等方法筛选出对目标抗原高度特异的单克隆细胞系。
制备单克隆抗体的流程
制备单克隆抗体的流程首先呢，得免疫动物。
就是要给动物注射特定的抗原哦。
这个抗原的选择可重要了呢！我觉得这一步得好好考虑清楚，要根据你想要得到的单克隆抗体的特性来选抗原。
你可别随便就选一个呀！当然啦，不同的动物对不同抗原的反应可能不太一样，这就需要你有点经验或者多做些小试验来确定啦。
接下来，就是取免疫后的动物细胞啦。
一般是取脾脏细胞，这一步要小心点哦！因为脾脏这个器官比较脆弱，要是不小心弄坏了，可能会影响后面的实验呢。
不过也不用太紧张，只要按照基本的操作规范来就好。
然后呢，要把取出来的细胞和骨髓瘤细胞融合。
怎么融合呢？这就用到一些特殊的试剂啦。
这一步呀，我觉得在操作的时候要特别细致。
根据我的经验，融合的条件得控制好，像温度啊、试剂的浓度啊这些，要是稍微有点偏差，可能融合的效果就不太理想了。
融合之后呢，就有了杂交瘤细胞啦。
这时候要进行筛选哦。
为什么要筛选呢？因为我们只想要得到那些成功融合的细胞呀！这一步可不能马虎，要把那些没融合好的细胞或者其他杂质细胞去掉。
这个筛选的方法有好几种呢，你可以根据自己实验室的条件和习惯来选择，我觉得这环节可以根据实际情况自行决定。
筛选出杂交瘤细胞后，就是克隆化培养啦。
这一步很关键呢！要让这些细胞不断地繁殖，得到足够多的细胞。
刚开始可能会觉得这个过程有点漫长，不过习惯了就好了。
在这个过程中，要注意细胞的生长状态，给它们提供合适的生长环境，像营养物质啊、温度啊、湿度这些都得照顾到。
最后呢，就是要检测单克隆抗体啦。
看看你得到的抗体是不是你想要的那种。
这一步要特别注意！小提示：别忘了最后一步哦！要是前面都做对了，最后却没检测好，那可就有点亏啦。
好啦，这就是制备单克隆抗体的大致流程啦。
当然啦，在实际操作过程中，可能会遇到各种各样的小问题，但只要多做几次，积累经验，就会越来越熟练的。
希望大家都能顺利制备出自己想要的单克隆抗体哦！。
单克隆抗体制备流程
03
单克隆抗体的生产
➢ 嵌合性单克隆抗体：用人的恒定区取代小鼠的恒定区，保留鼠单抗的可变区序列，形成一个人-鼠杂合的抗体。可 大幅降低异源抗体的免疫原性，却几乎保持亲本鼠单抗全部的特异性和亲和力。
➢ 人源化单克隆抗体：利用现有的已详细分析过的小鼠抗体，取其与抗原直接接触的抗体片段（互补决定区，CDR） 与人的抗体框架嫁接，经亲和力重塑，可维持特异性和大部分的亲和力，同时几乎去除免疫原性和毒副作用。
提取目的基因：在 数据库中查找目的 基因序列，设计引 物，PCR扩增目的 基因
构建载体：将扩 增的目的基因构 建到质粒上，转 入宿主中
诱导表达：通过化 学试剂诱导宿主大 量表达蛋白
蛋白纯化：用特定 的方式将目的蛋白 提取出来并纯化
2.2 动物免疫
• 2.2.1 动物免疫与效价测定
抗原乳化：将抗原 与佐剂混合，在乳 化器上进行乳化
其 B 细胞的细胞膜表面发现。 类型（按理化性质和生物学功能）：
➢ IgM：免疫应答中首先分泌的抗体。与抗原结合后启动补体的级联反应。它们还把入侵者相互连接起来，聚成一 堆便于巨噬细胞的吞噬；
➢ IgG：激活补体（辅助和补充特异性抗体），中和多种毒素。IgG持续的时间长，是唯一能在母亲妊娠期穿过胎盘保 护胎儿的抗体。他们还从乳腺分泌进入初乳，使新生儿得到保护；
克隆化培养：将融合 的细胞制成悬液移入 96孔板中，尽量保证 每孔只含一个细胞
复筛：ELISA+免疫 组化双重筛选，挑 选效价高、定位清 晰Байду номын сангаас克隆扩培
单克隆抗体技术操作流程
单克隆抗体技术操作流程一、免疫原制备免疫原是制备单克隆抗体的关键，它可以是蛋白质、多肽、病毒、细胞表面分子等。
首先需要获得纯度高的免疫原，并进行适当的处理，如去除杂质、进行修饰等。
接下来，将免疫原与适当的佐剂混合，以增强免疫原的免疫原性，如将免疫原与完全佐剂混合，然后注射到小鼠等实验动物体内。
二、免疫动物免疫将制备好的免疫原注射到实验动物体内，激发其免疫系统产生抗体。
通常情况下，需要多次免疫以增强免疫效果。
在每次免疫后，需要采集动物的血清样本，检测抗体的产生情况。
可以使用酶联免疫吸附试验（ELISA）等方法对血清中的抗体进行检测。
三、细胞融合与筛选当动物产生了满意的抗体效价后，需要从其脾脏等淋巴组织中获得抗体产生的细胞。
将脾脏细胞与骨髓瘤细胞（如NS-1细胞）进行融合，形成杂交瘤细胞。
融合后的细胞具有双亲细胞的优点，既能产生抗体，又具有无限增殖的能力。
为了筛选出产生特异性抗体的杂交瘤细胞，通常需要进行限稀稀释、酶标记法、细胞毒性试验等步骤。
其中，限稀稀释法是最常用的筛选方法，通过将杂交瘤细胞逐级稀释，最终得到单个细胞的克隆。
然后，将这些单克隆细胞扩大培养，并对其产生的抗体进行筛选和鉴定。
四、抗体纯化与鉴定通过培养和扩增单克隆细胞，可以得到大量的单克隆抗体。
接下来，需要对抗体进行纯化和鉴定。
纯化可以使用各种离子交换层析、凝胶过滤、亲和层析等技术，去除杂质，得到纯度较高的抗体。
鉴定抗体的特异性和亲和力是非常重要的步骤。
特异性可以通过免疫印迹、免疫组化等方法进行检测，判断抗体是否能够特异性地结合目标抗原。
亲和力可以通过表面等离子共振（SPR）等技术进行测定，评估抗体与抗原的结合强度。
五、应用和保存经过纯化和鉴定后，单克隆抗体可以应用于多个领域，如医学诊断、生物学研究、药物开发等。
在应用过程中，需要根据具体需求对抗体进行合适的标记和修饰，以提高其应用效果。
为了保存单克隆抗体，可以将其冻存于低温下，如-20°C或-80°C。
单克隆抗体制备流程
单克隆抗体制备流程一、免疫准备1）试剂：弗氏完全佐剂、弗氏不完全佐剂2）常用免疫原：纯化蛋白、融合蛋白、多肽。
3）耗材：1ml、2ml注射器，橡胶管，1.5ml EP管，刀片（或毛细玻璃管），酒精棉球。
4）免疫动物：小鼠（BALB/c,雌性6-8周）5）乳化器（或者手动推）二、免疫过程1）免疫前取血取血方式：酒精棉擦拭尾部后（酒精多了伤口挤压出来的血液易分散），用锋利的刀片在小鼠尾部靠近静脉处划开小口，如下图箭头所示方向从上往下挤压血管，血从伤口处流出后用枪吸取放入EP管中（30ul血够用）离心取上清放冰箱备用。
此方法取血最为简单易行，避免眼球取血毛细管扎瞎老鼠眼睛。
注意点：①避免切断老鼠尾巴②切口劲量靠近尾末端，方便挤压血管③伤口消毒酒精不要太多，不利于伤口血液凝固。
2）免疫原制备：一支2ml注射器吸抗原，另一支注射器吸等量体积佐剂，橡胶管连接两支注射器来回推几下混匀，然后放乳化器上乳化（为防止蛋白变性，乳化器上可放置冰袋），大约来回推1500次左右可乳化完全（滴一小滴到静水中若不扩散说明乳化完全）。
换上1ml注射器针头免疫小鼠（2ml注射器免疫不好控制，可将乳化液转移到1ml注射器中免疫，但这样会损失部分抗原）。
注：①每只老鼠免疫蛋白量10-100ug,初次免疫参考量50ug蛋白/只，加强免疫及融合前冲击免疫25ug蛋白/只。
初次免疫使用弗氏完全佐剂，加强免疫使用弗氏不完全佐剂，融合前冲击免疫不使用佐剂可用缓冲液如PBS等稀释抗原（如果需要）。
②免疫量100ul-300ul/每只小鼠。
③多点免疫，一针不要打太多。
3）免疫方式和免疫时间根据免疫原决定免疫方式，皮下免疫和腹腔注射较为常见(纯化蛋白、融合蛋白多肽)。
皮下注射免疫，免疫时间间隔为2周，第三次免疫一周后（8-10d）采血测效价，决定是继续加强免疫还是冲击免疫后做融合。
较好的效价应该在10W以上，附表1 免疫接种时间表天数操作佐剂免疫方式0 初次免疫CFA 皮下14 第二次免疫IFA 皮下28 第三次免疫IFA 皮下36-38 收集血清测效价＿＿42 第四次免疫（如果需要）IFA 皮下50 收集血清测效价＿＿52 融合前冲击免疫＿腹腔55 收获脾细胞和融合＿＿注：如果第四面免疫血清效价仍然达不到要求可以继续加强免疫，如果免疫超过6次仍然达不到要求免疫基本失败。
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单克隆抗体的制备流程
（一）动物的选择与免疫
1．动物的选择纯种BALB/C小鼠，较温顺，离窝的活动范围小，体弱，食量及排污较小，一般环境洁净的实验室均能饲养成活。
目前开展杂交瘤技术的实验室多选用纯种BALA/C小鼠。
2．免疫方案选择合适的免疫方案对于细胞融合杂交的成功，获得高质量的McAb 至关重要。
一般在融合前两个月左右根据确立免疫方案开始初次免疫，免疫方案应根据抗原的特性不同而定。
（1）可溶性抗原免疫原性较弱，一般要加佐剂，半抗原应先制备免疫原，再加佐
剂。
常用佐剂：福氏完全佐剂、福氏不完全佐剂。
初次免疫抗原1～50μg加福氏完全佐剂皮下多点注射或脾内注射（一般0.8～1ml,0.2ml/点）
↓3周后
第二次免疫剂量同上，加福氏不完全佐剂皮下或ip（腹腔内注射）（ip剂量不宜超过0.5ml）
↓3周后
第三次免疫剂量同一，不加佐剂，ip（5～7天后采血测其效价）
↓2～3周
加强免疫，剂量50～500μg为宜，ip或iv（静脉内注射）
↓3天后
取脾融合
目前，用于可溶性抗原（特别是一些弱抗原）的免疫方案也不断有所更新，如：①
将可溶性抗原颗粒化或固相化，一方面增强了抗原的免疫原性，另一方面可降低抗
原的使用量。
②改变抗原注入的途径，基础免疫可直接采用脾内注射。
③使用细胞
因子作为佐剂，提高机体的免疫应答水平，增强免疫细胞对抗原的反应性。
（2）颗粒抗原免疫性强，不加佐剂就可获得很好的免疫效果。
以细胞性抗原为例，免疫时要求抗原量为1～2×107个细胞。
初次免疫1×107/0.5ml ip
↓2～3周后
第二次免疫1×107/0.5ml ip
↓3周后
加强免疫（融合前三天）1×107/0.5ml ip或iv
↓
取脾融合
（二）细胞融合
1．细胞融合前准备
（1）骨髓瘤细胞系的选择：
骨髓瘤细胞应和免疫动物属于同一品系，这样杂交融合率高，也便于接种杂交瘤在同一品系小鼠腹腔内产生大量McAb。
（2）饲养细胞：在组织培养中，单个或少数分散的细胞不易生长繁殖，若加入其它活细胞，则可促进这些细胞生长繁殖，所加入的这种细胞数被称为饲养细胞。
在制备McAb 的过程中，许多环节需要加饲养细胞，如在杂交瘤细胞筛选、克隆化和扩大培养过程中，加入饲养细胞是十分必要的。
常用的饲养细胞有：小鼠腹腔巨噬细胞（较为常用）、小鼠脾脏细胞或胸腺细胞。
也有人用小鼠成纤维细胞系3T3经放射线照射后作为饲养细胞。
饲养细胞的量为一般为2×104或105细胞/孔。
2．细胞融合的步骤
（1）制备饲养细胞层：一般选用小鼠腹腔巨噬细胞。
与免疫小鼠相同品系的小鼠，常用BALB/C小鼠，6～10周
↓
拉颈处死，浸泡在75%酒精内，3～5min
↓
用无菌剪刀剪开皮肤，暴露腹膜
↓
用无菌注射器注入5～6ml预冷的培养液（严禁刺破肠管）
↓
反复冲洗，吸出冲洗液
↓
冲洗液放入10ml离心管，1200rpm/分离5～6min
↓
用20%小牛血清（NCS）或胎牛血清（FCS）的培养液混悬，调整细胞数至1×105/ml ↓
加入96孔板，100μl/孔
↓
放入37℃CO2孵箱培养
（2）制备免疫脾细胞
最后一次加强免疫3天后小鼠拉颈处死
↓
无菌取脾脏，培养液洗一次
↓
脾脏研碎，过细胞筛
↓
离心，细胞用培养液洗2次
↓
计数
↓
取108脾淋巴细胞悬液备用
（3）制备骨髓瘤细胞
取对数生长骨髓瘤细胞离心
↓
用无血清培养液洗2次
↓
计数，取得×107细胞备用
（4）融合
①将骨髓瘤细胞与脾细胞按1：10或1：5的比例混合在一起，在50ml离心管中用无血清不完全培养液洗1次，离心，1200rpm,8min;弃上清，用吸管吸净残留液体，以免影响聚乙二醇（PEG）浓度。
轻轻弹击离心管底，使细胞沉淀略松动。
②90s内加入37℃预温的1ml 45%PEG（分子量4000）溶液，边加边轻微摇动。
37℃水浴作用90s。
③加37℃预温的不完全培养液以终止PEG作用，每隔2min分别加入1ml、2ml、3ml、4ml、5ml和6ml。
④离心，800rpm, 6min。
⑤充上清，用含20%小牛血清HAT选择培养液重悬。
⑥将上述细胞，加到已有饲养细胞层的96孔板内，每孔加100μl。
一般一个免疫脾脏可接种4块96孔板。
⑦将培养板置37℃、5%CO2培养箱中培养。
（三）选择杂交瘤细胞及抗体检测
1．HAT选择杂交瘤细胞脾细胞和骨髓瘤细胞经PEG处理后，形成多种细胞的混合体，只有脾细胞与骨髓细胞形成的杂交瘤细胞才有意义。
在HAT选择培养液中培养时，由于骨髓瘤细胞缺乏胸苷激酶或次黄嘌呤鸟嘌呤核糖转移酶，故不能生长繁殖，而杂交瘤细胞具有上述两种酶，在HA T选择培养液可以生长繁殖。
在用HAT选择培养1～2天内，将有大量瘤细胞死亡，3～4天后瘤细胞消失，杂交细胞形成小集落，HAT选择培养液维持7～10天后应换用HT培养液，再维持2周，改用一般培养液。
在上述选择培养期间，杂交瘤细胞布满孔底1/10面积时，即可开始检测特异性抗体，筛选出所需要的杂交瘤细胞系。
在选择培养期间，一般每2～3天换一半培养液。
2．抗体的检测检测抗体的方法应根据抗原的性质、抗体的类型不同，选择不同的筛选方法，一般以快速、简便、特异、敏感的方法为原则。
常用的方法有：（1）放射免疫测定（RIA）可用于可溶性抗原、细胞McAb的检测。
（2）酶联免疫吸附试验（ELISA）可用于可溶性抗原、细胞和病毒等McAb的检测。
（3）免疫荧光试验适合于细胞表面抗原的McAb的检测。
（4）其它如间接血凝试验、细胞毒性试验、旋转粘附双层吸附试验等。
（四）杂交瘤的克隆化
杂交瘤克隆化一般是指将抗体阳性孔进行克隆化。
因为经过HAT筛选后的杂交瘤克隆
不能保证一个孔内只有一个克隆。
在实际工作中，可能会有数个甚至更多的克隆，可能包括抗体分泌细胞、抗体非分泌细胞、所需要的抗体（特异性抗体）分泌细胞和其它无关抗体的分泌细胞。
要想将这些细胞彼此分开就需要克隆化。
克隆化的原则是，对于检测抗体阳性的杂交克隆尽早进行克隆化，否则抗体分泌的细胞会被抗体非分泌的细胞所抑制，因为抗体非分泌细胞的生长速度比抗体分泌的细胞生长速度快，二者竞争的结果会使抗体分泌的细胞丢失。
即使克隆化过的杂交瘤细胞也需要定期的再克隆，以防止杂交瘤细胞的突变或染色体丢失，从而丧失产生抗体的能力。
克隆化的方法很多，最常用的是有限稀释法
1．有限稀释法克隆
（1）克隆前1天制备饲养细胞层（同细胞融合）。
（2）将要克隆的杂交瘤细胞从培养孔内轻轻吹干，计数。
（3）调整细胞为3～10个细胞/ml。
（4）取头天准备的饲养细胞层的细胞培养板，每孔加入稀释细胞100μl。
孵育于37℃、5%CO2孵箱中。
（5）在第7天换液，以后每2～3天换液1次。
（6）8～9天可见细胞克隆形成，及时检测抗体活性。
（7）将阳性孔的细胞移至24孔板中扩大培养。
（8）每个克隆应尽快冻存。
（五）杂交瘤细胞的冻存与复苏
1．杂交瘤细胞的冻存
细胞冻存液：50%小牛血清；40%不完全培养液；10%DMSO（二甲基亚砜）。
冻存液最好预冷，操作动作轻柔、迅速。
冻存时从室温可立即降至0℃后放入-70℃超低温冰箱，次日转入液氮中。
2．细胞复苏方法将玻璃安瓿自液氮中小心取出，放37℃水浴中，在1min内使冻存的细胞解冻，将细胞用完全培养液洗涤两次，然后移入头天已制备好的饲养层细胞的培养瓶内，置37℃、5%CO2孵箱中培养，当细胞形成集落时，检测抗体活性。
（六）单克隆抗体的大量生产
大量生产单克隆抗体的方法主要有两种：
（1）体外使用旋转培养管大量培养杂交瘤细胞，从一清液中获取单克隆抗体。
但此方法产量低，一般培养液内抗体含量为10～60μg/ml,如果大量生产，费用较高。
（2）体内接种杂交瘤细胞，制备腹水或血清。
①实体瘤法：对数生长期的杂交瘤细胞按1～3×107/ml接种于小鼠背部皮下，每处注射
0.2ml,共2～4点。
待肿瘤达到一定大小后（一般10～20天）则可采血，从血清中获得单克隆抗体的含量可达到1～10mg/ml。
但采血量有限。
②腹水的制备：常规是先腹腔注射0.5ml Pristane (降植烷)或液体石蜡于BALB/C鼠，1～2周后腹腔注射1×106个杂交瘤细胞，接种细胞7～10天后可产生腹水。