紫杉醇的性质及色谱分析方法

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紫杉醇含量测定

紫杉醇含量测定

微球载药率和包埋率的测定紫杉醇的定量分析采用高效液相色谱法。

色谱柱采用Inersil®ODS-3 C18 柱,流动相为乙腈/水(60/40),流速为1mL/min,进样量为100μL,紫外检测波长为227 nm。

采用紫杉醇标准品绘制标准曲线:精密称取紫杉醇标准品10mg,溶于100mL的乙腈/水混合溶液(60/40)中,配制成100μg/mL紫杉醇储备液,精密量取5、4、3、2、1、0.5 和 0.25 mL 储备液于5mL容量瓶中定容,分别得到浓度为 100、80、60、40、20、10 和5μg/mL 的标准液,采用上述液相色谱条件进行测定得标准曲线。

微球中的紫杉醇含量的测定:精确称取10mg载药微球溶于5mL乙腈中,每个样品做3个平行样,长时间超声后,置室温下过夜降解,漩涡3min,8000rpm下离心5min后取上清液600μL,加400μL超纯水完全混匀,使乙腈与水的体积比为60/40,采用上述色谱条件进行HPLC测定,将测定的峰面积代入标准曲线即可求得样品中紫杉醇浓度,进而计算得到微球的载药率(Loading Efficency,LE)和包埋率(Encapsalution Efficency,EE)。

载药微球体外释放行为测定精密称取5mg载药微球置于8mL玻璃小瓶中,加入5mL磷酸盐缓冲溶液(PBS,pH=7.4,其中含0.1%吐温80和0.1%吐温20)。

释放实验每个样品做三个平行样。

将其置于37℃恒温空气浴振荡器中振摇释放药物,振摇频率为40rpm。

特定时间段,将样品取出在8000 rpm 下离心5min。

将微球用新的磷酸盐缓冲液重新悬浮进行进一步的药物释放,上清液中加入2mL二氯甲烷溶液对PTX进行过夜萃取,当二氯甲烷溶液挥发干燥后加入1mL乙腈/水溶液(60/40)溶解紫杉醇,用上述HPLC方法测定释放的药物量。

2.2.1检测波长的选择紫杉醇适量,加甲醇溶解,制成每1ml中约含10陀的溶液。

沃特世最新PFP色谱柱适用于USP方法紫杉醇

沃特世最新PFP色谱柱适用于USP方法紫杉醇

沃特世最新PFP色谱柱适用于USP方法紫杉醇紫杉醇(Paclitaxel)最初是从红豆杉科红豆杉属(Taxus)植物的树皮中提取得到的二萜类化合物,具有独特抗癌活性,曾被美国国立癌症研究所认为是近15~20年来肿瘤化疗的最重要的进展。

紫杉醇注射液功效主治卵巢癌和乳腺癌及NSCLC的一线和二线治疗。

头颈癌、食管癌,精原细胞瘤,复发非何金氏淋巴瘤等。

USP对紫杉醇[1]以及紫杉醇注射液[2]的含量测定系统方法(系统方法参见色谱<621>通则*):流动相:水-乙腈 11:9(即 55:45),如需要时可适当调整比例。

洗脱:等度,1.5mL/min[1]色谱柱:5um, 4.6[1] 或 4.0[2] mmID x 250mmL,L43(即:PFP,全氟苯基)检测:UV227nm要求:拖尾因子0.7-1.3范围内[1];紫杉醇峰的保留时间在6.0-10.0min范围内[2] *USP Chromatography <621>允许调整范围如下而仍具有法规依从性:- 色谱柱粒径可减小(但减小程度最多为50%)- 柱长度可调整±70%- 流速可调整±50%使用沃特世最新产品XSelect HSS PFP色谱柱(3.5um, 4.6x150mm, PN186005862),流速1mL/min,可对混标得到如下分离效果,满足对紫杉醇定量分析的要求。

沃特世公司也提供更多规格XSelect HSS PFP色谱柱以满足不同应用与需要。

适当调整流动相,如降低乙腈浓度至42%v/v,即可获得更完全可靠的紫杉醇分离度如下:关于沃特世XSelect HSS PFP柱产品:- 是目前市场上稳定性最好的、最具重现性的PFP(全氟苯基)柱- 基于沃特世HSS(高强度硅胶)颗粒,有完全对等的ACQUITY UPLC亚二微米柱,可供未来无忧升级至UPLC技术平台- 独特的PFP(全氟苯基)键合相对碱性化合物和平面状芳香族化合物具有独特选择性[1] USP34, 3798, Assay of Paclitaxel Monograph.[2] USP34, 3799, Assay of Paclitaxel InjectionMonograph.。

真菌发酵法生物合成抗癌药物紫杉醇的研究

真菌发酵法生物合成抗癌药物紫杉醇的研究

真菌发酵法生物合成抗癌药物紫杉醇的研究真菌发酵法生物合成抗癌药物紫杉醇的研究一、引言癌症是当今世界严重威胁人类健康的重大疾病之一,寻找有效的抗癌药物一直是医学和生物学领域的研究热点。

紫杉醇作为一种重要的抗癌药物,具有独特的作用机制和显著的临床疗效。

传统的紫杉醇提取方法主要依赖于从红豆杉属植物中提取,然而红豆杉生长缓慢,资源有限,这限制了紫杉醇的大量生产。

因此,探索新的紫杉醇生产方法具有重要的现实意义。

真菌发酵法生物合成紫杉醇作为一种有潜力的替代方法,受到了广泛的关注。

二、紫杉醇的结构与作用机制1. 紫杉醇的化学结构紫杉醇是一种复杂的二萜类化合物,其分子结构包含多个手性中心和独特的官能团。

它的基本结构由紫杉烷环和侧链组成,紫杉烷环是一个刚性的四环结构,侧链则连接在紫杉烷环的特定位置上。

这种复杂的结构赋予了紫杉醇独特的物理和化学性质。

2. 紫杉醇的抗癌作用机制紫杉醇主要通过促进微管蛋白聚合,抑制微管解聚,从而稳定微管结构来发挥抗癌作用。

在细胞分裂过程中,微管是构成纺锤体的重要成分,紫杉醇稳定微管的作用会导致纺锤体无法正常形成,进而阻断细胞的有丝分裂过程,使癌细胞停止增殖并最终死亡。

此外,紫杉醇还可能通过其他机制影响癌细胞的生物学行为,如调节细胞信号传导通路、诱导细胞凋亡等。

三、真菌发酵法生物合成紫杉醇的研究进展1. 产紫杉醇真菌的筛选与鉴定研究人员从自然界中广泛筛选能够产生紫杉醇的真菌。

通过对不同环境样本(如土壤、植物组织等)进行分离培养,然后利用高效液相色谱(HPLC)等分析方法检测培养物中是否含有紫杉醇。

经过大量的筛选工作,已经发现了一些能够产生紫杉醇的真菌菌株,如紫杉霉属(Taxomyces)、拟盘多毛孢属(Pestalotiopsis)等。

对这些产紫杉醇真菌进行准确的分类鉴定,有助于深入了解它们的生物学特性和代谢途径。

2. 真菌发酵条件的优化为了提高真菌发酵生产紫杉醇的产量,需要对发酵条件进行优化。

红豆杉中紫杉醇的提取及检测方法简介

红豆杉中紫杉醇的提取及检测方法简介

红豆杉中紫杉醇的提取及检测方法简介曾欢2009090165摘要:紫杉醇(paclitaxel,商品名Taxol)是当今一种重要的天然抗癌新药。

最早是在红豆杉植物中分离出来的。

属双萜类化合物,为白色结晶粉末、微溶于水,易溶于三氯甲烷、丙酮等有机溶剂。

其分子式:C47H51NO14,相对分子质量为854。

目前紫杉醇生产方法主要有:化学合成法、人工栽培与半合成法、植物细胞悬浮培养法、微生物发酵法。

本文简要论述几种提取紫杉醇的常见方法及检测方法。

关键词:紫杉醇提取检测紫杉醇是一种具有独特作用机理的抗癌药,能有效地治疗晚期乳腺癌、卵巢癌和其他癌症,被认为是癌症治疗的重大进展之一[2]。

1962 年,植物学家A. Ba rclay 将采自美国西海岸的短叶红豆杉( T a x us b rev i f ol i a) 的树皮经NCI 交给Resea rch Triangle 研究所的化学家M. E. Wall 和M. C. Wani 进行提取。

同年对该药品的抗癌活性筛选显示,它有很强的KB 细胞毒和抗小鼠肉瘤、白血病的活性。

但是,直到1969 年,这种活性成分─紫杉醇才被分离出来。

因其含量甚低(0. 02 %) ,遂经数年积累,直到1971 年,才由其氢谱和甲醇解衍生物的单晶X 射线衍射分析确定了结构[3 ] 。

尽管紫杉醇抗癌活性显著,但由于当时供样困难、筛选体系受限制以及原料中含量不稳定等原因,以致NCI 简单的认为紫杉醇仅仅是与秋水仙碱、长春花碱等一样的另一种微管的解聚剂而将其研究“冷置“起来。

直到1979 年P. B. Schiff 等发现其独特的抗癌机制后,紫杉醇才受到学者们的广泛重视。

目前有关紫杉醇及其类似物的研究资料颇为丰富,而且更有增多的趋势。

紫杉醇属于有丝分裂抑制剂,它的独特机制在于可以诱导和促进微管蛋白聚合,促进微管装配及阻止微管的生理解聚,由此抑制癌细胞纺锤体的形成, 阻止有丝分裂的完成, 使其停留在G2 期和M 期直至死亡, 从而起到抗癌的作用。

高效液相色谱法测定紫杉醇的含量

高效液相色谱法测定紫杉醇的含量
2 23 4 .4
平均 回收 率 ( %)
1 .4 011
RS D
05 .2

1 14 9 .
1 14 9 . 2 0. 4 8
1 o9 0 .8
1 06 0 .4

2 0. 4 8 2 O_ 4 8 2 46 8 .
2 542 4 . 2 36 4 .9 2 63 8 .9 2 9O 8 .2 2 75 8 .3
溶解 并稀 释至 刻度 ,配 置成浓 度 为 20 gml 0 u/ 的储 配
液 。用溶剂 将储 备液 配 置成 1 、 5 5 、 5 O u / 0 2 、 0 7 、l O gml 的系 列浓度 按 “ .”项 下 的色 谱条 件进 行操作 ,以浓 21 度 作 为横 坐标 ( ,峰面积 为纵 坐标( ) X) Y ,绘 制标 准
1 仪器 与试 剂 戴安 p 6 80液相 色谱 仪 ;试 药 :紫杉 醇对 照 品 ( 中
检所 1 1 3 —0 2 2 ,紫 杉醇 注射 液 ( 15 4 2 0 0 ) 市售 ) ;乙腈 为 HL P C级 , 甲醇 、冰醋酸 为分析 纯 ( 南京化 学 试剂有
限公司 ) ,水 为重蒸 水 。
柱 比较 灵敏 、准确 、回收 率 高 ,适 用于 紫杉 醇 的质 量控 制 。
【 关铰词 】 高效液相 色谱法;紫杉醇;含量;五 氟代苯基 固定相
紫杉 醇 系 由红豆杉 属植 物树 皮和 树 叶提取 并 开发 的一种 天然 抗癌 新药 【,特 别对 卵巢癌 、乳腺 癌及 黑 1 】 色 素瘤有 很好 的疗 效 [,为 了控制 紫杉 醇注 射 液 的质 2 】 量 ,笔者 建议 采用 此方 法测 定紫 杉醇 的含 量 ,该方 法 准确 ,灵 敏 ,重现 性好 ,完 全满 足质 量控 制要 求 。 用溶 剂 ( 醋酸 02 加 甲醇 至 1 0 m1 适 量 , 摇 , 冰 . ml 00 ) 振

121013-紫杉醇的检测方法

121013-紫杉醇的检测方法

药典方法:本品,精密称定,加乙腈溶解并定量稀释制成每lml中约含0. 5mg的溶液,作为供试品溶液;精密量取适量,分别用乙腈定量稀释制成每lml中约含2.5иg、 0.5иg;^的溶液,作为对照溶液(1)与对照溶液(2);另取紫杉醇、三杉尖宁碱(杂质I )与7-表-10-去乙酰基紫杉醇(杂质 II)对照品适量,加乙腈溶解并稀释制成每lml中约含紫杉醇0. 5mg 、杂质1与杂质U均为2. 5Mg的溶液,作为系统适用性试验溶液。

照高效液相色谱法(附录V D)试验,用十八烷基硅垸键合硅胶为填充剂,以乙腈-水为流动相进行梯度洗脱,初始流动相为乙腈-水(40 = 60),待紫杉醇主峰洗脱完毕后(约35分钟),立即按下表进行线性梯度洗脱,流速为每分钟1. 5ml ,柱温为30°C,检测波长为227rm!。

取系统适用性试验溶液与对照溶液(2)各10(J注人液相色谱仪,紫杉醇峰与杂质H峰之间的分离度应大干1. 2,对照溶液(2)信噪比应不小于10。

精密量取供试品溶液与对照溶液(])各,分别注人液相色谱仪,记录色谱图。

供试品溶液色谱图中如有杂质峰,杂质I (杂质I峰面积乘以校正因子1.26)与其他单个杂质峰面积均不得大于对照溶液(1)主峰面积(0. 5%),各杂质峰面的和不得大于对照溶液(1)主峰面积的3倍(1.5%)。

期刊:分析测试学报名称:反相HPLC法分析红豆杉树皮和树叶中紫杉醇及其类似物含量的研究方法:期刊:现代中药研究与实践2010年第24卷第4期名称:高效液相色谱法测定南方红豆杉中紫杉醇的含量方法:期刊:林业科学研究名称:高效液相色谱-质谱联用技术测定毛榛中的紫杉醇含量方法:期刊:色谱名称:苯基-硅胶色谱介质的合成及其在紫杉醇提纯中的应用方法:期刊:Chinese Journal of Experimental Traditional Medical Formulae名称:HPLC法测定加拿大紫杉中紫杉醇的含量方法:期刊:食品与生物科技学报名称:D4020大孔树脂提纯发酵液中紫杉醇的研究方法:期刊:Journal of Chinese Medicinal Materials名称:HPLC测定比较曼地亚红豆杉和南方红豆杉不同部位的紫杉醇含量方法:期刊:中国职业药师‘质量控制名称:HPLC法测定南方红豆杉种子中紫杉醇的含量方法:期刊:天津医科大学报名称:HPLC法测定紫杉醇血药浓度条件的筛选方法:期刊:河南科学名称:RP-HPLC 法测定新乡种植红豆杉树皮中的紫杉醇方法:期刊:生物技术通报名称:SPE-HPLC法快速检测发酵液中紫杉醇的含量方法:期刊:中南药学名称:高效液相色谱法测定不同生长年限南方红豆杉中紫杉醇的含量方法:期刊:时珍国医国药名称:云南红豆杉枝叶中紫杉醇和三尖杉宁碱含量的测定方法:期刊:生物工程学报名称:正相和反相柱层析组合分离纯化紫杉醇方法:期刊:哈尔滨商业学报名称:正相色谱法分离纯化紫杉醇工艺过程的研究方法:期刊:解放军药学学报名称:中性氧化铝固相萃取-HPLC法测定紫杉醇含量方法:期刊:中国药科大学学报名称:紫杉醇高产菌发酵产物的分离、纯化和鉴定方法:。

紫杉醇

紫杉醇

紫杉醇1.紫杉醇的发现和历史2.紫杉醇的化学结构3.紫杉醇的提取分离方法4.紫杉醇的合成研究5.常见的几种紫杉醇药物6.个人感想1.紫杉醇的发现和历史紫杉醇是红豆杉科红豆杉属植物的次生代谢产物,这类植物主要分布于北半球的温带至亚热带地区,全世界共有11种。

最初,紫杉醇是从短叶紫杉(Taxus brevi folia)的树皮中分离获得的,在它的抗癌作用被发现之前,林木工人通常把它砍了当柴烧或者用来做篱笆。

早在1856年德国科学家Lucas·H开始对Taxus baccata Linn(浆果红豆杉)进行化学研究,并从其叶片中提取出粉状碱性成分Taxine,但在随后的100多年里没有多大的研究进展。

直到20世纪60年代,随着光谱技术的飞速发展,科学家才开始对红豆杉属的植物有了比较深入的研究。

20世纪初,人们发现美国西部山区的一个有一片红豆杉林的小城镇中的居民很长寿,他们的寿命最短的在95岁以上,绝大多数的人寿命超过100岁,而且百岁老人随处可见。

科学家到那里考察发现当地居民除了两个与其他地方居民不同的生活习惯外,其余的都差不多。

一是当地居民喜欢采摘山林中的红豆杉树叶泡茶喝;二是经常去红豆杉林中散步或运动。

这种现象引起了科学家对红豆杉的研究兴趣,他们从红豆杉树皮中提取出一种对许多类型的肿瘤细胞有细胞毒作用的提取物——紫杉醇。

后来研究表明其化学结构为紫杉烷类中的一种四环二萜类化合物【1】。

1962年8月,在美国农业部任职的植物学家Barclay响应由美国国立癌症研究所(National Cancer Institute ,NCI)发起的植物提取物抗癌活性成分筛选研究,收集了7Kg太平洋紫杉的树皮寄回了NCI。

这些样品后来经NCI北卡罗莱纳州“研究三角学院”(Research Triangle Institute ,RTI)分馏实验室的美国化学家Wani博士和Wall博士。

他们分离提取得到紫杉醇的粗提物,在筛选实验中他们发现紫杉醇粗提物对离体培养的鼠肿瘤细胞有很高的抑制活性,有强烈的KB细胞毒作用及抗小鼠肉瘤和抗白血病活性。

紫杉醇HPLC分析方法按USP要求

紫杉醇HPLC分析方法按USP要求

紫杉醇HPLC分析检验方法测试方法1:(适用于天然提取的紫杉醇)1、试剂:1.1乙腈1.2甲醇1.3磷酸1.4乙酸1.5纯化水2、溶液:2.1稀释剂:甲醇-乙酸混合溶液(1000:1 V/V)。

2.2系统适用性溶液:精密称取紫杉醇对照品和10-去乙酰-7-差向紫杉醇对照品,用稀释剂溶解,浓度约为(0.1+0.1)mg/ml。

2.3标准溶液:标准溶液A:精密称取紫杉醇对照品,用稀释剂溶解,可采用逐步稀释的方式,浓度约为0.1mg/ml。

标准溶液B:精密称取紫杉醇对照品,用稀释剂溶解,可采用逐步稀释的方式,浓度约为0.01mg/ml。

2.4供试液:供试液①:取约5mg紫杉醇样品,准确称重,置于5ml的容量瓶中,用稀释剂溶解、定容,混合。

供试液②:取约5mg紫杉醇样品,准确称重,置于50ml的容量瓶中,用稀释剂溶解、定容,混合。

3、流动相:乙腈-甲醇-0.1%磷酸的水(45:5:50 V/V),需混合、脱气及过滤。

4、色谱条件:4.1检测波长:227nm4.2色谱柱: 4.6- mm×25.0-cm,5-μm ,L43填料(PFP,五氟苯基)。

4.3流速:1.2ml/min4.4柱温: 20℃~25℃4.5 运行时间:约30min5、要求:5.1系统适用性试验:5.1.1精密度:取系统适用性溶液进样10μl至液相色谱系统,记录色谱图,连续5次进样紫杉醇峰面积测量值的相对标准偏差(RSD%)≤2%;5.1.2分离度:紫杉醇与10-去乙酰-7-差向紫杉醇的分离度(Rs)≥1.5;5.1.3拖尾因子:紫杉醇峰的拖尾因子≤1.5。

5.2标准溶液测试:5.2.1重复进样标准溶液A的紫杉醇峰面积测量值的相对标准偏差≤2%。

5.2.2重复进样标准溶液B的紫杉醇峰面积测量值的相对标准偏差≤15%。

5.2.3检测极限:相关物质的检测定量限为0.005%。

5.2.4相关物质的相对保留时间(RRT)和相对响应因子(f):6、相关物质分析:将标准溶液B和供试液①分别进样10μl至液相色谱系统,记录色谱图,并按色谱图上各相关物质峰面积以外标百分比方法计算相关物质含量(以无水、无溶剂干基计)。

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紫杉醇的性质及色谱分析方法摘要紫杉醇是从紫杉(Taxus brevifolia)树皮中所提得,是红豆杉属植物中的一种复杂的次生代谢产物,也是目前所了解的惟一一种可以促进微管聚合和稳定已聚合微管的药物。

已成为目前全球销售量排名第一的抗肿瘤药物。

综述紫杉醇的发现历史、来源、性质及色谱分析方法。

AbstractPaclitaxel is extracted from Taxus brevifolia bark,whichnot only is one of the plants of the genus Taxus chinensis complex secondary metabolites, also is the only kind of antitumor drugs that can promote microtubule polymerization and stable microtubule polymerization till now. It has become the top sales in the worldwide . Review of Paclitaxel history, origin, nature and chromatographic methods.关键词:发现历史;来源;性质;紫杉醇;色谱Keyword:Discovery history; Source; Properties; Paclitaxel; The chromatographic1.紫杉醇简介:1.1发现历史1963年美国化学家瓦尼(M.C. Wani)和沃尔(Monre E. Wall)首次从一种生长在美国西部大森林中称谓太平洋杉(Pacific Yew)树皮和木材中分离到了紫杉醇的粗提物。

在筛选实验中,Wani和 Wall发现紫杉醇粗提物对离体培养的鼠肿瘤细胞有很高活性,并开始分离这种活性成份。

由于该活性成份在植物中含量极低,直到1971年,他们才同杜克(Duke)大学的化学教授姆克法尔(Andre T. McPhail)合作,通过x-射线分析确定了该活性成份的化学结构——一种四环二萜化合物,并把它命名为紫杉醇(taxol)。

1.2来源由于野生红豆杉资源有限且紫杉醇含量极低,限制了紫杉醇制药业的发展,全世界紫杉醇的需求量约为4000公斤/年,而总产量只有到300-400公斤/年。

所以,从天然的红豆杉中提取紫杉醇的方法远远不能满足人们对紫杉醇日益增长的需要。

因此,采用各种手段积极寻求紫杉醇新药源生产途径,扩大紫杉醇原料供应能力,已成为紫杉醇产业发展的重点研究方向之一, 目前已取得了一定的进展, 其途径可归结为以下几种:1.2.2天然红豆杉植物提取紫杉醇的最直接来源是对天然植物红豆杉属种树皮和叶片中中提取。

但由于红豆杉数量极少,自身繁殖率低,生长缓慢,且紫杉醇的含量又极低。

在这种情况下,要获得足够的紫杉醇用于临床研究和基础研究,单纯靠从天然植物中提取必将给红豆杉属植物的在自然界中的生存带来极大的威胁。

但由于从红豆杉中提取紫杉醇的工艺已经成熟且工业化。

因此,人们可利用人工栽培的方法来解决天然资源不足的问题。

规模化、集约化营造红豆杉人工原料林, 是目前解决紫杉醇原料短缺的最现实、最快捷解决紫杉醇原料紧缺的方法。

近年来,我国红豆杉人工种植发展迅速,云南农科院高山经济植物所繁育了5万株,成活率达94.3%,湖南绥宁县林业局繁殖幼苗3000多株,现已移栽大田,黑龙江中医药大学人工育苗也获成功。

人工植物栽培的成功,为紫杉醇的获取开辟了广阔的前景[1]。

据不完全统计, 我国现有红豆杉种植企业140多家, 现已在云南、福建、湖南、四川、黑龙江等地拥有一定规模的红豆杉种植基地, 种植面积近15万亩。

红豆杉人工种植对保护野生资源和满足紫杉醇制药工业的发展发挥了积极的作用。

1.2.3化学合成1.2.3.1 紫杉醇的全合成1994年初,Holto和Nicolaou几乎同时宣告紫杉醇的全合成获得成功[2-3]。

此后紫杉醇全合成又在不同的研究小组获得成功[4-5],但由于紫杉醇是分子结构复杂的化合物,全合成途径都包括25-40步化学反应,合成路线极其复杂,反应条件极难控制,所用化学试剂昂贵且收率低, 产品成本极高、效率低,目前尚未进入产业化。

1.2.3.2 紫杉醇的半合成半合成法指的是将红豆杉属植物中所含的紫杉醇类似物经过某些化学反应,将其转化为紫杉醇。

目前紫杉醇半合成法是为从天然红豆杉针叶中提取分离10-去乙酰基巴卡亭III(10-deacetylbaccatin III)或巴卡亭III (baccatin III)原料, 通过选择性保护7位羟基, 然后再酰化10位羟基,得到7位保护的巴卡亭III, 然后与侧链缩合,最后去掉保护基团得到紫杉醇。

由于10-去乙酰基巴卡亭III和巴卡亭III在红豆杉属植物枝叶中含量较高,而且红豆杉枝叶量大,再生能力强,为紫杉醇半合成提供了丰富的原料。

现在紫杉醇的半合成方法已比较成熟,国外紫杉醇生产的主要企业如美国Bristol-Myers Squibb Co.,现已利用半合成法进行工业化生产紫杉醇。

目前,半合成紫杉醇被认为是除人工种植外,扩大紫杉醇来源的有效途径。

半合成法可以更大限度地利用植物资源, 但与直接提取紫杉醇的办法并无本质上区别,需要消耗大量红豆杉树木,仍然不能从根本上解决植物资源的匮乏问题。

1.2.4 植物组织细胞培养利用植物细胞培养法生产紫杉醇,是各种研究方向中十分有吸引力的一个方向,细胞培养能够连续均匀生产,受外界条件影响不大,而且可以在反应器中大规模培养,易于提高产量和进行产物的提取纯化。

美国农业部于1991年就批准了Christen和 Gibson 等用细胞培养法生产紫杉醇及其类似物的专利[6-7]。

1994年ESCAgenetics(CA, USA)也宣布用细胞培养的方法生产紫杉醇,用细胞培养法所得产物紫杉醇含量为树皮的2-5倍[8],但这个工作的细节没有报道。

中国的甘烦远等发现云南红豆杉细胞在发酵罐中生长速率达到12 g/L,紫杉醇含量为0.119%,约为成年树树皮中含量的12倍,为栽培植株的40倍[9],但未见实际应用的报道,短期内成功应用的可能性较小。

目前,虽然红豆杉细胞培养生产紫杉醇取得了很大的进展,紫杉醇生物合成途径基本清楚,细胞的生长和紫杉醇的产量已基本得到解决,有的已经得到生物反应器放大阶段,如美国一公司现在已经完成4000 L的培养技术,正在进行20000 L规模的工业放大研究[10],但植物细胞遗传与生理的不稳定性、细胞间的不一致性使得在培养工程中高产细胞系不能实现高产率,而且易发生遗传变异产生其它代谢产物。

另外,植物细胞培养技术较复杂,对反应器要求较高,也阻碍了通过细胞培养工业化生产紫杉醇的实现[11]。

1.2.5微生物发酵法1993 年 Stierle 与 Stroble 首次报道了从太平洋紫杉树中分离出 200 多个内生真菌,对培养产物运用了 TLC、HPLC、ELISA、MS 和同位素标记等多种手段分析研究,发现一个真菌新种在培养 3 周后具有稳定地产生紫杉醇的能力,被命名为Taxomyces andreanae,紫杉醇含量为 24-50 ng/L[12], 随后一系列产紫杉醇内生真菌被分离到[13-19],为人们展示了一个可能生产紫杉醇的诱人的新途径。

除已经报道的内生真菌外,加拿大的科研人员还从加拿大红豆杉(Taxuscanadensis)的针叶中分离出一株产紫杉醇的内生细菌 Brawinia taxi,其紫杉醇的产量为 200-1000 ng/L,该菌株已经被保存在 ATCC (American Type Culture Collection),遗憾的是目前分离到的内生真菌紫杉醇产量都不高,尚达不到产业化的要求。

但是真菌的遗传操作比植物更简单,通过发酵条件和应用现代生物技术,可望提高紫杉醇的产量,降低紫杉醇的价格来满足市场的需求。

所以筛选产高产紫杉醇内生真菌,用微生物发酵的方法生产紫杉醇,是目前解决药源问题的有效途径之一。

1.2.6 从山榛等植物中提取紫杉醇榛子为桦木科(Bet ulaceae)、榛属(Coryl us linn), 坚果树种,世界有15个种, 广泛分布在亚洲、欧洲、北美洲的温带地区。

被学术界确认的有9个种,即美洲榛(C.America)、欧洲榛(C. avellana)、土耳其榛(C. colurna)等。

榛子原产于我国,我国北方主要有两个种,即平榛(C. heterophylla Fisch)和毛榛(C. mandshurica Maxim),其分布范围广,遍布黄河、秦岭以北地区。

1998年美国俄勒岗大学化学系Angela Hoffman博士等人发现从欧洲榛子中可以提取紫杉醇,她们发现至少从12个榛子树中提取到紫杉醇,特别是Gasaway, Halls Giant, Lewis and Willamette这四个品种紫杉醇含量较高[20-25]。

2006年意大利科学家Federica Bestoso等人也从欧洲榛子的愈伤组织提取到紫杉醇且在愈伤组织中紫杉醇水平与红豆杉相当[26]。

尽管山榛中的紫杉醇含量只有红豆杉的1/10,但是山榛是被子植物,世界上被子植物的种类比裸子植物要大数百倍。

另外,山榛生长十分迅速、资源极其丰富,且不怕任何病虫害,更可贵的是山榛不仅枝叶、树皮中能够分离出了紫杉烷和紫杉醇等活性成分,它的果实-山榛子壳中也含有紫杉醇。

他们的发现为紫杉醇药用新资源开发带来了新的希望,既可降低紫杉醇的价格,又有助于保护红豆杉这一珍稀植物资源。

1999年美国科学家Roy Stahlhut等人从东非罗汉松(Podocarpaceae)中提取到紫杉醇,但含量较低(0.54 mg/kg 干重)[27]。

张长河等对可能与红豆杉有共同的起源的三尖杉(Cephalotaxus fortunei Hook.F.)的当年生幼茎和未成熟假种皮诱导出愈伤组织,HPLC分析发现含有紫杉醇和合成紫杉醇的前体10-去乙酰基巴卡亭III等物质[28]。

周荣汉等从白豆杉(Pseudotaxus chienii)中分离到了紫杉醇和短叶醇的存在[29]。

这些发现可望为扩大紫杉醇原料来源的途径之一。

如果上述几种紫杉醇技术开发的成功,将可大大缓解人们对红豆杉的依赖,避免人为造成红豆杉属植物的物种的生存危机,有效降低紫杉醇应用成本,为临床的广泛应用提供可能。

1.2.7 基因工程随着基因工程技术的飞速发展和广泛应用,利用现代生物技术提高植物或微生物中紫杉醇及其前体含量的研究成为近年来科研工作者研究的一个热点。

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