植物组织培养 论文
植物组织培养论文
植物激素浓度和灭菌消毒时间对植物组织培养状况影响的探究一.植物祖师培养综述1.1概念植物的组织培养广义又叫离体培养，指从植物体分离出符合需要的组织、器官或细胞、原生质体等，通过无菌操作，在人工控制条件下进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他产品的技术。
狭义组织培养是指用植物各部分组织，如形成层、薄壁组织、叶肉组织、胚乳等进行培养获得再生植株，也指在培养过程中从各器官上产生愈伤组织，愈伤组织再经过再分化形成再生植物。
1.2 研究历史19世纪30年代，德国植物学家施莱登和德国动物学家施旺创立了细胞学说，根据这一学说，如果给细胞提供和生物体内一样的条件，每个细胞都应该能够独立生活；1902年，德国植物学家哈伯兰特细胞全能性的理论是植物组培的理论基础。
1958年，一个振奋人心的消息从美国传向世界各地，美国植物学家斯蒂瓦特等人，用胡萝卜韧皮部的细胞进行培养，终于得到了完整植株，并且这一植株能够开花结果，证实了哈伯兰特在五十多年前关于细胞全能的预言。
近几十年来植物组织培养技术已经发展成为一项新兴无性繁殖技术。
1.3技术原理植物组织培养即植物无菌培养技术，又称离体培养，是根据植物细胞具有全能性的理论，利用植物体离体的器官(如根、茎、叶、茎尖、花、果实等）、组织（如形成层、表皮、皮层、髓部细胞、胚乳等）或细胞（如大孢子、小孢子、体细胞等）以及原生质体,在无菌和适宜的人工培养基及温度等人工条件下，能诱导出愈伤组织、不定芽、不定根，最后形成完整的植株。
1.4培养特点1.4.1培养条件可以人为控制组培采用的植物材料完全是在人为提供的培养基和小气候环境条件下进行生长，摆脱了大自然中四季、昼夜的变化以及灾害性气候的不利影响，且条件均一，对植物生长极为有利，便于稳定地进行周年培养生产。
1.4.2生长周期短，繁殖率高组培是由于人为控制培养条件，根据不同植物不同部位的不同要求而提供不同的培养条件，因此生长较快。
另外，植株也比较小，往往20-30天为一个周期。
植物组织培养管理论文
植物组织培养管理论文植物组织培养是一项重要的现代技术，它为植物繁殖和研究提供了有力的工具。
由于植物组织培养需要精密的操作和复杂的培养环境，因此，对于植物组织培养的管理不仅是一项必要的工作，更是保证培养质量的关键。
本文将讨论植物组织培养管理的重要性，以及如何实现高质量的组织培养。
一、植物组织培养管理的重要性植物组织培养管理对于保证培养品质和提高培养产量具有不可忽视的作用。
以下是植物组织培养管理的重要性：1. 保证培养质量植物组织培养中，培养基的成分和植物材料的来源、处理等诸多方面都会影响培养结果。
因此，对于培养环境的控制和维护非常重要。
包括消毒、环境温度和湿度等因素的调节，这些都是对培养质量的保障。
2. 提高培养产量植物组织培养超过单个细胞、组织或器官的生长和再生，目的是获得大量生产植株。
因此，对于培养条件的调控、管理以及后续的营养和生长阶段的管理，都至关重要。
3. 减少质量差异植物体细胞都是由相同的DNA贡献。
但在培养过程中，对于成分的变化和环境变化容易对植物细胞产生影响，这就导致培养品质差异的出现，包括营养、生长速度、形态等。
因此，对于培养条件、营养供应、组织均匀性等方面进行管理，减少培养品质差异非常必要。
二、植物组织培养管理的方式植物组织培养管理可以通过以下三个方面实现：1. 管理培养环境关于培养环境管理，保持适宜的温度、湿度以及灯光条件都非常重要。
对于培养室、培养器具等设备一定要保持清洁，并且防止因人员操作不当造成外界细菌侵入。
2. 管理培养营养对于营养的供应，最好是根据培养需要，在营养物浓度和种类的选择等方面进行一定的优化，以达到最佳外界环境与获得良好的成长和营养条件的肥料。
3. 管理培养过程关于培养过程管理，包括时间，以及培养物种类、数量、容器管理，以及后期的一些细节管理方面，保证培养物的生长平稳和高效率。
另外，定期更换营养液、检查培养物表面、观察生长情况等措施也是为了试验的成功实验，保证试验结果的准确性。
植物组织培养 论文
植物组织培养技术【摘要】植物的组织培养是根据植物细胞具有全能性这个理论，近几十年来发展起来的一项无性繁殖的新技术。
我分別从植物组织的培养方法、植物组织培养步骤、植物组织培养的优点来学习植物组织培养技术。
【关键词】植物组织培养、离体培养、试管苗、培养基植物的组织培养是根据植物细胞具有全能性这个理论，近几十年来发展起来的一项无性繁殖的新技术。
植物的组织培养广义又叫离体培养，指从植物体分离出符合需要的组织.器官或细胞，原生质体等，通过无菌操作，在人工控制条件下进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他产品的技术。
一、植物组织的培养方法1、非试管微组织快繁非试管微组织快繁技术是将外植体（一般要求带一叶一芽）放置在室内外普通沙子培养基上进行培养，利用植物腋芽自然倍增达到快速繁殖的目的。
一般植物7～15天可以生长出根系。
此技术投资低，操作环节少。
2、试管组织培养试管组织培养是将外植体（即离体组织、器官或细胞）放置在试管等器皿中在无菌的条件下进行组织培养获得试管苗。
二、植物组织培养步骤1、培养材料的采集要根据培养目的适当选取材料，选择原则：易于诱导、带菌少。
要选取植物组织内部无菌的材料。
这一方面要从健壮的植株上取材料，不要取有伤口的或有病虫的材料。
另一方面要在晴天，最好是中午或下午取材料，决不要在雨天、阴天或露水未干时取材料。
因为健壮的植株和晴天光合呼吸旺盛的组织，有自身消毒作用，这种组织一般是无菌的。
培养材料的消毒从外界或室内选取的植物材料，都不同程度地带有各种微生物。
这些污染源一旦带人培养基，便会造成培养基污染。
因此，植物材料必须经严格的表面灭菌处理，再经无菌操作手续接到培养基上。
（一）试剂：乙醇、吲哚乙酸（ IAA）或 2 ，4 – D （生长素类似物）、氯化汞（升汞）或次氯酸钠、6- 苄基氨基腺嘌呤（ 6-BA ）MS 培养基、0.1 mol/L NaOH与 0.1 mol/L HCl（二）配制培养基（ 1 ）愈伤组织诱导培养基： MS 培养基（蔗糖含量为 10 g/L ， 2,4 – D 含量为 2 mg/L ，琼脂 10 g/L ）。
植物组织培养论文
植物组织培养的发展及其应用刘兆书、王梦瑶、王瑞雄、尹树明、左通通（石河子大学，生命科学学院，新疆石河子，832000）摘要:植物组织培养作为一种有效的技术手段已被广泛应用于生产实践的各个领域。
本文从植物组织培养技术的发展，总结了植物组织培养的发展历史及发展现状，重点介绍了组织培养技术在育种和脱毒快繁方面的应用，为今后植物组织培养的进一步发展和应用打下基础。
关键词：植物组织培养；发展；快繁；脱毒；育种德国的植物生理学家Haberlandt提出细胞全能性理论以后，在无数科学家的努力下，植物组织培养经过近百年的发展历程后，该技术日趋完善和成熟，得到了广泛的应用。
随着科学技术的不断发展，研究领域的不断拓展与深入，植物组织培养技术的应用也越发的广泛。
育种方面的应用非常广泛，已经形成了一门理论和技术；在工厂化育苗方面，产生巨大的经济及社会价值;同时植物组织培养技术的发展也促进设施农业、食品、工业、医药业等领域发展，现就植物组织培养技术的发展和应用作简单总结。
1、植物组织培养的发展1.1植物组织培养的发展历史1838-1839年，德国的植物学家T. Schleidon和动物学家T. Schwann提出细胞学说。
1902年德国的植物学家Haberlandt提出:高等植物的器官和组织，具有植物细胞全能性。
1904年Harming在无机盐和蔗糖溶液中对萝卜和辣根菜的胚进行培养，发现离体胚可以发育成熟，并提前萌发成小苗。
1937年White 发现了B族维生素，建立了第一个由已知化合物组成的培养基，该培养基被定名为White培养基。
同时法国的Gautherer和Nobecourt也发现了B族维生素的重要性，三个人被誉为植物组织培养学科的奠基人。
1952年Morel和Martin通过茎尖分生组织的离体培养，从已受病毒侵染的大丽花中首次获得脱毒植株。
1953-1954年Muir利用震荡培养和机械方法获得了万寿菊和烟草的单细胞，实施了看护培养，使单细胞培养获得了成功。
植物组织培养课程论文
植物组织培养题目：烟草的再生姓名：专业班级：学号：指导老师：烟草的再生前言：植物组织培养是指用无菌方法使植物体的离体器官、组织和细胞在人为提供的条件下生长和发育的所有培养技术的总称，也称之为离体培养或试管培养。
植物体的每一个具有完整细胞核的细胞都具有该物种全部遗传的物质，在一定条件下具有发育成完整植物体的潜在能力，这就是植物细胞的全能性，这也是植物组织培养的理论基础。
组织培养材料可分为①器官：根、茎尖、叶、花、果实等；②组织：形成层、表皮、皮层、髓部细胞、胚乳等；③细胞：大孢子、小孢子、体细胞；④原生质体。
因此按照组织培养的材料可将植物组织培养分为（1）组织、器官或细胞培养：指利用生物体各部分组织、器官或细胞进行离体培养，使之形成愈伤组织或完整有机体的技术。
（2）原生质体培样：指将微生物或植物细胞游离成原生质体，在适宜培养条件下，依据细胞全能性使其再生细胞壁，并进行细胞分裂分化，形成完整个体的技术。
一个细胞一旦沿着某一条特定的途径分化发育后，一般不会再回复到未分化状态，但在组织培养条件下，可能发生脱分化和再分化。
脱分化是将已分化的不分裂的静止细胞，放在培养基上培养后，细胞重新进入分裂状态。
一个成熟的细胞转变为分生状态的过程。
再分化是脱分化的组织或细胞在一定的培养条件下可转变为各种不同的细胞类型，形成完整植株的过程。
植物组织培养具有①培养条件可以人为控制；②生长周期短，繁殖率高；③管理方便，利于工厂化生产和自动化控制等特点。
植物组织培养过程为：一、实验目的：1.了解学习组织培养的基本操作过程。
2.实践母液的配制、培养基的配制。
二、实验材料试剂和实验仪器1.实验材料：烟草的叶片2.实验试剂：MS培养基母液所需的各类药品，蔗糖，琼脂，1mol/L的NaOH，70%酒精，升汞溶液，蒸馏水，无菌水3.实验仪器：无菌操作台，锥形瓶，镊子，解剖刀，酒精灯，电子天平，烧杯，高压蒸汽灭菌锅，刀片，培养皿，量筒，培养箱，牛皮纸，玻璃棒，漏斗，灭菌后的滤纸，棉线，电炉，PH试纸，冰箱，塑料瓶，移液管，洗耳球三、实验步骤（一）MS培养基的配制1.大量元素母液的配制（1）大量元素母液配制的方法无机盐中大量元素母液按照培养基配方的用量，用感量为0.01g的天平，分别用50mL烧杯称量，用蒸馏水溶解。
植物组织培养论文-植物学论文-生物学论文
植物组织培养论文-植物学论文-生物学论文——文章均为WORD文档，下载后可直接编辑使用亦可打印——植物组织培养是指用植物各部分组织，如形成层、薄壁组织、叶肉组织、胚乳等进行培养获得再生植株，本篇文章就向大家介绍几篇植物组织培养论文，希望对大家探讨植物组织培养时有所帮助。
植物组织培养论文参考阅读10篇之第一篇：浅谈林木植物组织培养技术中存在的问题及对策摘要：该文从褐化、玻璃化、生根困难、组培成本较高等方面分析了林木植物组织培养技术存在的主要问题，介绍了植物无糖组培技术，以期提升林木植物组织培养技术水平，为该领域的研究提供参考。
关键词：林木植物；组织培养技术；问题；对策；自细胞全能性理论于1902年被提出以来，人们对植物组织培养技术的研究已有100多年的历史，并且研究成果在不断增加，对细胞全能性理论的利用也越来越广泛。
长期以来，对于植物组织培养主要是从外植体方面进行相关的研究，同时也对完善培养基和提高增殖率方面加强了研究。
我国在研究植物组织培养的方面较早，最初在组培技术方面的利用是对欧洲赤松进行胚胎培养，20世纪70年代以后，一些研究成果已处于世界领先水平。
近年来，我国开始利用小型化的培养材料和试管苗，为在小空间培育出大量植物幼苗提供了条件。
组织培养最显著的特点是快,以1个茎尖或少量的叶片为基数，可以在组织培养下增殖10000~100000株/年。
目前，相较于花卉、草本植物，移植存活率更低、生长周期更长的林木植物在组培研究中受到褐化、玻璃化、生根困难、组培成本较高等因素的影响，需要通过相关研究解决这些难题。
1 林木植物组织培养存在的主要问题1.1 褐化褐化又被称为酚污染，出现这一情况不仅会影响培养组织的再分化，也会影响外植体脱分化，对林木植物的组织培养具有重要的影响。
褐化包括酶促褐化和非酶促褐化2个方面，通常酶促褐化是常见的病变。
在正常生长发育的植物组织细胞中，多酚类物质不会与多酚氧化酶接触，所以不存在褐化的问题。
菊花组织培养论文
菊花组织培养论文引言在植物组织培养领域，菊花（Chrysanthemum morifolium）是一个重要的研究对象。
菊花具有丰富的花色和形态的变异性，广泛用作观赏植物。
然而，菊花的繁殖方式繁琐且时间较长，限制了大规模繁衍菊花。
组织培养技术的引入为菊花的快速繁殖和改良提供了解决方案。
本论文旨在研究菊花的组织培养方法，以及组织培养对菊花生长和形态的影响。
材料与方法1. 实验材料•菊花离体组织：从菊花茎、根和叶中分离获得。
•培养基：含有适当激素和营养元素的MS培养基。
2. 组织培养方法1.材料消毒：将菊花组织浸泡在含有0.1%次氯酸钠的消毒液中，连续搅拌10分钟。
2.组织分离：使用无菌工具将经消毒的菊花茎、根和叶切割成小块。
3.转接至培养基：将切割好的菊花组织转移到含有MS培养基的培养皿中。
4.培养条件：在光照强度为2500 lux、温度为25℃的无菌培养室中培养。
3. 观察和测量指标•菊花组织是否存活：观察培养基中组织的颜色和形态的变化。
•菊花组织生长指标：测量组织的增长速度和鲜重。
结果1. 组织存活情况经过观察，菊花茎和叶的存活率高，颜色鲜绿，软硬适中；而菊花根的存活率较低，颜色较暗，质地较硬。
根据这些观察结果，我们选择茎和叶作为菊花组织培养的优选材料。
2. 菊花组织生长情况菊花组织在MS培养基中呈现良好的生长趋势。
初始培养后的菊花茎和叶组织在第4周开始发芽，生长速度逐渐加快，到第8周达到最大鲜重。
然后，鲜重稳定，在第12周后稍有下降。
菊花根组织的生长速度较慢，到第8周才开始发芽，但鲜重相对稳定，在第12周后也有轻微下降。
讨论通过本研究，我们成功地建立了菊花的组织培养方法，为菊花的快速繁殖提供了解决方案。
从实验结果可以看出，菊花茎和叶组织在培养基中的生长情况较好，适合用于大规模繁衍菊花。
而菊花根组织的生长速度较慢，不适合用于菊花的组织培养。
这些结果对于菊花的组织培养技术的进一步优化和应用具有重要的参考价值。
植物组织培养论文
植物组织培养论文第一篇论文植物组织培养班级：生物技术112组别：第六组姓名：蔡静波摘要：近些年来玉米组织培养技术发展十分迅速，玉米组织培养技术作为一种新型的科研技术，越来越受到人们的重视。
浅谈植物组织培养技术的基本原理、意义及面临的一些问题，综述了玉米子房和幼胚系统的组织培养研究、玉米茎尖和根尖离体培养研究和玉米花粉和花药培养研究。
关键词：组织培养；原理；玉米1 植物组织培养1.1 植物组织培养的意义植物组织培养首先不仅可以生产大量的优良无性系，而且可以获得人类需要的多种代谢物质；其次，细胞融合可打破种属间的界限，克服远缘杂交不亲和性障碍，在植物新品种的培育和种性的改良中发挥着巨大的作用；再次，还可获得单倍体、三倍体及其它多倍体、非整倍体；最后，组织培养的植物细胞也成为在细胞水平上分析研究的理想材料。
1.2 植物组织培养的基本原理植物组织细胞培养的依据是植物细胞的全能性和再生作用。
1902 年，德国著名植物学家G Haberlanclt 根据细胞学理论，大胆地提出了高等植物的器官和组织可以不断分割，直到单个细胞，即植物体细胞，在适当的条件下，具有不断分裂和繁殖，发育成完整植株的潜力的观点。
织培养选用的基础培养基有MT 、MS 、SH 、White 、N6等，由于不同种类植物所需要的生长条件有所不同，有的培养基要作一些改良，有的要选择专用培养基，但是一般采用较多的是MS 。
组织培养采用固体培养基的比较多，但固体培养基只有在植物的周围的营养物和激素被吸收，而大多数的物质还残留在培养基里，如果这些培养基还能被利用，对工厂化生产的减少成本方面有很大的帮助。
杜勤仁等在无外源激素条件下，研究液体和固体培养基对黄瓜子叶培养器官分化的影响，结果用液体培养基直接诱导花芽率更高，分化高峰期出现的时间也更早。
这也说明了液体培养基对外植体的生长更有利，只是固体培养基在操作上更方便，被较广泛应用。
胚性愈伤组织比非胚性愈伤组织具有更强的生长能力、胚胎发生能力和相对较高的同工酶活性，而形成胚状体再分化出植株比形成愈伤组织再形成植株要更容易。
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植物组织培养技术
【摘要】植物的组织培养是根据植物细胞具有全能性这个理论，近几十年来发展起来的一项无性繁殖的新技术。
我分別从植物组织的培养方法、
植物组织培养步骤、植物组织培养的优点来学习植物组织培养技
术。
【关键词】植物组织培养、离体培养、试管苗、培养基
植物的组织培养是根据植物细胞具有全能性这个理论，近几十年来发展起来的一项无性繁殖的新技术。
植物的组织培养广义又叫离体培养，指从植物体分离出符合需要的组织.器官或细胞，原生质体等，通过无菌操作，在人工控制条件下进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他产品的技术。
一、植物组织的培养方法
1、非试管微组织快繁
非试管微组织快繁技术是将外植体（一般要求带一叶一芽）放置在室内外普通沙子培养基上进行培养，利用植物腋芽自然倍增达到快速繁殖的目的。
一般植物7～15天可以生长出根系。
此技术投资低，操作环节少。
2、试管组织培养
试管组织培养是将外植体（即离体组织、器官或细胞）放置在试管等器皿中在无菌的条件下进行组织培养获得试管苗。
二、植物组织培养步骤
1、培养材料的采集
要根据培养目的适当选取材料，选择原则：易于诱导、带菌少。
要选取植物组织内部无菌的材料。
这一方面要从健壮的植株上取材料，不要取有伤口的或有病虫的材料。
另一方面要在晴天，最好是中午或下午取材料，决不要在雨天、阴天或露水未干时取材料。
因为健壮的植株和晴天光合呼吸旺盛的组织，有自身消毒作用，这种组织一般是无菌的。
培养材料的消毒
从外界或室内选取的植物材料，都不同程度地带有各种微生物。
这些污染源一旦带人培养基，便会造成培养基污染。
因此，植物材料必须经严格的表面灭菌处理，再经无菌操作手续接到培养基上。
（一）试剂：乙醇、吲哚乙酸（ IAA）或 2 ，4 – D （生长素类似物）、氯化汞（升汞）或次氯酸钠、6- 苄基氨基腺嘌呤（ 6-BA ）MS 培养基、0.1 mol/L NaOH与 0.1 mol/L HCl
（二）配制培养基
（ 1 ）愈伤组织诱导培养基： MS 培养基（蔗糖含量为 10 g/L ， 2,4 – D 含量为 2 mg/L ，琼脂 10 g/L ）。
（ 2 ）试验培养基：在 MS 培养基中加入 IAA 和 6–BA 。
吲哚乙酸（IAA)先用少量 0.1 mol/L NaOH 溶解， 6- 苄基氨基腺嘌呤先用少量 0.1 mol/L HCl 溶解，然后用蒸馏水稀释，再加入培养基中。
（三）仪器设备
培养室，高压灭菌锅，水浴锅，解剖刀，三角烧瓶（ 100mL ），烧杯，量筒，培养皿，棉线，接种箱或超净工作台，分析天平，长镊子，剪刀，容量瓶，移液管，牛皮纸。
（四）培养基灭菌
将配好的培养基加入琼脂加热溶解，调至 pH 5.8 ，趁热分装于 100 mL 三角烧瓶中，每瓶约 20 mL 。
待培养基冷却凝固后，用一层称量纸和一层牛皮纸包扎瓶（管）口，并用棉线扎牢，然后在高压灭菌锅中121 ℃（ 1 kg/cm 2 ）下灭菌 20 min 。
取出三角烧瓶放在台子上，冷却后备用。
接种操作所需的一切用具（如长镊子、解剖刀、剪刀等）及灭菌水，需同时灭菌。
2、培养材料的消毒
（一）先将材料用流水冲洗干净，最后一遍用蒸馏水冲洗，再用无菌纱布或吸水纸将材料上的水分吸干，并用消毒刀片切成小块。
（二）在无菌坏境中将材料放入70％酒精中浸泡30－60秒。
（三）再将材料移入漂白粉的饱和液或0.01％升汞水中消毒10分钟。
（四）取出后用无菌水冲洗三、四次。
3、制备外植体
将已消毒的材料，用无菌刀、剪、镊等，在无菌的环境下，剥去芽的鳞片、嫩枝的外皮和种皮胚乳等，叶片则不需剥皮。
然后切成0.2－0.5厘米厚的小片，这就是外植体。
在操作中严禁用手触动材料。
4、接种和培养
（一）接种
在无菌坏境下，将切好的外植体立即接在培养基上，每瓶接种4－10个。
（二）封口
接种后，瓶、管用无菌药棉或盖封口，培养皿用无菌胶带封口。
（三）温度
培养基大多应保持在25℃左右，但要因花卉种类及材料部位的不同而区别对待。
（四）增殖
外植体的增殖是组培的关键阶段，在新梢等形成后为了扩大繁殖系数，需要继代培养。
把材料分株或切段转入增殖培养基中，增殖培养基一般在分化培养基上加以改良，以利于增殖率的提高。
增殖1个月左右后，可视情况进行再增殖。
（五）根的诱导
继代培养形成的不定芽和侧芽等一般没有根，必须转到生根培养基上进行生根培养。
1个月后即可获得键壮根系。
5、组培苗的练苗移栽
试管苗从无菌到光、温、湿稳定的环境进入自然环境，必须进行炼苗。
一般移植前，先将培养容器打开，于室内自然光照下放3天，然后取出小苗，用自来水把根系上的营养基冲洗干净，再栽入已准备好的基质中，基质使用前最好消毒。
移栽前要适当遮荫，加强水分管理，保持较高的空气湿度（相对湿度98％左右），但基质不宜过湿，以防烂苗。
三、植物组织培养的优点
1、占用空间小，不受地区、季节限制。
2、培养脱毒作物。
3、培养周期短。
4、可用组培中的愈伤组织制取特殊的生化制品。
5、可短时间大量繁殖，用于拯救濒危植物。
6、可诱导之分化成需要的器官，如根和芽。
7、解决有些植物产种子少或无的难题。
8、不存在变异，可保持原母本的一切遗传特征。
9、投资少，经济效益高。
10、繁殖方式多，试用品种多。
近50年来，植物组织培养已渗透到生物学的各个领域，广泛应用于农业、医药业、林业和工业，并产生了巨大的经济效益和社会效益，成为生物学的重要研究技术和当代生物科学中最具生命力的学科之一。
随着组织培养技术的日趋深入和成熟，植物组织培养形成了一套完善和丰富的理论体系，成为一门在理论指导下的实践技术型课程。
通过自主学习，我发现了其中的乐趣，我还会继续努力的！加油~
高2-4班：张超莉 2011.2。