家兔麻醉气管插管,颈总动脉插管,
急性呼吸衰竭动物模型的复制
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材料与方法
实验步骤和实验项目 5. 测量肺系数
注入盐水后当插管内出现泡沫样液体时，处死动物。 打开胸腔，取出气管插管，于插管处结扎气管，自结 扎线上端剪断气管，将连接肺的血管等全部剪断，取 出肺脏，用滤纸吸去肺表面的水分，称量肺重量。操 作过程中，勿挤压肺脏。 肺系数=肺重量(g)/体重(kg)(肺系数的正常值为4.1-5.0) 观察肺大体变化，纵行切开肺脏，注意切面是否有泡 沫样液体流出。
急性呼吸衰竭动物模型的复制
实验目的
目 的
本实验目的是通过复制不同类型急性呼吸衰竭病 理模型，观察机体的机能代谢变化，分析呼吸衰 竭发生的机制。
呼吸衰竭
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材料与方法
实验对象：家兔 实验器材和药品： BL-410生物机能实验系统，血气分析仪，手术 器械，动脉插管，气管插管，手术台，注射器 (1ml, 5ml, 20ml)，麻醉药，0.5%肝素溶液，生 理盐水，3%NaCl溶液
① 气道阻力增加：将气管插管的通气端接一个12号 针头，部分阻塞气管插管，使动物处于不完全窒 息5min。 ② 待动物恢复后，用20ml注射器取3%NaCl (3ml/kg)，连接一细塑料管，将其沿气管插管缓缓 插入6-7cm深，速度缓慢匀速将盐水注入气管内 (5min内推完)，观察各指标和呼吸音变化。
呼吸衰竭
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检测指标及处理条件
呼吸幅度 呼吸频率 血压 心率 血液颜色 血气结果 正常 气道阻力(12#针) 3%NaCl(3ml/kg)
呼吸衰竭
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注意事项
1. 2. 3. 4. 5. 气管插管时，一定注意对气管进行止血，并将气管内清 理干净再进行插管。 每项实验后，应等呼吸基本恢复并稳定后再进行下一 项。 测血气样本切忌接触空气，若针头内有气泡应立即排 除，并迅速套上带有胶塞的针头。 每次采血后用掌心滚动针管几次，使血样和肝素生理盐 水充分混匀，防止凝血。 采血动作要快。
急性动物实验基本操作技术
健康家兔，体重2kg左右，雌雄不拘。
[实验药品及器材]
25%氨基甲酸乙脂（乌拉坦） 0.9%NaCl溶液 哺乳类动物手术器械1套
哺乳类手术器械
用于切开皮肤和脏器。常用手术刀由刀片和刀柄组成。 根据手术的部位与性质，可以选用大小、形态不同的手术 刀片。
哺乳类手术器械
哺乳类手术器械
三、实验内容
➢ （一）称重、麻醉 ➢ （二）固定、剪毛 ➢ （三）颈部手术
[实验步骤]
1、家兔的捉拿及称重。
×
××
✓
✓
2、家兔的麻醉
（1）麻醉药的选择 25%氨基甲酸乙脂(乌拉坦)，4ml/kg。
（2）麻醉的方法及部位：耳缘静脉注射
耳缘静脉（厚） 动脉
⊙ 耳缘静脉（薄）
麻醉效果的观察：指导P67页 （1）呼吸：呼吸变慢且均匀 （2）反射活动：角膜反射迟钝 （3）肌张力：全身肌肉松驰 （4）皮肤夹捏反应：消失
最粗 最细
分离神经和血管
神经分离示意图
神经分离示意图-示迷走神经
（6）颈总动脉插管
动脉插管：
先在远心端结扎左侧颈 总动脉，再用动脉夹在 近心端将其夹闭。用眼 科剪将动脉剪开一斜口， 将注满肝素生理盐水的 插管向心脏方向插入动 脉，结扎固定。
颈总动脉
动脉插管
6、家兔股部的手术
（1）用手触摸股动脉搏动，辨明动脉走向 （2）在皮肤上切3~5cm长的切口 （3）分离皮下组织及筋膜 （4）辨别神经血管
①在胸壁上造成1cm2的创口，使胸膜腔与 大气相通
②观察：胸内压的变化 呼吸的变化 肺组织的萎缩
8、处死动物 （1）空气栓塞 （2）大量放血
股神经（白色） 股动脉（粉红色） 外→内 股静脉（蓝色） （5）股动脉插管：方法同颈总动脉插管
实验家兔心电图及高钾血症的治疗
10、高钾血症模型的复制（分工合作） 10.1 基础阶段： ⑴. 通过颈外静脉输液装置，静脉滴注3％的KCl溶液 (20滴/min)，密切观察和记录心电图变化 注意：从慢到快调滴速：6滴/第1min—9滴/第2min— 20 滴/第3min。
⑵. 一旦心电图出现正弦波时或QRS波群与T波发生融 合时，立即停止滴注。 注意：改变滴速时，动作要快。因为ECG出现正弦波 时心室颤动已迫在眼前。
对机体的影响
• 对心肌的影响 • 对骨骼肌的影响 • 对酸碱平衡的影响
对心肌的影响
• 对心肌跨膜电位的影响 • 对心肌生理特性的影响 • 对心电图的影响
高钾血症心电图波形变化特征
高钾血症对心肌电生理特性的影响
血清[K＋]
？ • 兴奋性下降 • 传导性减慢 • 自律性下降
血[K+]↑ →细胞内外[K+]差↓ →RP↓ →与Et距离↓ →兴奋性↑
高钾血症心电图波形变化特征
• ① 心房肌细胞兴奋性↓：使P波压低、增宽或 消失。
• ② 传导性↓：使P-R间期延长，QRS复合波增 宽。
• ③ 细胞膜电导性↑，3期钾外流加速：反映复 极化3期的T波高耸，反映动作电位的Q-T间期 缩短或正常。
• ④ 自律性降低、传导性降低和心肌兴奋性降 低，故心电图上有心率减慢（可伴有心律不 齐）、甚至停搏。
10、高钾血症模型的复制（分工合作）
10.2 维持阶段： ⑴.改变静脉滴注3％的KCl溶液的速度为(6-9滴/min)， 维持阶段持续30分钟 ⑵. 30分钟后于动脉插管取血，采第2管血0.5ml。
注意：维持阶段的滴速6-9滴/分是可以调整的，以 ECG保持宽大的QRS波群、高尖T波和无P波状态20 min，即维持重度高钾血症30 min。
家兔急性右心衰竭
实验目的
复制家兔急性右心衰的动物模型。 观察心衰时的各项生理指标（呼吸、 血压、心率 、中心静脉压） 探讨家兔急性右心衰的发病机制。
实验原理
注入栓塞剂增加右心后负荷 快速输液增加右心前负荷
实验动物
● 家兔1只
实验器材
直止血钳4把 动脉夹1个
输液器1套 弯止血钳2把 气管插管1个 生理盐水1瓶 大剪刀1把 三通2个 线团1个 手术剪1把
开始清点器材 准备操作
ห้องสมุดไป่ตู้
胸、腹水水量；观察心脏各腔的体积。
观察肝、脾等腹腔脏器有无水肿。
实验结果
实验前
收缩压 舒张压 中心静脉压 呼吸频率 心率
注射石蜡后 快速输液后
BL-410生物机能实验系统
需要掌握的是:
主菜单:输入实验人员名单，定标调零 输入信号：四个通道的生物信号的选 择
BL-410生物机能实验系统
颈总动脉插管
先结扎颈总 动脉的远心端。 然后用动脉夹 夹住动脉的近 心端，在其间 靠远心端处剪V 形口，向近心 端插入动脉插 管。结扎固定。 记录血压变化
注意：插管前先将BL-410的压力换能器通过三通和 动脉插管连接好，并将三通和动脉插管内冲满 0.1% 肝素生理盐水，起排气和抗凝的作用。
另一侧颈外静脉插管
输入实验人员名单定标调零输入信号四个通道的生物信号的选择称重麻醉固定颈部备皮分离气管穿一根线颈总动脉及颈外静脉分别穿两根线缘静脉注射肝素2mlkg气管插管颈总动脉插管远心端结另一侧颈外静脉插管远心端结扎近心端夹闭10滴分输液记录心率呼吸血压中心静脉压耳静脉注射1ml石蜡再次记录上述指标快速输液5mlkg分钟每增加25mlkg输液量测各项指标一次直至动物死亡
操作考试
家兔手术的基本操作（麻醉，分离颈部动脉、神经，气管插管，分离股动脉/静脉）1．家兔抓拿、称重、麻醉与固定：用一手抓住兔子颈背部皮肤，另一手托家兔臀部，用婴儿秤称重。
以20%乌拉坦溶液按5ml/Kg的剂量进行麻醉，拔除耳缘静脉附近的兔毛，注射器吸取麻醉量+2-3ml，从兔耳缘静脉（从静脉远端开始入针）注入，麻醉量前1/2较快注射，后1/2缓慢注射，观察家兔的反应，待动物肌张力↓、角膜反射↓，仰卧固定于实验台上。
2．分离气管并插管1）剪毛：用剪毛剪将颈部手术野的被毛剪去，即可进行手术。
2）用组织剪于颈正中线剪开一小口，用组织剪行皮下钝性分离，然后剪开颈部皮肤5-7cm，止血钳钝性分离颈部软组织和肌肉，露出气管，并在气管下方穿一手术缝合线备用。
3）将穿入气管下方的手术缝合线提起，于甲状软骨下3-4个“C”形气管软骨处剪开气管（不要将气管剪断），再从开口处向甲状软骨方向纵形剪一小口，形成倒“T”形的开口，将气管插管向近心端插入，并扎紧手术缝合线，将余线固定于气管插管的分叉处，以防气管插管松脱。
3. 分离颈总动脉，迷走神经，减压神经和交感神经3). 寻找颈总动脉鞘，内包含颈总动脉，迷走神经，减压神经和交感神经。
用左手拇指和食指拉起气管一侧的皮肤和肌肉，其余三指将颈部的皮肤垫起，仔细分辨三条神经：迷走神经最粗，交感神经次之，减压神经最细。
用玻璃针纵形划开筋膜，分出颈总动脉、迷走、交感和减压神经。
分离时不要过度牵拉，每条神经和动脉分出2-3cm，其下穿一条线备用，并指出各自的名称4. 分离股动脉/静脉1）剪毛：于腹股沟中间处摸到一凹陷，内有动脉搏动，将此处手术视野的毛剪掉（不要提起皮肤）。
2）沿动脉走行方向于动脉搏动处剪一小口（垂直于腹股沟），组织剪上下钝性分离皮肤，再将开口扩大至3-4cm，可见股三角内有股动脉/静脉和神经，用玻璃针划开筋膜，仔细分离，股静脉暗红最粗，神经最细为白色，动脉居中（可摸到搏动）。
家兔气管插管实验原理
家兔气管插管实验原理家兔气管插管实验是一种常用的实验方法，用于研究气管插管技术的有效性和安全性。
本文将从实验原理、操作步骤和实验结果等方面介绍家兔气管插管实验的相关内容。
一、实验原理家兔气管插管实验的原理在于通过插入气管插管来模拟人体气管插管手术，进而观察和评估插管技术的效果和安全性。
实验中常采用家兔作为实验对象，因为家兔的气管结构与人类相似，且家兔体型较小，易于操作和观察。
二、操作步骤1. 准备工作a. 麻醉家兔：使用合适的麻醉剂对家兔进行麻醉，确保家兔处于无痛觉状态。
b. 消毒准备：对实验所需的仪器、器械和操作台等进行彻底消毒，以确保实验的无菌性。
c. 准备插管器材：包括气管插管、导丝、喉镜等。
2. 插管操作a. 定位：将家兔固定在操作台上，保持颈部伸直，以便插管的顺利进行。
b. 喉镜引导：使用喉镜引导导丝进入气管，确保插管的准确性。
c. 插管：将气管插管顺利地通过口腔或鼻腔插入气管，并固定好插管位置。
3. 实验观察a. 呼吸观察：插管后观察家兔的呼吸情况，包括呼吸频率、深度等。
b. 血氧饱和度监测：使用血氧仪等设备监测家兔的血氧饱和度，评估插管对呼吸功能的影响。
c. 心率监测：监测家兔的心率变化，评估插管对心血管系统的影响。
三、实验结果家兔气管插管实验的结果主要包括插管的成功率、呼吸功能的变化以及家兔的生理指标等。
插管成功率是评估插管技术的重要指标，插管成功率越高，说明插管技术越优秀。
呼吸功能的变化可通过观察家兔的呼吸频率、深度以及血氧饱和度等指标进行评估。
此外，还可以通过监测家兔的心率变化来评估插管对心血管系统的影响。
四、实验应用家兔气管插管实验在临床医学中具有重要意义，可以用于评估气管插管技术的安全性和有效性。
通过此实验可以评估插管对呼吸和心血管功能的影响，为临床医生提供参考，以确保手术操作的安全性和患者的生命安全。
此外，家兔气管插管实验还可以用于研究新型插管材料和技术的应用前景，推动气管插管技术的发展和改进。
呼吸系实验报告
一、实验目的1. 了解呼吸系统的基本结构和功能；2. 掌握呼吸系统的生理调节机制；3. 学习呼吸系统疾病模型的制备和观察方法；4. 提高实验操作技能和数据分析能力。
二、实验原理呼吸系统是人体与外界环境进行气体交换的重要器官，主要由呼吸道、肺泡和呼吸肌组成。
呼吸过程包括吸气和呼气两个阶段，通过呼吸肌的收缩和舒张，使肺泡内气体与外界气体进行交换，从而实现氧气的吸入和二氧化碳的排出。
三、实验材料与器材1. 实验动物：家兔（体重1.5-2.0kg）2. 实验器材：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、气管插管、20ml及1ml注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、CO2、乳酸、生理盐水、棉线、纱布等。
四、实验步骤1. 家兔麻醉与固定取一只家兔，称重后，用剪刀剪去耳缘静脉上的毛。
用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注25%氨基甲酸乙酯（1g/kg体重）进行麻醉。
待家兔麻醉成功后，将其固定于手术台上。
2. 建立呼吸模型（1）气管插管：将气管插管插入家兔气管，连接呼吸传感器和生理信号采集处理系统，实时监测呼吸频率和幅度；（2）动脉插管：将动脉插管插入家兔动脉，连接三通管和生理盐水，用于采集动脉血样进行血气分析；（3）颈动脉插管：将颈动脉插管插入家兔颈动脉，连接生理盐水，用于监测血压。
3. 观察呼吸运动（1）正常呼吸曲线记录：观察家兔正常呼吸运动，记录呼吸频率、幅度和血压；（2）增加无效腔：向气管插管内注入一定量的空气，模拟增加无效腔，观察呼吸频率、幅度和血压的变化；（3）CO2吸入：向气管插管内注入一定浓度的CO2，观察呼吸频率、幅度和血压的变化；（4）乳酸吸入：向气管插管内注入一定浓度的乳酸，观察呼吸频率、幅度和血压的变化；（5）缺氧：降低实验室内氧气浓度，模拟缺氧环境，观察呼吸频率、幅度和血压的变化。
4. 数据分析对实验过程中收集到的呼吸频率、幅度、血压等数据进行统计分析，探讨呼吸系统在不同生理和病理条件下的调节机制。
机能学实验动物实验技术操作训练
因腹壁与腹腔内脏紧贴，作腹壁切口时一定提起腹壁，以免伤及腹腔内脏。
01
分离输尿管时，注意分清输精管，输精管为围绕输尿管横向走行的白色管，与膀胱无联系。
02
分离输尿管时不要伤及周围血管，以防出血模糊手术野。分离应尽量干净，以便剪口和插管时看得清楚。
03
插管时不要插入肌层与粘膜之间，插入方向应与输尿管方向一致，勿使输尿管扭结。
4
(4)麻醉效果
麻醉过量 实验动物会出现两种情况，一是呼吸、心搏骤停或间断等情况：二是动物全身皮肤色表紫，呼吸运动浅而慢。要密切观察动物生命体征的变化，做好实施各项抢救工作的准备。
麻醉过浅 动物可能出现挣扎、尖叫等表现，需要及时地追加麻醉药物，但一次追加不宜超过总量1／3，并密切观察动物是否已达到麻醉的基本状态。
3.颈总动脉插管术(视频)
A
分离动脉时不要损伤动脉的小分支，以免造成出血。
B
颈总动脉剪口不宜过大或过小，过大易于使颈总动脉插断，过小导管不易插入。
C
动脉导管的插入端要光滑，不能过尖，以防刺破动脉壁，引起大出血。
D
未扎紧动脉插管前不要松动动脉夹。
(2)注意事项
膀胱插管术(视频)
膀胱插管操作要点： 在耻骨联合上方备皮，做一3~5cm的切口，沿腹白线打开腹腔，暴露膀胱，将膀胱向下方翻开，可见白色输尿管。 结扎尿道口。 膀胱底部剪一小口，插入导管，与切口处的膀胱壁结扎固定。
1.家兔的捉拿
可损伤两肾 可造成皮下出血 可损伤两耳
图2 错误捉拿法
家兔的称重
注意点： 调零 切勿使劲按压称面 将家兔放在婴儿秤上，待家兔安静的时候观察体重并记录。
1
2
二、家兔的麻醉
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气管插管：
• 由颈正中剪开一约６cm的口，钝性分离皮 下筋膜分离出气管，穿线备用； • 在甲状软骨下方第3-4个环状软骨上作一倒 “T”形切口，插入“Y”形气管插管，并用 线固定好
颈部手术、气管插管
颈动脉插管技术
１、沿颈正中线从甲状软骨下到胸骨上沿作一约６ cm 的口。 2、钝性分离皮下筋膜。 3、分离一侧颈总动脉，穿双线备用。 4、结扎远心端，在距结扎线约2-3cm处用动脉夹夹闭 颈总动脉近心端。 5、在靠近结扎线处用眼科剪剪一“v”形切口，切口大 小约为动脉口径的1/3－1/2。 6、将连接好压力换能器的动脉插管灌满肝素，向近心 端插入动脉插管，并用线结扎牢固。 7、打开换能器开关，观察并记录结果。
家兔全身麻醉
麻醉剂：
1.5%戊巴比妥钠，2ml/kg
麻醉具体操作：
前1/2快速推入，以求动物能顺利、 快速地渡过兴奋期；后1/2速度宜慢，且 边注射边注意观察动物的生命体征变化， 当确定已达到麻醉效果时，即停止给药， 不必急于将剩余的麻醉药物全部推入
角膜反射迟钝
麻醉成功标志
肢体肌肉松弛 疼痛反射消失
颈动脉插管
动脉插管和血压换能器内注满肝 素生理盐水以排气抗凝
NOTICE
• 动脉插管和血压换能 器内注满肝素生理盐 水以排气抗凝 • 压力换能器与动物心 脏等高
• 动脉插管与颈总动脉 呈一条直线