(完整word版)植物内生菌DNA提取方法
菌dna提取方法
菌dna提取方法
菌DNA提取方法主要有以下几种常用的方法：
1. 热裂解法：将菌株经过培养后，取一部分菌体加入到含有蛋白酶K和SDS等裂解液的管内，经过高温加热和高速离心等步骤，将细胞裂解，使DNA释放到溶液中。
2. 真菌细胞壁裂解法：对于真菌等含有较坚硬的细胞壁的菌株，可以先用混合酶或纤维素酶等酶解细胞壁，然后再用热裂解法或理化方法提取DNA。
3. CTAB方法：CTAB（盐基洗脱法）常用于提取高质量的食管菌和黄杆菌等高GC含量的菌株DNA。
首先，将菌体经过裂解后，使用CTAB裂解液中的盐离子与DNA结合形成沉淀，然后通过洗脱步骤将DNA纯化。
4. 醋酸盐方法：醋酸盐方法适用于提取低GC含量的菌株DNA。
将菌体经过裂解后，通过添加醋酸盐裂解液，使DNA与醋酸和盐结合成为可溶性复合物，后续通过酒精沉淀等步骤将DNA沉淀出来。
5. 商业化基因提取试剂盒：市面上还有许多商业化的基因提取试剂盒，这些试剂盒提供了一套完整的操作流程和试剂，能够方便快速地提取和纯化菌DNA。
不同的菌株和研究目的可能需要使用不同的提取方法，因此在选择提取方法时需
要根据具体情况进行选择。
植物DNA的提取
植物DNA的提取（SDS法）
1．将离心管中加入提取缓冲液
2．将研钵洗净灭菌，将-80度存放的植物材料在液氮中迅速研磨成粉末；
3．将粉末放入已有提取缓冲液的离心管中，摇匀；
4．加入60ul（1/10体积）的20%SDS溶液，充分混匀；
5．65度保温30分钟；
6．冷至室温后加入220ul（1/3体积）的5M KAc溶液，充分混匀，冰上放置30分钟以沉淀蛋白和多糖；
7．室温，13,200rpm离心20分钟，取上清750ul；
8．离心管中加入750ul氯仿，充分混匀，离心12,000rpm，10分钟；
9．取600ul上清加入600ul氯仿，充分混匀，离心12,000rpm，10分钟；
10．取500ul上清，加入1ml（2倍体积）无水乙醇沉淀核酸，混匀至于-20度放置30分钟；11．低速（8000rpm）离心10分钟收集沉淀，用70%乙醇洗涤沉淀，洗3次；
12．真空抽干3分钟，溶于100ul灭过菌的去离子水中；
13．可以再用无DNase的RNase到1mg/ml，37度保温30分钟消化RNA。
拟南芥基因组的ＰＣＲ直接鉴定法
试剂：NaOH0.5M
Tris 100mM
5-10mg叶片加入到100ul NaOH，研磨，
5ul上清加入到50ul Tris中，混匀，
取1ul做ＰＣＲ
但整个流程最好在冰上操作。
实验四植物DNA的提取[定稿]
![实验四植物DNA的提取[定稿]](https://img.taocdn.com/s3/m/5de4138468dc5022aaea998fcc22bcd126ff4203.png)
实验四植物DNA的提取[定稿]第一篇：实验四植物DNA的提取[定稿]实验四植物DNA的提取一、实验目的掌握CTAB法从植物叶片提取DNA的原理和方法。
采用CTAB法从植物叶片中提取基因组DNA，并进行纯度分析。
二、实验原理1、核酸提取的基本原理核酸是生物有机体中的重要成分，在生物体中核酸常与蛋白质结合在一起，以核蛋白的形式存在。
核酸分为脱氧核糖核酸(DNA)和核糖核酸(RNA)两大类，在真核细胞中，前者主要存在于细胞核中，后者主要存在于细胞质及核仁里。
在制备核酸时，通过研磨破坏细胞壁和细胞膜，使核蛋白被释放出来。
在浓氯化钠溶液(1～2 mol／L)中，DNA核蛋白的溶解度很大，RNA核蛋白的溶解度很小；而在稀氯化钠溶液(0.14 mol／L)中，DNA核蛋白的溶解度很小，RNA核蛋白的溶解度很大。
因此，可利用不同浓度的氯化钠溶液将DNA核蛋白和RNA核蛋白从样品中分别抽提出来。
分离得到核蛋白后，需进一步将蛋白等杂质除去，常采用的去除蛋白的方法有3种：①用含异戊醇的氯仿振荡核蛋白溶液，使其乳化，然后离心除去变性蛋白质，此时蛋白质凝胶停留在水相和氯仿相中间，而DNA溶于上层水相。
用两倍体积的无水乙醇溶液将DNA 钠盐沉淀出来。
如果用酸性乙醇或冰乙酸来沉淀，得到的是游离的DNA。
②用十二烷基硫酸钠(SDS)等去污剂使蛋白质变性，与核酸分离，从而从材料中直接提取出DNA。
③用苯酚处理，然后离心分层，DNA溶于上层水相，蛋白变性后则停留在酚层内。
吸出上面水层，加两倍体积的无水乙醇溶液，得到白色纤维状DNA沉淀。
反复使用上述方法多次处理DNA核蛋白溶液，就能将蛋白等杂质较彻底地除去，得到较纯的DNA制品。
为了彻底除去DNA制品中混杂的RNA，可用RNA酶处理。
生物材料中含有的脂肪物质和大部分的多糖，在用盐溶液分离核蛋白和用乙醇或异丙醇分级沉淀时即被除去。
在DNA提取、制备的过程中，核酸极不稳定，许多因素可破坏其完整结构：①化学因素，核酸的结构在pH值4.0～11.0间较稳定，pH值在此范围外就会使核酸变性降解，故制备过程应避免过酸过碱。
植物DNA提取_SDS法
1植物基因组DNA的提取1）取适当新鲜叶片放入2ml离心管中，在液氮中迅速研磨成粉末。
2）加入800µl的DNA提取液和5µl的RNase A（10mg/ml）,振荡混匀。
37℃，水浴30min（水浴过程中上下颠倒混匀）。
3）加入800µl的“三混”溶液，充分混匀。
12000rpm，离心10min。
4）吸取650µl的上清液至一干净的2ml离心管，加入等体积氯仿，充分混匀。
12000rpm，离心10min。
5）吸取450µl的上清液至一干净的1.5ml离心管，加入450µl的异丙醇和45µl的3M醋酸钠（pH=5.2）,轻轻混匀，DNA析出，呈絮状沉淀。
-20℃放置30min。
6）12000rpm，离心10min。
弃上清，加入600µl的75%乙醇溶液，清洗两次。
7）弃上清液，用移液器吸尽残留酒精溶液，超净台中干燥（约5min），加入100µl的1×TE或ddH2O溶解，并置4℃中溶解过夜。
8）采用紫外分光光度计法检测DNA的含量及纯度，1%琼脂糖凝胶检测DNA的质量。
将DNA浓度统一稀释至100ng/µl，-20℃保存。
2试剂配制1）DNA提取液(1L，1%SDS，0.1M Tris，0.1M NaCl，10mM EDTA，pH=8.5)在去离子水中依次加入3.2g Na2EDTA，5.8g NaCl，12.1g Tris base，以及100ml的10%的SDS溶液，搅拌均匀后，用HCl调节pH至8.5，定容至1L。
2）“三混”溶液将Tris平衡酚、氯仿、异戊醇按体积比25：24：1，充分混匀，4℃中静置分层并避光保存。
3）3M醋酸钠(1L)称取408.24g NaAC·3H2O溶解到800ml蒸馏水中，用冰醋酸调pH至5.2，定容至l L，高压灭菌备用。
4）1×TE溶液(1L，10mM Tris，1mM EDTA，pH=8.0)在500ml水中加入1.211g Tris base，0.372g Na2EDTA，用HCl调pH至8.0，定溶至1L，高压灭菌备用。
一种植物根内生细菌DNA的提取方法[发明专利]
![一种植物根内生细菌DNA的提取方法[发明专利]](https://img.taocdn.com/s3/m/a6000a8368dc5022aaea998fcc22bcd127ff427f.png)
(19)中华人民共和国国家知识产权局(12)发明专利申请(10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201810800649.X(22)申请日 2018.07.20(71)申请人 河海大学地址 211100 江苏省南京市江宁开发区佛城西路8号(72)发明人 周淇 (74)专利代理机构 南京苏高专利商标事务所(普通合伙) 32204代理人 陈风平(51)Int.Cl.C12N 15/10(2006.01)(54)发明名称一种植物根内生细菌DNA的提取方法(57)摘要本发明公开了一种植物根内生细菌DNA的提取方法，包含以下步骤：(1)样品前期处理：将包含植物根部组织的土柱样品冷冻干燥；(2)去除植物根系松散土壤，使得植物根表面附着的土壤厚度为1-2mm；(3)将经步骤(2)处理后的植物根放入装有PBS缓冲液的离心管中，洗涤、超声处理，获取植物根，随后低温保存；(4)将步骤(3)处理的植物根研磨、均质；(5)取步骤(4)得到的样品，提取植物根内生细菌DNA。
本发明极大减少植物根际部分细菌DNA对根内生细菌DNA的污染，分离操作行之有效，提取步骤简单易行，提取纯度高，省略了纯化步骤，安全实用，提高了植物根内生细菌DNA的提取效率和纯度。
权利要求书1页 说明书4页 附图1页CN 108570467 A 2018.09.25C N 108570467A1.一种植物根内生细菌DNA的提取方法：其特征在于，包含以下步骤：(1)样品前期处理：将包含植物根部组织的土柱样品冷冻干燥；(2)去除植物根系松散土壤，使得植物根表面附着的土壤厚度为1-2mm；(3)将经步骤(2)处理后的植物根放入装有PBS缓冲液的离心管中，洗涤、超声处理，获取植物根，随后低温保存；(4)将步骤(3)处理的植物根研磨、均质；(5)取步骤(4)得到的样品，提取植物根内生细菌DNA。
2.根据权利要求1所述的植物根内生细菌DNA的提取方法，其特征在于，步骤(3)中，所述超声处理次数不低于10个循环。
植物DNA提取实验方案
植物DNA提取实验方案一、实验目的本实验旨在通过提取植物组织中的DNA，了解DNA的结构和功能，学习DNA提取技术。
二、实验原理DNA提取实验基于DNA的特性进行，主要包括以下几个步骤：1.组织破碎：通过物理或化学方法将植物组织破碎，使DNA暴露出来。
2.细胞溶解：使用细胞溶解液使细胞膜破裂，释放DNA。
3.蛋白质消化：加入蛋白酶等物质，将DNA周围的蛋白质降解。
4.DNA沉淀：通过加入乙醇等溶剂，使DNA沉淀。
5.洗涤和纯化：通过洗涤和纯化步骤去除杂质。
6.分析和测定：利用凝胶电泳等技术对提取得到的DNA进行分析和测定。
三、实验材料1.植物材料（如香蕉、草莓等）2.液氮或冰块3.细胞溶解液（如PBS缓冲液、CTAB溶液等）4.蛋白酶K溶液5.乙醇6.盐溶液7. DNase-free水8.1.5mL离心管9.离心机10.电磁振荡器11.热水浴12.紫外分光光度计四、实验步骤1.将所需植物材料切碎，放入离心管中。
2.将离心管放入液氮或冰块中，立即研磨材料，直至完全破碎。
3.加入适量的细胞溶解液，如PBS缓冲液，将混合物混合均匀。
4.将混合物置于电磁振荡器中，振荡5分钟。
5.加入适量的蛋白酶K溶液，混合均匀。
6.将离心管置于热水浴中，温度为55℃，孵育1小时。
7.加入相同体积的酒精，轻轻摇匀离心管，将DNA沉淀。
9.倒出上清液，加入适量的盐溶液，轻轻摇匀离心管，使DNA残留在离心管底部。
10.使用离心机将离心管离心，离心条件同上，离心10分钟。
11.倒出上清液，加入适量的乙醇，轻轻摇匀离心管，使DNA沉淀。
12.使用离心机将离心管离心，离心条件同上，离心10分钟。
13.倒出上清液，加入适量的盐溶液，轻轻摇匀离心管，使DNA残留在离心管底部。
14.使用离心机将离心管离心，离心条件同上，离心10分钟。
15. 倒出上清液，用DNase-free水洗涤DNA三次，每次离心5分钟。
16. 将离心管中的DNA溶解于适量的DNase-free水中。
真菌DNA的提取
真菌DNA的提取（方法一）1.取真菌菌丝0.5g, 在液氮中迅速研磨成粉2.加入4mL提取液，快速振荡混匀3.加入等体积的4mL的氯仿:异戊醇(24:1)，涡旋3～5min（此处是粗提没有加酚，可以节约成本的哟！）4.1000rpm，4℃，5min5.上清用体积的氯仿:异戊醇(24:1)再抽提一次（10,000 rpm，4℃离心5 min）6.取上清，加入2/3倍体积的-20℃预冷异丙醇或2.5倍体积的无水乙醇沉淀, 混匀, 静置约30 minulTE中μ7.用毛细玻棒挑出絮状沉淀, 用75%乙醇反复漂洗数次, 再用无水乙醇漂洗1次, 吹干，重悬于5008.加入1 ul RNaseA （10 mg/mL），37℃处理1 hr9.用酚（pH8.0）:氯仿:异戊醇(25:24:1)和氯仿:异戊醇(24:1)各抽提1次（10,000 rpm，4℃离心5 min）10.取上清，1/10V 3M NaAc,2.5V体积的无水乙醇, -70℃沉淀30 min以上11.沉淀用75%乙醇漂洗，风干, 溶于200 ulTE中，-20 ℃保存备用DNA提取液：0.2M Tris-HCl（pH 7.5），0.5M NaCl，0.01M EDTA，1％SDS，3M NaAcTE：10 mmol/L Tris-HCl pH8.0，1 mmol/L EDTA酚（pH8.0）:氯仿:异戊醇(25:24:1)氯仿:异戊醇(24:1)异丙醇无水乙醇75%乙醇RNaseA真菌DNA的提取（方法二）1.真菌菌丝0.5-1 g, 在液氮中迅速研磨成粉2.加入3 mL 65℃预热的DNA提取缓冲液，快速振荡混匀65℃水浴30 min, 期间混匀2-3次3．加入1 mL 5M KAc，冰浴20 min4．等体积的氯仿:异戊醇(24:1)抽提1次（10,000 rpm，4℃离心5 min）5．取上清，加入2/3倍体积的-20℃预冷异丙醇, 混匀, 静置约30 minL TE中μ6．用毛细玻棒挑出絮状沉淀, 用75%乙醇反复漂洗数次, 再用无水乙醇漂洗1次, 吹干，重悬于5007．加入1 ul RNaseA （10 mg/mL），37℃处理1 hr8．用酚（pH8.0）:氯仿:异戊醇(25:24:1)和氯仿:异戊醇(24:1)各抽提1次（10,000 rpm，4℃离心5 min）9．取上清，1/10V 3M NaAc,2.5V体积的无水乙醇, -70℃沉淀30 min以上10．沉淀用75%乙醇漂洗，风干, 溶于200 ul TE中，-20 ℃保存备用。
植物叶片中DNA的提取
1. 植物叶子0.1- 0.2g, 剪碎置预冷研钵中
加入1mL提取缓冲 液，研磨成浆
2. 吸入1.5mLeppendorf 管中，摇动混匀
3. 60℃水浴保温30-60min
4. 10000rpm离心5min
5. 吸上清于新的离心管中，加入等体积氯仿，颠倒混匀
6. 再次10000rpm离心5min； 将上清小心吸入新的离心管中；
DNA样品在0.7% Agarose胶上电泳（例图）
实验注意事项
1. 微量移液枪的使用一定要规范，吸取氯仿 等有机试剂要注意不要将试剂吸入枪中； 2. 提取过程中的机械力可能使大分子 DNA 断 裂成小片段，所以为保证 DNA 的完整性， 各步操作均应较温和，避免剧烈震荡。
思考题:1.为什么构建DNA时, 一定要用大分 子DNA？ 2. 如何检测和保证DNA的质量？
实验一
植物叶片DNA的提取
DNA extraction
实验原理
• 利用基因组 DNA 较长的特性，可以将其与细胞器或质粒等小分子 DNA 分离。加入一定量的异丙醇或乙醇，基因组的大分子DNA即沉淀形成纤 维状絮团飘浮其中, 可用玻棒将其取出，而小分子DNA则只形成颗粒状 沉淀附于壁上及底部, 从而达到提取的目的。在提取过程中,染色体会发 生机械断裂，产生大小不同的片段，因此分离基因组DNA时应尽量在温 和的条件下操作，如尽量减少酚/氯仿抽提、混匀过程要轻缓, 以保证 , 否则酶切后两边都带合适末端的有效片段很少。而进行 RFLP 和 PCR 分析 , DNA 长度可短至 50kb ，在该长度以上，可保证酶切后产生 RFLP片段(20kb以下)，并可保证包含PCR所扩增的片段 (一般2kb以下)。 • 不同生物（植物、动物、微生物）的基因组DNA的提取方法有所不同; 不同种类或同一种类的不同组织因其细胞结构及所含的成分不同，分离 方法也有差异。在提取某种特殊组织的DNA时必须参照文献和经验建立 相应的提取方法，以获得可用的DNA大分子，尤其是组织中的多糖和酶 类物质对随后的酶切、PCR反应等有较强的抑制作用，因此用富含这类 物质的材料提取基因组DNA时，应考虑除去多糖和酚类物质。
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在提取植物内生菌之前，植物需要表面灭菌，其具体操作为将植物浸泡在添加了0.02%的Tween-20的质量分数为1%的次氯酸钠溶液中1 min，再将植物浸泡在70%酒精中1 min，然后用硫代硫酸盐/Ringer’s（林格氏液）清洗3次，每.次1 min。
根和茎（土表面以上1 cm处）都要灭菌处理，将根茎切成片状。
为了更好地分析细菌的位置，灭菌后茎表皮撕下，茎内部按照之前的方法灭菌。
表皮组织和根最后一次淋洗液中的细胞都用来提取DNA。
植物不同组织的内生菌群落DNA提取通过直接研磨植物组织，步骤为溶解、提取和纯化步骤（方案一），或者在DNA提取前从片状植物组织中淋洗出细胞（方案二）。
东南景天表面灭菌方法：整株植物用自来水冲洗30 min，用蒸馏水洗3次，每次3 min。
用吸水纸吸去植物表面水分，用无菌剪刀在根基部将根系剪下，与植物地上部分开。
将根系用70 %酒精浸泡2 min，无菌水洗3次，3 % NaClO浸泡2次，每次1 min，然后用无菌水冲洗3次，每次2 min，最后一次清洗液涂LB平板。
1. 将2 g左右消毒后植物组织于无菌研钵中，加5 mL磷酸钠缓冲液（19.9 g Na2HPO4·H2O，1.27 g NaH2PO4·2H2O，H2O 定容到1 L）研磨至匀浆。
2. 将植物匀浆转移至50 mL无菌离心管中，摇床200 rpm振荡1-2 h，使细菌细胞尽可能的从植物组织中释放出来。
3. 取4 mL悬液于新的无菌离心管中，12 000×g离心10 min收集菌体细胞。
4. 弃上清，将收集的菌体细胞重新溶于550μL 1×TE buffer（Tris-EDTA；pH8）中加入10 mg mL-1溶菌酶10μL，37℃水浴1-4h。
5. 加入50μL 20% SDS和8μL 20 mg mL-1蛋白酶K，混匀，65℃水浴3h，期间轻轻上下颠倒混匀数次。
6. 加入200μL 5 M NaCl，涡旋振荡15 s，12000×g离心10 min。
7．取上清液，并向上清液中加入等体积的氯仿-异戊醇（24:1），彻底混匀，12000×g离心10 min。
8. 上清液转移至新的无菌离心管中，重复步骤7一次。
9. 上清液转移至新的无菌离心管中，加入0.6倍体积（0.6 vol）的冰冷的异丙醇，4℃放置1 h。
10. 4℃，12000×g离心10 min，弃上清。
11. 沉淀用70 %冰乙醇清洗，离心，弃上清。
12. DNA沉淀室温风干后，用无菌超纯水溶解。
13. DNA纯化采用TIANquick Midi Purification Kit。
微生物16S rRNA基因V5-V6-V7区域扩增引物：
799F2：GATGG CCATT ACGGC CNNNN NN
1193R：ACGCA TCCCC ACCTT CCTC
用含10 % SDS提取缓冲液(NaP缓冲液)重新悬浮细胞团块。
用直径0.11mm 的玻璃珠珠打操作50 s，以溶解细胞。
用苯酚-Tris (pH 8)溶液和氯仿/异戊醇提取，用0.6 vol的异丙醇和0.5 mol/L NaCl通过沉淀再次获得DNA。
用70 %的乙醇洗涤细胞团块，真空干燥，再溶解在50μl的超纯水中。
原始DNA提取物用Glassmilk purification kit (Bio101, La Jolla, CA)进一步纯化。
所需试剂：Na2HPO4·H2O，NaH2PO4·2H2O，10 % SDS（十二烷基硫酸钠），Tris饱和酚，氯仿/异戊醇（体积比24:1混合），异丙醇，0.5 mol/L NaCl，70 %乙醇。
苯酚、氯仿、异戊醇在DNA提取时的作用
抽提DNA去除蛋白质时，怎样使用酚与氯仿较好？
酚与氯仿是非极性分子，水是极性分子，当蛋白水溶液与酚或氯仿混合时，蛋白质分子之间的水分子就被酚或氯仿挤去，使蛋白失去水合状态而变性。
经过离心，变性蛋白质的密度比水的密度为大，因而与水相分离，沉淀在水相下面，从而与溶解在水相中的DNA分开。
而酚与氯仿有机溶剂比重更大，保留在最下层。
作为表面变性的酚与氯仿，在去除蛋白质的作用中，各有利弊，酚的变性作用大，但酚与水相有一定程度的互溶，大约10％～15％的水溶解在酚相中，因
而损失了这部分水相中的DNA，而氯仿的变性作用不如酚效果好，但氯仿与水
不相混溶，不会带走DNA。
所以在抽提过程中，混合使用酚与氯仿效果最好。
经酚第一次抽提后的水相中有残留的酚，由于酚与氯仿是互溶的，可用氯仿第二次变性蛋白质，此时一起将酚带走。
也可以在第二次抽提时，将酚与氯仿混合（1:1）使用。
为什么用酚与氯仿抽提DNA时，还要加少量的异戊酵？
在抽提DNA时，为了混合均匀，必须剧烈振荡容器数次，这时在混合液内易产生气泡，气泡会阻止相互间的充分作用。
加入异戊醇能降低分子表面张力，所以能减少抽提过程中的泡沫产生。
一般采用氯仿与异戊酵为24：1之比。
也可采用酚、氯仿与异戊醇之比为25：24:1（不必先配制，可在临用前把一份酚加一
份24：1的氯仿与异戊醇即成），同时异戊醇有助于分相，使离心后的上层水相，中层变性蛋白相以及下层有机溶剂相维持稳定
Tris平衡苯酚的配制方法
1. 使用原料：大多数市售液化苯酚是清亮无色的，无需重蒸馏便可用于分子生物学实验。
但有些液化苯酚呈粉红色或黄色，应避免使用。
同时也应避免使用结晶苯酚，结晶苯酚必须在160℃对其进行重蒸馏除去诸如醌等氧化产物，这些氧化产物可引起磷酸二酯键的断裂或导致RNA和DNA的交联等。
因此，苯酚的质量对DNA、RNA的提取极为重要，我们推荐使用高质量的苯酚进行分子生物学实验。
2. 操作注意：苯酚腐蚀性极强，并可引起严重灼伤，操作时应戴手套及防护镜等。
所有操作均应在通风橱中进行，与苯酚接触过的皮肤部位应用大量水清洗，并用肥皂和水洗涤，忌用乙醇。
3. 苯酚平衡：因为在酸性pH条件下DNA分配于有机相，因此使用苯酚前必须对苯酚进行平衡使其pH值达到7.8以上，苯酚平衡操作方法如下：
①液化苯酚应贮存于-20℃，此时的苯酚呈现结晶状态。
从冰柜中取出的苯酚首先在室温下放置使其达到室温，然后在68℃水浴中使苯酚充分溶解。
②加入羟基喹啉（8-Quinolinol）至终浓度0.1％。
该化合物是一种还原剂、RNA酶的不完全抑制剂及金属离子的弱螯合剂，同时因其呈黄色。
有助于方便识别有机相。
③加入等体积的1M Tris-HCl（pH8.0），使用磁力搅拌器搅拌15分钟，静置使其充分分层后，除去上层水相。
④重复操作步骤③。
⑤加入等体积的0.1M Tris-HCl（pH8.0），使用磁力搅拌器搅拌15分钟，静置使其充分分层后，除去上层水相。
⑥重复操作步骤⑤，稍微残留部分上层水相。
⑦使用pH试纸确认有机相的pH值大于7.8。
⑧将苯酚置于棕色玻璃瓶中4℃避光保存
唐琳的引物：
F357GC(5’-CGCCC GCCGC GCGCG GCGGG CGGGG CGGGG GCACG GGGGG CCTAC GGGAG GCAGC AG-3’)
R518(5’-ATT ACC GCG GCT GCT GG-3’)。