实验动物的麻醉方法
常用实验动物全身性麻醉药物的使用
常用实验动物全身性麻醉药物的使用实验动物全身性麻醉药物的使用在科研和医学领域具有重要意义。
全身性麻醉药物可以抑制动物神经系统，使其处于无痛觉、无意识状态，以便于进行实验操作或治疗。
本文将介绍全身性麻醉药物的分类、使用方法、注意事项及发展趋势。
全身性麻醉药物可根据作用机制分为吸入性麻醉药物和静脉麻醉药物两类。
吸入性麻醉药物通过动物呼吸系统进入体内，主要包括氟烷、甲氧氟烷等。
这类药物可以在动物体内迅速分布，起效快，但排出也较快，需要连续给药以维持麻醉状态。
静脉麻醉药物则通过静脉注射进入动物体内，如丙泊酚、硫喷妥钠等。
这类药物起效较慢，但维持时间较长，且对动物循环系统影响较小。
在使用全身性麻醉药物时，需根据实验需求和动物种类选择合适的药物。
吸入法适用于短期、小型实验，可以通过面罩或注射器给予。
静脉注射法则适用于大型、长期实验，需通过静脉穿刺或导管给予。
在用药过程中，需密切动物的呼吸、心率、体温等指标，以及药物使用量和时间。
使用全身性麻醉药物时需注意以下事项：要严格控制药物剂量，根据动物体重、体型等因素进行个性化给药。
要避免使用时间过长，以免动物出现耐药性或药物残留。
要动物的生命体征，一旦出现异常情况，应立即停止给药并采取相应救治措施。
应尽量选择不良反应小的全身性麻醉药物，以减少对动物的损害。
近年来，随着科技的不断进步，全身性麻醉药物的研究和开发也取得了很多进展。
新型麻醉药物的研发不仅可以提高麻醉效果，还可以降低不良反应发生率。
随着麻醉监控技术的发展，对麻醉药物的用量和麻醉深度的把握更加准确，从而提高了实验的准确性和安全性。
实验动物全身性麻醉药物的使用在科研和医学领域中具有重要作用。
在选择和使用全身性麻醉药物时，需遵循科学、规范的原则，动物的生理变化和药物的不良反应。
随着科技的不断进步，相信未来全身性麻醉药物的研发和麻醉监控技术将取得更加显著的成果，为科研和医学事业的发展做出更大的贡献。
动物实验中，麻醉剂的选择至关重要。
实验动物的麻醉
八、实验动物的麻醉在一些动物实验，特别是手术等实验，为减少动物的挣扎和保持其安静，并便于操作，常对动物采用必要的麻醉。
由于动物种属间的差异等情况，所采用的麻醉方法和选用的麻醉剂亦有不同。
(一)常用的麻醉剂动物实验中常用的麻醉剂分为三类，即挥发性麻醉剂、非挥发性麻醉剂和中药麻醉剂。
1．挥发性麻醉剂这类麻药包括乙醚、氯仿等。
乙醚吸入麻醉适用于各种动物，其麻醉量和致死量差距大，所发安全度亦大，动物麻醉深度容易掌握，而且麻后苏醒较快。
其缺点是对局部刺激作用大，可引起上呼吸道粘膜液体分泌增多，再通过神经反射可影响呼吸、血压和心跳活动，并且容易引起窒息，故在乙醚吸入麻醚时必需有人照看，以防麻醉过深而出现上情况。
2．非挥发性麻醉剂这类麻醉剂种类较多，包括苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠等巴比妥类的衍生物，氨基甲酸乙脂和水合氯醛。
这些麻醉剂使用方便，一次给药可维持较长的麻醉时间，麻醉过程较平衡，动物无明显挣扎现象。
但缺点是苏醒较慢。
3．中药麻醉剂动物实验时有时也用到象洋金花和氢溴酸东莨菪碱等中药麻醉剂，但由于其作用不够稳定，而且常需加佐剂麻醉效果才能理想，故在使用过程中不能得到普及，因而，多数实验室不选用这类麻醉剂进行麻醉。
（二）动物的麻醉方法1．全身麻醉（1）吸入法用一块圆玻璃板和一个钟罩或一个密闭的玻璃箱作为挥发性麻醉剂的容器，多选用乙醚作麻药。
麻醉时用几个棉球，将乙醚倒可其中，迅速转入钟罩或箱内，让其挥发，然后把待麻醉动物投入，约隔4-6分钟即可麻醉，麻醉后应立即取出，并准备一个蘸有乙醚的棉球小烧杯，在动物麻醚变浅时给套在鼻上使其补吸麻药。
本法最适于大、小鼠的短期操作性实验的麻醉，当然也可用于较大的动物只是要求有麻醉口罩或较大的玻璃箱罢了。
由于乙醚燃点很低，遇火极易燃烧，所以在使用时，一定要远离炎源。
（2）腹腔和静脉给药麻醉法非挥发性和中药麻醉剂均可用作腹腔和静脉注射麻醉，操作简便，是实验室最常采用的方法之一。
动物实验常见操作技术
动物实验常见操作技术动物实验是科学研究中常用的一种手段，通过对动物进行各种操作和处理，获得与人类相关的科学数据和知识。
以下是动物实验中常见的操作技术。
一、麻醉和镇痛技术动物实验中会应用麻醉药物使动物失去感觉和意识，以减少动物在实验过程中的痛苦和压力。
常用的麻醉技术包括静脉麻醉、吸入麻醉和局部麻醉。
镇痛技术用于减轻术后疼痛，常采用各种药物如阿片类和非甾体抗炎药等。
二、手术技术手术技术是动物实验中常见的一项操作技术，用于在动物体内插入仪器、移除组织样本、修复组织或器官的损伤等。
常见的手术技术包括卵巢切除术、肝脏切片术、心脏手术等。
三、体内采样技术体内采样技术是从动物体内获取生物样本的一种方法，用于分析动物的生理和生化指标。
常见的体内采样技术包括血液采样、尿液采样、肠道内容物采样等。
四、药物给药技术药物给药技术是将药物通过各种途径输入动物体内，以研究药物的药代动力学和药效学等。
常见的给药途径包括静脉注射、腹腔注射、皮下注射等。
五、环境控制技术环境控制技术用于控制实验动物的环境条件，以确保实验结果的准确性和可靠性。
常见的环境控制技术包括温度控制、湿度控制、光照控制等。
六、行为测定技术行为测定技术用于评估动物的行为特征和认知功能，常用于研究动物的学习记忆、情绪行为等。
常见的行为测定技术包括开放田间测试、旋转杆测定、挖洞测试等。
七、分子生物学技术分子生物学技术用于研究动物的基因表达、DNA/RNA的分离和测定等。
常用的分子生物学技术包括PCR技术、凝胶电泳技术、蛋白质电泳技术等。
八、影像学技术影像学技术用于研究动物的器官结构、功能和病理变化等。
常见的影像学技术包括X线摄影技术、CT扫描、MRI等。
九、细胞培养技术细胞培养技术用于研究动物的细胞生长、增殖和代谢等。
常用的细胞培养技术包括离心培养、悬浮培养、共培养等。
以上列举了动物实验中常见的操作技术，不同实验目的和研究领域需要选用不同的操作技术，以获得准确和可靠的实验结果。
动物全身麻醉的方法
动物全身麻醉的方法全身麻醉：麻醉药经呼吸道吸入或静脉、肌肉注射,产生中枢神经系统抑制,呈现神志消失，全身不感疼痛，肌肉松弛和反射抑制等现象，这种方法称全身麻醉。
其特点为抑制深浅与药物在血液内的浓度有关,当麻醉药从体内排出或在体内代谢破坏后,动物逐渐清醒，不留后遗症。
1. 吸入麻醉法麻醉药以蒸气或气体状态经呼吸道吸入而产生麻醉者，称吸入麻醉，常用乙醚作麻醉药。
吸入法对多数动物有良好的麻醉效果，其优点是易于调节麻醉的深度和较快的终止麻醉，缺点是中、小型动物较适用，对大型动物如狗的吸入麻醉操作复杂，通常不用。
具体方法是：使用乙醚麻醉兔及大小鼠时，可将动物放入玻璃麻醉箱内，把装有浸润乙醚棉球的小烧杯放入麻醉箱，然后观察动物。
开始动物自主活动，不久动物出现异常兴奋，不停地挣扎，随后排出大小便。
渐渐地动物由兴奋转为抑制，倒下不动，呼吸变慢。
如动物四肢紧张度明显减低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，则表示动物已进入麻醉，可行手术和操作。
在实验过程中应随时观察动物的变化，必要时把乙醚烧杯放在动物鼻部，以维持麻醉的时间与深度。
2. 注射麻醉法常用的麻醉药有戊巴比妥钠、硫喷妥钠、氨基甲酸乙酯等。
大、小鼠和豚鼠常采用腹腔注射法进行全身麻醉。
狗、兔等动物既可腹腔注射给药,也可静脉注射给药。
在麻醉兴奋期出现时，动物挣扎不安，为防止注射针滑脱，常用吸入麻醉法进行诱导，待动物安静后再行腹腔或静脉穿刺给药麻醉。
在注射麻醉药物时，先用麻醉药总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，如已达到所需麻醉的程度，余下的麻醉药则不用，避免麻醉过深抑制延脑呼吸中枢导致动物死亡。
实验动物麻醉规范
实验动物麻醉规范一、麻醉深度的监测（1）后足反射消失：方法---用镊子夹脚趾没有收缩反应（2）肌肉松弛失去张力（3）呼吸深，慢，但有节律*** 对于长时间的手术，整个手术过程中要不断检查麻醉深度***二、全身麻醉（1）腹腔注射戊巴比妥钠（小鼠50-90 mg/kg；大鼠40-60 mg/kg；兔20-40 mg/kg 静脉注射）（2）同时术前给予皮下注射美洛昔康（小鼠1-2 mg/kg；大鼠 1 mg/kg；兔 0.3 mg/kg）或卡洛芬（小鼠 5 mg/kg；大鼠 5 mg/kg；兔 4 mg/kg）三、术后给予镇痛药（1）大鼠，小鼠：美洛昔康 (0.005 mg/mL 加入饮水瓶中) 或布洛芬（0.2 mg/mL 加入饮水瓶中），持续2-3天（2）兔：皮下注射美洛昔康（0.3 mg/kg）或卡洛芬（4 mg/kg），每天一次，持续2-3天*** 对于创伤大的手术（包括开腹，开胸，器官移植，骨科手术，烧伤模型，创伤模型，肠穿孔模型，皮下泵植入，永久性插管等）术后必须使用镇痛剂***四、局部麻醉用药（推荐）*** 对于创伤大的手术推荐局麻药和全身麻醉联合使用***方法：0.5% 布匹卡因→生理盐水稀释至 0.25%，皮下局部浸润（总剂量不超过8 mg/kg，大鼠、小鼠相同）如何溶解美洛昔康莫比可 0.5 片（含美洛昔康 3.75 mg）, 加入 1.5 ml 90% 乙醇和 0.5 ml 0.1 M 的氢氧化钠，充分研磨溶解，用pH 7.5 的磷酸缓冲液稀释至 0.5 mg/ml 的原液。
将原液按 1：100 的比例加入饮水中（饮水中可适当加些蔗糖消除异味）。
可用于大鼠和小鼠。
*** 美洛昔康溶于DMSO,如注射可先用DMSO溶解再用生理盐水稀释 ***。
常用的麻醉剂和麻醉方法(人医和动物均有)
常用的麻醉剂和麻醉方法常用的麻醉剂大致分为三类，即挥发性麻醉剂、非挥发性麻醉剂和中药麻醉剂。
麻醉方法一般分为吸入、注入（静脉、皮下、肌肉、腹腔等）、口服、灌胃等。
麻醉药物应用的方法和剂量如下：一最常用的挥发性麻醉药物为乙醚开放麻醉法是用脱脂棉浸湿乙醚后，小动物如大鼠、小鼠可将头部放入蘸有乙醚棉球的广口瓶内，4～6分钟后即处于麻醉状态。
适用于各种实验动物。
如实验过程较长，可在其鼻部放棉花或纱布，不时滴加乙醚维持，也可用乙醚先麻醉后再用非挥发性麻醉剂维持麻醉。
较大动物可用麻醉口罩滴药法。
封闭麻醉法是将小动物置于一封闭容器中，该容器中预先置于浸泡乙醚之棉球，乙醚挥发后使动物吸入而置麻醉。
在给药过程中必须随时观察动物的变化，如果发现动物的角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。
防止麻醉过深，引起死亡。
常用全身麻醉剂：乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
实验动物常用操作(抓取、麻醉、给药)
实验动物常用操作方法1.小鼠的抓取与固定抓取和固定是动物实验操作中一项最基本的技术，所有的动物实验都要涉及到。
由于动物害怕陌生人接触其身体，对于非条件性的各种剌激会进行防御性反抗。
因此，在抓取、固定前应对动物的生活习性有所了解，根据其生活习性采用相应的抓取固定方法。
一般在抓取固定动物过程中首先慢慢友好地接近动物，并注意观察其反应，让动物有一个适应过程。
抓取时的动作力求准确、迅速、熟练，争取在动物感到不安之前抓取到动物。
（1）抓取方法习惯用右手者，首先用右手从笼盒内将小鼠尾中部或基部抓住(不可抓尾尖)，并提起或放在左手上或笼盖表面。
如下图。
也可用尖端带有橡皮的镊子夹住小鼠的尾巴。
抓取时需注意如果过分用力，会使动物窒息或颈椎脱臼，力过小，动物头部能反转来咬伤实验者的手。
因此实验者必须反复练习，熟练掌握。
（2）固定方法①徒手固定：右手抓取小鼠尾，将小鼠放在笼盖(或表面粗糙的物体)上，轻轻向后拉鼠尾。
然后在小鼠向前挣脱时，用左手(熟练者也可用同一只手)拇指和食指抓住两耳和颈部皮肤，无名指、小指和手掌心夹住背部皮肤和尾部，并调整好动物在手中的姿势。
习惯用左手者，操作时可调整左右手。
这类抓取方法多用于灌胃以及肌肉、腹腔和皮下注射等实验。
②固定板固定：小鼠麻醉后置小鼠固定板上，取仰卧位，用胶布缠粘四肢，再用针透过胶布扎在板上，从而将小鼠固定在小鼠固定板上。
此方法常用作心脏采血、解剖、外科手术等实验。
③固定架固定：让小鼠直接钻入固定架里，封好固定架的封口，露出尾巴。
此装置特别适用于小鼠尾静脉注射等。
④简易固定：进行尾静脉注射或抽血时，如果没有这些固定装置，也可采用一种简易的办法。
即倒放一个烧杯或其他容器，把小鼠扣在里面，只露出尾巴。
然后酒精擦拭，暴露血管，注射或采样。
这种烧杯或容器的大小和重量要适当，既能够压住尾部不让其活动，同时起到压迫血管的作用。
2.小鼠的麻醉方法实验动物的麻醉就是用物理的或化学的方法，使动物全身或局部暂时痛觉消失或痛觉迟饨，以利于进行实验。
常用的麻醉剂和麻醉方法(人医和动物均有)
常用的麻醉剂和麻醉方法常用的麻醉剂大致分为三类，即挥发性麻醉剂、非挥发性麻醉剂和中药麻醉剂。
麻醉方法一般分为吸入、注入（静脉、皮下、肌肉、腹腔等）、口服、灌胃等。
麻醉药物应用的方法和剂量如下：一最常用的挥发性麻醉药物为乙醚开放麻醉法是用脱脂棉浸湿乙醚后，小动物如大鼠、小鼠可将头部放入蘸有乙醚棉球的广口瓶内，4～6分钟后即处于麻醉状态。
适用于各种实验动物。
如实验过程较长，可在其鼻部放棉花或纱布，不时滴加乙醚维持，也可用乙醚先麻醉后再用非挥发性麻醉剂维持麻醉。
较大动物可用麻醉口罩滴药法。
封闭麻醉法是将小动物置于一封闭容器中，该容器中预先置于浸泡乙醚之棉球，乙醚挥发后使动物吸入而置麻醉。
在给药过程中必须随时观察动物的变化，如果发现动物的角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。
防止麻醉过深，引起死亡。
常用全身麻醉剂：乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
动物麻醉技术
动物麻醉技术4.麻醉技术实验动物的麻醉就是用物理的或化学的方法，使动物全身或局部暂时痛觉消失或痛觉迟钝，以利于进行实验。
在进行各类动物实验时，各种强刺激（疼痛）持续地传入大脑皮质，会引起大脑皮质的抑制，使其对皮质下中枢的调节作用减弱或消失，致使机体生理机能发生障碍，甚至发生休克及死亡。
另一方面，许多实验动物性情凶暴，容易伤及操作者。
因此，动物实验时，动物的麻醉是必不可少的。
动物的麻醉与人类的麻醉有不同之处，特别是麻醉毒性、副作用、使用剂量等方面是与人类有差别的，不能完全通用。
麻醉剂主要作用是抑制中枢神经系统，减除或减轻动物的疼感，但仍保持延髓（呼吸、心血管运动中枢）和平滑肌组织的功能。
应用麻醉药物使动物入睡，反射活动降低或部分消失，肌肉微松弛者称浅（不完全）麻醉，而使动物呈深睡状态，反射消失及肌肉松驰，则称为深（完全）麻醉。
后者多用于身体状况良好，手术实验复杂的情况。
动物麻醉的方法有全身麻醉、局部麻醉、针刺麻醉、复合麻醉、低温麻醉等。
一般实验室所采用的大部分是全身麻醉。
这里重点介绍一下动物全身麻醉的有关技术。
（一）全身麻醉前的准备在实施全身麻醉时，以下几个问题不容忽视：①动物禁食10～12小时。
不能少于8小时。
②麻醉前不能使用泻剂。
因为泻剂可导致降低血液的碱储，从而增加血流和组织的酸度，在麻醉和失血情况下，易发生酸中毒并能降低损伤组织的抗感染能力。
③麻醉后的动物必须保持气道的通畅和组织（眼球、舌、肠等器官）的营养。
④犬做长时间实验前1小时应灌肠排除积粪。
⑤应检查麻醉剂质量、数量是否满足要求，麻醉保定器具是否有破损（漏气或堵塞），有关麻醉中毒急救品和器材是否准备齐妥，以应急需。
（二）全身麻醉的方法全身麻醉的常用方法主要有吸入麻醉和非吸入麻醉。
1.吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体麻醉剂经呼吸道吸入动物体内，从而产生麻醉效果的方法。
吸入麻醉剂常用的有乙醚、氟脘、甲氧氟脘、氯仿等。
气体麻醉剂常用氧化亚氮、环丙烷等。
动物实验中常用麻醉药应用
中， 林
量 监 督
麻 醉 药
常美 琼
用，
检 验 所 ， 广
影 响 因 素
麻郑东
醉保 婷
广 州
药
， 黄
应︶ 昱
用
DOI:10援3969/J.ISSN援1671-6027援2019援04.023 510663
全身麻醉是意识和全身感觉暂时 可逆的消失。在进行动物实验，特 别是手术等操作时，为减少动物的 挣扎和保持其安静，醉，麻醉可分 为 5 个阶段：诱导前、诱导、维持、 恢复、麻醉后阶段。本文主要介绍 动物实验中常用的麻醉药及其注 意事项。 1 常用麻醉剂
局部麻醉要常见的有三种：（1）普鲁卡因：浸润麻醉（封 闭疗法）0.25%~0.5%溶液、利多卡因：浸润麻醉：0.25%~0.5% 溶液，表面麻醉：2%~5%溶液、丁卡因：0.5%~1%等渗溶液用 于眼科表面麻醉，1%~2%用于鼻，喉头喷雾或气管插管手术， 0.1%~0.5%用于泌尿道粘膜麻醉。 3 麻醉注意事项
熟悉各种麻醉药性质，麻醉时正确选用麻醉药、给药途 径与剂量。
麻醉前做好准备，动物禁食 12h，防止麻醉过程中呕吐， 人员做好相应消毒，穿戴准备，操作室做好器械准备。
麻醉时需注意保温护理，同时注意监护，关注心率，呼 吸，毛细血管回血时间，准备好相应急救药物，常备急救药物 有阿托品、肾上腺素、尼可刹米、多巴胺等掌握其用法。
DOI:10援3969/J.ISSN援1671-6027援2019援04.024
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实验动物麻醉方法麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。
(二)常用全身麻醉剂：1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。
万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。
待恢复自动呼吸后再进行操作。
2.苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。
通常在实验前半至一小时用药。
使用剂量及方法为：狗腹腔注射80～100mg/kg体重，静脉注射70～120mg/kg体重(一般每公斤体重给70～80mg即可麻醉，但有的动物要100～120mg才能麻醉,具体用量可根据各个动物的敏感性而定)。
兔腹腔注射150～200mg/kg体重。
3.戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长,一次给药的有效时间可延续3-5小时,所以十分适合一般使用要求。
给药后对动物循环和呼吸系统无显着抑制作用，药品价格也很便宜。
用时配成1～３％生理盐水溶液，必要时可加温溶解，配好的药液在常温下放置1～2月不失药效。
静脉或腹腔注射后很快就进入麻醉期，使用剂量及方法为：狗、猫、兔静脉注射30～35mg/kg体重,腹腔注射40～45mg/kg体重。
4.硫喷妥钠为黄色粉末，有硫臭，易吸水。
其水溶液不稳定，故必须现用现配,常用浓度为1～5％。
此药作静脉注射时，由于药液迅速进入脑组织，故诱导快，动物很快被麻醉。
但苏醒也很快，一次给药的麻醉时效仅维持半至一小时。
在时间较长的实验过程中，可重复注射，以维持一定的麻醉深度。
此药对胃肠道无副作用，但对呼吸有一定抑制作用，由于其抑制交感神经较副交感神经为强,常有喉头痉挛,因此注射时速度必须缓慢。
实验剂量和方法：狗静脉注射20～25mg/kg体重；兔静脉注射7～10mg/kg体重。
静脉注射速度以15秒钟注射2ml左右进行。
小鼠1％溶液腹腔注射0.1～0.3ml/只；大鼠0.6～0.8ml/只。
5.巴比妥钠使用剂量及方法：狗静脉注射225mg/kg体重；兔腹腔注射200mg/kg体重；鼠皮下注射200mg/kg体重。
6.氨基甲酸乙酯此药是比较温和的麻醉药，安全度大。
多数实验动物都可使用,更适合于小动物。
一般用作基础麻醉，如使用全部过程都用此麻醉时，动物保温尤为重要。
使用时常配成20～25％水溶液，狗、兔静脉、腹腔注射0.75～1g/kg体重。
但在作静脉注射时必须溶在生理盐水中，配成5％或10％溶液，及每公斤体重注射10～20ml。
鼠1.5～2g/kg体重，由腹腔注射。
以上麻醉药种类虽较多，但各种动物使用的种类多有所侧重。
如做慢性实验的动物常用乙醚吸入麻醉(用吗啡和阿托品作基础麻醉)；急性动物实验对狗、猫和大鼠常用戊巴比妥钠麻醉；对家兔和青蛙、蟾蜍常用氨基甲酸乙酯；对大鼠和小鼠常用硫喷妥钠或氨基甲酸乙酯麻醉。
二、麻醉方法(一)全身麻醉：麻醉药经呼吸道吸入或静脉、肌肉注射,产生中枢神经系统抑制,呈现神志消失，全身不感疼痛，肌肉松弛和反射抑制等现象，这种方法称全身麻醉。
其特点为抑制深浅与药物在血液内的浓度有关,当麻醉药从体内排出或在体内代谢破坏后,动物逐渐清醒，不留后遗症。
1.吸入麻醉法麻醉药以蒸气或气体状态经呼吸道吸入而产生麻醉者，称吸入麻醉，常用乙醚作麻醉药。
吸入法对多数动物有良好的麻醉效果，其优点是易于调节麻醉的深度和较快的终止麻醉，缺点是中、小型动物较适用，对大型动物如狗的吸入麻醉操作复杂，通常不用。
具体方法是：使用乙醚麻醉兔及大小鼠时，可将动物放入玻璃麻醉箱内，把装有浸润乙醚棉球的小烧杯放入麻醉箱，然后观察动物。
开始动物自主活动，不久动物出现异常兴奋，不停地挣扎，随后排出大小便。
渐渐地动物由兴奋转为抑制，倒下不动，呼吸变慢。
如动物四肢紧张度明显减低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，则表示动物已进入麻醉，可行手术和操作。
在实验过程中应随时观察动物的变化，必要时把乙醚烧杯放在动物鼻部，以维持麻醉的时间与深度。
2.注射麻醉法常用的麻醉药有戊巴比妥钠、硫喷妥钠、氨基甲酸乙酯等。
大、小鼠和豚鼠常采用腹腔注射法进行全身麻醉。
狗、兔等动物既可腹腔注射给药,也可静脉注射给药。
在麻醉兴奋期出现时，动物挣扎不安，为防止注射针滑脱，常用吸入麻醉法进行诱导，待动物安静后再行腹腔或静脉穿刺给药麻醉。
在注射麻醉药物时，先用麻醉药总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，如已达到所需麻醉的程度，余下的麻醉药则不用，避免麻醉过深抑制延脑呼吸中枢导致动物死亡。
(二)动物局部麻醉方法：用局部麻醉药阻滞周围神经末梢或神经干、神经节、神经丛的冲动传导，产生局部性的麻醉区，称为局部麻醉。
其特点是动物保持清醒，对重要器官功能干扰轻微，麻醉并发症少，是一种比较安全的麻醉方法。
适用于大中型动物各种短时间内的实验。
局部麻醉操作方法很多，可分为表面麻醉、局部浸润麻醉、区域阻滞麻醉以及神经干(丛)阻滞麻醉。
1.表面麻醉利用局部麻醉药的组织穿透作用，透过粘膜,阻滞表面的神经末梢，称表面麻醉。
在口腔及鼻腔粘膜、眼结膜、尿道等部位手术时,常把麻醉药涂敷、滴入、喷于表面上，或尿道灌注给药，使之麻醉。
2.区域阻滞麻醉：在手术区四周和底部注射麻醉药阻断疼痛的向心传导,称区域阻断麻醉。
常用药为普鲁卡因。
3.神经干(丛)阻滞麻醉：在神经干(丛)的周围注射麻醉药，阻滞其传导,使其所支配的区域无疼痛，称神经干(丛)阻滞麻醉。
常用药为利多卡因。
4.局部浸润麻醉：沿手术切口逐层注射麻醉药，靠药液的张力弥散，浸入组织,麻醉感觉神经末梢，称局部浸润麻醉。
常用药为普鲁卡因。
在施行局部浸润麻醉时，先固定好动物，用0.5～1％盐酸普鲁卡因皮内注射，使局部皮肤表面呈现一桔皮样隆起，称皮丘，然后从皮丘进针，向皮下分层注射，在扩大浸润范围时，针尖应从已浸润过的部位刺入，直至要求麻醉区域的皮肤都浸润为止。
每次注射时，必须先抽注射器，以免将麻醉药注入血管内引起中毒反应。
三、使用全身麻醉剂的注意事项给动物施行麻醉术时,一定要注意方法的可靠性,根据不同的动物选择合适的方法，特别是较贵重的大型动物。
1.麻醉剂的用量，除参照一般标准外，还应考虑个体对药物的耐受性不同,而且体重与所需剂量的关系也并不是绝对成正比的。
一般说，衰弱和过胖的动物，其单位体重所需剂量较小，在使用麻醉剂过程中，随时检查动物的反应情况,尤其是采用静脉注射,绝不可将按体重计算出的用量匆忙进行注射。
2.动物在麻醉期体温容易下降，要采取保温措施。
3.静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应,当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
配制的药液浓度要适中不可过高，以免麻醉过急；但也不能过低，以减少注入溶液的体积。
4.作慢性实验时，在寒冷冬季，麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平。
四、实验动物用药量的确定及计算方法(一)动物给药量的确定观察一种药物对实验动物的作用时，一个重要的问题就是给动物用多大的剂量较合适。
剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物中毒致死。
可以按下述方法确定剂量：1.先用少量小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量,然后用小于中毒量的剂量，或取致死量的若干分之一作为应用剂量，一般可取1/10～1/5。
2.植物药粗制剂的剂量多按生药折算。
3.化学药品可参考化学结构相似的已知药物，特别是化学结构和作用都相似的剂量。
4.确定剂量后，如第一次用药的作用不明显，动物也没有中毒的表现,可以加大剂量再次实验。
如出现中毒现象，作用也明显，则应降低剂量再次实验。
在一般情况下，在适宜的剂量范围内，药物的作用常随剂量的加大而增强。
所以有条件时，最好同时用几个剂量作实验，以便迅速获得关于药物作用的较完整的资料。
如实验结果出现剂量与作用强度之间毫无规律时，则更应慎重分析。
5.用大动物进行实验时，防止动物中毒死亡,开始的剂量可采用鼠类的1/15～1/2,以后可根据动物的反应调整剂量。
6.确定动物给药剂量时，要考虑给药动物的年龄大小和体质强弱。
一般说确定的给药剂量是指成年动物的，如是幼龄动物，剂量应减小。
如以狗为例：6个月以上的狗给药剂量为1份时，3～6个月的给1/2份，45～89日的给1/4份，20～44日的给1/8份，10～19日的给1/16份。
7.确定动物给药剂量时，要考虑因给药途径不同，所用剂量也不同。
以口服量为100时，皮下注射量为30～50，肌肉注射量为20～30，静脉注射量为25。
(二)人与动物的用药量换算方法人与动物对同一药物耐受性不同，一般动物的耐受性要比人大，单位体重的用药量动物比人要高。
必须将人的用药量换算成动物的用药量。
一般可按下列比例换算：人用药量：1 小鼠、大鼠：50～100 兔、豚鼠：15～20 狗、猫：5～10 以上系按单位体重口服用药量换算。
如给药途径为静脉、皮下、腹腔注射，换算比例应适当减小些。