实验一 培养基优化ppt

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实验一 培养基优化 - 副本

实验一 培养基优化 - 副本

分析A因素各水平对试验指标的影响。由表3可以看出,A1的
影响反映在第1、2、3号试验中,A2的影响反映在第4、5、6
号试验中,A3的影响反映在第7、8、9号试验中。 A因素的1水平所对应的试验指标之和为
KA1=y1+y2+y3=0+17+24=41,kA1= KA1/3=13.7;
A因素的2水平所对应的试验指标之和为
平,列出因子水平表; 根据因子和水平数选用合适的正交表,设计 正交表头,并安排实验; 根据正交表给出的实验方案,进行实验; 对实验结果进行分析,选出较优的实验条件 以及对结果有显著影响因子。
一、实验目的
掌握微生物斜面培养基、种子培养基及发
酵培养基确定方法,学会对已确定菌种确 定实验室发酵工艺。
二、实验原理
生物量的测定方法有比浊法和直接称重法等。
由于细菌、酵母等单细胞生物在液体深层通 气发酵过程中是以均一混浊液的状态存在的, 所以可以采用直接比色法进行测定。
三、仪器与试剂
全恒温振荡培养箱,分光光度计、电热恒温
水浴槽、天平、电炉。
试剂为葡萄糖、胰蛋白胨、 酵母浸粉、
NaCl。
案(表10-5)。
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退 出
表10-5 试验方案及试验结果 试验号 1 2 3 4 5 6

A 11(10) 1 1 22(50) 2 2 B 11(1) 22(4) 33(7) 1 2 3

C 11(20) 22(35) 33(50) 2 3 1 D
1(1.5) 1
2(2.5) 2 3(3.5) 3
四、实验方法
(1)培养基的配制 表1
因素水平 1 2 3 4 葡萄糖% 5 3 1.5 1

培养基优化方法

培养基优化方法

方法一:LB培养基、平板保存的工程菌HB101/pJJ-rhIFNα2B、Amp、酵母提取物、蛋白胨、10×SAE、100×MgCl2、100×TES、Tris、HCl10×SAE配方(1L):KH2PO410g、K2HPO4·3H2O52.4g、NH4Cl10g、K2SO426g100L【步骤】种子制备:1、取100mLLB培养基加入到一无菌的500ml三角形中,同时加入100μl100mg/ml的Amp。

2、接种甘油管保存的工程菌HB101/pJJ/rhIFNα-2b100μl,使工程菌分散于培养液中。

3、盖好试管,在摇床上以220rpm的速度,于37℃培养至对数中期(约5小时)上罐准备:1、配置500ml10×SAE2、配置发酵培养基(3L)称取胰蛋白胨30g,酵母提取物90g,加入2.64L去离子水,搅拌溶解后加入300ml 10×SAE、30ml100×MgCl2、30ml100×TES。

3、将培养基加入到5L发酵罐,插入pH、溶氧电极和温度探头,装上空气过滤膜,包扎好后放入灭菌锅中,同时放入一瓶250ml30%磷酸(调pH用),于1.05kg/cm2高压下蒸汽灭菌30min。

4、待灭菌结束后,将发酵罐放在冷却底座上,开启发酵罐控制系统,联接好冷凝水、空气线路。

5、控制pH=7.4,在转速650r/m、通气量3L/min 定D.O.为100%于自动控制发酵罐上37℃发酵22小时。

6、当培养基温度冷却到37℃后,接入制备好的种子7、从接种完时刻起,每两小时取适当量样品,其中取1ml用于测菌体浓度(A600nm);另取1ml加入到一称过重ep管中,12000rpm离心,小心取出900μl上清用作测菌体浓度的空白,甩干后再次称重,计算菌体湿重,按每8.3mg菌体湿重加入300μL水重悬菌体,冻于-20℃备用。

枯草芽孢杆菌培养基优化

枯草芽孢杆菌培养基优化
培养特性:枯草芽孢杆菌可在营养丰富的培养基上生长,如LB培养基、 酪素培养基等;在固体培养基上可形成典型的菌落,菌落为乳白色、圆
形、凸起、湿润。
枯草芽孢杆菌在培养过程中可产生多种代谢产物,如抗菌物质、酶等, 这些代谢产物具有潜在的商业价值。
03
培养基成分对枯草芽孢杆菌生长 的影响
碳源对枯草芽孢杆菌生长的影响
氮源是培养基中重要的营养成分之一, 对枯草芽孢杆菌的生长和代谢具有重要
影响。
常用的氮源包括有机氮源和无机氮源, 其中有机氮源如蛋白胨、酵母粉等可以 提供丰富的营养物质,促进枯草芽孢杆 菌的生长,而无机氮源如硝酸盐、氨盐
等则对其生长作用有限。
在优化培养基时,需要选择适当的氮源 及其浓度,以获得最佳的生长效果。
实验操作
根据因素和水平数量,选择合适的均匀表 ,确保每个实验组合都包含所有因素和水 平,且每个水平的出现次数相同。
数据处理
根据均匀表进行实验操作,记录每个组合 下的枯草芽孢杆菌生长情况。
分析实验数据,找出最优的培养基组合。
05
培养基优化实验结果分析
正交试验设计结果分析
• 氮源种类:在正交试验中,不同氮源种类对枯草芽孢杆菌的生长和芽孢产量有显著影响。其中,牛肉膏、蛋白 胨和尿素为较优的氮源,牛肉膏与蛋白胨的组合或牛肉膏与尿素的组合为最佳氮源。
生长因子对枯草芽孢杆菌生长的影响
生长因子是促进微生物生长和代谢的一类微量营养成分。
不同的生长因子对枯草芽孢杆菌的生长和代谢具有不同的作用,如维生素B1可以促进其生 长和产酶,而其他一些生长因子则对其生长和代谢没有明显影响。
在优化培养基时,需要添加适量的生长因子,以促进枯草芽孢杆菌的生长和代谢。
培养基pH值对枯草芽孢杆菌生长的影响

青霉素培养基优化ppt课件

青霉素培养基优化ppt课件

针对三因子进行正交实验
• 乳糖----------22.5g 或葡萄糖----------7.5g • 醋酸铵----------8.0g • 苯乙酸---------1.0g
青霉素培养基因子水平表
因子
乳糖/葡萄糖 20/10g 22.5/7.5g 25/5g
醋酸铵 7.0g 8.0g 9.0g
碳源PK:乳糖比葡萄糖更优越
青霉素的生物合成,受糖分解代谢产物 的阻遏,如合成青霉素的酰基转移酶就 会被阻遏。 在青霉素发酵过程中,被青霉素迅速利 用的葡萄糖有利于菌体生长,但抑制青 霉素的合成。 被缓慢利用的乳糖,水解成单糖的速度 正好符合青霉素生产期合成青霉素的需 要,而又不会产生高浓度的分解产物来 抑制青霉素的合成,是生产青霉素的优 越碳源。
生产青霉素的菌种


目前,国内青霉素生产菌按其在深层培养中菌 丝的形态分为丝状菌和球状菌两种。 根据丝状菌产生孢子的颜色又分为黄孢子丝状 菌和绿孢子丝状菌,常用菌种为绿孢子丝状菌, 如产黄青霉菌。
青霉素制备的一般流程图
菌种 孢子制备 种子制备 发酵阶段
前体
发酵
发酵液预处理及种子加滤
提取及精制 成品检验 成品包装 提取阶段
青霉素分泌期
菌丝自溶期
青霉素发酵培养基成分:
碳源:青霉菌能利用多种碳源如乳糖、蔗糖、葡萄糖
目前采用淀粉水解糖,糖化液进行流加。 等。
氮源:可采用玉米浆(0.3%-0.4%)、花生饼粉、精制 前体:为生物合成含有苄基基团的青霉素G,需要在发
棉籽饼粉或麸皮粉等有机氮源,及醋酸铵(提供氮源,同时提供 碳源)、氯化氨、硫酸氨、硝酸氨等无机氮源。 酵中加入前体如苯乙酸或苯乙酰胺。由于它们对青霉素有 一定毒性,故一次加入量不能大于0.1%,并采用多次流 加方式加入。 霉素有毒害作用,应严格控制发酵液中铁含量在 30ug/mL以下。

培养基优秀PPT讲义

培养基优秀PPT讲义
如灰色链霉菌在葡萄糖-硝酸盐-其他盐的培养基上都能很好地生长和产 生孢子;但若加入0,5%酵母膏或酪蛋白后;就只长菌体而不产孢子
B所用无机盐的浓度要适量;否则会影响孢子量和孢子颜 色,
C注意pH和培养基的湿度,
常用孢子培养基:
◆ 麸皮培养基
◆ 小米培养基
◆ 大米培养基
◆ 玉米碎屑培养基
◆ 用葡萄糖、蛋白胨、牛肉膏和食盐等配制的琼脂斜面培养基
淀粉水解糖的制备 是发酵生产的一项
重要工艺,
糖类
葡萄糖 乳糖 淀粉 蔗糖
工业上常用的糖类及来源
来源
纯葡萄糖、水解淀粉 纯乳糖、乳清粉 大麦、花生粉、燕麦粉、黑麦粉等 甜菜糖蜜、甘蔗糖蜜、粗红糖、精白糖等
葡萄糖
最易利用;几乎所有微生物都能利用
葡萄糖常作为培养基的一种主要成分;并且作为加速微生 物生长的一种有效糖,
一般种子培养基都用营养丰富而完全的天然有机氮源;因为 有些氨基酸能刺激孢子发芽,但无机氮源容易利用;有利菌体的 迅速生长;所以在种子培养基中常包括有机氮源和无机氮源,
最后一级的种子培养基的成分最好能较接近于发酵培养基; 这样可使种子进入发酵培养基后能迅速适应;快速生长,
3发酵培养基
供菌体生长、繁殖和合成大量代谢产物用的培养基,
糖蜜主要含有蔗糖;总糖可达50%-75%,
糖蜜分甘蔗糖蜜和甜菜糖蜜;二者在糖的含量和无机盐的 含量上有所不同;即使同一种糖蜜由于加工方法不同其成分也 存在差异;因此使用时要注意,
淀粉糊精 多糖;也是常用的碳源; 需经胞外酶水解成单糖后再被吸收利用; 使用淀粉可克服葡萄糖代谢过快的弊病;价格也比较低廉;在 发酵工业中被普遍使用, 常用的淀粉为玉米、甘薯、马铃薯、木薯淀粉,
培养基

发酵培养基的优化方法与策略PPT课件

发酵培养基的优化方法与策略PPT课件
▪ 大米和小米常用作霉菌孢子培养基,因它们含 氮少、疏松、表面积大,是较好的孢子培养基。 水分控制在21%-25%。(手捏法)
第5页/共60页
B 种子培养基
• 种子培养基是供(孢子萌发)、菌体生长和大 量繁殖的培养基。
• 在种子扩培过程中,各级种子培养基的成分往 往不一样。 (种子培养基营养相对比较丰富)
2.2.2, 无机氮源-- (NH4) 2SO4 , NH4 Cl , NH4 NO3 , KNO3, NaNO3, NH3
第18页/共60页
2.2.1 有机氮源
• 成分复杂:除了蛋白质、多肽、氨基酸外,还有 少量的糖、脂肪、无机盐、维生素等
• 玉米浆 Corn steep Liquor • 玉米淀粉生产过程中的副产品 • ①可溶性蛋白、生长因子(生物素)、苯乙酸 • ②较多的乳酸 • ③硫、磷、微量元素等 第19页/共60页
• 最后一级的种子培养基的成分比较接近发酵培 养基。
第6页/共60页
C 发酵培养基
---发酵培养基是供菌体生长、繁殖和合成产物之用。
要求 ① 培养基能够满足产物合成的需要。 ② 培养基的原料应因地制宜,价格低廉;质量稳定,资源
丰富,便于运输、仓藏。 ③所选用的培养基应能满足总体工艺的要求,如不应该影响
(3) 产物促进剂
促进剂提高产量的机制还不完全清楚,其原因是多方面 的(机理不详)。 ➢ 有些促进剂本身是酶的诱导物; ➢ 有些促进剂是表面活性剂,可改善细胞的透性,改善
细胞与氧的接触从而促进酶的分泌与生产; ➢ 也有人认为表面活性剂对酶的表面失活有保护作用; ➢ 有些促进剂的作用是沉淀或螯合有害的重金属离子。
锰对于羧化作用是必需的,糖代谢中许多酶的活性都 与锰有关。

培养基及其设计、制备、优化


1.3.3 氧化还原电势Eh:好氧微生物生长Eh为:
+0.3 ~0.4V,兼性厌氧微生物为:>0.1V,厌氧微生 物为:< 0.1V。 1.4 根据培养微生物的目的配制:产物是菌体:N源含 量比较高产物是某种代谢产物:考虑代谢产物的化 学组成。
1.5 尽量使用廉价易得的原料(8个代替)
以粗代精,以“野”代“家”,以废代好,以简代繁,
-dN/dt=kN 积分得:
t=2.303/ k(lgN 0/Ns )
N 0—灭菌初始时培养基菌数,个/ml Ns—灭菌一时间段后培养基菌数,一般取0.001个/ml k 表示微生物的耐热性。
灭菌温度T与菌死亡反应速度常数K的关系:对 于一定的菌种,灭菌温度与k 的关系可用阿累尼
乌斯方程表示:
k=Ae-E/RT
以烃代粮,以纤代粮,以氮代朊 ,以“国”代“进”
2、培养基的优化方法
2.1 生态模拟 2.2 查阅文献:直接、间接的信息。
2.3 借助优选法或正交试验法精心设计培养基的配方。
2.4 试验比较:实验规模一般由定性到定量,由小到大。 摇瓶、反应器培养基研究的两个层次
摇瓶——培养基设计的第一步
反应器—扩大培养进一步进行配方优化
的生长。Aw表示微生物在天然环境中可实际利用的自 由水或游离水的含量。 Aw=P/P0,即某溶液的蒸汽
压(P)与纯水的蒸汽压(P0)的比值。各种微生物
的生长范围Aw:0.998~0.6,设计培养基时应考虑 到Aw, G-生长的最小水分活度一般比G+高,表明通常 G+比G-有较高的内部渗透压,酵母与 G+类似,丝状 真菌范围大。
4.2 培养基成分 油脂,糖类及一定浓度的蛋白质可增加微生物的耐热 性,另一些物质,如高浓度的盐类,色素等可削弱其 耐热性。 4.3 泡沫:灭菌应避免产生泡沫,因为泡沫能形成隔层, 使热量难以传递,不易达到微生物致死温度。 4.4 培养基的物理状态:牛顿型培养基(细菌、酵母), 非牛顿型培养基(放线菌、霉菌) 固体培养基比液体培养基灭菌时间长,液体的传热效 率高。 4.5 微生物细胞中水含量:在一定范围内,微生物细胞 含水量越多,则蛋白质的凝固温度越低。

培养基的配制及质量控制课件(共44张PPT)

3、当批培养基不符合促生长试验,应寻找造成不合格的原因。
禁用金属容器如铁、铜、铝容器,避免 ①每种菌液接种量含菌小于100cfu
⑶其他 如溶血,可能冷藏温度下形成的结晶,大量的汽泡,微生物污染,氧化还原指示剂的状况,批数量和有效期的检查和记录,培养 基的无菌检查等。
金属离子与培养基成分结合,生成有害 当培养基需要添加其它组分时,添加后也应将其充分混匀。
⑵微生物限度检查(计数培养基)培养基 的适用性检查
微生物限度检查(计数培养基) 使用 前应进行适用性试验,适用性试验包括 促生长、抑制及指示能力检查。
菌种
铜绿假单胞菌 [CMCC(B)10 104]
金黄色葡萄球菌 [CMCC(B)26003]
枯草芽孢杆菌 [CMCC(B)63501 ]
白色念珠球菌 [CMCC(B)98001]
矫正pH 配制培养基必须矫正pH,干燥培养基也
必须对pH进行验证,高压灭菌前的pH应比最终 pH值高左右。矫正pH后的培养基应加热、过滤,
使培养基澄清。
2、培养基的灭菌
灭菌方法及条件不当可直接影响培养基质量,培 养基灭菌方法和条件,商品化的成品培养基或自配 的培养基若采用不适当的加热和灭菌条件,有可能 引起颜色变化、透明度降低、琼脂凝固力或pH的变
整个有效期内均需符合这些相应的标准。每批培养基储 存的时间将取决于一定存放条件(包括容器和密封性) 的培养基组成成分的稳定性。
试验结果处理
⑴当批培养基不符合促生长试验,应寻找造成不 合格的原因。
⑵这个调查包括采取适当的行动以防止问题的重 复出现。
⑶如果未找到原因或还没有解决有关培养基的促 生长问题,那么任何不符合要求的批次均不能使 用。
一、培养基的配制
培养基是绝大多数微生物试验的基础。因此,培养基的质 量是微生物试验成功与否的关键因素。适宜的培养基制备 方法、贮藏条件和质量控制试验是提供优质培养基的保证。

枯草芽孢杆菌培养基优化ppt


06
参考文献
参考文献
《Biochemistry and Molecular Biology of Bacillus subtilis and Other Gram-Positive Microorganisms》
《Biosynthesis of antibiotics and related secondary metabolites》
培养基优化目的和意义
通过优化培养基组成和条件,可以提高枯草芽孢杆菌的产 量和抗菌活性,为农业、医药等领域提供更多、更好的生 物防治制剂。
优化培养基可以降低生产成本,提高产业化应用的可行性 。
培养基优化策略及方法
通过单因素实验法,分别考察不同碳源、氮源、无机盐等对枯草芽孢杆菌生长和 抗菌活性的影响,确定最佳组成和浓度。 采用正交实验法,对培养基主要成分进行优化组合,得到最佳培养基配方。
在正交实验中,当初始pH值为7 时,枯草芽孢杆菌的菌落数达
到最大值。
结果分析与讨论
根据单因素和正交实 验的结果,我们可以 得出以下结论
葡萄糖浓度对枯草芽 孢杆菌的生长具有显 著影响,最佳浓度为 0.5%。
蛋白胨是促进枯草芽 孢杆菌生长的重要氮 源,最佳浓度为 0.75%。
初始pH值对枯草芽孢 杆菌的生长也有较大 影响,最佳值为7。
2023
枯草芽孢杆菌培养基优化
目录
• 引言 • 枯草芽孢杆菌培养基优化原理 • 枯草芽孢杆菌培养基优化实验方案 • 实验结果分析与讨论 • 结论与展望 • 参考文献
01
引言
枯草芽孢杆菌简介
枯草芽孢杆菌是一种广泛分布在土壤、空气、水等环境中的 益生菌,具有耐高温、耐旱、耐盐等特点。
枯草芽孢杆菌可以产生多种抗菌物质,如枯草菌素、制霉菌 素等,对多种植物病原菌具有抑制作用。

优选常规培养基的制作ppt

细菌对这些物质需要量不大,但如缺少,某些 细菌就不能生长。通常肝浸液、肉浸液、酵母 浸液和血液中含有大部分生长因子,但有时需 要另外加入。
1.8无机盐类
制备培养基时常加入氯化钠和磷酸盐,这是因 为细菌生长繁殖需要无机盐类,如K、Na、 Mg、Fe、磷酸盐、氯化物等。
其中,有的需要量极微,如Mn、Cu等。这些 无机离子除作为构成菌体的成分外,还是酶的 激活剂,并起维持一定渗透压的作用。
4.2指示剂是为方便了解和观察细菌是否利用 和分解培养基中糖、醇类物质,而在培养基中 加入的成分。
常用指示剂多为酸碱指示剂,如酚红、溴甲酚 紫、溴麝香草酚蓝、中性红、甲基红、碱性复 红等,还有氧化还原指示剂,如亚甲蓝。
此外,一些新的氧化还原指示剂如四氮唑盐类 等,也已广泛用于细菌快速培养和鉴定以及快 速药敏试验方面。
4.抑制剂和指示剂
抑制剂和指示剂是由于选择、鉴定和判断结果 的需要而加入到培养基中的物质,并不为细菌 生长繁殖所需。
4.1抑制剂加入目的是抑制非检出菌生长或其 少生长,以利于检出菌生长。根据所要抑制选 择不同抑制剂。
常用抑制剂有胆盐、煌绿、玫瑰红酸、亚硫酸 钠、四硫磺酸盐、叠氮钠及一些染料和某些抗 生素等。在选择抑制剂时需注意抑制剂应具有 选择性抑制作用。
常用于制备特殊培养基,如Braid-Praker琼脂 培养结核杆菌的罗氏培养基和白喉棒状杆菌的 吕氏血清培养基等。
此外鸡蛋和血清还具有凝固剂作用,便于观察 细菌菌落形态和生长情况。
1.7生长因子
在细菌生长繁殖过程中,需要一定的辅助生长 因子。
生长因子根据化学结构及代谢功能不同分为三 大类:维生素、氨基酸和嘌呤与嘧啶。

真菌pH为:5.0-6.0。
第二节 实验内容
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水平
1 2 3
10-3 因素水平表
试验因素
加水量
加酶量
(mL/100g) (mL/100g)
A
B
酶解温度 (℃) C
10
1
20
50
4
35
90
7
50
酶解时间 (h) D
1.5
2.5
3.5
(3) 选择合适的正交表
正交表的选择是正交试验设计的首要问题。确定了
因素及其水平后,根据因素、水平及需要考察的交互
pH的要求
培养基设计过程
根据前人的经验,初步确定可能的培养基成分; 通过单因子实验最终确定出最适宜的培养基成分; 当培养基成分确定后,剩下的问题就是各成分最适
的浓度,由于培养基成分很多,为减少实验次数常采 用一些合理的实验设计方法。
正交实验设计
根据问题的要求和客观的条件确定因子和水
(3) 冷却后接种(接种量为 5%),置于 37 ℃ 培养箱
进行培养。
(4) 测OD 值:将接种0 h、 2 h、3 h、4 h、5 h不
同时间的菌悬液摇均匀后于600 nm 波长、1cm 比 色皿中测定 OD 值。比色测定时,用未接种的培 养基作空白对照,并将 OD 值填入表中,最终确 定最佳培养基的组成及发酵时间。
此例不考察交互作用,可将加水量(A)、加酶量(B)和酶解
温度 (C)、酶解时间(D)依次安排在L9(34)的第1、2、3、4 列上,见表10-4所示。
SUCCESS
THANK YOU
2020/1/9
(2) 选因素、定水平,列因素水平表
根据专业知识、以往的研究结论和经验,从影响试验指标的 诸多因素中,通过因果分析筛选出需要考察的试验因素。一般确 定试验因素时,应以对试验指标影响大的因素、尚未考察过的因 素、尚未完全掌握其规律的因素为先。试验因素选定后,根据所 掌握的信息资料和相关知识,确定每个因素的水平,一般以2-4 个水平为宜。对主要考察的试验因素,可以多取水平,但不宜过 多(≤6),否则试验次数骤增。因素的水平间距,应根据专业 知识和已有的资料,尽可能把水平值取在理想区域。
四、实验方法
(1)培养基的配制 表1 正交表试验设计
因素水平 1 2 3 4
葡萄糖% 胰蛋白胨% 酵母浸粉%
5
2
1
3
1.5
0.75
1.5
1
0.5
1
0.5
0.25
NaCl% 2 1.5 1 0.5
表2 正交表实验方案
编号 葡萄糖 胰蛋白胨 酵母浸粉 NaCl
生物量(OD)
(A)
(B)
(C)
(D)
0h
及交互作用的自由度之和等于所选正交表总自由度,
则可采用有重复正交试验来估计试验误差。
(4) 表头设计
所谓表头设计,就是把试验因素和要考察的交互作用分别安排到正交表的 各列中去的过程。
在不考察交互作用时,各因素可随机安排在各列上;若考察交互作用,就应按 所选正交表的交互作用列表安排各因素与交互作用,以防止设计“混杂” 。
2.1 试验方案设计
(1) 明确试验目的,确定试验指标
对本试验而言,试验目的是为了提高山楂原料的利用率。所以可以以液化率
{液化率=[(果肉重量-液化后残渣重量)/果肉重量]×100%}为试验指标,来评价液 化工艺试条验件设的计好前坏必。须液明化确率试越验高目,的山,楂即原本料次利试用验率要就解越决高什。么问题。试验目的确定 后,对试验结果如何衡量,即需要确定出试验指标。试验指标可为定量指标,如强 度、硬度、产量、出品率、成本等;也可为定性指标如颜色、口感、光泽等。一般 为了便于试验结果的分析,定性指标可按相关的标准打分或模糊数学处理进行数量 化,将定性指标定量化。
平,列出因子水平表;
根据因子和水平数选用合适的正交表,设计
正交表头,并安排实验;
根据正交表给出的实验方案,进行实验; 对实验结果进行分析,选出较优的实验条件
以及对结果有显著影响因子。
一、实验目的
掌握微生物斜面培养基、种子培养基及发
酵培养基确定方法,学会对已确定菌种确 定实验室发酵工艺。
上一张 下一张 主 页 退 出
对本试验分析,影响山楂液化率的因素很多,如山楂品种、山楂果肉的破碎 度、果肉加水量、原料pH 值、果胶酶种类、加酶量、酶解温度、酶解时间等等。 经全面考虑,最后确定果肉加水量、加酶量、酶解温度和酶解时间为本试验的试 验因素,分别记作A、B、C和D,进行四因素正交试验,各因素均取三个水平, 因素水平表见表10-3所示。
2h
3h
4h 5h
1
1
1
1
1
2
1
2
2
2
3
1
3
3
3
4
1
4
4
4
5
2
1
2
3
6
2
2
1
4
7
2
3
4
1
8
2
4
32Βιβλιοθήκη 9313
2
10
3
2
4
3
11
3
3
1
4
12
3
4
2
1
13
4
1
4
2
14
4
2
3
1
15
4
3
2
4
16
4
4
1
3
(2) 将上述培养基配制好以后,每支支试管装入培
养基 3ml,于 121℃下灭菌 25 min,冷却。
五、思考题
(1) 比浊计数在生产实践中有何应用价值? (2) 本实验为什么采 600 nm 波长测定大肠杆
菌菌悬液的光密度?如果你在实验中需要测 定酵母菌生长的 OD 值,你将如何选择波长?
实例:为提高山楂原料的利用率,研究酶法液化工艺制造山楂原汁,拟通过正交试 验来寻找酶法液化的最佳工艺条件。
作用的多少来选择合适的正交表。正交表的选择原则
是在能够安排下试验因素和交互作用的前提下,尽可
能选用较小的正交表,以减少试验次数。

一般情况下,试验因素的水平数应等于正交表中
的水平数;因素个数(包括交互作用)应不大于正交
表的列数;各因素及交互作用的自由度之和要小于所
选正交表的总自由度,以便估计试验误差。若各因素
实验一 微生物培养基优化
优化培养基的目的和方法
成分&最佳配比
从生化反应的基本原理来推断和计算?
经验
配方实验
培养基成分选择的原则
菌种的同化能力 大分子原料应首先考虑是否具有相应的水解酶。 代谢的阻遏与诱导 快速利用的碳(氮)源和慢速利用的碳(氮)源的相互配合 合适的C、N和比 C源:碳架,能源>N源;C/N=100:(0.2-2.0)
二、实验原理
生物量的测定方法有比浊法和直接称重法等。
由于细菌、酵母等单细胞生物在液体深层通 气发酵过程中是以均一混浊液的状态存在的, 所以可以采用直接比色法进行测定。
三、仪器与试剂
全恒温振荡培养箱,分光光度计、电热恒温
水浴槽、天平、电炉。
试剂为葡萄糖、胰蛋白胨、 酵母浸粉、
NaCl。
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