急性大鼠心肌梗死实验模型的制备(课堂PPT)

合集下载

急性大鼠心肌梗死实验模型的制备

急性大鼠心肌梗死实验模型的制备

急性大鼠心肌梗死实验模型的制备
陈红霞;高英茂;邴鲁军
【期刊名称】《中国组织化学与细胞化学杂志》
【年(卷),期】2005(014)001
【摘要】目的建立一种稳定可重复的急性心肌梗死动物模型.方法 Wistar大鼠经戊巴比妥钠麻醉后,气管切开插管,连通呼吸机,开胸后结扎左冠状动脉前降支.4周后取出心脏做病理组织学和心肌特异性肌钙蛋白T免疫组织化学染色检测.结果成功制备心肌梗死动物模型,并进行了病理组织学和免疫组织化学染色证实.结论本文建立的实验方法操作简单,成功率高,结果可靠.
【总页数】4页(P70-73)
【作者】陈红霞;高英茂;邴鲁军
【作者单位】山东大学医学院组织胚胎学教研室,济南,250012;山东大学医学院组织胚胎学教研室,济南,250012;山东大学医学院组织胚胎学教研室,济南,250012【正文语种】中文
【中图分类】R541
【相关文献】
1."血瘀证"下急性心肌梗死模型与单纯急性心肌梗死模型大鼠心肌形态学、心肌酶学及血液流变学变化的比较 [J], 王佳;曲绍眷;于晓风;周金影;睢大筼
2."血瘀证"下急性心肌梗死模型与单纯急性心肌梗死模型大鼠心脏血流动力学及心电图变化的比较 [J], 于晓风;王佳;曲绍春;周金影;西月;睢大筼
3."血瘀证"下急性心肌梗死模型与单纯急性心肌梗死模型大鼠血液生化学比较 [J],
曲绍春;于晓风;王佳;周金影;谢昊霖;睢大筼
4.大鼠急性心肌梗死模型制备及对心功能影响的实验研究 [J], 侯春丽;张冬梅;侯学红;杨少军
5.大鼠急性心肌梗死模型制备方法研究进展 [J], 曹珏;李贻奎;陈孟倩;姚魁武
因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

大鼠急性心肌梗死模型的制备

大鼠急性心肌梗死模型的制备

实验流程: 1、麻醉动物 2、建立人工气道,机械通气 3、开胸,暴露心脏,结扎左冠状动脉 4、心电图验证损伤电流,确认心肌梗死 5、关胸,抗感染处理 6、附加实验,可练习制备心动过缓模型
实验步骤:
大鼠称重后用戊巴比妥钠溶液(30 mg/kg)或水合氯醛(300 mg/kg) 腹腔注射,麻醉后仰卧固定于手术 台板上。手术野皮肤去毛,碘酒、 酒精消毒,铺消毒巾。同时连心电 图机,用肢体导联进行心电图监测。
实验步骤:
迅速将心脏复位,逐层缝合;
最后一针先穿针打虚结,通过此间隙用注射器 抽出胸腔内气体,恢复胸腔负压后关胸。 待动物苏醒后拔除气管插管,以7/0 无损伤逢 合针将切口处相邻两个气管软骨环拉拢后闭合 气管。(如为经口腔插管则不需缝合。) 术后每天肌肉注射青霉素80万U,预防感染3 d。
关键要点: ① 剪开心包,挤压右侧胸腔使心脏暴露于 胸腔外,或用小药匙将心脏小心移出胸腔。 ② 以左冠状静脉主干为标志,于左心耳根 Байду номын сангаас下方2mm处进针,在肺动脉圆锥旁出针。 观察心电图,待其稳定后双重结扎前降支。 此后的心电图变化才能说明冠脉结扎情况。
附加实验——大鼠缓慢心率模型制备
结扎冠脉成功后,可不关胸,继续进行缓慢 心率模型制备练习 实验方法:
用棉签蘸40%甲醛,于上腔静脉根部与右 房交界处,接触1min,损伤窦房结,观察 心电图,如出现心率减慢,提示模型成功, 其余关胸步骤同前。
(因心梗可出现缓慢心率,此结果判定不排 除是心肌梗死引起的,仅供练习。)
实验步骤: 颈部正中切开气管并插管,用动物 人工呼吸机进行人工呼吸;潮气量 30 ml/kg,机械通气频率60-70次 /min。 人工呼吸下,在胸骨左缘扪及心脏 搏动处纵行切开皮肤约3 cm,逐层 分离皮下组织、肌肉,于第4肋间开 胸,剪开心包,暴露心脏、血管。

急性大鼠心肌梗死实验模型的制备共21页

急性大鼠心肌梗死实验模型的制备共21页

谢谢!
61、奢侈是舒适的,否则就不是奢侈 。——CocoCha nel 62、少而好学,如日出之阳;壮而好学 ,如日 中之光 ;志而 好学, 如炳烛 之光。 ——刘 向 63、三军可夺帅也,匹夫不可夺志也。 ——孔 丘 64、人生就是学校。在那里,与其说好 的教师 是幸福 ,不如 说好的 教师是 不幸。 ——海 贝尔 65、接受挑战,就可以享受胜利的喜悦 。——杰纳勒 尔·乔治·S·巴顿
急Hale Waihona Puke 大鼠心肌梗死实验模型的制备16、自己选择的路、跪着也要把它走 完。 17、一般情况下)不想三年以后的事, 只想现 在的事 。现在 有成就 ,以后 才能更 辉煌。
18、敢于向黑暗宣战的人,心里必须 充满光 明。 19、学习的关键--重复。
20、懦弱的人只会裹足不前,莽撞的 人只能 引为烧 身,只 有真正 勇敢的 人才能 所向披 靡。

大鼠心肌梗死动物模型的制备

大鼠心肌梗死动物模型的制备

Reut S ria aeo h a d l a 0 .L EFo eAM[go p d ce s dsg ic nl ( <0 O , o ae sl s uvv lrt ftert mo e s % w 6 V ft h ru e rae inf a t P i y . 1) C mp rd w t h h m go p.L S n -d / to eA ru erae inf a t ( <0 0 i tes a ru h V P a d 1 p d ft MIgo pd ce sdsg i cnl P - h i y . 5,P<0 O ),b t h V P .1 u eL ED t
o h fteAMIrtice sd s nf a t ( <0 O ) Hitp too y s d o l en te sa n h rleain o h a n ra e i ic nl P g i y . 1 . so ah lg t y cud se h c ra d te poi rt fte u f o
( . ig a nrlHoptl& S c n a ittdHo ptl fQ n d oUnvri ,Qig a 6 0 2 C ia 1 Q n d oCe t si a a e o d F cl ae si ig a iest i ao y n d o2 6 4 , hn ; 2 L b rtr fC r ilg ,C iaP A Ge ea s i l ej g1 0 5 C ia . a oaoyo adoo y hn L n rlHopt ,B in 0 8 3, hn ) a i
率 6% ; 0 手术 组 L E V F较假 手术 组 显 著 降 低 ( 0 0 ) 与 假 手术 组 比 , 术 组 的 L S P< . 1 ; 手 V P明显 下 降 ( 00 ) ±d/ P< . 5 , p d 显 著 降 低 ( 0 0 ) 而 L E P明 显 升 高 ( 00 ) 病 理 组 织 学 检 查 可 见 瘢 痕 形 成 , 维 组 织 增 生 。 结 论 本 t P< . 1 , V D P< . 1 ; 纤

大鼠急性心肌梗死动物模型的建立和评估-最新文档资料

大鼠急性心肌梗死动物模型的建立和评估-最新文档资料

大鼠急性心肌梗死动物模型的建立和评估1 对象与方法?1. 1研究对象清洁级雄性Spreague-Dawley (SC)大鼠20 只,体质量250〜300 g (275± 15. 3) g,由广州中医药大学实验动物中心提供。

随机分为假手术组和心肌梗死组。

1 .2 研究方法?1 . 2. 1 MI 模型的建立[2-3] 氯胺酮( 75 mg/kg )腹腔注射麻醉,经口人工呼吸(导管置于大鼠的舌体与上颌之间),连接小动物呼吸机予以正压通气,潮气量3〜5 ml/100 g ,呼吸频率60次/min,吸呼比1? : ?1。

左侧胸部备皮,消毒手术区域,经胸骨左缘第4 肋间开胸,钝性分离肌肉,以眼科开睑器撑开肋间肌切口,暴露心脏,剪开心包,于肺动脉圆锥与左心耳之间距主动脉根部2~3 mm处,用7-0眼科无创缝合针,穿过前降支深部连同一小束心肌一并结扎。

根据心电图和心肌组织颜色确定冠脉结扎成功。

逐层缝合胸壁,自主呼吸恢复后拔出通气导管。

大鼠清醒后送动物房饲养,规律照明,自由进食和饮水。

术后连续3 d 予以青霉素40 万U 腹腔注射以预防感染。

假手术对照组除不结扎冠状动脉外,其余步骤相同。

1. 2. 2 超声心动图检查[4]3% 戊巴比妥钠( 45 mg/kg )腹腔注射麻醉,用Philips Sonos 5500型多功能超声诊断仪( S12探头,频率5~12 MHz),在胸骨旁以二维超声和M型超声测量左室收缩末径(LVSd、左室舒张末径(LVDd、舒张期左室后壁厚度(PWd、舒张期左室前壁厚度(AWd Ml组为梗死区室壁厚度)、左室射血分数(LVEF和短轴缩短率(FS),分别计算梗死区变薄指数(BBZS即舒张期左室前壁厚度/后壁厚度)和非梗死区增厚指数(ZHZS即舒张期左室后壁厚度/前壁厚度)。

所有参数均在3 个连续的心动周期中进行测量并取平均值。

1.2.3 血流动力学检查[5]3%戊巴比妥钠(45mg/kg)腹腔注射麻醉,气管切开插管,保持呼吸道通畅。

大鼠心肌梗塞模型

大鼠心肌梗塞模型

大鼠心肌梗塞模型
大鼠:用3%戊巴比妥钠(30mg/kg)行腹腔注射麻醉,麻醉满意后置于手术台,四肢及头部仰卧固定于手术台上,四肢皮下连接心电图电极,记录标准Ⅱ导联心电图,颈部皮肤备皮消毒,胸骨上窝上正中切开皮肤0.5cm,向上钝性分离推开下颌下腺,剪除气管前肌肉,使气管在没有任何拉钩牵引的情况下能充分显露,彻底止血后于第2~3气管环间行气管横行切开,注意不要切断气管软骨环,切口长度不超过气管周径的1/3,擦干其内分泌物后插入气管插管,深度为0.5~1cm。

连接空气呼吸机进行人工控制呼吸,呼吸频率90次/min,潮气量10~12ml,呼吸比设为1:1。

左前胸去毛,消毒铺巾,顺肋间隙方向于胸骨左旁第3~4肋间切开皮肤,长约1cm,逐层分离皮下组织、肌肉,于2~3肋骨间撑开进胸,向右上方推开胸腺,可暴露心脏及大血管根部,切开心包,轻挤大鼠胸廓,将心脏挤出,有部分动物在左心耳下缘与肺动脉圆锥间可以看见左冠脉前降支起始部,线缝针的进针深度控制在0.1cm,宽度为0.1~0.2cm;回纳心脏入胸廓,待动物的数十次心动周期后,收线打结;观察数分钟后,彻底止血后逐层关胸。

关胸过程中于切口内放置排气管,关胸毕,抽空胸腔积气后拨除。

恢复大鼠自主呼吸,拨出气管内插管,清除气管内分泌物,气管切口及颈部切口开放,不作缝合。

手术过程中分开胸后、缝针后、结扎后和关胸后四个点记录心电图变化;合格动物2周及6周后均复查心电图。

以上手术均在严格无菌条件下进行。

术后肌内注射青霉素钠2×10U/d,连续5d抗感染。

大鼠心肌梗死模型建立方法选择及心电图表现

大鼠心肌梗死模型建立方法选择及心电图表现

檵檵檵檵殝
526
中国实验动物学报 2011 年 12 月第 19 卷第 6 期
Acta Lab Anim Sci Sin , December , 2011 , Vol. 19. No. 6
spectively. There was no myocardial infarction and the survival rate was 100% in the sham operation group. ECG : QRS-T wave displayed an intersection “M ” shape in the sham group and before left coronary artery ligation. The R wave and T wave fused into one large tent-like single wave after the left coronary artery ligation ,and without visible ST segment. Histopathological changes of myocardial infarction were seen at 4 weeks after operation. Conclusions tip ,and all ECG showed no visible ST segment in the rats. 【Key words 】 Rat ; Model ,myocardial infarction ; Electrocardiogram It is a novel method to establish myocardial infarct model that the suture is placed about 2 mm distal to the horizontal line of left atrial appendage

大鼠心梗模型goodppt课件

大鼠心梗模型goodppt课件
• 1011Pfu/ml Ad一hPPARYl 自制
Pfu/ml:plaque forming unit/ml,噬斑形成 单位,指每毫升试样中所含有的具有侵染 性的噬菌体数 当噬菌体裂解平板培养基上 细菌后,就形成一个空斑,计为一个 plaque
TTC染色法
• 并行TTC染色进行心肌梗死范围的测定。TTC染色法:在 体动物模型灌注结束后,结扎冠状动脉,左心室注入2-3 %Evans蓝2-3ml,确定未缺血心肌(呈蓝色)和缺血心肌 (无蓝色)。分离缺血区和非缺血区并以滤纸吸干,置于 天平上称重,将缺血区心室肌以平行于房室沟的方向切成 7-8片,每片厚1-2mm,置入1%氯化三苯基四氮唑(TTC )磷酸盐缓冲液(PH 7.4)中37℃水浴10-15min。缺血 危险区因脱氢酶还原TTC而呈红色,梗死区因脱氢酶流失 而呈白色,将梗死区和非梗死区分离并分别称重,梗死范 围以梗死心肌占缺血心肌重量的百分比表示。
给药
• 实验兔称重 ,硫责妥钠 ;30mg/kg静脉麻醉,免仰卧位固定于手术台上 ,Maclab/8s多功能生理仪行心电监护。常规备皮、消毒,无菌条件下行 胸正中切口,沿胸骨正中将胸骨切开,暴露心脏,保持两侧胸膜完整无破 损,小心提起心包并剪开,可见与左冠状动脉前降支(LAD)相伴行的心大 静脉,LAD走行于心大静脉深方 ,表面覆盖薄层心肌 ,肉眼不易见 。
• 关胸过程中于切口内放置排气管(用小儿头 皮针的软管自制),关胸毕,抽空胸腔积气 后拨除。
• 试停呼吸机,大鼠恢复自主呼吸后,拨出 气管插管,充分清除气管内分泌物。
• 根据文献[l”一]和本实验室条件建立模型:健康成年雄性sD大鼠,体重 200一2509,术前禁食12h,不禁饮。3%戊巴比妥钠30m叭g腹腔注 射麻醉大鼠,起效后仰卧位固定于鼠板。用0号婴儿喉镜片经口气管 插管,插入16G静脉留置针,接小动物呼吸机控制呼吸。确定插管位 置深度正确后,口角挂线固定导管,根据血气结果,呼吸参数设定为 潮气量4一6ml,频率60一70次/分,吸呼比1:1。
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
13
14
1.7 术后抗感染及护理 大鼠本身具有比较强的抗感染能力,但是 预防感染有利于促进术后恢复,并且良好 的术后护理可以提高动物模型的生存率。 因此,术前所用手术器械均要用75%酒精 浸泡消毒。术后腹腔注射青霉素80万U。待 大鼠麻醉清醒后即可与其糖水和饲料,无 须禁食。术后可适量补充能量。冬天应注 意保嗳。
15
2 检测指标
2.1 术前和术中做的心电图 2.2 组织病理学检查
开胸结扎冠状动脉后1d、2d及3 d分批处死 实验鼠。取其心脏,沿心脏纵轴剖开左右 心室,用10%福尔马林溶液固定24 h,然 后垂直于心脏纵轴从心尖部至心底部分别 横切4个切面,石蜡包埋,连续5 um厚度切 片,HE染色,观察左室壁心肌组织的病理 变化,确定心肌梗死的存在。
⑶. 开睑器撑开术口压迫肺脏时间过长,可能 存在气胸肺不张造成实验鼠缺氧;
⑷. 压迫心脏时造成大血管移位扭转,重要脏 器供血不足;
⑸.术中失血过多,造成血压下降,失血性休 克;
18
⑹. 结扎冠状动脉时部位未掌握好,结扎部位 过高(结扎到左主干),大鼠出现严重心 律失常乃至心跳骤停,尽管已施以胸外按 压等抢救措施,但是最终没有成功使实验 鼠复苏;
16
3 结果讨论
两只实验鼠死亡原因讨论: ①号实验鼠在结扎冠状动脉时心脏停止跳动死亡 ②号实验鼠在关闭胸腔时呼吸停止死亡
考虑以下可能原因: ⑴. 鼠龄过大,适应手术能力较适龄鼠差,多篇文
献提出实验鼠体重以250 ±25 g 为宜,本次实验 鼠体重分别为① 290g及②360g;
17
⑵. 实验鼠体重较实验前预期的要重,麻醉剂 有使用过量的可能,实验鼠术中出现呼吸 抑制;
3
1 实验步骤和观察项目
1. 1 实验动物 健康雄性Wistar大鼠30只, 体质量250 ±25 g制作心肌梗死动物模型的 大鼠体重以200~ 250 g为宜(动物太小, 不利于操作,耐受创伤能力低;而体重及 鼠龄太大,则不利术后观察生存期,而且 麻醉剂量不好掌握,凝血功能较差,不易 止血。实验动物由广西医科大学实验中心 提供。)
5
6
1. 4气管插管
大鼠仰卧固定于手术台上。沿颈部中线切 开皮肤,分离组织暴露气管,用7号注射针 头做为插管以45度斜进针从甲状软骨下缘 轻轻水平插入约0.7~1.5cm 斜面朝上。固 定好,气管插管,呼吸比为1:2,呼吸频率 90次/rain,潮气量14 ml/kg。关闭呼吸 机,四肢接心电图机记录术前心电图。完 毕打开呼吸机, (此时作心电图与开胸后结 扎前心电图对照,验证是否为先天变异或实 验前异常-心电图机未借到,所以心电图 未能做)
大鼠心肌梗死实验模型的制备
1
背景
有关心肌梗死模型的制作,国内外采用结扎、 药物、冷冻、栓塞、电凝等方法制作兔、大鼠、 狗等不同动物的心肌梗死模型,但大多数学者认 为结扎法复制的心肌梗死模型与心肌梗死实际发 病过程更符合。
由于临床大多心肌缺血或心肌梗死都是一渐 进性过程,会不断发生缺血或梗死后再灌现象。 而冠状动脉结扎法能人为地仿造临床心肌梗死过 程的冠状动脉梗死,其梗死部位、分布范围相对 一致,病理生理、生化改变与临床心肌梗死更相 似。
4
1. 2 试验材料和药品 : 10%水合氯醛溶液、青霉素注射液、碘伏、 小动物呼吸机、心电图机、大白鼠手术板、 5ml注射器2个、7号或4号针头、眼科剪、 手术灯、眼科开睑器、小镊子、小弯钳、 缝针、缝合线(6 - 0线)、小无菌棉签
1.3 麻醉 SD大鼠称重(两只Wistar大鼠体重各为① 290g及②360g), ① 号鼠腹腔注射乌拉坦 1.45ml②号鼠腹腔注射 10%水合氯醛1ml。

左心耳
10
在左心耳下距主动脉根部2~3 mm处可见一粉红色细小血管
11
12
1.6 关胸及术后处理 逐层关胸, 断开呼吸机,清理呼吸道(拔出气 管插管后应注意将大鼠舌头外提,防止舌根 后坠出现缺氧窒息)并观察大鼠呼吸,以浅 快呼吸,频率30~40次/min为宜。术后单笼 饲养。
注:手术过程中大鼠冠状动脉结扎后可能马上出 现心律失常,室性停搏或心室纤维颤动,立 即解除对心脏的挤压或同时进行心内按压可 以使心脏恢复搏动。
综上所述,结合实际操作条件,选用结扎大鼠冠 状动脉结扎的方法,以建立稳定的、适于细胞移植 治疗心肌梗死的大鼠动物模型。
2
建模原理
生物体各组织器官要维持其正常的生命活动,需要心 脏不停地搏动以保证血运。而心脏作为一个泵血的肌性动 力器官,本身也需要足够的营养和能源,供给心脏营养的 血管系统,就是冠状动脉和静脉,也称冠脉循环。冠状动 脉是供给心脏血液的动脉,起于主动脉根部,行于心脏表 面。冠状静脉伴随 冠状动脉收集代谢后的静脉血,归流 于冠状静脉窦,回到右心房。正常情况下,冠状动脉 之 间,尚有丰富的吻合支或侧支。冠状动脉虽小,但血流量 很大。占心排血量的5%,这就保证了心脏有足够的营养, 维持它有力地昼夜不停地跳动。如果冠状动脉突然阻塞, 不能很快建立侧支循环,常常导致心肌梗塞。但若冠状动 脉阻塞是缓慢形 成的,则侧支可逐渐扩张,并可建立新 的侧支循环,起代偿的作用。左冠状动脉为最大冠状动脉 分支.主要供应左心室前壁和侧壁,其主要分支是左前降 支和左回旋支.选用结扎鼠左冠状动脉前降支中上1/3处 结扎的方法,冠状动脉突然阻塞,侧支循环不及起代偿的 作用.以建立稳定的、适于细胞移植治疗心肌梗死.
7
甲状软骨下缘
8
1.5开胸及冠状动脉结扎
心前区域剃毛, 在心脏搏动最明显处,第三肋间隙 水平开胸,皮肤切口约1. 5~2. 0 cm,逐层钝性分离 肌肉至胸膜。剪开胸膜,用眼科开睑器撑开肋间肌 切口,以无菌棉球向下压迫左肺以保护肺脏剪开心 包,用无菌棉签推开左心耳。在左心耳下距主动脉 根部2~3 mm处,用6 - 0线穿过一小束心肌,并结 扎。(1)结扎后左室壁变苍白,并出现室壁运动减弱。 (2)术中结扎成功标识:心电监护见II导联大鼠于结 扎冠状动脉后QRS波峰降低,J点上移,ST段明 显抬高.证明心肌缺血存在心肌梗死(证明结扎成 功,心电图于结扎前与结扎后的心电图改变,排除 手术操作造成人为性大鼠心肌缺血) 。然后加大 通气量,充分使肺复涨,并清理胸腔。
相关文档
最新文档