PCR反应管检验标准操作规程

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PCR生产操作规程

PCR生产操作规程

PCR生产操作规程PCR(聚合酶链反应)是一种分子生物学技术,用于扩增特定的DNA序列。

PCR的操作过程需要严格控制条件,以保证反应的准确性和稳定性。

以下是PCR生产的操作规程:1. 实验室准备:- 确保实验室整洁干净,操作台面清洁无尘。

- 确保实验室内温度适宜,保持恒温状态。

- 准备PCR试剂盒,包括DNA模板、引物、逆转录酶、聚合酶、dNTPs等。

2. 样品处理:- 提取DNA样品时,要避免污染、降解和损伤。

- 使用无菌管、无菌试剂和消毒仪器,避免样品交叉污染。

3. PCR试剂配置:- 根据实验样品的数量和浓度,计算所需的试剂量。

- 试剂配置过程中要注意无菌操作和准确的配比,避免试剂误差。

4. 反应体系:- 根据实验需求进行不同的PCR反应设置,包括温控系统、反应管、引物和试剂的加入顺序等。

- 准备阳性和阴性对照样本,以检验PCR反应的准确性。

5. 反应条件:- 根据PCR扩增的要求,设置反应体系的温度、时间和循环次数等。

- 设置好PCR反应的温度曲线,包括变性、退火和延伸阶段,以保证扩增效果。

6. 仪器操作:- 启动PCR仪器前,确保设备完好、无异常情况。

- 设置好PCR仪器的程序和参数,包括温度梯度、循环次数、温度保持时间等。

- 监控PCR反应的过程,及时调整温度和时间等参数。

7. 结果分析:- PCR反应结束后,分析PCR产物的扩增结果。

- 使用电泳技术对PCR产物进行分析,观察扩增片段的大小和条带的强度。

- 对PCR结果进行解读,确认是否成功扩增目标DNA序列。

8. 结果记录和保存:- 将PCR结果记录在实验日志中,包括样品编号、反应条件、扩增结果等信息。

- 将PCR产物进行保存,可以冷冻保存或进行二次扩增和测序等后续实验。

9. 试剂和废弃物处理:- 将使用过的试剂垃圾按照规定的分类进行处理,尽量减少对环境的污染。

- 将废弃物进行消毒处理,避免有害生物的传播和污染。

10. 定期维护和检验设备:- 定期对PCR仪器进行检验和维护,确保其正常工作。

PCR实验室操作标准流程

PCR实验室操作标准流程

乙型肝炎病毒(HBV DNA PCR ABI7300)检侧原则操作程序一、INFORMATIONFORTEST检测信息项目名称乙型肝炎病毒核酸措施聚合酶链反映措施根据卫生部《全国临床检查操作规程》第三版()第七篇第六章第一节二、ANALYTICALPRINCTPLE检测原理聚台酶链式反映(PCR〕可对特定核苷酸片段进行指数级旳扩增,而实时荧光定量PCR技术,是指在PCR反映体系中加入荧光基团,运用荧光信号积累实时监测整个PCR进程,最后通过原则曲线对未知模板进行定量分析旳措施。

在实时荧光定量PCR反映中,引入了一种荧光化学物质,荧光物质有两种:荧光探针和荧光染料。

我们目前是使用TaqMan荧光探针旳检测原理:PCR扩增时在加入一对引物旳同步加入一种特异性旳荧光探针,该探针为一寡核苷酸,两端分别标记一种报告荧光基团和一种淬灭荧光基团。

探针完整时,报告基团发射旳荧光信号被淬灭基团吸取;PCR扩增时,Taq酶旳5’一3’外切酶活性将探针酶切降解,使报告荧光基团和淬灭荧光基团分离,从而荧光监测系统可接受到荧光信号,即每扩增一条DNA链,就有一种荧光分子形成,荧光信号强度也等比例增长(图一)。

这样就可以通过荧光强度变化监测产物量旳变化,从而得到一条荧光扩增曲线图。

三、操作环节(一)试剂配制1、进入试剂准备区,启动冰箱冷冻层取出HBV-DNA检测试剂盒。

查看外包装盒(涉及生产批号、有效期),无误后拆开试剂盒,取出核酸提取液、反映液及Taq酶(核对核酸提取液、HBVPCR反映液及Taq酶管上批号与试剂外包装盒批号与否一致)(图1),不一致则不可使用,需更换新旳试剂。

室温平衡20min,完全融化后rpm离心备用。

2、核酸提取液旳分装(1)取0.5ml离心管架置于超净工作台内(开机前用紫外线消毒30分钟),用右手拿起镊子逐个将离心管放入离心管架(注意应夹住离心管外壁,不能遇到管内壁),摆放顺序为横列从左往右摆,竖列为从上往下隔行排,离心管个数为n(n=样本数+对照品+质控品)。

pcr实验室标准

pcr实验室标准

pcr实验室标准PCR实验室标准。

PCR(聚合酶链式反应)是一种常用的分子生物学技术,广泛应用于基因克隆、基因表达分析、疾病诊断等领域。

在PCR实验室中,严格遵循一系列标准操作程序对实验室环境、试剂、设备和操作人员进行管理,对PCR实验的准确性和可靠性至关重要。

本文将介绍PCR实验室的标准操作流程,帮助实验室工作人员规范实验操作,提高实验效率和结果可靠性。

实验室环境管理。

PCR实验室应具备良好的实验环境,包括洁净、无菌、无尘、无霉、无细菌等特点。

实验室内空气应保持流通,避免气味、异物等对实验产生干扰。

实验室内的工作台面、仪器设备、试剂瓶等应定期进行清洁消毒,保持干净整洁。

试剂管理。

PCR实验室应建立完善的试剂管理制度,对试剂的储存、使用、保管和报废进行严格管理。

试剂的储存温度和有效期应进行标注,避免使用过期试剂进行实验。

在使用试剂时,应按照操作规程准确称量、混合和稀释,避免试剂误用或交叉污染。

设备管理。

PCR实验室的设备应定期进行检测和维护,确保设备的正常运行和准确性。

在使用设备前,应进行预热、平衡和校准,避免设备误差对实验结果产生影响。

实验室应建立设备使用记录,及时发现设备故障并进行维修或更换。

操作人员管理。

PCR实验室的操作人员应接受相关的培训和考核,熟悉实验操作流程和安全注意事项。

在进行实验操作时,应严格按照操作规程进行,避免个人操作失误对实验结果产生影响。

操作人员应穿戴实验服、手套、口罩等个人防护用品,避免人为污染对实验产生影响。

实验操作流程。

PCR实验操作流程包括样品处理、反应体系配置、PCR扩增、扩增产物分析等步骤。

在进行实验操作时,应按照标准操作程序进行,避免操作失误对实验结果产生影响。

在每一步操作后,应及时记录实验数据和结果,以备后续分析和验证。

实验结果分析。

PCR实验结果的分析应准确、可靠、重复性好。

在进行实验结果分析时,应对实验数据进行统计和比对,排除实验误差和干扰因素,确保实验结果的准确性和可靠性。

PCR室检测结果分析的标准操作程序

PCR室检测结果分析的标准操作程序

PCR室检测结果分析的标准操作程序1.目的保证扩增及结果分析的标准化、规范化;保证实验结果的有效性,准确判断实验失控的原因,加强实验的可靠程度。

2.适用范围本规则适用于实验结果判定标准3.制定依据《临床基因扩增检验技术》申子瑜李金明主编人民卫生出版社出版2002年第一版;试剂使用说明书4.职责由经培训合格的临床基因扩增实验室技术人员负责操作。

5.结果分析标准程序5.1对于结果曲线的分析,应按以下步骤进行:全部曲线——阴性对照——阳性室内质控品——阳性标准品——逐个分析(标出阳性标本和可疑标本)——调整参数,获得较好的标准曲线,显示定量结果——登记,发报告。

5.2整体曲线的观察将所有曲线选中进行整体观察①观察是否存在污染情况(包括标本污染和试剂污染),特别应注意大量曲线在同一Ct值出现上涨的情况。

②观察是否有光路传导阻滞或电压波动等机器原因形成的异常曲线。

5.3空白对照的分析空白对照:仅含扩增反应混合液的管作用:监测扩增试剂是否发生污染5.4阴性对照的分析阴性对照:试剂中加入与待检标本进行同样处理的已知阴性标本。

作用:用以监测实验室和前处理过程中是否存在污染。

5.5阳性对照的分析阳性对照:试剂中加入与待检标本进行同样处理的已知阳性标本。

作用:用以监测实验能否正常检出阳性标本,避免假阴性的出现。

5.6阳性室内质控品的分析阳性室内质控品:试剂中加入与待检标本进行同样处理的已知浓度的阳性室内质控血清。

作用:用以监控日常实验的精密度。

5.7阳性标准品的分析5.7.1各梯度曲线的分布是否均匀,若各梯度曲线均未分开,则表明阳模稀释可能存在问题,提示实验中存在较大人为误差。

5.7.2观察各曲线的Ct值是否在平常的正常位置。

有两种情况:①若出现低拷贝标准品做不出,而各曲线Ct 值均后移,则判断是否为试剂扩增效率下降(如试剂过期或保存条件不合格)。

②出现低拷贝标准品做不出,而高拷贝曲线Ct值均正常,则提示可能存在低拷贝阳性标准品的降解情况。

PCR实验室操作流程

PCR实验室操作流程

PCR实验室操作流程PCR(聚合酶链式反应)是一种重要的分子生物学实验技术,用于在体外扩增DNA序列。

下面是PCR实验室操作流程的详细说明。

1.实验前准备:a.准备必需的试剂和材料,包括PCR反应缓冲液、dNTPs、引物、聚合酶、模板DNA、消毒水、离心机、PCR仪等。

b.检查PCR反应缓冲液、dNTPs、引物和聚合酶的保存条件和有效期。

c.将PCR反应管、移液器、移液枪、显微镜幻灯片等进行消毒处理。

2.PCR反应体系的准备:a.将PCR反应缓冲液、dNTPs、引物和聚合酶按照规定比例混合,制备PCR反应体系。

b.添加模板DNA,使总体积达到预定的体积。

3.PCR反应管的装填:a.执行无菌操作,将PCR反应体系均匀地分装到PCR反应管中,避免空气泡影响反应结果。

b.添加防止蒸发的润滑油至PCR反应管中。

4.PCR仪的设置:a.打开PCR仪,设定所需的温度和时间参数。

b.确保PCR仪处于冷却状态,使反应管可以准确控制升温和降温的过程。

5.PCR反应程序设置:a.根据扩增的目标基因长度和引物设计,确定适当的PCR循环数、退火温度和延伸时间。

b.在PCR仪的控制面板上设置所需的循环数、温度和时间参数。

6.PCR反应的进行:a.将PCR反应管放入PCR仪的样品位。

b.关闭PCR仪的盖子,启动PCR反应。

7.PCR反应结束后:a.关闭PCR仪,取出PCR反应管。

b.使用电泳或其他方法,对PCR产物进行分析和检测。

8.PCR反应管和废弃物处理:a.将PCR反应管中的废液倒入废液收集容器中。

b.将PCR反应管进行无菌处理,避免污染实验室环境。

c.将废弃物放入相应的废弃物容器中,以便进行妥善处置。

需要注意的是,PCR实验室操作流程中的无菌操作和个人防护是非常重要的。

在整个实验过程中,实验人员应佩戴实验手套,并注意将不同试剂和反应物进行分装。

此外,实验结束后,实验台面和设备都需要进行彻底的清洁和消毒处理,以保证实验环境的无菌和清洁。

PCR仪操作规程

PCR仪操作规程

PCR仪操作规程一、PCR仪的准备工作1.将PCR仪放置在坚固平稳的工作台上。

2.确保PCR仪能够正常通电,并连接稳定的电源。

3.检查PCR仪是否有足够的耗材,如:PCR试剂盒、PCR板、PCR管等。

4.确保PCR仪的外壳干净整洁,无尘。

5.检查PCR仪的温控系统是否正常运作,温度探头是否正确连接。

二、程序设置1.打开PCR仪的电源,等待仪器启动。

2.进入PCR仪的操作界面,在设置中选择需要运行的PCR程序。

3.设置PCR程序的相关参数,包括:反应体系、产物大小、温控方式、梯度设置等。

4.确认无误后,保存设置。

三、样本处理1.根据实验需求,准备所需的样本和试剂。

2.将待测样本和控制样本分别加入PCR管中,并按照试剂盒说明书的要求,分别加入PCR试剂。

3.小心混匀,避免产生气泡。

4.使用电动移液器,将样品转移到PCR板的相应孔中。

5.确保试管盖扣紧并密封,避免蒸发和污染。

四、样品放置1.使用PCR板架,将PCR板放入PCR仪中。

2.确保PCR板放置稳定,不晃动。

3.在关闭仪器时,检查所有的孔位是否已经满。

4.根据实验要求选择合适的PCR模式。

五、运行PCR程序1.确保PCR仪处于关机状态,将PCR板放入PCR仪中。

2.关闭PCR仪的盖子,并轻轻按下,确保盖子紧密贴合。

3.打开PCR仪的电源,启动PCR程序。

4.开始运行程序后,定期检查PCR仪的运行状态,确保温度的稳定和反应的正常进行。

5.在PCR反应过程中不要移动或震动PCR仪。

6.必要时对PCR反应进行监测,可使用实时荧光PCR功能。

六、PCR反应后处理1.PCR反应结束后,停止PCR程序运行。

2.打开PCR仪盖子,取出PCR板。

3.将PCR板置于洗涤台上,进行样本的后续处理。

4.根据实验要求,可以选择对PCR产物进行凝胶电泳分析或进一步测序。

七、清洁和维护1.每次使用后,将PCR仪的工作台面、盖子等部位用75%乙醇擦拭干净。

2.定期清洁PCR仪的内部,检查温控系统的工作情况。

pcr实验室的操作流程及注意事项

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质粒PCR检验标准操作规程范文模板(工序标准操作规程例文模板)

该文件制订参与人:文件变更列表目录1范围 (4)2定义 (4)3职责 (4)4附件 (4)5内容 (4)5.1检验前准备工作 (5)5.2检验操作 (5)5.2.1试剂分装 (5)5.2.2样品稀释 (6)5.2.3加试剂 (6)5.2.4PCR (6)5.2.5凝胶电泳 (7)5.2.5.1制胶 (7)5.2.5.2加试剂 (8)5.2.5.3电泳 (8)5.2.5.4凝胶成像 (8)5.3检验数据分析 (9)附件1:F-SOP-XXXX《样品、引物表》 (10)附件2:F-SOP-XXXX《2-Log DNA Ladder(0.1-10.0kb)》 (14)附件3:R-SOP-XXXX《质粒PCR检验记录》 (15)1 范围适用于质粒PCR检验,检测样品中是否存在目的DNA片段。

2 定义2.1 PCR:即聚合酶链式反应,是一种用于放大扩增特定DNA片段的分子生物学技术,它可看作是生物体外特殊DNA复制,PCR的最大特点,是能将微量的DNA大幅增加。

2.2 变性:目的的双链DNA片段在94℃下解链。

2.3 退火:两种寡核苷酸引物在适当的温度下与模板上的目的序列通过氢键配对。

2.4 延伸:在DNA聚合酶合成DNA的最适温度下,以目的DNA为模板进行合成。

2.5 酶促反应:又称酶催化或酵素催化作用,指的是由酶作为催化剂进行催化的化学反应。

2.6 寡核苷酸:是一类只有20个以下碱基的短链核苷酸的总称(包括脱氧核糖核酸DNA或核糖核酸RNA内的核苷酸),寡核苷酸可以很容易地和它们的互补对连结,所以常用来作为探针确定DNA或RNA的结构,经常用于基因芯片、电泳、荧光原位杂交等过程中。

2.7 PCR原理在体外通过酶促反应有选择的地大量扩增(包括分离)一段目的基因的技术。

设计一对寡聚核苷酸引物与目的的DNA分子互补,在DNA聚合酶的作用下,通过变性、退火和延伸的循环来大量扩增目的DNA片段。

2.8 琼脂糖凝胶电泳原理琼脂糖凝胶电泳是用于分离、鉴定和提纯DNA片段的标准方法。

PCR实验室操作规范

PCR实验室操作规范PCR检测技术是一种借助PCR扩增仪进行体外DNA高效复制的核酸扩增技术,其优势就是灵敏度极高,能准确快速判断样本中是否存在目标病原,但同时也存在气溶胶扩散、易污染实验环境的风险。

为了有效避免污染,获得稳定可靠的检验结果,建议PCR实验检验人员按照以下要求规范操作:1.严格控制进出实验室人员。

实验无关人员不得随意进出实验室,有条件情况下要在各分区设置独立通道和进出整个实验区的门。

2.尽量减少在实验区内不必要的走动以减少交叉污染的可能性。

3.试剂准备区(配液区)是洁净级别要求最高的区域,最好在超净工作台中进行操作。

分装反应液后,阴性对照最先加样,盖上管盖;阳性对照在完成样本加样后再加,动作应轻柔准确,防止高浓度的阳性对照核酸扩散。

4.扩增反应区是最主要的扩增产物污染来源,废液不能在实验室中倾倒,必须经消毒液浸泡消毒后在远离实验室的地方弃掉,用过的吸头等一次性材料也应经消毒液浸泡消毒后统一处理,如焚烧等。

5.各个实验区域根据需求配备专区专用仪器设备和耗材,如超净工作台、离心机、移液枪、枪头盒等,避免仪器设备及实验耗材交叉使用。

6.实验室自配试剂(去离子水、缓冲液等)和所有使用器具在使用之前均应高压灭菌或紫外杀菌。

移液器吸头、反应管等实验耗材应一次性使用。

7.实验的过程中选择最合适尺寸的手套并能及时更换,在进出不同实验区域或进行模板操作后都必须更换手套,最好实验服、口罩、帽子也及时更换,以避免不同实验区交叉污染。

8.装有PCR试剂的反应管在打开之前应先瞬时离心,将管壁及管盖上的液体离心至管底,降低污染手套或加样器的风险;谨慎开启反应管,防止管内液体溅出或形成气溶胶导致污染。

9.PCR检测试剂盒应低温冷冻保存,同时应与样品和PCR产物分开,不应放于同处。

10.应遵循实验室内部质量控制相关规定,实验中设立阳性对照、阴性对照和空白对照,全程质控实验过程,验证PCR反应的可靠性,并协助判断扩增系统的可信性。

分子生物组(PCR)检测程序性能验证标准操作程序

1目的确立分子生物组检测程序性能验证标准操作规程,使检测程序性能验证操作规范化。

2适用范围采用基因扩增检验方法检测的所有项目。

3职责或责任人3.1组长负责组织本组工作人员具体实施,并审核报告;3.2本组工作人员负责对适用范围内的检测程序进行验证操作,并撰写报告;3.3技术主管负责监督本规程的实施;3.4质量主管参与对检验程序有效性的评价及指导;3.5检验科主任负责批准检测程序的实施。

4内容定量检测方法和程序的分析性能验证内容至少应包括精密度、正确度、线性、测量和/或可报告范围、抗干扰能力等.定性检测项目验证内容至少应包括测定下限、特异性、准确度(方法学比较或与金标准比较)、抗干扰能力等。

4.1正确度指该检测程序测定的结果与真实值或参考值接近的程度。

4.1.1验证方法:本组采用对照试验,将卫计委临床检验中心或湖北省临床检验中心的能力验证/室间质评的质控品、或已获认可的实验室的标本作为样品,以所用的检测程序对进行定量分析,分析结果与质控品靶值或比对实验室检测值进行比较,误差在可接受范围即可接受。

4.1.2样品数量:至少5份,包括正常和异常水平或不同常见基因突变型;4.1.3频率:至少每年2次;4.1.4判定标准:对于定性试验,阴阳性应该一致;对于定量试验,应有≥80%的结果符合要求,卫计委临床检验中心能力和湖北省临床检验中心验证评价界限靶值分别为0。

4和0.5,实验室间结果比对合格标准是偏倚〈±7.5%.4.2特异性指在可能其它成分(如其他病原体、内源物质等)存在的条件下,采用的方法能正确测定待测物的特性。

对于核酸检测的特异性,主要是指核酸扩增过程中的特异性。

4.2.1验证方法:取一份阴性标本,加入其他常见病原体高浓度核酸样本,进行10次独立的检测。

4.2.2判断标准:观察并记录检测结果为阴阳性的差异。

4.3精密度指在规定的测试条件下,同一个均匀样品,经多次取样测定所得结果之间的接近程度。

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1.目的
建立PCR反应管的检验作业指导书,对PCR反应管检验进行规范。

2.范围
PCR反应管检验。

3.职责
QC负责本规程实施,部门负责人监督执行。

4.仪器
4.1ABI7500荧光定量PCR仪
4.2微量移液器及相匹配的带滤心吸头
4.3生物安全柜
5.材料与试剂
5.1待检PCR反应管
5.2检验合格的α-地中海贫血(SEA型)检测试剂盒大包装PCR反应液
6.规程
6.1性状:
本品为无色透明耗材
6.2 阴性参考品:
使用待检样品和其它检验合格的原料及大包装混合酶液配制PCR体系液,检测阴性参考品阴性参考品扩增结果全部为阴性,符合率100%。

6.3 检出限:
使用待检样品和其它检验合格的原料及大包装混合酶液配制PCR体系液,检测最低检出限参考品扩增结果为阳性,扩增曲线有明显的指数增长期,最低检出限为1000 copies/ml。

6.4阳性对照:
使用待检样品和其它检验合格的原料及大包装混合酶液配制PCR体系液,检测阳性对照阳性对照检测结果为阳性,Ct≦25,且扩增曲线有明显的指数增长期
7.记录
7.1 《检验报告单》FSD-QR-101
7.2 《原料检验记录》FSD-QR-105。

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