家兔失血性休克实验设计

家兔失血性休克实验设计

【实验原理与目的】

休克是一种全身性病理过程，失血、创伤、感染、过敏等多种原因都可以引起休克。血容量急剧降低、血管容量扩大和急性心功能衰竭可以作为休克的始动环节。

本实验通过对家兔大量放血，使其血容量急剧降低，复制出家兔失血性休克模型，观察失血性休克时血流动力学改变及微循环变化，探讨其发生机制。

【实验对象】

家兔1只，体重2．0～3．0 kg。

【实验器材与药品】

1．仪器BL-410／BL-420生物机能实验系统(或MS一302生物信号记录分析系统)或二道生理记录仪，血压换能器，张力换能器。光学显微镜，超级恒温水浴器。

2．器械哺乳类动物手术器械一套，中心静脉压测量及输液装置，微循环观察装置(恒温灌流盒)，动脉导管，静脉导管，输尿管插管，记滴器，500 ml烧杯，5 ml、10 ml及50ml注射器，体温计，三通管。

3．药物生理盐水，0．5％肝素生理盐水(5 mg／ml)，3％戊巴比妥钠溶液，微循环灌流液(1％明胶台氏液)。

4．其他丝线、纱布、吸管、连接大号针头的胶管、硅胶管、擦镜纸。

【实验步骤与观察指标】

1．仪器装置按操作规程准备好BL-410／BL-420生物机能实验系统(或MS一302生物信号记录分析系统)或二道生理记录仪的血压、呼吸、尿滴记录装置(见《常用实验仪器》)，准备好微循环观察装置。

2．手术操作

(1)动物麻醉与固定：动物称重后，以3％戊巴比妥钠1 ml／kg(30mg／kg)静脉注射麻醉。将麻醉好的动物仰卧位固定于动物手术台上。

(2)备皮：剪去颈部、腹部及右侧腹股沟等手术部位的狗(或家兔)毛。

(3)颈部手术：在颈部正中切开皮肤(狗6～8 cm，家兔4～6 cm)，分离气管、左颈总动脉和右颈外静脉。①行气管插管并连接马利氏鼓，通过鼓膜运动牵拉张力换能器的弹性敏感梁活动，张力换能器与仪器连接，记录呼吸。②行左颈总动脉插管并经三通管一压力换能器与仪器连接，记录动脉血压。③将静脉导管从右颈外静脉插入到上腔静脉入右心房口处(锁骨下1-2 cm)并与中心静脉压(CVP)测量输液装置连接，行测量中心静脉压和输液用。未测CVP时，维持每分钟10一15滴输液速度，以保持管道通畅。记录呼吸方法也可在剑突处皮肤上缝一针，用线连接张力换能器，但这种方法当动物清醒挣扎时，容易损坏张力换能器。也可以用呼吸换能器记录呼吸，免马利氏鼓。

(4)股部手术：于右侧腹股沟动脉搏动明显处沿动脉走向切开皮肤4～5 cm，分离出股动脉，夹上动脉夹。用连接大号针头胶管行股动脉插管，暂不松开动脉夹，备放血用。

(5)腹部手术：

1)在耻骨联合上作下腹部正切口，长约5 cm，找到膀胱，在其背面膀胱三角区找到并分离双侧输尿管，插入输尿管导管，用记滴器记录每分钟尿滴数或尿量。

2)在右侧腹直肌旁作6～8cm的腹部旁正中切口，钝性分离肌肉，打开腹腔后推开大网膜，找出一段游离度较大的小肠肠襻，轻轻拉出，置于微循环恒温灌流盒内，用显微镜观察肠系膜微循环。

3．观察与记录实验过程中动态观察记录的指标包括：动物一般情况、皮肤黏膜颜色、肛温、动脉血压、CVP、尿量和肠系膜微循环(血管口径、血流速和肠系膜毛细血管数及血液流变学参数)。

(1)放血前：手术完毕，待动物血压平稳后，观察与记录上述各项指标作实验对照值。

(2)放血造成休克：

1)松开股动脉上的动脉夹，预先在500 ml烧杯中加入肝素2 mg／kg，用于收集所放血

液。快速放血，在15 min内使平均动脉血压(MAP)降至40 mmHg(5．33 kPa)，通过调节放血量，维持MAP 于40 mmHg，30 min。

2)测量放血量。

3)记录失血期间动物各项观察指标的改变，每5～10min记录1次，特殊变化随时记录。

(3)抢救：将所放出的血液用50ml注射器从静脉缓缓回输，输血完毕后观察30 min，每10 min记录1次各项观察指标变化。也可设计输入高渗盐水、胶体溶液等其他抢救方案。

【注意事项】

1．麻醉深浅要适度，麻醉过浅，动物疼痛可致神经源性休克。麻醉过程或麻醉后若出现呼吸暂停，应及时作人工呼吸。

2．尽量减少手术创伤引起出血。

3．牵拉肠襻要轻巧，以免引起创伤性休克。

4．血压换能器和动脉导管要排除气泡和加入一定量肝素抗凝。静脉导管一经插入后除非测量CVP，宜缓慢滴人生理盐水(10-15滴／min)，以保持管道通畅。

【思考题】

1．放血使MAP降至40 mmHg后即停止放血，MAP有什么变化?为什么?

2．急性大量失血是如何引起休克发生的?

3．为什么输回所失的全部血液后狗血压仍未能恢复至原来的水平?