临床医学病人准备和标本采集

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临床标本的采集和运输

临床标本的采集和运输

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准备采集工具:根据采集方法准备好所需的工具,如注射器、试管、 棉签、滤纸等
遵循无菌操作原则:在采集过程中,必须遵循无菌操作原则,以避 免污染标本和感染采集人员
4床中最常用的标本采集方法之一,以下是采集过程中的注意事项 选择合适的静脉:通常选择肘正中静脉或头静脉等较大且清晰的静脉进行采血
消毒:在采血前,需要对采血部位进行消毒,以避免感染
穿刺:在消毒后,使用采血 针进行穿刺,穿刺成功后将 针头固定在静脉上
收集血液:将血液收集到试 管中,根据需要加入抗凝剂 或防腐剂等
拔针:在采血完成后,迅速 拔出针头,并压迫采血部位 5-10分钟,以避免出血和感 染
2. 尿液采集
尿液采集通常分为两种方式:留置导尿和自然排尿。以下是尿液采集的注意事项
标识:在容器上标识患者信息、标本类型、采集时 间和检测要求等
保护标本:在运输过程中,需要保护标本免受震动 、污染和光照等影响
及时送检:在规定时间内将标本送至实验室进行检 测,以保证检测结果的准确性
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目录
CONTENTS
1 临床标本采集前的准备
2
临床标本的采集
3
临床标本的运输
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1
在进行临床标本 采集之前,需要 做好以下准备工

1
了解患者的基本信息:包括姓名、性别、年龄、病史、用药情况等, 以便确定采集的标本类型和数量
确定采集方法:根据标本类型和采集部位的不同,需要采用不同的 采集方法,包括静脉采血、尿液采集、呼吸道分泌物采集等

采集标本操作流程

采集标本操作流程

采集标本操作流程
采集标本是临床医学中非常重要的一环,它是确诊疾病、制定治疗方案的基础。

采集标本操作流程的规范性和准确性直接影响到检验结果的准确性和可靠性。

下面我将详细介绍采集标本的操作流程。

首先,进行采集标本前,需要准备好所需的工具和材料,包括手套、采血针、采血管、消毒棉球、绷带等。

确保所有工具和材料都是干净的,无损坏。

接着,进行采集标本的准备工作。

首先,要确认患者的身份信息,包括姓名、性别、年龄等,以避免混淆。

其次,要询问患者有无特殊情况,如过敏史、用药史等,以便采集标本时做好相应的准备。

然后,进行采集标本的操作。

首先,要洗手并戴上手套,确保操作的无菌性。

然后,选择合适的采集部位,如静脉采血、皮下组织采血等。

在采集标本时,要注意采血针的角度和深度,避免损伤血管和组织。

采集完标本后,要及时处理采血针和采血管,避免交叉感染。

最后,进行标本的处理和保存。

采集完标本后,要及时标注标本信息,包括患者信息、采集时间等。

然后,将标本送往实验室进
行检验,确保标本的质量和准确性。

在标本保存过程中,要注意避免标本的污染和损坏,确保检验结果的可靠性。

总的来说,采集标本操作流程的规范性和准确性对于临床诊断和治疗至关重要。

只有严格按照操作流程进行采集标本,才能确保检验结果的准确性和可靠性,为患者的健康提供有力的支持。

希望以上介绍能够帮助您更好地了解采集标本的操作流程。

临床血液标本采集指南医院

临床血液标本采集指南医院

临床血液标本采集指南一、检验申请规范填写检验申请单项目填写齐全,用词规范、字迹清楚、避免涂改;不同标本类型最好分开申请对于被检者的特殊情况,应当在申请单上注明,供检验人员判断结果参考;检验科要求检验人员加强与临床医护人员沟通,及时解决检验项目申请和送检标本存在的问题和疑问;对于不合格检验申请单和不合格送检标本按照“医学检验工作制度”进行登记、处理;对于漏填或错填申请科室的检验申请单,检验科一律禁止发送检验报告,必要时送交医务科处理;二、病人准备医护、检验人员指导病人做好准备考虑饮食、运动、生理周期、疾病及药物等对检验结果可能产生的影响,指导病人正确采集标本;一控制饮食(1)大多数检验项目都要求在早晨空腹采血,咖啡、浓茶、高糖及可乐类饮料也应禁食;(2)肝功、血脂、凝血等项目要求禁食12-16小时,且提前一天的晚餐应当避免饮酒、禁止高脂肪、高蛋白饮食;(3)饮食对血脂检验影响重大,至少应当在抽血前的三天内注意保持正常饮食;(4)在做内生肌酐清除率测定之前,待检者应禁食肉类3天,不饮咖啡和茶,停用利尿剂,实验前避免剧烈运动,饮足量的水;二避免药物影响许多药物如VitC、雌激素、降血脂药等对检验结果尤其是血、尿、便的生化检验结果产生影响,抗生素应用将对微生物培养检验结果产生直接的影响;申请检验前医生应该了解待检者近期及当前相关药物使用情况并给予适当指导,在对检验结果可能产生明显影响时,应当在检验申请单上注明,或以电话或其他方式告知相关检验人员;举例:降血脂、避孕药、噻嗪类利尿剂、§-受体阻滞剂、免疫抑制剂、某些降压药、降糖药、胰岛素及其它激素制剂等可影响血脂检验结果;应根据药物特性,在作血脂检验前停药数天至数周;如不能停药,应记录用药情况,恰当评估药物及检验结果的影响;三避免运动影响(1)剧烈运动可以使许多血液成分发生变化,甚至持续24小时以上,因此剧烈运动之后不能立即抽血;快步行走之后至少应休息10-15分钟后再抽血;(2)应在平静状态抽血,避免情绪激动;四注意生理差异临床医生申请检验项目及评估检验报告时,应考虑性别、年龄、昼夜节律、季节变动、生理周期如怀孕、月经等因素对检验结果的影响,并给与必要指导;五注意体位要求(1)许多血浆生化成分在站、坐、卧三种不同体位时有明显的浓度差异;(2)静坐5-10分钟后以坐位从肘静脉采血为最佳;(3)卧床患者可卧位采血;三器材选择1一般采血可采用质量合格的一次性塑料注射器;从动脉采集血气标本,以采用玻璃注射器为佳,可以减少血液中氧气的弥散;2采用注射器采血时,7号22G或8号针21G为标准抽血用针,针头过细容易产生溶血;3采用真空采血管-采血针已成为国际标准,可以有效减少溶血,凝血及采血量不准的差错;4采集抗凝血液标本时,血标本采用的抗凝剂的种类及浓度、体积必须正确无误;四、采血操作一正确选择血标本种类1大多数检验项目生化、免疫、凝血、血培养、交叉配血等采用静脉血标本;2血气分析最好采用动脉血标本,也可从动脉化毛细血管采血如新生儿;3血常规检验全血细胞分析可以采用静脉血或手指末梢血,但除非静脉抽血确实困难者如:新生儿、幼儿、老人、肥胖者、严重烧伤患者、出血倾向严重的患者、病危患者,或者必须为治疗保留静脉者如肿瘤化疗患者可考虑采用末梢血外,其他人应采用静脉血;二正确选择采血部位1末梢血标本可从手指采集,采用耳垂末梢血作为血常规检验标本的做法已废止;新生儿可以从足跟,、大指采血;2动脉血标本常从股动脉、肱动脉、桡动脉采血,新生儿及婴儿可从头皮动脉或脐动脉采血;3静脉血标本常从肘前静脉、腕静脉采血,小儿和新生儿有时从颈静脉和前囟静脉;4禁止从输液三通管采血输液成分回流、输液管内残留液体成分都将极大地影响检验结果;三尽量避免输液时采血1一般应在输液结束30分钟以后采血;2抢救过程中必须一边输液一边采血时,应避免从正在输液的肢体上采血,应避免输液成分混入血液标本;3输液时采血应当遵从“远端原则”:---选择在输液的对侧肢体或无输液的其他肢体如足部静脉采血;---在四肢静脉都输液时,可以选择在输液静脉的远心端静脉血流的上游采血;(4)急诊、抢救过程中在输液的同时采血,应在检验申请单上注明;四避免消毒酒精引起溶血静脉穿刺处消毒酒精未干就采血,容易引起标本溶血;三合理使用止血带(1)止血带不能扎得过紧,使用时间应尽量缩短;抽血时,见到回血就应该立即松开止血带,减少血行阻滞时间也不应该鼓励被抽血者长时间、用力攥拳;(2)血脂项目、出凝血项目、血常规项目抽血时止血带使用应限定在1分钟以内;(3)止血带束缚太紧,时间过长如超过3分钟,会造成血行阻滞时间过长,因溶血、血小板激活、纤溶系统激活等原因将使以上检验项目的检验结果产生偏差,甚至诱导错误诊断;(4)需要重新采血时,在止血带束缚时间太长的情况下,应当在对侧手臂重新采血;六“一针见血”、抽血顺畅;1许多检验项目,尤其是涉及出凝血机制的项目如血小板计数,出凝血项目等均要求做到“一针见血”、抽血顺畅;2“一针见血”、抽血顺畅,可以有效防止溶血、减少血管及组织细胞损伤导致血液成分改变对检验结果的影响;溶血造成红细胞内成分的释放、血管损伤导致凝血机制的激活,对很多检验项目将产生明显影响;七控制抽血力度1用注射器抽血应避免大力拉、推针栓,以免血细胞因过度挤压而增加溶血;2抽血时大力抽拉针栓,还易使血液产生气泡;气泡是导致溶血、蛋白酶失活的重要原因之一;3从动脉采集血气分析标本,应让血液自动流入针筒,不要用负压抽取血液,以免增加血液中气体挥发及产生溶血;八血液标本采集顺序1注射器采血可以一次性采集足量血液,然后立即依如下顺序分装各标本管:血常规、凝血、生化、免疫;2使用配套的真空采血管-采血针时,第一管最好不作为凝血检验标本最大限度的降低血管及组织细胞损伤造成血液成分改变对检验结果的影响,临床医生申请凝血检验项目时最好考虑与血常规或其他检验项目一起采血;3使用配套的真空采血管-采血针时,采血顺序应当是:血培养、不含添加剂的采血管血清标准管,红色、橘红色或黄色、凝血标准管蓝色、其他管;4采集末梢血标本的顺序应当是:擦去第一滴血,依次采集血小板计数,红细胞计数,血红蛋白测定,白细胞计数等的标本;九减少针头导致的溶血1如果使用注射器抽血,应先卸掉针头,再沿试管壁将血液轻缓的注入试管;2通过针头将血液推入试管血液细胞二次通过针头,尤其是用力推送将增加血液细胞受挤压而破碎的机会,导致溶血;十准确控制标本量1抗凝血标本的体积必须准确——真空采血管的标签上都有体积标志黑色小方块;抗凝血标本的体积误差必须控制在5%以内如2ml凝血标本管的血液体积误差应不大于;2抗凝血液标本的体积不符合要求可能产生的主要影响:血液体积太多——抗凝剂比例太少,容易产生凝块;血液体积太少——抗凝剂体积相对剩余,血液成分过度稀释,且使血细胞渗透压降低而产生变形或溶血,PT和APTT时间假性延长;十一尽快与抗凝剂彻底混合(1)需要抗凝的血液标本,抽血后应立即将血液注入含抗凝剂的标本管,并使血液与抗凝剂彻底混匀,避免血液凝固;(2)真空采血管以颠倒5-8次为标准操作,动作应迅速而轻柔;用力振荡、产生气泡也不可避免产生溶血;(3)如果管中抗凝剂为液体,应当使粘附在管壁、管盖上的抗凝剂能够全部与血液混合;(4)对于出凝血项目、血常规、白细胞表面抗原分类检测等项目,血液标本出现凝固即使少量细胞凝聚均为不合格;五、血液标本保存一血液标本的保存要求1采血后应将标本管直立、静置、避免震荡、摔落;2所有标本最好都采用有盖容器存放,防止灰土,杂物混入,减少水分、气体蒸发,避免标本溅洒,污染;3标本应保存于阴凉处,避免阳光直射;某些检验项目要求避光保存血液标本;4标本一般应室温保存,避免过高或过低温度影响;5特定项目的血液标本需要低温保存如血气标本应将封闭的血液立即冷冻至4℃然后送检;6血液标本全血、血清或血浆低温保存,应当在检验人员指导下进行;二血液标本应立即送检1血液标本不应在临床科室保留,应尽可能立即送往检验科室;2检验人员应根据不同检验项目的要求及时处理标本立即检验、低温保存、分离血清后低温或常温保存等;三血清标本的有效检验时限1血气分析-----必须立即送检,应当在30分钟内完成检验;2凝血因子、细胞因子目前我院尚未开展及激素检验------必须立即送检,即刻检测或冻存标本不适合采用早晨统一采血、统一送血的方法;条件具备时,应在实验室采血;3凝血项目、电解质项目、肝功及多数血清酶类生化项目-------应尽快送检,在2小时内检验;4血常规项目------应在4小时内完成检验;5血培养项目-------应在采血后尽快放入35℃培养箱中,超过2小时可能降低微生物培养的阳性率;6多数抗原-抗体检测项目-------全血室温4℃为佳可保存24小时,或分离血清-20℃保存;7在环境温度超过30℃的条件下,所有标本都应尽快送往检验科室;8有些临床科室早晨抽血时间过早,至送检时标本已室温放置超过2小时,标本因细胞代谢、溶血、蒸发等原因造成许多项目偏差,如:钾、乳酸脱氢酶、谷丙转氨酶、谷草转氨酶、血红蛋白、酸性磷酸酶等升高,钠,血糖等降低;检验科建议:住院病房早晨抽血时间应控制在6:30以后,标本应在8:00左右送至检验科;四血培养标本的特殊要求1确保无菌采血,严防标本污染;2血培养瓶接种的血液量一般为:成人10ml,儿童4ml,幼儿1-2ml;接种的血液过多易引起假阳性;3做厌氧培养的血液标本,应避免接触空气,立即注入专用厌氧培养瓶内;4如果同时做厌氧培养和需氧培养,应先将血标本接种厌氧培养瓶,然后再接种需氧培养瓶;六、血液标本运送1标本应从采集地点直接送往检验科室,不应在其他地点放置;2以上血液采集、保存过程对标本质量的要求应当得到满足;必须避免剧烈震荡、血液溅洒、光线照射、异物混入等情况的发生;3交叉配血的输血者血液样本,必须由临床医护人员或专职运送人员直接送往检验科血库;禁止其他人员或受血者家属执行血样运送任务;4外送检验标本应当接受检验人员对标本种类全血、血清或血浆、标本容器、生物安全防护要求以及运送保存温度等方面的指导;七、其他一正确处理不合格标本1检验科室在核收送检标本时,对不合格检验标本应当拒收;2临床科室在证实标本不合格之后应当重新采集标本送检;严禁诸如“将因出现凝集而被拒收的血常规在挑出凝块之后重新送检”之类的严重错误发生;二标本溅洒事故的处理1从标本管溅洒出来的血液标本不能再放回标本管作为标本送检;2严禁将同一个待检者含不同抗凝剂的血液标本进行混合,严禁将不同待检者的血液标本进行混合;3如果发生标本溅洒事故,应当立即对被污染物体表、衣物、台面、地面等进行有效的消毒处理;。

血培养标本采集

血培养标本采集

血培养标本采集在临床医学中,血培养标本采集是一项非常重要的检查操作,能够帮助医生迅速准确地判断感染的病原体及其敏感性。

正确的采集方法和操作流程是确保检验结果准确可靠的关键之一。

本文将为您介绍血培养标本采集的步骤和注意事项。

一、准备工作在进行血培养标本采集之前,医务人员需要完成以下准备工作:1.检查所需材料:血培养瓶、采血针、无菌消毒棉球、无菌手套等。

2.确认患者的身份:核对患者的姓名、住院号等重要信息,确保采集的标本与患者对应。

3.告知患者:向患者解释采集血培养标本的目的和过程,并获得其同意。

二、采集步骤1.无菌操作:医务人员需戴上无菌手套,确保采集操作在无菌环境下进行。

同时,注意保持工作区的整洁和清洁。

2.选择合适的采血部位:一般常采用质感好、容易握持的静脉作为采血部位,如患者的前臂外侧静脉。

3.皮肤消毒:采血部位的皮肤需要进行消毒处理,以减少细菌污染。

常用的消毒剂有75%酒精和碘酒,根据患者对消毒剂的过敏情况选择适当的消毒剂。

4.穿刺采血:医务人员用无菌针头在经消毒处理的静脉部位插入静脉,待血液自由流出时开始采集。

5.采集血培养标本:将血培养瓶插入静脉针头上的连接器上,打开瓶盖,让血液自由流入瓶中。

一般情况下,每瓶血培养标本所需血量为8-10ml。

6.采血完成后,轻轻拧紧瓶盖,拔出连接器,用无菌棉球轻压在采血点上,帮助止血。

三、注意事项1.遵循严格的无菌操作:确保操作过程中的无菌环境,减少细菌污染的可能性。

2.插针时注意技巧:确保针头成功插入静脉并定位准确,避免因插针错误而导致血液外溢或组织损伤。

3.血液采集量的控制:不同的血培养瓶需要不同的血液量,医务人员需要根据实际情况确保采集到足够的血液。

4.采血时间和频率:最佳的血培养标本采集时间通常是在患者发热的早晨,此时细菌浓度较高,有助于提高阳性检出率。

同时,根据医生的嘱托,可适当增加血培养的采集频率。

5.采集后标本的处理:采集完成后,将血培养瓶标注患者信息,并尽快送往实验室进行培养和检验。

检验科标本采集手册。。。

检验科标本采集手册。。。

检验科标本采集手册概述标本采集是医学检验的重要环节,采集的正确与否直接影响到结果的准确性,从而也对临床诊断产生重要的影响。

采集标本涉及到哪些具体内容呢?这里给大家准备了一份检验科标本采集手册,详细介绍标本采集的注意事项和流程。

标本采集前在标本采集之前,我们需要注意以下几点:1.病人身份确认在采集标本之前,首先要确认病人的身份,包括姓名、年龄、性别、住院号或门诊号等信息,避免采错样本。

2.术前准备首先需要准备好采集针头、采集管、采样杯、乙醇棉球、消毒液等采集工具。

同时还要确认病人是否符合采集标本的时间要求。

例如:血糖检查需要在早晨空腹,或餐后一个小时等。

3.采集位置选择需要选择采集标本的正确位置,例如:动脉血需要穿刺到相应的动脉,如股动脉、桡动脉等。

4.术后护理采血或者取标本后,要及时以消毒、止血等方式进行术后护理,同时告知病人注意保持休息,尽可能减轻不适。

标本采集流程血液标本采集1.选择静脉穿刺部位,通常在手背或前臂上,可以松紧带辅助找到表浅的静脉。

2.用乙醇棉球进行局部消毒,该过程应逐步向外摆动。

3.穿刺过程需要采用无菌穿刺法,采用锥形针头穿刺抽取速度要适当。

4.抽出血量,具体数值根据检验需求在2mL到5mL之间。

5.采完标本后,按压穿刺部位止血,根据需要贴上敷料,以消毒棉球顺着采血的轴心进行按压。

尿液标本采集1.玻璃杯采集法:采样前需首先按照病人的需要进行宣教,让病人注意保持排泄的量,采集自然排泄的尿液,勿让手触碰到杯壁,并避免空气中异物的污染。

收集的尿液量大于10mL。

2.导尿采集法:使用导尿管采集尿液,需要使用无菌导管。

粪便标本采集1.纸尿裤收集法:如果采集婴幼儿的粪便标本,可以使用纸尿裤,将宝宝大便直接收集。

2.容器收集法:采集成人粪便标本需要准备好容器,通常是无菌脱口器或集便器。

收集前也需要进行局部清洁消毒。

小结以上为标本采集的注意事项和流程,不同的标本采集依据检验要求有所不同,但各个流程都十分重要,希望大家能够认真操作,保证采集的样本有效性,从而保证检验结果的准确性。

检验科标本接收流程图

检验科标本接收流程图

检验科标本接收流程图检验科标本接收流程图一、流程图简述本文将详细介绍检验科标本接收的整个流程,包括从病人准备标本到标本被检验科接收的步骤。

通过阅读本文,读者将了解检验科标本接收的规范操作,以及各个环节的重要性。

二、流程图背景介绍检验科是医院中负责临床实验室诊断的重要部门,而标本接收是检验科日常工作中至关重要的一环。

正确的标本接收流程不仅能保证实验室结果的准确性,还能为临床诊断提供有力支持。

为此,以下详细介绍了检验科标本接收流程图。

三、流程图详解1、病人准备:病人需在医生的指导下进行标本采集,确保采集的标本符合检验要求。

2、标本采集:医护人员根据检验申请单,正确采集标本并将其标记。

3、标本运输:医护人员将采集的标本及时送往检验科,防止长时间保存对标本质量造成影响。

4、标本接收:检验科工作人员对送达的标本进行核对、登记,确保所有信息准确无误。

5、标本预处理:根据检验项目要求,对标本进行必要的预处理,如离心、稀释等。

6、标本检测:检验技术人员对标本进行相关实验检测,得出初步结果。

7、结果审核:主管检验师对初步结果进行审核,确保结果的准确性。

8、报告发放:经过审核后,结果将被录入报告单并分发给临床医生。

9、质量监督:定期对标本接收流程进行质量评估和监督,持续改进工作流程。

四、总结本文详细介绍了检验科标本接收的整个流程,包括从病人准备到结果审核及报告发放。

每个环节都遵循严格的规范操作,以确保实验室结果的准确性。

正确的标本接收流程对于临床诊断和治疗具有重要意义。

为了提高实验室效率和确保结果准确性,检验科应加强对标本接收流程的质量监督,并持续改进工作流程。

五、参考文献[此处列出参考文献]检验科工作流程图标题:检验科工作流程图详解一、引言在医疗机构中,检验科是一个核心的部分,它负责为临床医生提供关于病人病情的准确、及时的实验室数据。

为了确保工作的准确性和效率,检验科有一套详细的工作流程。

本文将通过流程图的形式,详细阐述检验科的工作流程。

临床检验标本采集手册

临床检验标本采集手册芜湖县中医院检验科临床检验标本采集指南及注意事项临床检验标本采集和处理问题已普遍引起了人们的重视。

芜湖县中医院检验科每年参加省临床检验中心的室间质评活动,并取得较好成绩。

为做到临床检验质量保证,必须做到对实验检查的全过程进行全面的质量控制和质量管理。

这里包括:实验前(分析前)、实验中(分析中)和实验后(分析后)三个阶段的质量控制,其中实验前质量控制尤其重要。

分析前质量管理是一个最薄弱的环节,试验误差中60~70%来自实验前,而且实验前误差是仪器、试剂、质控品和标准品等再好也无法解决的。

实验前质量控制主要包括:⑴病人准备⑵标本采集⑶标本保存和运送⑷标本处理等。

一、病人准备1.患者的状态:一般需在安静状态下采集标本,如患者处于激动、兴奋、恐惧状态时,可使血红蛋白、白细胞增高。

运动后,由于能量消耗、体液丢失、剧烈呼吸,可造成许多检验结果的变化,如谷丙转氨酶、谷草转氨酶、乳酸脱氢酶、肌酸激酶等一时升高,还可引起血中钾、钠、钙、白蛋白、血糖等成分的变化。

2. 患者的饮食:2.1 多数试验要求空腹采血(空腹12小时左右),最好是早晨空腹采血。

研究表明,餐后血液中GLU、TG、ALT、ALP、BUN、Na等均可升高。

进食高蛋白或高核酸食物,可引起血中尿素(Urea)及尿酸(UA)的增高;进食高脂肪食物,可引起TG的大幅度增高。

餐后采集的血液样本,其血清常出现乳糜状,影响到许多检验测定的正确性。

一些饮料如咖啡,也可使淀粉酶(AMY)、促甲状腺素(TSH)等升高。

2.2 禁食过久也会影响检测结果。

通常血糖浓度呈下降趋势;胆红素清除速率降低,引起血清胆红素浓度上升。

绝食状态下脂肪酸和酮酸成为肌肉能量来源,因此血清中酮体、脂肪酸和甘油的浓度会显着增加。

禁食48小时后,血清甘油三酯增加20%,此后又会下降。

绝食使血清尿酸盐浓度显着上升。

身体饥饿时醛固酮分泌增加,尿排钾增加引起血清钾降低。

2.3 素食者:长期素食者低密度脂蛋白(LDL)和极低密度脂蛋白(VLDL)浓度都会偏低,总脂质和磷脂浓度也会减少,胆固醇和三酸甘油脂浓度可能只有杂食个体的三分之二。

检验标本的采集与运送规范

检验标本的采集与运送规范检验标本的采集与运送是医学检验过程中的重要环节,直接关系到检验结果的准确性。

为了确保检验结果的科学性、准确性和可靠性,必须严格按照规范进行标本的采集和运送。

以下是关于检验标本的采集与运送的详细规范。

一、标本采集规范1. 采集前的准备(1)采集人员应具备专业的采集技能和知识,了解检验项目的相关要求。

(2)准备所需的采集工具,如注射器、试管、棉签、消毒液等,并确保工具的清洁、无菌。

(3)核对患者信息,确保采集的标本与患者信息相符。

2. 采集方法(1)采集血液标本时,应根据检验项目选择合适的采血部位,如空腹采血选择肘正中静脉,非空腹采血选择股静脉或头皮静脉等。

(2)采集过程中,注意止血带的使用,避免过度压迫血管。

(3)采集尿液标本时,应确保尿液标本来自清洁的尿道,避免污染。

(4)采集粪便标本时,应使用无菌棉签或试管进行采集,避免标本污染。

(5)采集唾液标本时,使用无菌试管,指导患者在采集前避免进食和口腔清洁。

3. 采集注意事项(1)采集标本时,应严格遵守无菌操作原则,防止交叉感染。

(2)采集过程中,注意保护患者的隐私和权益。

(3)采集血液标本时,注意观察患者的反应,如出现晕血、过敏等情况,应立即采取相应措施。

(4)采集标本时,应详细记录患者的病情、服用药物等信息,以便检验人员分析检验结果。

二、标本运送规范1. 运送前的准备(1)将采集好的标本放入合适的容器中,确保容器密封、防漏。

(2)根据检验项目的要求,选择合适的运送方式,如冷链、常温等。

(3)填写标本运送单,包括患者信息、标本类型、采集时间等。

2. 运送过程(1)标本的运送应尽快进行,避免延迟。

(2)运送过程中,注意保持标本的稳定性,避免剧烈震动、温度变化等。

(3)对于特殊标本,如细胞学标本、微生物标本等,应严格按照要求进行运送。

(4)运送人员应具备相关的专业知识,了解标本的运送要求。

3. 运送注意事项(1)运送过程中,确保标本的安全,防止标本丢失、损坏等。

标本采集操作流程及并发症处理评分

标本采集操作流程及并发症处理评分标本采集是临床医学中重要的一环,它直接关系到诊断和治疗的准确性和有效性。

标本采集的操作流程和并发症处理评分是临床医学领域中必须要掌握的内容。

本文将围绕标本采集的操作流程和并发症处理评分展开讨论。

一、标本采集操作流程1.准备工作在进行标本采集之前,必须进行充分的准备工作。

首先,要对采集工具进行必要的消毒和准备,确保采集工具的干净和无菌。

其次,要对采集现场进行准备,包括清洁工作台、准备标本瓶和标签等。

最后,要核对患者的个人信息和医嘱,确保采集的标本与患者的身份和医嘱相符。

2.采集操作在进行标本采集时,要严格按照操作规程进行。

首先,要进行充分的交流和沟通,让患者充分了解采集的过程和事项。

然后,要选择合适的采集位置,进行必要的消毒和局部麻醉。

接下来,要按照规定的采集方法进行标本采集,并确保采集的标本量和质量满足实验室检测的要求。

最后,要妥善处理采集后的伤口,防止感染和出血。

3.标本保存标本采集完成后,要对标本进行适当的保存和处理。

首先,要及时将标本装入标本瓶,并加上正确的标签。

然后,要根据标本的特性和实验室的要求进行适当的保存和运送,确保标本的完整性和稳定性。

同时,要及时记录标本的采集时间、采集人员和保存地点等信息,建立标本追踪系统,方便后续的质控和追溯。

二、并发症处理评分标本采集过程中可能会出现一些并发症,如出血、感染等,必须要进行及时处理。

对于不同的并发症,有相应的评分标准,以便及时判断和处理。

1.出血评分出血是标本采集过程中常见的并发症之一。

对于出血的评分,主要根据出血的程度、持续时间和影响范围等指标进行评估。

一般采用0-4级的评分标准,根据出血的情况进行相应的评分和处理。

对于1-2级的出血,可以采取局部止血和压迫等方法进行处理;对于3-4级的出血,需要进行紧急处理并及时转诊。

2.感染评分感染是另一个常见的并发症。

对于感染的评分,主要根据感染的部位、症状和病原菌等指标进行评估。

采集血标本流程

采集血标本流程血标本采集是临床医学中非常重要的一环,它直接关系到患者的健康和诊断治疗。

正确的血标本采集流程可以有效避免采集错误,确保标本的准确性和可靠性。

下面将介绍一般的血标本采集流程,希望能够帮助大家正确进行血标本采集。

1. 准备工作。

在进行血标本采集之前,首先需要准备好所需的工具和材料,包括一次性采血针、采血管、消毒棉球、绷带等。

另外,还需要准备标本采集表格、病人信息确认单等相关文件。

2. 患者准备。

在进行血标本采集之前,需要对患者进行必要的准备工作。

首先要确认患者的身份信息,包括姓名、性别、年龄等。

其次要向患者说明采血的目的和过程,让患者了解采血的重要性和必要性,消除患者的紧张和恐惧。

3. 采血部位选择。

选择合适的采血部位是血标本采集的关键之一。

常用的采血部位包括前臂内侧的肘窝处和手背静脉 plexus dorsalis manus。

在选择采血部位时,需要根据患者的具体情况和采血的目的进行合理选择。

4. 皮肤消毒。

采血前需要对采血部位进行皮肤消毒,以避免感染的发生。

一般采用酒精棉球进行皮肤消毒,消毒的范围要大于采血点周围,以确保采血的无菌。

5. 采血操作。

在进行采血操作时,需要注意以下几点,首先要确保采血针的使用是一次性的,并且在使用前要检查针头是否完好;其次要注意采血管的标识,确保标本的准确性;最后要注意采血的角度和深度,避免损伤血管和神经。

6. 采血后处理。

在完成采血操作后,需要对采血部位进行适当的处理,包括用消毒棉球进行按压止血,并在必要时使用绷带固定。

另外,还需要将采血管和相关文件妥善保存,以确保标本的完整性和可靠性。

以上就是一般的血标本采集流程,正确的采血操作可以有效确保标本的准确性和可靠性,为临床诊断和治疗提供可靠的依据。

希望大家在进行血标本采集时能够严格按照流程操作,确保采血的质量和安全。

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病人准备和标本采集是检验质量保证的重要环节之一。

由于病人受到各种内在和外界的影响,可使检验结果产生或大或小的误差,为此检验前病人须作适当准备,可减少随机分析误差。

一、病人准备病人准备除了特殊检验有专门规定外,一般要求病人处于安静状态,生活饮食处于日常状态,目前已公认运动、过度空腹、饮食、饮酒、吸烟及姿势体位等可影响某些检验结果,现分述如下:1.运动:肌肉活动的影响可分短暂性的和持续性的两类,短暂性影响为血浆脂肪酸含量,可因运动而暂时减少,而后渐渐增加而恢复。

丙氨酸可因运动暂时增加达180%,而乳酸则可增加至300%。

受到持续性影响主要是一些肌肉有关酶,如肌酸激酶、醛缩酶、乳酸脱氢酶等,据称一场60min 的手球训练赛后11h,肌酸激酶活性比赛前仍增加达125%,长期坚持体育锻炼还会提高性激素水平,因此采血前宜安静,不作过大的活动。

2.食物:进餐后血浆脂肪、蛋白质、糖类有所增加。

有人研究于高脂餐后2-4h采血,多数人碱性磷酸酶含量增高,主要来自肠源性同工酶,且与血型有密切关系,O 型或B 型兼为Le+分泌型者增高更明显。

一般认为高蛋白质餐使血浆尿素、血氨增加,但不影响肌酐含量,高比例不饱和脂肪酸食物,可减低胆固醇含量;香蕉、菠萝、番茄可使尿液5-羟色胺增加数倍;含咖啡因饮料,可使血浆游离脂肪酸增加,并使肾上腺和脑组织释放儿茶酚胺。

食物如含有动物血液,可引起粪隐血假阳性。

故在做相应检验时,应对食物有一定的控制。

3.过度空腹:一般血液生化检验要求病人晚餐后禁食,至次日晨采血,空腹约12-14h。

但过度空腹,若达24h 以上,某些检验会有异常结果。

例如血清胆红素可因空腹48h 而增加240%;血糖可因空腹过长而减少为低血糖;血脂空腹过度,甘油三酯、甘油、游离脂肪酸反有增加,而胆固醇无明显改变。

故空腹并非越长越好,近年国外有人主张胆固醇单项检验,不必空腹抽血。

4.饮酒:饮酒后使血浆乳酸、尿酸盐、乙醛、乙酸盐增加。

长期饮酒者高密度脂蛋白胆固醇偏高,平均红细胞体积增加,谷氨酰转肽酶(GGT)亦较不饮酒的人为高,甚至可以将这项作为嗜酒者的筛选检查。

5.吸烟:瘾大者血液一氧化碳血红蛋白含量可达8%,而不吸烟者含量在1%以下。

此外儿茶酚胺、血清可的松亦较不吸烟者为多;血液学方面亦有变化,白细胞数增加,嗜酸粒细胞减少,中性粒细胞及单核细胞增多,血红蛋白偏高,平均红细胞体积偏高。

Dalferes 认为吸烟组血浆硫氰酸盐浓度明显高于非吸烟组。

6.药物:药物对检验的影响非常复杂,15000 多种药物对检验有干扰作用。

众所周知,抗结核药、抗生素、抗白血病制剂、磺胺类药物,对肝功能有大小不一的1影响,甚至几片常用药物可以引起严重的药物反应,故在采样检查之前,暂停各种药物是为上策,如不可停用,则应了解可能对检验结果产生的影响。

7.体位:体位影响血液循环,由于血浆和组织间液因体位不同而平衡改变,则细胞成分和大分子物质的改变较为明显,例如由卧位改为站位,血浆白蛋白可因此而浓度增大,总蛋白、酶、钙、胆红素、胆固醇及甘油三酯等亦因站位而浓度增加;血红蛋白、血细胞比容、红细胞计数亦于站位时增加。

由于体位的因素,不要让病人自己到检验科来采血做血常规,或复查红、白细胞计数,以免体位引入的误差。

8.其他:病人准备还应考虑病人的生物钟规律,因此复查以在大体相同的时间采样为好。

采血时止血带结扎过久,也是一种误差因素,如以结扎1min 的样品结果为基数,则结扎3min,可使血浆总蛋白增加5%,胆固醇增加5%,铁增加6%,胆红素增加8%。

血气和PH 值测定的血液以动脉血为原则,且不可漏气。

细菌培养的样品要采用无菌技术,防止污染。

二、标本采集标本采集是直接关系检验结果的基本功,如果标本采集不当,即使最好的仪器设备,也难以弥补在采集标本时引入的误差和错误。

现将各种标本采集要点分述如下:(一)临检、生化、免疫及分子生物学标本采集1.血液标本:分普通管、抗凝管两大类;抗凝管又根据抗凝剂不同分为草酸钾管、草酸钠管、枸橼酸钠管、乙二胺四乙酸二钾盐或二钠盐(EDTA-K2 或EDTA-Na2)管、肝素管等。

(1)草酸钾:与钙离子结合成草酸钙,使血液抗凝,常用量为1-2g/L 血液。

(2)草酸钾氟化钠混合抗凝剂:专供葡萄糖测定用,氟化钠 1g,草酸钾 3g 混合,混合每4mg 可使血液1ml 抗凝。

(3)枸橼酸钠:用于血沉及血凝检查。

血沉(魏氏法)用109mmol/L(32g/L)枸橼酸钠0.4ml,与血液1.6ml 混和;血凝多用38g/L,亦可用 32g/L,以抗凝剂与血液1:9 混和。

(4)肝素:是一种粘多糖体,可抑制凝血酶原转化为凝血酶,使纤维蛋白原不能转化为纤维蛋白,以15+-2.5IU 抗凝1ml 血。

可用于生化和血液学检验标本,但不可用于筛选弥散性血管内凝血的血浆鱼精蛋白副凝试验(3P)和凝血酶试验。

因肝素可与鱼精蛋白作用,发生沉淀使3P 出现假阳性以及肝素的抗凝血酶作用出现严重干扰。

(5)乙二胺四乙酸(EDTA):能与钙离子络合而抗凝,通常血常规中用其钾盐EDTA-K2,或EDTA-K3。

2.尿液标本:根据采集时间可分为晨尿、随意尿、空腹尿,计时尿(2h 3h 12h 24h 等),午后尿、餐后尿等。

晨尿为住院病人留尿的主要方法,早晨起床后采集第1 次排尿,可用于常规检验。

随时尿不受时间的约束,多为门诊病人的留尿方法。

空腹尿为进餐后4h 左右排尿,收集下1次的尿液供检验,主要用于了解葡萄糖代谢23情况。

计时尿不论几小时,均应于计时开始进排空尿液,然后于规定时间内排尿,计时尿多用于肾功能和有形成成分排出率的评估,亦用计算淀粉酶或肌酐的排出率。

24h 尿多用于化学组分的测定,亦用于泌尿道抗酸杆菌的检查。

尿液原则上不用防腐剂为好,如需 12h 或 24h 尿,首选以冷藏为妥,次为根据检验申请加用合适的防腐剂。

3.粪便标本:采集后及时送检,如作原虫阿米巴检查应保持一定温度,且立即送检,立即检查。

如检查虫体或绦虫头节,应全部粪便送检,如检查蛲虫则不必送送验粪样,而应于晨起排便前用棉拭擦肛门周围,可得虫卵。

粪便标本不应污染容器外表,且不太满,30g 容器装 5-10g 为妥,如大便上有粘液或是血液,应采集此处标本,以提高阳性率,30min 内送检,放置过久易导致细胞的破坏,特别是阿米巴等原虫。

4.脑脊液、浆膜腔液、关节液:均由临床医师穿刺采样,检验科应提供专用的各种试管或容器,相互配合并及时检验。

5.骨髓:采集由临床医师穿刺,为使涂片满意,必要时本科协助作骨髓涂片。

6.胃及十二指肠液:一般均在门诊室或病房采集后送检,收样时应核对标本。

胃液分基础胃酸分泌(BAO)、最大胃酸分泌(MAO)等;十二指肠液分甲、乙、丙管,甲管来自总胆管为橙黄色,乙管来自胆囊为黄绿色,丙管来自胆道为柠檬色,细菌培养应从乙管取样接种培养。

7.痰液标本:采早晨第 1 口痰,多用于细胞学及微生物学检查。

采样前应先反复漱口,经深呼吸数次后用力咳痰,不可吐入唾液。

微生物培养取样应在抗生素等药物治疗开始之前,如已用药,则应选血药浓度最低时采样。

8.阴道分泌物:由妇产科医师采样后送检,如成批送检应在 37℃加温数分钟后检查,否则影响滴虫动力,容易漏检。

9.精液和前列腺液:采集精液应在 3-5 天内勿排精,且于排精后 30min 内保温送达检验科,容器以广口小玻璃瓶为好,不可贮于避孕套或塑料瓶内。

收到标本后应及时检查。

前列腺液由医师作前列腺按摩术取样,收到标本后应立即检查。

10.其他标本:根据具体检验项目而定。

(二)常规标本采集方法1.血常规、生化及免疫检验标本采集方法(1)采血前仔细核对血常规试管上的标签与化验单上的姓名、床号、住院号是否相符。

(2)检查血常规试管底部是否有抗凝剂。

(3)静脉血一般用肘静脉,也可选用颈静脉或股静脉,采血处应避免有皮肤红肿、溃疡等现象。

(4)消毒穿刺部位,针刺取血液(血常规 1ml 、生化5-6ml 、免疫 5ml)缓缓注入血常规试管中或加血至标记线处,盖上盖子,或真空管采集血液至 1ml ,立即颠倒混匀不少于 5 次,避免剧烈振荡,以免产生气泡。

一小时内送检。

(5)禁止在输液侧肢体采血或在输液后立即于该侧采血。

(6)实行一人、一针、一管、一带、一垫,防止交叉感染。

(7)若要进行比较性测定,应尽量在同一时间采血,不同时间的细胞数可能有较大的变化。

(8)由于血小板极易凝集,采血者应首先采集血常规,其次为出凝血、血沉,最后才是生化免疫。

注:网织红细胞(RET)、C 反应蛋白(CRP)、糖化血红蛋白(Halb)、脑钠肽(BNP)可与血常规共用一管。

2.凝血、血沉标本采集方法(1)采血前,仔细核对试管上的标签与化验单上的姓名、床号、住院号是否相符。

(2)检查试管底部是否有抗凝剂。

(3)尽量空腹采血,采血要顺利。

(4)消毒穿刺部位,针刺取血,缓缓向凝血、血沉管中加血至刻度处,务必要准确,立即加盖,或真空管采集血液,颠倒充分混匀5、6 次,及时送检。

3.其他常规血液项目标本采集方法(1)血中微丝蚴:在夜间10 时至凌晨2时之间,取末梢血2~3 滴于干净玻片上,制成厚涂片,立即送检。

(2)红斑狼疮细胞(LE):请到门诊处抽血。

(3)疟原虫:最好在全身开始寒战初期,将血滴涂成薄涂片,立即送检。

(4)肺炎支原体、衣原体抗体:采血约2ml 置洁净玻璃管内,2 小时内送检。

4.尿液标本采集方法(1)尿常规(URT):取晨起第一次小便中段尿,或第二次小便中段尿约 20ml置洁净器皿内,30min 内送检。

如急诊可取随机尿。

(2)尿淀粉酶(UAMY):晨尿或随机尿约10ml,30min 内送检。

(3)尿本周氏蛋白(Bence-Jones):取晨尿20ml,30min 内送检。

(4)乳糜试验:随机尿20ml,30min 内送检。

(5)妊娠试验(尿h CG):晨尿中段或随机尿中段约10ml,立即送检。

(6)尿三杯试验:采集标本时应连续排尿,中间不应有间断,各杯不少于10ml,立即送检。

(三)微生物标本采集要求1.血液细菌培养标本的采集:临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者,需做血液细菌培养以明确病因。

及时、准确地从患者血液中分离出病原菌,才能正确实施有效的抗菌治疗,从而有助于治愈率的提高和医疗费用的降低。

(1)采血时机在患者发热期间越早越好,应在抗菌治疗前,患者正在发冷或发热前半小时为宜(对已用药而不能中止的病人,也应在下次用药之前)。

(2)采血的次数及间隔根据研究,仅抽血培养 1 次分离率约占 80%,培养 2次的分离率约占 90%,而培养 3 次的分离率约占 99%。

仅抽血培养 1 次,除了分离率低4(其实因菌血症常会暂时消失)外,且将很难评估病原菌是污染还是与感染有关。

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