细胞培养实验报告范文
动物细胞培养实验报告
动物细胞培养实验报告第一篇：一、实验目的1、学习并掌握动物细胞培养的无菌操作技术。
2、学习并掌握细胞传代培养的方法。
3、学习并掌握用倒置荧光显微镜观察细胞细胞形态。
二、实验原理细胞培养（cell culture）：细胞在体外条件下生长，细胞不再形成组织。
动物细胞培养（animal cell culture）就是从动物机体中取出相关的组织，将它分散成单个细胞（使用胰蛋白酶或胶原蛋白酶）然后，放在适宜的培养基中，让这些细胞生长和增殖。
由于细胞具有生长和自我复制的能力，为细胞体外培养和研究提供可能。
动物细胞培养可分为原代培养和传代培养。
原代培养（primary culture）即直接从动物机体分离、获得组织细胞，在无菌条件下，用胰蛋白酶消化或机械分散等方法，将动物组织分散成单个细胞开始首次培养长出单层细胞的方法。
传代培养（subculture）当细胞生长增值达到一定密度，用胰蛋白酶将细胞消化分散成单细胞，将细胞转移到新的培养皿中扩大培养的方法。
高等生物是由多细胞构成的整体，在整体条件下要研究单个细胞或某一群细胞在体内的功能活动是十分困难的，但如果把或细胞拿到体外培养、增殖并进行观察和研究，则方便简单的多。
被培养的动物细胞是非常好的实验对象和实验研究材料，对体外培养的活细胞进行研究可以帮助人类探索防治各种疾病途径和机制，也可以人为地诱导和改变细胞的遗传性状和特性，因此，动物细胞体外培养技术是研究细胞分子机制非常重要的实验手段，被广泛应用于医学、生物技术、基因工程等研究领域。
三、细胞培养相关设施及材料1、细胞培养室无菌操作区：只限于细胞培养及其它无菌操作，与外界隔离。
孵育区：培养箱设定的条件为37℃，5%CO2。
制备区：培养液及有关培养用液体的制备，液体制备后应该在净化工作台进行过滤除菌。
储藏区：包括冰箱、干燥箱、液氮罐等。
清洗区和消毒灭菌区：清洗区为相对污染区，消毒灭菌区与清洗区分开。
2、细胞培养常用基本设施：荧光显微镜、超净工作台、孵箱、电热鼓风干燥箱、冰箱、液氮罐、消毒器、恒温水浴槽、滤器等。
细胞培养实验报告
细胞培养实验报告细胞培养是现代生物学研究中不可或缺的手段，其涉及到细胞的生长、分化、代谢以及各种分子和信号的相互作用等。
今天我将分享一份由我亲自进行的细胞培养实验报告，以介绍这一重要技术的原理、步骤和结果。
实验原理细胞培养指的是将体外的细胞，按照一定比例和条件，放置在培养基中进行生长和繁殖的一种方法，通常包含以下步骤：使用无菌操作要求的器材和条件进行细胞总和的计数、试管的制备、制备试验培养液、细胞处理、细胞复苏、细胞的种植等。
实验步骤在实验之前，需要先准备培养所需的器材和试剂，如细胞培养基、跳汞灯、无菌器皿、超净台、离心管、显微镜和培养皿等。
接下来，我们按照以下步骤进行细胞培养。
1. 细胞的收获和处理我们用脱离液将细胞从体内取出，再加入一个特定的培养基中。
我们需要用细胞水平计算细胞总量，并将其分为每个培养皿中的所需数量。
如我们所选的細胞因子等指标。
2. 细胞扩增和培养在试管中添加适当的培养基、生长因子、荷尔蒙和混合，将所有细胞加入并处理好，很快开始分裂形成足够的细胞密度。
3. 培养的观察和种植使用无菌操作的器材和技术检查细胞的状况和数量，然后将其通过无菌技术铺在特定的基质上，进行后续的观察和研究。
实验结果在本次细胞培养实验中，我们成功提取了人造血液中的白细胞，通过分裂和培养，检测到细胞数量的增加和改变，以及不同化学和物理刺激的作用。
我们也观察了细胞的状态、形态和细胞核的状态，以评估其是否处于正常状态。
此外，我们还测试了不同培养条件下的生长速度和丰度，比较了细胞的发育和生长。
结论和思考在本次实验中，我们成功进行了细胞培养，该技术不仅可用于证实细胞的正常生长和增殖，还可用于疾病的研究和治疗中。
在实验中，我们需要注意无菌操作、培养条件和细胞的状态，以保证实验的成功和准确性。
总之，本次细胞培养实验为我们提供了一个更深入地了解细胞生物学的机会。
不仅可以促进人类健康的治疗方法，还可以为制药、医疗和工业领域提供更好的方法和技术。
细胞培养实验报告
细胞培养实验报告一、实验目的本次细胞培养实验旨在掌握细胞培养的基本技术和方法，了解细胞在体外生长和增殖的规律，为进一步的细胞生物学研究和应用奠定基础。
二、实验原理细胞培养是指在体外模拟体内环境，将细胞从机体中取出，在无菌、适当温度和一定营养条件下，使其生长、繁殖并维持其结构和功能的一种技术。
细胞培养的关键在于提供适宜的生长环境，包括培养基、血清、气体环境、无菌条件等。
三、实验材料与设备1、细胞株：选用了_____细胞株。
2、培养基：使用了_____培养基，添加了_____血清和_____抗生素。
3、实验设备：超净工作台、CO₂培养箱、倒置显微镜、离心机、移液器等。
4、试剂：胰蛋白酶、EDTA 等。
四、实验步骤1、细胞复苏从液氮罐中取出冻存的细胞管，迅速放入 37℃水浴中，轻轻摇动使其快速融化。
将融化的细胞悬液转移至离心管中，加入适量的培养基，离心 5 分钟（＿____转/分钟）。
弃去上清液，加入新鲜的培养基重悬细胞，将细胞接种到培养瓶中，置于 CO₂培养箱中培养。
2、细胞传代当细胞生长至汇合度达到 80% 90%时，进行传代培养。
吸出原培养基，用 PBS 缓冲液冲洗细胞 2 次。
加入适量的胰蛋白酶EDTA 消化液，置于培养箱中消化2 3 分钟。
在倒置显微镜下观察细胞形态，当细胞变圆、脱壁时，加入适量的含血清培养基终止消化。
轻轻吹打细胞，使其形成单细胞悬液，按照 1:2 或 1:3 的比例进行传代接种，置于 CO₂培养箱中继续培养。
3、细胞计数采用血球计数板对细胞进行计数。
吸取适量的细胞悬液，加入等体积的台盼蓝染液，混匀。
取少量混合液加入血球计数板的计数室，在显微镜下计数。
4、细胞形态观察在倒置显微镜下，每天观察细胞的形态、生长状态和密度。
五、实验结果1、细胞复苏结果细胞复苏后，经过 24 小时的培养，大部分细胞贴壁生长，形态良好，表明复苏成功。
2、细胞传代结果细胞经过传代培养后，能够正常生长和增殖，形态和生长速度与原代细胞相似。
体外细胞的实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本实验旨在研究体外细胞培养技术，通过观察细胞在不同条件下的生长、形态变化和生物学特性，探讨细胞培养方法在生物学研究中的应用。
二、实验材料与仪器1. 材料：- 人胚胎肾细胞（HEK293细胞）- DMEM培养基- 胎牛血清（FBS）- 0.25%胰蛋白酶- 10%胎牛血清- 无菌培养皿- 移液器- 吸管- 显微镜- 紫外可见分光光度计2. 仪器：- 培养箱- 恒温培养箱- CO2培养箱三、实验方法1. 细胞培养：- 将HEK293细胞接种于无菌培养皿中，置于37℃、5%CO2的培养箱中培养。
- 每2-3天更换一次培养基。
2. 细胞传代：- 当细胞生长至80%-90%时，用0.25%胰蛋白酶消化细胞，收集细胞。
- 将收集到的细胞用DMEM培养基稀释至所需浓度，接种于新的培养皿中。
3. 细胞形态观察：- 使用显微镜观察细胞在不同培养时间下的形态变化。
- 拍照记录细胞形态。
4. 细胞活力检测：- 使用MTT法检测细胞活力。
- 将细胞接种于96孔板中，培养24小时后，加入MTT溶液，继续培养4小时。
- 使用酶标仪检测吸光度值。
5. 细胞增殖实验：- 将细胞接种于培养皿中，培养不同时间后，收集细胞，进行细胞计数。
- 计算细胞增殖率。
四、实验结果1. 细胞形态观察：- 初始接种的细胞呈梭形，细胞间连接紧密。
- 随着培养时间的延长，细胞逐渐增多，细胞间连接变稀疏，部分细胞出现变圆、萎缩等现象。
2. 细胞活力检测：- 细胞活力随培养时间的延长而降低。
3. 细胞增殖实验：- 细胞增殖率随培养时间的延长而降低。
五、实验讨论本实验成功培养了HEK293细胞，并通过观察细胞形态、细胞活力和细胞增殖实验，初步了解了细胞在不同条件下的生物学特性。
细胞培养技术在生物学研究中具有重要意义，可以用于研究细胞生物学、分子生物学、药理学等领域。
六、实验结论1. 体外细胞培养技术可以成功培养HEK293细胞。
2. 细胞在不同培养条件下表现出不同的生物学特性。
细胞传代培养实验报告
细胞传代培养实验报告实验目的：通过细胞传代培养，掌握细胞培养技术，并观察细胞生长情况，练习实验记录与实验报告的写法。
实验原理：细胞传代培养是指将细胞从一个培养瓶中移植到下一个培养瓶中，继续培养和增殖的过程。
传代培养的目的是实现细胞扩增，为后续实验做准备。
在传代培养的过程中，细胞需要注意以下几个方面：1. 分离细胞：当细胞密度达到一定程度后，需要将细胞进行分离，以避免过度生长造成的细胞损伤。
2. 细胞传代：将分离好的细胞移植到一个新的培养瓶中，进行传代培养。
3. 细胞检验：需要对传代培养的细胞进行检验，检查其是否健康，是否存在任何异常现象。
实验步骤：1. 取出细胞冻存管并放置室温10-20min，使其解冻为细胞悬液。
2. 用DMEM培养基将细胞悬液稀释为1:2。
3. 将扩展细胞培养的培养瓶制备好，取出离心好的FBS（胎牛血清）及抗生素，加入培养基中。
将培养瓶放入恒温摇床中高速振荡10min。
4. 恒温摇床停止震荡并将培养瓶放入其上方。
使用无菌的移液管将稀释好的细胞悬液滴加入培养瓶。
5. 放回恒温摇床进行培养。
6. 细胞达到对数生长期后(通常在3～4天后)，可用0.25%溶解液对细胞进行消化，在显微镜下观测细胞是否已完全消化，同时根据细胞的形态和大小评估细胞的状态。
7. 将细胞悬液稀释为1:3或1:4，并用相同方法进行传代培养，通常每5～7天进行一次传代培养。
实验结果：经过正确的传代培养方法，细胞在恒温摇床中缓慢而稳定地增殖。
在进行下一次传代培养前，需要仔细地检查细胞是否充满了培养瓶。
在观察细胞时，需要特别注意细胞的形态、大小、数量以及任何异常现象。
掌握这些指标有助于评估细胞的状态和健康程度，为后续实验做好准备。
通过本次的细胞传代培养实验，我们成功地掌握了细胞培养技术，并且观察到细胞在不同阶段生长的不同特点。
熟练掌握本技术对于生物医学研究和生产制造都是至关重要的。
本次实验的成功也提醒我们在日常实验操作中需要注意细心认真，保证实验的准确性和有效性。
细胞培养技术实验报告
细胞培养技术实验报告引言细胞培养技术是生物学研究中的重要工具，可以用于研究细胞的生长、分化、功能以及疾病的发生机制等。
本实验旨在通过细胞培养技术，培养和研究细胞的生长特性和细胞系的建立。
实验材料和方法实验材料•细胞培养基•细胞培养器具（培养皿、离心管、移液器等）•细胞种子实验方法1.准备培养基：根据所需培养细胞的类型选择适当的培养基，加入适量的血清、抗生素等添加剂。
将培养基分装至培养皿中。
2.细胞分离：取得细胞样本后，使用消化酶等方法将细胞分离，并进行细胞计数。
3.细胞接种：将分离得到的细胞悬浮液加入到准备好的培养基中，使细胞均匀分布于培养皿表面。
4.培养条件：将培养皿放置于恒温培养箱中，保持适当的温度、湿度和CO2浓度，并定期更换培养基。
5.细胞观察和记录：每天观察细胞的形态、生长情况，并记录观察结果。
6.细胞传代：当细胞达到一定的密度时，使用胰蛋白酶等方法将细胞从培养皿上剥离下来，进行传代，以维持细胞的活性和生长。
实验结果和讨论在本实验中，我们成功地培养了人类乳腺癌细胞系，并观察到了其在培养基中的生长情况。
以下是我们的实验结果和讨论：1.细胞形态观察：在培养基中，乳腺癌细胞呈现出典型的悬浮生长形态，细胞体积逐渐增大，呈现出圆形或不规则的形状。
2.细胞增殖：经过连续培养，我们观察到乳腺癌细胞的数量逐渐增加，呈现出指数型增长曲线。
这表明我们成功地建立了乳腺癌细胞系，并且细胞具有较高的增殖能力。
3.细胞活性：通过MTT试验等方法，我们评估了细胞的活性。
实验结果显示，乳腺癌细胞在培养基中具有较高的代谢活性，代表细胞系的良好生长状态。
综上所述，我们通过细胞培养技术成功地建立了乳腺癌细胞系，并观察到了其生长特性和活性。
这为进一步研究乳腺癌的发生机制和新药开发提供了重要的实验平台。
结论细胞培养技术是一种重要的工具，可以用于研究细胞的生长特性和功能。
本实验通过细胞培养技术成功地建立了乳腺癌细胞系，并观察到了其在培养基中的生长和活性。
细胞培养实验报告
细胞培养实验报告引言：细胞培养是一项关键的实验技术，被广泛运用于生物医学研究以及产业生产领域。
本实验旨在通过培养小鼠胚胎成纤维细胞（MEF）并观察其生长、形态特征以及细胞增殖情况，探究细胞培养技术的应用和原理。
实验方法：本实验通过收集小鼠胚胎，将其胚体分离为单个细胞，并在含有完善的培养基的培养皿中进行培养。
细胞培养过程需要细致地调节温度、湿度和培养基组分的浓度，以提供细胞正常生长所需的环境条件。
结果与讨论：1. 细胞形态观察：在培养7天后，我们观察到细胞呈现典型的长条状形态，细胞质呈深染的圆形，细胞核体积大且显著染色。
这些形态特征与前人研究得出的成纤维细胞特征相符，表明成功培养的细胞为成纤维细胞。
2. 细胞增殖情况：为了观察细胞增殖情况，我们定期记录细胞的数量。
结果显示，在培养的前3天内，细胞数量迅速增加，呈指数增长趋势。
然而，在培养达到第4天后，细胞数量的增长速度下降，呈现对数增长趋势。
这与前人研究中发现的细胞生长曲线相吻合，即细胞在培养初期呈现快速增殖，随后进入平台期。
3. 细胞死亡情况：我们也检测了细胞的死亡情况。
结果显示，在培养的前3天内，细胞死亡率较低，细胞具有良好的存活率。
然而，随着培养时间的延长，细胞死亡率逐渐升高。
这可能是由于细胞寿命受到限制，受到培养基中营养物质的消耗和毒性物质的积累的影响。
4. 细胞传代：为了延续细胞的生长，我们进行了细胞传代的实验。
在细胞密度达到一定水平后，我们对细胞进行了传代，并观察到新传代的细胞能够生长并形成典型的细胞群。
这证实了我们成功地培养出了具有传代潜能的细胞。
结论：通过本次实验，我们成功地培养出了小鼠成纤维细胞，并观察到其特征、增殖和传代情况。
这次实验验证了细胞培养技术的可行性，并为细胞生物学和生物医学研究提供了有力的工具。
细胞培养技术的应用将进一步推动生物医学领域的发展，有望为疾病治疗和组织工程等领域带来更多突破。
展望：尽管本次实验获得了较为理想的结果，但仍存在一些值得深入研究的问题。
细胞培养的实验报告
细胞培养的实验报告细胞培养的实验报告引言：细胞培养是生物学研究中常用的技术手段之一，它可以为我们提供大量的细胞供应，从而进行各种实验研究。
本实验旨在通过细胞培养技术，观察细胞的生长和分裂情况，并探究不同培养条件对细胞生长的影响。
实验材料与方法：1. 细胞培养基：含有营养物质、生长因子和抗生素的培养基。
2. 细胞培养器：培养细胞的容器，如培养皿、细胞培养瓶等。
3. 细胞培养物：实验中使用的细胞株。
4. 培养箱：提供适宜的温度、湿度和二氧化碳浓度。
5. 显微镜：观察细胞生长和形态的工具。
实验步骤：1. 准备培养基：按照说明书的要求，将培养基与适量的培养液混合均匀。
2. 细胞接种：将细胞株取出，加入培养基中，并使用移液器进行充分混合。
3. 培养条件调节：将培养器放入培养箱中，设置适宜的温度、湿度和二氧化碳浓度。
4. 观察细胞生长：每隔一段时间，用显微镜观察细胞的生长情况，并记录细胞数量和形态变化。
5. 细胞分裂观察：在细胞生长到一定程度后，进行细胞分裂观察，记录细胞分裂的时间和方式。
6. 培养条件对比：将不同培养条件下的细胞生长情况进行对比分析，探究不同条件对细胞生长的影响。
结果与讨论：通过实验观察，我们发现细胞在培养基中能够良好地生长和分裂。
在适宜的培养条件下，细胞数量逐渐增多，并呈现出正常的形态。
细胞分裂的时间和方式也符合细胞生长的规律。
而在不适宜的培养条件下，细胞生长受到抑制，数量较少且形态异常。
进一步的对比分析发现，温度、湿度和二氧化碳浓度是影响细胞生长的重要因素。
过高或过低的温度会导致细胞代谢异常，影响细胞的生长和分裂。
湿度过高则容易导致细菌和霉菌的滋生，对细胞生长产生不利影响。
而二氧化碳浓度的调节则与细胞的酸碱平衡和呼吸有关，过高或过低的浓度都会对细胞的生长产生负面影响。
结论：细胞培养技术是一种重要的生物学研究手段，通过合理调节培养条件可以实现细胞的良好生长和分裂。
本实验通过观察细胞在不同培养条件下的生长情况，发现温度、湿度和二氧化碳浓度对细胞生长具有重要影响。
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细胞培养实验报告范文
一、实验仪器及用品
（一）超净台：
1.枪头：10mL、5mL、1mL、200μL、10μL；
2.移液枪：同上，及相
应的支架；
3.离心管：50mL、15mL、1.5mL，及相应支架与盛皿；
4.记号笔；
5.PBS缓冲液；
6.酒精棉；
7.废液杯某2：一个装枪头，一个装废液；8.封口膜；9.排枪卡槽；（二）细胞间：
1.离心机：中型、小型；
2.培养瓶：透气的用于培养，密封的用于运输，培养皿；
3.灭菌离心管、枪头、冻存管等备用；
4.毛巾、手套、口罩、酒精喷壶、灭菌超纯水、除菌滤膜；
5.100μL
排枪；6.血球计数板、载玻片；7.水浴锅；（三）冰箱：1.双抗、环丙沙星；
2.4℃：DMEM、1640、PBS、已配培养基；
3.-20℃：MTT、MTS、DMSO、血清、胰酶；（四）缓冲间：1.CO2罐、液氮罐；（五）换衣间
1.实验服、拖鞋、手套、口罩、酒精喷壶；
二、实验前准备
（一）实验前将需要带入的物品洗净、高温灭菌、喷酒精，放入传送窗，将传送窗与细胞间紫外开启杀菌半小时；
（二）半小时后关闭紫外，开启风阀与空调，散去臭氧，双手用洗手液洗净擦干后进入换衣间，换上隔离服（若不使用超净台，换实验服即可），戴上口罩、手套喷酒精，进入缓冲间风浴1-3min；
（三）进入细胞间，冰箱中取出所需溶液（胰酶、培养基等）置于超净台中，开启超净台紫外，关闭传送窗紫外，将物品取出后喷酒精后放于应处位置；注：若是冬天，溶液应在37℃水浴后再使用，所有物品放入超净台前均需再喷酒精，特别是盖口处。
三、细胞培养
（一）细胞复苏
1.培养基配制：倒出50mL培养基，加入50mL血清，5mL双抗（浓度10-50μg/mL环丙沙星可作用一周抑制支原体生长），分装3天够用的培养基即可，所有都用封口膜封住；
2.冻存液配制：1mLDMSO、2mL血清、7mL培养液混合；
3.37℃温育DMEM培养液（含双抗和血清）。
一般通过急速升温的方法使冻存的细胞吸收水分，保证细胞结构不受影响。
即取出冻存细胞放入37℃水浴槽中快速转动，1min内迅速融化，避免细胞内再结晶的发生。
4.细胞悬液转移至离心管中并加入温育的培养液至10mL，900r/min 离心10min，倒出上清培养液，再加入培养液重悬细胞，重复上述操作，共离心3次，最后将细胞重悬于10mL培养液中，转移至培养瓶中，放入37℃5%CO2恒温培养箱中培养。
5.大约4~5小时后，开启电脑显微镜，培养箱中取出细胞放于显微镜下观察；注：平拿平放，不可用手触摸瓶皿接口处，观察细胞是否细胞贴壁，继续培养。
6.换液：定时观察细胞形态及培养基状态，细胞生长至
12h左右贴壁，24h后可根据培养基颜色变化和细胞生长速度及形态变化
选择换液，吸去原培养基，用PBS缓冲液洗涤细胞2-3次，更换新培养基。
（二）细胞传代
细胞传代，是将培养的Hela细胞用胰酶消化、稀释、分配到新的培
养瓶内继续培养的过程。
观察细胞瓶内细胞长满（细胞密度＞90%），进
行传代。
具体操作步骤如下：
1.将37℃温育了20min的磷酸盐缓冲液（1某PBS）、胰酶和DMEM
培养液（含双抗和血清）取出，用纱布擦拭后，喷洒酒精置于无菌生物安
全柜中。
2.将培养瓶中旧的培养液倒出，移取2mL1某PBS于培养瓶中，轻轻
摇晃洗涤并将液体倒出，用1某PBS洗涤2次。
之后加入2mL胰酶消化，
倒置显微镜下观察至细胞轮廓分明约1~2min，倒掉胰酶，加入6mL新培
养液，从上至下轻轻吹打，至瓶壁透明。
3.将制得的细胞悬液分装至2个新的培养瓶中，补齐新培养液至
10mL/瓶。
放入37℃5%CO2恒温培养箱中培养。
（三）细胞保藏
冻存前一天换液，显微镜下观察保证所有细胞无菌且生长状态较好，
弃培养基，PBS清洗两次，胰酶消化后以800rpm离心5min,弃上清，适量
冻存液悬浮细胞，用血球计数板计数，调节细胞密度为104-5个/mL，分
管冻存于细胞保藏盒中。
标明保藏日期，置于4℃30min后转到-
20℃30min，再存于-80℃。
四、MTT法操作
（一）铺板：将状态良好生长壮实的细胞（复苏后的细胞应穿3代后
再用于实验）吸去培养基，PBS后用1mL胰酶消化1min，以两倍胰酶体积
即2mL培养基终止消化，转入离心管后，800rpm离心5min去上清，用1-
2mL培养基轻轻吹打重悬细胞后，取10μL至血球计数板置显微镜下计数，铺板的浓度一般为10-10个细胞/mL，每空100μL细胞应有约10-10个细胞，计数后计算出添加培养基的量，用排枪将培养基与细胞混合均匀加入96孔板中，周围用PBS密封细胞，以免培养基挥发；
（二）配制样品浓度：将样品用培养基或PBS稀释相应浓度梯度，过
膜除菌备用；1.加样：细胞培养12h处于贴壁状态后即可添加样品，吸出
原培养基，加入100μL新培养基，加入各浓度样品（应提前计算添加
100μL培养基稀释后的样品
4
5
3
4
浓度，以此为样品终浓度），复孔3或5个，对照组换液后加入无药
品的药品稀释剂（培养基或PBS）；
2.检测：48h后结束培养，显微镜下拍照记录，吸出所有液体，以每
孔180μL无血清培养基与20μLMTS试剂混合均匀后添加，培养1-4h，
用酶标仪在490nm波长下检测OD值；
五、注意事项
1.血球计数板数四个角计数，计上不计下，计左不计右，数÷4某104，即密度：个/mL，用后酒精棉擦拭即可；
2.倒出液体后可将瓶口、管口倒扣在酒精棉上除去残留，也处理可能污染的物质；
3.排枪卡槽使用完清洗后用酒精浸泡，置于超净台紫外杀菌自然风干即可；
4.所有计算均在细胞间外完成，可将操作步骤或配取比例贴在超净台外，方便观看；
5.控制细胞时可边传代边保存，传代时调节密度，离心后弃掉半小时还未沉降至沉淀的细胞，半年内使用放-80℃，长期保存放液氮中；
6.刚做完细菌实验或生化实验最好不要进入细胞间，每天都应观察细胞状态及时做处理；
7.96孔板应合理利用，时间梯度也可同时进行，标记明确即可；
8.环丙沙星除去支原体后应逐渐减少浓度，不可一直使用，以免产生耐药性；9.培养基的无菌水一周换一次，废液缸一天清理一次细胞间可
1-2周打扫一次，若染菌，培养箱应高压一次；
10.使用完的物品应及时准备好补给回细胞间，如酒精棉、枪头、废液缸、离心管等；。