人类K-ras基因突变检测试剂盒说明书

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癌组织K-ras基因突变、术前血清CEA水平与结直肠癌临床病理特点的关系

癌组织K-ras基因突变、术前血清CEA水平与结直肠癌临床病理特点的关系

K rs —a 基因突变者 3 9例 ( 9 %) 其 中 1 3. 0 , 2号密码子突变 3 例 ,3号密码 1 1
子突变 8 。有淋 巴结转移者 K ms 例 — 基因突变率 ( 78 ) 5 . 明显 高于无 淋巴结转移者 ( 36 ) 有肝脏 % 2. % , 转移者 K r —舾基 因突变 率 ( 2 % ) 6 . 明显高于无肝转 移者 ( 45 ) T M分期 Ⅲ 、 5 3. % ,N Ⅳ期 K rs 因突变 —a 基 率 ( 65 明显高于 I、 5 .%) Ⅱ期 ( 41 。K r 基因突变率与肿瘤 大小 、 2 .%) —a s 部位 、 肿瘤浸润深度 、 分化程度 无密切关 系。4 9例 C A水平超 出正常范围 ( 9 %) E 4 . 。有淋 巴结转移或肝转移患者 C A水平显著高于 0 E 无淋 巴结或肝转移患者 ( <O 5) 在肿瘤不 同的临床病理分期 ( u e 、 N P . 。 0 D k’ T M分期 ) C A水平差异 s 间 E 有统计学意义 , u e 和 T M 1 期出现高阳性率 。C A水 平在肿瘤不 同浸润深度 、 D k’D期 s N m、 v E 体积及分化 程度上无 明显差异。 结论 癌组织 K rs 因突变和血清 C A水平超出正常水平 预示结直肠癌可能合 —a 基 E

论 著 ・
癌组织K rs 因突变 、术前血清C A —a基 E 水平与 结直肠癌 临床病理 特点 的关 系
吴文辉 汤友珍 肖隆斌 蔡世 荣 何裕 隆 詹 文华
【 摘要 】 目的 观察结直肠癌组织 中 K r 基因突变情 况 , —a s 术前检测患者血清 C A水平 , E 探讨两
中 华普通外科学 文献 ( 子版 ) 00 月第 4 电 2 1 年8 卷第 4 ] h Ac Gn u (l tn E i n ,A g t 0 , o , o  ̄ C i r e r E coi d i ) uu 1 V l N . n h S g er c t o s2 0 4 4

卵巢黏液性肿瘤中EGFR表达和K-RAS基因的突变

卵巢黏液性肿瘤中EGFR表达和K-RAS基因的突变
Байду номын сангаас
Ex r sin o p e so fEGF a d m u a in o - R n t t fK RAS g n n o a in m u i o st m o o e e i v ra cn u u r
YU X a ・ o g i o h n ,YE L u,DI n — u ,S a — o g NG Ho g h i HU Ku n y n ,W EIB o xu a — i
( eat etfP tooy Jag i t nl n h dH at o i l N nh n 刀 DD ,C i ) Dp r n ahl , in x Mae a a dC i el H s t , ac ag m o g r l h pa 0 6 hn a
Ab t a t P r o e T n e t a e te e p e so fEGF p oen a d mu ain o RAS g n n t e o a in mu i o st mo r n sr c : u p s o iv si t h x rs in o g R rt i n tt fK・ o e e i h v r c n u u u ,a d a t x l r h ah g n s f h v r n mu i o st mo ra d t e f a i i t ftr e e e t e a y o e p oe te p to e e i o e o a i cn u u u n h e s l y o g t n h r p .M eh d I s t a b i a g t o s mmu o i o h mi a n hs c e cl t P 9 0 n C R L e e u e o d t c e e p e so fE R a d mu a in o e K— V 0 0 a d P R— F P w r s d t e e t h x r s in o GF n tt ft RAS g n ,r s e t ey,i. 0 c s so — t o h e e e p c i l n 2 a e fo v v r n c sa e o , 0 c s so v r n mu i o sb r e l e c sa e o n 0 c s so v r n mu i o s c s d n c r i o .Re a a y t d n ma 4 a e fo a a cn u o d r n y td n maa d4 a e f a a c n u y t e o ac n ma i i o i a - s i T e p st e e p e so ae fEGF we e 0.3 . % ut s h o ii x r s in r ts o v R r 75 ad6 . % n 7 5 i v r n c sa e o n v ra cn u od d n n o a i y t d n ma a d o a in mu i o s b r e i e a

肽核酸钳制PCR技术在结肠癌K-Ras基因突变检测中的优化

肽核酸钳制PCR技术在结肠癌K-Ras基因突变检测中的优化

a d ul cai( N mi nce c P A)adpies odt to — vl ua os eut T e l p n t i epam d f 2ad1 e i d n r r t ee wl e m tin.R sl h dt eadmu t nt l is n 3 m cl e t s i w y ao y p s o1
【 bt c】 0 j t e T ee pas si , ip n al m t df -a m ti e co aet o c o A s at r be i odvl ni e s l ads b e o r R s u tndt tni ptn l cv o e t v m e t e h o K ao ei n i sf on
107 北 京 军事 医 学科 学院 附属 医院 消化道 肿瘤 内科 00 1
刘晓静 ,徐 建 明 ,宋三 泰 ,师 明磊 ,张 彦 ,王 洋
【 摘
要】 目的
优化建立一种敏感 、 简便 、 稳定地检测 结肠 癌患者 KR s —a 基因突变的方法 。方法
构建 KR s 因第 —a 基
Ss m O cl yA l t o i l c dm M d a Si cs yt no g ,f i e H s t , a e yo e i l c ne, e o i f a d pa A f c e
n 0 0 1 C ia g 10 7 , hn
Ja — ig E m i:mx2 0 @y h o cn inm n , — al j u 0 3 a o.o
l床肿 瘤 学 杂 志 2 1 缶 02年 2月第 1 第 2期 7卷
C i s l i l nooy F b 0 2 V 11 , o2 hn eCi c clg ,e .2 1 , o.7 N . e n aO来自・9 ・ 7

EGFR和KRAS基因检测意义

EGFR和KRAS基因检测意义

• 检测K-ras基因突变是深入了解癌基因的情 况、了解各种癌症的发展预后、放化疗疗 效的重要指标。 • 1.K-ras基因突变发生在肿瘤恶变的早期, 并且原发灶和转移灶的K-ras基因高度保持 一致。一般认为,K-ras基因状态不会因治 疗而发生变化。 • 2.K-ras基因突变见于20%的非小细胞肺癌 (NSCLC),其中肺腺癌占30%~50%。
KRAS基因 - K-ras基因突变发生的时间 • K-ras基因突变发生在肿瘤恶变的早期,并 且原发灶和转移灶的K-ras基因高度保持一 致。一般认为,K-ras基因状态不会因治疗 而发生变化。 大肠癌患者K-ras基因突变异 常的概率为30%-35%。
KRAS基因 - K-ras基因检测(K-ras,p21) 临床意义
EGFR基因检测在肺癌中的应用
检测方法:DNA测序法 检测周期: 7-10天
检测位点:EGFR的18,19,21号外显子
标本要求: 肿瘤组织病理切片,厚度8-10μm, 5-10张,要 求肿瘤组织占标本的70%以上 支气管镜活检组织,厚度8-10μm,需要10张 切片
KRAS基因检测
KRAS蛋白处于EGFR信号 通路通路的下游。在生理情况 下,EGFR信号通路活化后, KRAS蛋白短暂激活,其后迅 速失活,KRAS激活/失活效应 是受控的。 而KRAS基因突变时,可以 导致 EGRF 信号通路持续激活, 加 速 肿 瘤 细 胞 增 殖 。
KRAS基因检测在大肠癌中的应用
检测方法:DNA测序法 检测周期: 7-10天
检测位点:KRAS基因第2外显子的12,13密码子
标本要求: 肿瘤组织病理切片,厚度8-10μm, 5-10张,要求肿 瘤组织占标本的70%以上。 肠镜活检组织,厚度8-10μm,需要10张切片。

直肠癌患者HPV感染及APC、K-ras基因突变检测及其意义

直肠癌患者HPV感染及APC、K-ras基因突变检测及其意义

肠癌 恶性表 型的重要 因素; P 而A C和 K rs - 基因突变是直肠癌 发生常见 的早期分子事件。 a [ 关键词] 直肠肿瘤; 多肽现 象, 单链 构象 ; 乳头状瘤病毒 , ; 人 腺瘤性息 内病 , 结肠 ; — s 因 Kr 基 a [ 中图分类号 ] R 3 .7 7 5 3 [ 文献标志码 ] A [ 文章编号 ] 10 —4 1 2 1 )80 8 -5 0073 (0 0 0 -620
例 (0 O ) 在 有 A C基 因突 变 的 4 5.% ; P 3例 直 肠癌 组 织 中 , 时伴 有 Krs 因突 变 1 倒 (4 2 ) 而 无 A C基 因突 变 的 3 同 - 基 a 9 4.% , P 2例 直肠 癌 中 ,- s 因突 变 1 Kr 基 a 5例 ( 69 ) H V感 染 、P 4 .% , P A C和 K rs 因突 变 三者 间无 相 关 性 。 结 论 : P 感 染 可 能是 导致 直 — 基 a HV
采用 P R法检测 e D A在直肠癌组织及 正常结直肠 黏膜 组织 中的表 达; C 一 链构 象多态性 (ig — r dcno t n N P R单 s l sa ofr i n e tn mao plm rhs S C ) o op i S P 银染法检测 A C基 因突 变密集 区( uao ls r ei , C 和 Krs基 因第 1外显 子 的突变情 况。 y m, P m ttncut g n M R) i er o - a 结 果 : 5例直肠癌组织 中检测到 5 7 5例 D A为 阳性 ( 3 3 ) 而在正常 黏膜 组织 中未 检测到 。 N N 7 .% , D A的存在。H V P 感染 与患者年龄和淋 巴结转移存在相关性 , 而与患者族别、 肿瘤大小、 肿瘤类型、 组织学类型、 u e分期及浸润深度无关; P Dk AC 基 因突变4 3例(7 3 )K rs 5 .% , - 基因突变3 a 4例(5 3 ) 均与患者年龄 、 4 .% , 组织学 类型、 侵袭 深度 、 巴结转移及 D k 淋 ue分期无 相关性; 中A C基 因突变与患者 性别存在相关性 ( 00 ) 其 P P< .5 。在有 H V感 染的5 P 5例直肠癌 中, 同时伴有 A C基 因突变 3 P 1 例 (6 4 ) Krs 因突 变 2 5.% , - 基 a 4例 (36 ) 在 H V 阴性 的 2 4 .% ; P 0例 直肠 癌 中 ,P A C基 因突 变 1 ( 0 0 ) Krs 因突 变 1 2例 6 .% ,- 基 a 0

结直肠癌患者血浆K-ras基因突变情况分析

结直肠癌患者血浆K-ras基因突变情况分析

[ 摘要 ] 采 用直接测序法检测 4 例结直肠癌患者血浆 、 组织及 2 例正常人 血浆 中 Kr 基 因突变情况 。 2 肿瘤 0 -s a
结果 4 例结直肠癌患者血浆 K r 基因突变 1 (04 %)肿瘤组 织 K r 基 因突 变 1 (5 2 %) 2 -s a 7例 4 .8 , -8 a 9例 4 . 4 。对 照组无
黏 稠 的液体 。加入 等体积 酚一 氯仿一 异 戊醇 (52 2 :4 :) 1混合 液振 荡混匀 ,000r i 1 0 / n离心 1 i, 上 m 0mn将 清液移入 一个 新 的离 心管 中。在 上 清 液 中加 入 1 / 2
体积的 75 . M醋酸铵 , 倍 体积的 1 %乙醇 , 00 2 0 0 5 0
3 讨 论
122 N .. D A提取
①将冷藏的血浆 自然解冻后反
复离 心 , 提取 , 弃上 清 液 , 留沉 淀 物 , 加入 T E缓 冲液 溶解 沉 淀 物 。② 取 1g冷 藏 的肿 瘤 组 织 浸 入 液 氮 中, 组织 结冻 , 其捣 碎 , 入研钵 中 , 人少 许液 待 将 置 加 氮 , 磨至 粉末状 。取 粉末状 肿瘤 组 织 10m , 研 0 g加入 消化 液 12m ,0o消化 3~1 , . l5 C 8h 待溶 液成 为 透 明
d i 心 2mn 析 出沉 淀 , 上 清 。用 7 % 乙 醇 mn 离 i, 弃 0
瘤组 织 的 D A进 行 直接 测 序 , 测 Krs 因的 突 N 检 — 基 a
变情况 。现报 告如下 。 1 资料 与方 法
05 l . ~1 洗涤沉淀 , m 空气干燥 。加人 T E缓冲液溶
123 引物设 计 ..
参 照 文 献 序 列 …并 结 合计 算 机

非小细胞肺癌p53、FHIT、K-RAS基因突变与吸烟相关性Meta分析

非小细胞肺癌p53、FHIT、K-RAS基因突变与吸烟相关性Meta分析

【 bt c】 0 jcv :o er ea e a s e e tn f 5 ,HT K— A n u tn ad b A s at r be i T ro M t al io t li 3F I, R s n h r ao o p g m ao a
c l c r i o ft e e o h g s rfa t r o c e t e a y w t e l a cn ma o h s p a u e r co y t h moh r p ih 5

Enig rPC, a zn e Ryn DP, lr W ,ta. e l o ea e ,ipai Cak J e We kyd c tx l es lt 1 n
马 列, 赵明静 , 群 , 王 李秀林 , 王笑歌
p 3, HT, 5 F I K—R S g n tt n r so itdwi mo ig i n n—s lc lln A e e muai saea s cae t s kn n o o h mal elu g c n e y Mea—a ay i a c rb t — n l s s
l e( N I ,hn c neadT cnlg e oia D tbg V PIf mao e o ) teU S N t n i i C K ) C iaSi c n ehooyPr d l a ae( I no t nN t r , . . a oa L— n e i c a r i w k h il bay f u Me aaaeadte S Sc t o l i l no g A C )poedns e ace o 9 0t rr o b ddt s .oi y f i c cl y( S O rceig r s rhdf m 19 P b n h U. e C n aO o w ee r o

实体肿瘤中Ras基因突变及其临床意义

实体肿瘤中Ras基因突变及其临床意义
关键词: 肿瘤; 基因, ras; 诊断, 鉴别; 预后
中图分类号: R 730 文献标志码: A 文章编号: 1001-1692( 2010) 01-0089-05
人类肿瘤中 Ras基因突变是最常见的癌基因异 常, 大约可见于 30% 的人体 肿瘤, Ras 基 因家族由 H-ras, K-ras和 N-ras三个成员组成, 其中 K-ras 基因 突变最常 见。K-ras 尤其和 腺癌相关, 目前 原因不 明。在几乎所有的胰腺癌和 50% 的大肠癌、甲状腺 癌以及 30% 的肺腺癌可见 K-ras 基因突变, 然而在 乳腺癌、卵巢癌中 Ras 基因突变非常罕见。随着研
本组病例术后均常规行胸腔负压引流, 无纵隔 重度移位、心脏嵌顿、腔静脉撕裂等 严重并发症发 生。直接拉拢缝合膈肌, 使膈肌紧张, 减少全肺切除 后胸腔空间, 减轻因切除受侵膈神经造成的膈肌反
常呼吸, 术后亦无膈肌裂开及膈疝形成。通过临床 观察, 作者认为采用自体带蒂膈肌瓣修补心包缺损, 为心包内全肺切除提供了更满意的辅助条件。
常的生理要求 [ 3] 。 由于心包内全肺切除病例数不断增多, 对缺损
心包的修复材料的选择上文献报道有壁层胸膜、阔 筋膜、小牛心包及各种合成材料如涤纶网等。相比 较而言, 壁层胸膜较薄弱, 强度往往达不到修补心包 的理想要求, 阔筋膜手术制取及存活相对较困难, 对 于小牛心包及合成材料则有异物排斥, 对合并有胸 腔感染者就会使感染难以控制, 且费用较高; 而膈肌 瓣血供丰富、强度高、弹力好、表面光滑、取材面积 大、手术操作方便, 可 避免以上各种 修补材料的缺 陷, 是更为理想的生物材料 [ 4] 。
1 Ras基因定位及生物学功能 R as 基因家族包括 H-ras, K-ras和 N-ras, 分别定
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人类K-ras基因突变检测试剂盒说明书 人类K-ras基因突变检测试剂盒(PCR-熔解曲线法)说明书 【产品名称】 通 用 名:人类K-ras基因突变检测试剂盒(PCR-熔解曲线法)

英 文 名:Diagnostic kit for Mutations of Human K-ras Gene (PCR-Melting Curve Analysis)

【包装规格】 20测试/盒 【预期用途】 K-ras基因位于12号染色体短臂上,是重要的癌基因之一,编码一种21kD 的kras蛋白,参与细胞内的信号传递,主要包括PI3K/PTEN/AKT 和 RAF/MEK/ERK信号转导途径,这些转导途径是当前肿瘤靶向药物研究的热点,靶向药物通过抑制这些途径发生药理作用。K-ras基因第12和13密码子发生突变,将导致kras蛋白变异并处于持续激活状态,使药物失效。。据中国2010版《肿瘤学临床实践指南》,在一项包含101例肺腺癌亚型细支气管肺泡癌 患者的回顾性研究中,所有患者均接受厄洛替尼单药一线治疗。K-ras突变者无一例缓解(0/18),而无K-ras突变者则有20例缓解(20/62,32%),差别有统计学意义(P <0.01)。因此,指南建议,非小细胞肺癌和结直肠癌患者使用靶向药物前应进行K-ras基因突变状态的检测。

本试剂盒以人非小细胞肺癌、结直肠癌肿瘤组织切片提取的基因组DNA为检测样本,用于检测肿瘤组织K-ras基因第12,13密码子的12种体细胞突变(表1),提供突变状态的定性结果。为临床肿瘤靶向药物的个体化用药提供辅助诊断依据,本品适用于进入个体化靶向治疗疗程前的患者使用。 1)。 【主要组成成份】 本试剂盒包含PCR反应液I、PCR反应液Ⅱ和野生型对照品等3管试剂。PCR反应液I包含相应的K-ras基因突变检测引物和探针,探针由FAM荧光指示;PCR反应液Ⅱ含有dNTP、Taq酶和MgCl2等。 检测必须但试剂盒中不包含的组分: 1.5ml 离心管(用于配制PCR反应液和DNA提取);0.2ml PCR管或8联PCR管或96孔PCR板; 带滤塞的吸头(1ml、200μl和10μl);

DNA提取试剂盒ReliaPrep™ FFPE gDNA Miniprep System(货号:A2352)

【贮存条件及有效期】 置于-20℃条件下储存,有效期6个月。4-10℃避光条件下储存或运输不得超过7天。

【适用仪器】 适用于ABI7500、Linegene FQD-96A型号的Real-time PCR扩增仪。 【样本要求】 1. 适用样本为非小细胞肺癌、结直肠癌石蜡包埋病理组织切片,切片厚度10μm,数量1片,所用切片样品保存不超过3年。

2. 由于肿瘤的复杂性,所采集的临床样品往往会混有正常组织细胞,石蜡包埋病理切片样品肿瘤病变细胞

应不低于 %,所取部分应尽量在蜡块中部;

3. 使用商业化的试剂盒来提取人类基因组DNA,推荐使用Promega公司的ReliaPrep™ FFPE gDNA

Miniprep System(A2352)提取石蜡包埋组织切片样品,所提DNA需用紫外分光光度计测定浓度和纯度,其DNA OD260/OD280的值应在1.8~2.0,浓度应在3~300ng/μl之间,样本DNA质量不合格者不得用于检测,建议重新取切片进行核酸提取,提取完的DNA建议立即进行检测,否则请于-20℃以下保存,保存时间不要超过6个月。 【检验方法】 一、 核酸提取(样本处理室) 使用ReliaPrep™ FFPE gDNA Miniprep System进行核酸提取,提取步骤如下。

1. 用矿物油去除石蜡 加矿物油500µl到装有组织切片样本的1.5ml离心管内,80℃孵育1min,振荡混匀;

2. 组织样本裂解,消化组织蛋白质 1) 离心管内加入200µl裂解液,室温10,000g离心15s,形成水油两相溶液,下层为水相,上层为油相;

2) 向离心管水相加入20µl蛋白酶K, 用移液枪吸打混匀; 3) 56℃孵育1h; 4) 80℃孵育1h;

5) 冷却到室温,离心15s; 3. 去除RNA 向离心管水相加入10µl RNase A,吸打混匀。室温(20-25℃)孵育5min; 4. 用核酸提取柱提取基因组DNA1) 加入 220µl BL Buffer到含裂解样品的离心管中,再加入240µl乙醇(95-100%),震荡混匀,室温10,000g离心15s,形成水油两相溶液,下层为水相,上层为油相;

2) 将结合柱置于收集管内,小心吸取离心管下层水相(包括可能形成的沉淀)转移到结合柱内,盖上管盖,将离心管丢弃。

3) 收集管室温10,000g离心30s,弃去管中的滤出液。

4) 把柱子重新装入收集管中,加入500μl 1 洗涤液至柱内,室温10,000g离心30 s,弃去滤出的洗涤液。 5) 重复步骤4)再洗涤一次;

6) 打开结合柱盖子,室温条件下16,000g离心3 min以甩干柱内残余的液体;

7) 把柱子转移至一个干净的自备1.5ml离心管中,向柱内加入50μl Elution Buffer,室温16,000 g 离心1 min

洗脱基因组DNA,丢弃提取柱。 注意事项: 1. 操作提取柱和收集管时应戴好一次性手 套; 2. 收集基因组DNA前的16,000g离心3 min操作必须开盖,以除净乙醇,乙醇残留过量将严重影响基因组的收集质量。

二、 试剂准备(试剂准备室) 将试剂从冰箱取出,室温融化,混匀,1000rpm快速离心20秒,备用;

三、 反应体系配制(试剂准备室) 1. 根据检测样本数计算所需反应数,如样本数为n,则需做n+2个反应(包含一个阴性对照反应和一个

无模板对照反应); 2. 根据表3计算所需各反应液的体积,并配制反应体系,反应体系混匀后3000rpm快速离心30秒,分装至PCR管中,每管18μl; 四、 加样(样本处理室) 取2μl提取的样品DNA加入PCR反应管,盖上管盖,1000rpm离心或轻甩,排除管底气泡;阴性对照反应所用模板为试剂盒中野生型对照品,空白对照反应所用模板为超纯水(自备)。

五、 上机检测(扩增室) 1. 将PCR管按顺序放入PCR仪,设置反应程序

(1) LineGene FQD-96A荧光定量PCR仪程序设置 在52℃时收集荧光,荧光检测通道选择FAM检测通道,获得扩增曲线及Ct值,实时监测反应进程。

Melt分析时,目标温度65℃,起始温度39℃,台阶温度1℃,台阶温度维持30s,荧光采集方式为“台阶”。荧光检测通道选择FAM检测通道。

(2) ABI7500荧光定量PCR仪 Melt分析时,选择StepAndHold模式,温度39~65℃,每个步骤升高0.3℃,在每个温度都收集荧光。荧光检测通道选择FAM检测通道。

2. 运行PCR反应程序,保存文件。 六、 结果获取 荧光定量PCR仪运行结束后,使用配套软件对本次试验的结果进行熔解曲线导数图(-dF/dT)分析。

【参考临界值】 以野生型对照品反应管为参照,以野生型对照峰峰高的1/5划定阈值线。

【检验结果的解释】 1. 空白对照在Linegene FQD-96A中应无明显熔解峰,若分析后出现明显熔解峰,可能为试剂受到污染或操作过程中的污染,请排除污染源后重新检测;在ABI7500中,空白对照荧光变化曲线(Normalized Reporter)应为逐渐上升的一条斜线(如图4),若出现荧光值下降的熔解特征曲线,可能为试剂受到污染或操作过程中的污染,请排除污染源后重新检测; 2. 野生型对照管在熔解曲线分析后应有单独熔解峰,若野生型对照管无熔解峰,或出现2个或2个以上熔解峰,该批次样本需重新检测。请确认所使用的试剂是否仍在有效期内,确定操作是否严格按照说明书进行。

3. 若满足1和2要求,表明此次实验成功,对样品管进行分析:

(1) 样品管只出现单独熔解峰,且Tm值在野生型对照管熔解曲线峰Tm±1范围内,该样本判定为阴

性(野生型),如图5野生峰; (2) 样品管只出现单独熔解峰,且Tm值小于野生型对照管熔解曲线峰Tm值3℃以上,则该样本判定

为阳性(突变型),如图5突变峰; (3) 样品管出现两个熔解峰,且两个熔解峰分别符合(1)和(2)的要求(如图6A),或样品管出现

一个宽峰(左右各有一个高点,可以判为峰值,但两峰间平缓过渡,凹陷不明显,见图6B、C和 D),则该样本判定为阳性(突变型); (4) 一般情况下不会出现突变峰与野生峰位置相差3℃以内或单一突变峰与野生型对照管的野生峰位

置相差1~3℃的情况,如确实发生此种情况,考虑仪器温度控制和传感系统是否发生故障; (5) 样品管在熔解曲线分析中无明显熔解曲线峰,可能为DNA样本中存在PCR抑制剂或DNA量不够,请确认样本质量以及前处理过程是否规范,必要时再行检测。

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