猪传染性胃肠炎病毒NSP5蛋白单克隆抗体的制备及抗原表位鉴定-论文
1株猪传染性胃肠炎病毒的分离鉴定及其生物学特性研究

1株猪传染性胃肠炎病毒的分离鉴定及其生物学特性研究李晓楠;唐青海;李羽;王瑾;姚伦广;阚云超;杨海【摘要】The faeces samples were collected from a pig with severe diarrhoea,transmissible gastroenteritis virus(TGEV) nucleotide was amplified by reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) and serological methods to isolate the new TGEV strain.The filtered samples were inoculated into ST cells to isolate viruses,then the characterization of the viruses propagated in ST cells were determined by immunoperoxidase monolayer assay(IPMA) and RT-PCR.TGEV S1 gene was amplified by RT-PCR and sequenced,analyzed by solftware DNAStar 7.0 and Mega5.0.Results showed that significant cytopathic effect(CPE) of ST cells inoculated the sample was observed;RT-PCR detection results showed that the culture samples were TGEV nucleotide positive,as well as serologic test results showed that the culture samples were TGEV antigenic positive.The isolated virus strain was named TGEV-NY.TGEV could be detected in the ST cells 12 hours post infection(hpi) by IPMA,as well as TGEV nueleotide could be detected by RT-PCR in the culture supernant.Nucleotide sequences showed that the open reading frame of S1 gene was 2 220 bp encoding 740 aa.Phylogenetic analysis showed that TGEV-NY strain belonged to the gene group Ⅰ,shared close g enetic relationship with TGEV strain SC-Y which was isolated in 2006 from China.%采集1例疑似感染猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)仔猪的粪便,运用RT-PCR方法和血清学方法对病料进行TGEV检测,并应用猪睾丸细胞(ST)进行病毒分离培养,分别采用免疫过氧化物酶单层细胞染色法(IPMA)和RT-PCR方法检测病毒在ST细胞中的增殖动态,应用RT-PCR方法扩增分离TGEV S1基因,经序列测定后,采用DNAStar 7.0和Mega 5.0软件对TGEV 进行生物信息学分析.结果表明,病料接种到ST细胞培养后,出现明显细胞病变效应(CPE);RT-PCR检测结果显示,TGEV核酸阳性;血清学鉴定TGEV抗原阳性.将分离毒株命名为TGEV-NY.感染12h后,IPMA检测结果阳性,且可从细胞培养上清中检出TGEV核酸.序列测定分析表明,分离毒株S1基因开放阅读框(ORF)为2 220 bp,编码740个氨基酸.进化分析显示,分离毒株与我国2006年分离的SC-Y毒株亲缘关系最近,分离毒株属于基因Ⅰ群.【期刊名称】《河南农业科学》【年(卷),期】2017(046)008【总页数】6页(P131-136)【关键词】猪传染性胃肠炎病毒;分离培养;免疫过氧化物酶单层细胞染色法;S1基因【作者】李晓楠;唐青海;李羽;王瑾;姚伦广;阚云超;杨海【作者单位】南阳师范学院河南省伏牛山昆虫生物学重点实验室/昆虫生物反应器河南省工程实验室,河南南阳473061;南阳师范学院河南省伏牛山昆虫生物学重点实验室/昆虫生物反应器河南省工程实验室,河南南阳473061;衡阳师范学院生命科学与环境学院/生物药物研究所,湖南衡阳421008;南阳师范学院河南省伏牛山昆虫生物学重点实验室/昆虫生物反应器河南省工程实验室,河南南阳473061;南阳师范学院河南省伏牛山昆虫生物学重点实验室/昆虫生物反应器河南省工程实验室,河南南阳473061;南阳师范学院河南省伏牛山昆虫生物学重点实验室/昆虫生物反应器河南省工程实验室,河南南阳473061;南阳师范学院河南省伏牛山昆虫生物学重点实验室/昆虫生物反应器河南省工程实验室,河南南阳473061;衡阳师范学院生命科学与环境学院/生物药物研究所,湖南衡阳421008【正文语种】中文【中图分类】S855.3传染性胃肠炎病毒(transmissible gastroenteritis virus,TGEV)是冠状病毒科(Coronaviridae)成员,该病毒是引起猪胃肠炎的主要病原体。
抗猪流行性腹泻病毒N蛋白单克隆抗体制备及部分特性鉴定

抗猪流行性腹泻病毒N蛋白单克隆抗体制备及部分特性鉴定裴敦国;葛俊伟;马广鹏;姜艳萍;李一经【期刊名称】《东北农业大学学报》【年(卷),期】2008(039)007【摘要】以原核表达系统pGEX-6p-1-N/BL21经IPTG诱导表达的重组PEDV N-GST融合蛋白作为免疫抗原,免疫BALB/c小鼠,运用淋巴细胞杂交瘤技术,制备单克隆抗体,用原核表达系统T12-pPROHTa/BL21经IPTG诱导表达的PEDV N 蛋白做筛选抗原,通过间接ELISA进行筛选,获得两株抗PEDV N蛋白杂交瘤细胞,命名为2E3、4C6.亚类鉴定为IgG1和IgG2a型,均为κ链抗体,染色体数平均为(91±7)对.用制备的单抗与pGEX-6p-I-N/BL21、T12-pPROHTa/BL21诱导表达后的菌体裂解物做Western Blot试验,在不同载体表达的N蛋白处出现明显的特异性条带;通过间接ELISA做病原检测,这两株单抗不与TGEV、PRV和PrV发生交叉反应,而与PEDV显示良好的特异性反应.【总页数】6页(P84-89)【作者】裴敦国;葛俊伟;马广鹏;姜艳萍;李一经【作者单位】东北农业大学动物医学院,哈尔滨,150030;东北农业大学动物医学院,哈尔滨,150030;东北农业大学动物医学院,哈尔滨,150030;东北农业大学动物医学院,哈尔滨,150030;东北农业大学动物医学院,哈尔滨,150030【正文语种】中文【中图分类】S852.65;Q785【相关文献】1.抗猪流行性腹泻病毒N蛋白单克隆抗体的制备与鉴定 [J], 刘苏君;段松焕;胡景炎;金俊杰;涂宜强;白宇2.抗鸡传染性支气管炎病毒N蛋白单克隆抗体制备与鉴定 [J], 于丹;韩宗玺;邵昱昊;李慧昕;金鑫;孔宪刚;刘胜旺3.抗猪传染性胃肠炎病毒重组N蛋白单克隆抗体的制备及其部分特性鉴定 [J], 姜骞;李一经4.抗猪流行性腹泻病毒单克隆抗体的研制及其特性鉴定 [J], 孙智锋;钱永清;方锡玲;闻人楚;唐永兰;许大新;陈培龙5.抗重组SARS病毒N蛋白单克隆抗体制备及性质初步研究 [J], 李辉;许汴利;赵旭东;刘国华;邓艳;郝宗宇因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
猪传染性胃肠炎诊断与治疗

猪传染性胃肠炎诊断与治疗猪传染性胃肠炎(PED)是一种严重的猪类传染病,主要发病于婴幼猪,常引起猪群的大规模死亡,并严重影响养猪业的发展。
病因主要是由猪传染性胃肠炎病毒引起,该病毒对肠道有强烈侵袭性,在感染猪只后可引起严重的肠道疾病,表现为腹泻、脱水、厌食等症状。
本文将针对猪传染性胃肠炎的诊断和治疗进行详细介绍。
一、诊断1. 临床表现猪传染性胃肠炎主要表现为腹泻、呕吐、脱水、厌食、体重下降等症状,严重时可导致幼猪死亡。
在病猪中,最常见的表现是水样便,有时伴有泡沫,粪便浓度较高,颜色较淡。
病猪出现厌食、消瘦,精神萎靡,毛色暗淡等现象。
2. 病理变化肠道病理学检查是诊断PED的重要依据之一。
感染PED病毒后,肠道上皮细胞受到破坏,小肠黏膜变薄,结肠极度水肿,并伴有病变黏液的积聚。
在镜检中可以观察到肠道黏膜上皮的脱脱落和脱屑,并有大量淋巴细胞、浆细胞和嗜酸性粒细胞浸润。
3. 实验室检查通过病毒学检测方法,包括逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)、酶联免疫吸附试验(ELISA)等,可以从病猪粪便、肠道组织中检测到PED病毒。
对血清标本进行抗体检测也是一种诊断PED的方法。
二、治疗1. 对症治疗治疗PED的关键是对症治疗,主要措施包括防止脱水和电解质紊乱、恢复食欲和营养摄取、控制并发感染等。
病猪应得到充分的休息,保持环境卫生,定期清洁病栏,并适时更换干净的饲料和饮水。
2. 药物治疗在对症治疗的基础上,可以使用一些药物来帮助病猪尽快康复。
可以使用抗菌药物来控制并发感染,如氟哌酸、庆大霉素等。
对于出现严重腹泻和脱水的病猪,可以使用补液盐溶液和氨基酸溶液来纠正脱水和电解质失衡。
3. 预防控制在治疗的也需要加强对PED病毒的预防控制工作。
在饲养管理上,应严格做好猪只的隔离和消毒工作,避免病原菌的传播。
养殖场应每日对粪便、饮水、饲料等进行检查,及时发现异常情况并采取相应措施。
对于久经流行的养殖场,也可以考虑接种疫苗来预防PED的发生。
猪萨佩罗病毒VP1蛋白单克隆抗体制备及其抗原表位鉴定

猪萨佩罗病毒VP1蛋白单克隆抗体制备及其抗原表位鉴定王羽茜;牟春晓;陈振海【期刊名称】《扬州大学学报:农业与生命科学版》【年(卷),期】2021(42)6【摘要】猪萨佩罗病毒(PSV)是一种小RNA病毒,在临床上多与猪流行性腹泻病毒、捷申病毒等引起混合感染。
近年来,我国多个省份报道在猪体内分离到该病毒,因而有必要加强对PSV的相关研究。
参照PSV-HuN2株序列,将VP1基因插入pGEX-6p-1中进行重组蛋白表达。
将蛋白质溶液与弗氏佐剂混合,按照标准程序免疫6~8周龄BALB/c小鼠,第3次免疫后,小鼠眼眶采血,IFA鉴定抗体水平,选取抗体水平高的小鼠脾细胞进行细胞融合。
使用IFA法筛选阳性杂交瘤细胞,经过2次有限稀释法亚克隆,最终获得1株PSV VP1单克隆抗体,命名为33-2A。
通过IFA、WB、IP 试验,33-2A均可与PSV结合。
同时对该单抗的B细胞抗原表位进行鉴定,其所识别的抗原表位在PSV VP1蛋白第40—46位氨基酸,多肽序列为^(40)PALTAAE^(46)。
结果显示,该单抗与猪萨佩罗病毒VP1蛋白具有良好的反应特异性,并且将其抗原表位与NCBI中上传的PSV毒株序列进行分析,33-2A可识别大多数PSV毒株,具有一定的广谱性。
这一研究为猪萨佩罗病毒病原学及其新型疫苗的研制奠定了基础。
【总页数】7页(P48-53)【作者】王羽茜;牟春晓;陈振海【作者单位】扬州大学兽医学院/江苏高校动物重要疫病与人兽共患病防控协同创新中心【正文语种】中文【中图分类】S852.651【相关文献】1.猪传染性胃肠炎病毒NSP5蛋白单克隆抗体的制备及抗原表位鉴定2.A组猪轮状病毒NSP3蛋白单克隆抗体的制备及抗原表位鉴定3.猪圆环病毒2型Cap蛋白单克隆抗体制备及线性抗原表位鉴定4.一株H1N1亚型猪流感病毒血凝素HA蛋白中和性单克隆抗体的制备及抗原表位鉴定5.猪萨佩罗病毒VP1蛋白的原核表达及其间接ELISA方法的建立因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
猪传染性胃肠炎疫苗抗体免疫效果评价

216猪传染性胃肠炎疫苗抗体免疫效果评价汤永蓉 陈 彬(宝应县畜牧兽医站,江苏扬州 225800)摘 要:为验证猪传染性胃肠炎疫苗对猪群的安全性和免疫效果,进一步在基层推广应用,本试验为期4个月,通过选择4家规模猪场280头母猪注射疫苗,对生猪疫苗注射前后采血,按照“猪传染性胃肠炎诊断技术标准”(NYT548-2002)进行抗体测定。
结果显示,试验猪群疫苗免疫前和免疫后7d、14d、30d的猪传染性胃肠炎免疫抗体平均值为6.1%、80.4%、89.5%、92.3%。
试验结果表明,猪传染性胃肠炎疫苗安全性高、副反应小,免疫效果好。
关键词:猪传染性胃肠炎疫苗;免疫;评价0 引言猪传染性胃肠炎是由猪传染性胃肠炎病毒引起的一种急性、高度接触性肠道传染病,临床上以发热、严重呕吐、剧烈腹泻和高度脱水为特征,各个年龄的猪都可感。
冬春寒冷季节易多发,因其潜伏期很短,一般12~18h,有的为1~8d,多数病例2~4d,发病较为突然,传播迅速,数日内可蔓延至全群,是严重危害猪群的原发性疾病之一,严重制约了规模化养猪场的经济效益。
目前,对该病还没有特效的治疗药物,疫苗免疫是预防该病的最安全、最有效的手段,也能使猪群获得很好的抗体免疫效果,并且无副作用。
为了验证猪传染性胃肠炎疫苗对生猪的安全性和免疫效果,此次选择了本地4家规模猪场,开展猪传染性胃肠炎疫苗抗体试验。
试验结果证明,猪传染性胃肠炎疫苗的免疫效果较好,随后在基层范围内进行推广应用,均取得了好评。
1 试验原理试剂盒系由预包被猪传染性胃肠炎病毒重组N蛋白的酶标板、酶标记物及其他配套试剂组成,应用酶联免疫法(ELISA)原理检测猪血清、血浆样本中猪传染性胃肠炎病毒抗体。
实验时在酶标板中加入对照血清和待检样本,经温育后若样品中含有猪传染性胃肠炎病毒抗体,则将与酶标板上抗原结合,经洗涤除去未结合的其他成分后;再加入酶标记物,与酶标板上抗原抗体复合物发生特异性结合;再经洗涤除去未结合的酶标记物,在孔中加TMB底物液,与酶反应形成蓝色产物,显色深浅与样品中的特异性抗体含量成正相关;加入终止液终止反应后,产物变为黄色;用酶标仪在450nm波长测定各反应孔中的吸光值,即可知样品是否含有猪传染性胃肠炎病毒抗体。
猪传染性胃肠炎的诊断与防治

猪传染性胃肠炎的诊断与防治
猪传染性胃肠炎(Porcine Epidemic Diarrhea,PED)是一种由猪传染性胃肠炎病毒(Porcine Epidemic Diarrhea Virus,PEDV)引起的急性胃肠炎,主要表现为猪只的急性腹泻和呕吐。
本文将介绍猪传染性胃肠炎的诊断和防治方法。
诊断方法:
1. 病情观察:猪传染性胃肠炎通常表现为急性腹泻和呕吐。
养殖户可以观察猪只的排便情况,如果发现大量稀水样便便和呕吐现象,可能是猪传染性胃肠炎的症状。
2. 病毒检测:可以通过PCR或ELISA等方法对猪只的粪便、胃肠道组织等样本进行病毒检测,以确定是否感染了猪传染性胃肠炎病毒。
3. 病理检查:可以通过对猪只的胃肠道组织进行病理学检查,观察组织病变和病毒感染情况,进一步确诊猪传染性胃肠炎。
防治方法:
1. 强化消毒:对猪舍、饮水设备、饲料槽等进行定期消毒,以防止病毒传播和感染。
2. 隔离感染猪只:对发病猪只进行及时隔离,以防止病毒的扩散。
对新引进的猪只进行隔离和观察,确保其健康状况符合要求后再放入养殖环境中。
3. 提高猪只免疫力:可以通过合理饲养和营养,提高猪只的免疫力,减少感染猪传染性胃肠炎的风险。
4. 疫苗接种:目前已有部分PEDV疫苗可供使用,可以根据养殖户的需求和疫情情况进行疫苗接种,以预防和控制猪传染性胃肠炎的发生。
总结:
猪传染性胃肠炎的诊断主要通过观察猪只的症状、病毒检测和病理学检查等方法来确定。
防治方法包括强化消毒、隔离感染猪只、提高猪只免疫力和疫苗接种等措施,旨在预防和控制猪传染性胃肠炎的发生和传播。
猪传染性胃肠炎病毒双抗体夹心ELISA检测方法的建立
第 3 5卷 第 5期
2 0 1 3 年 5 月
中 国 预 防 兽
医 学 报
V0 1 . 3 5. No . 5
Ma y . 2 01 3
Ch i n e s e J o u na r l o f P r e v e n t i v e Ve t e r i n a r y Me d i c ne i
( C o l l e g e o f An i ma l Me d i c i n e , No r t h e a s t Ag r i c u l t u r a l Un i v e r s i t y , H a r b i n 1 5 0 0 3 0 , C h i n a )
A b s t r a c t : T o d e v e l o p a me t h o d f o r he t d e t e c i t o n o f p o r c n i e t r a n s mi s s i b l e g a s r t o e n t e r i t i s v i r u s( T G E V ) , a d o u b l e - a n t i b o d y s a n d w i c h E L I S A( D AS - E L I S A) w a s d e v e l o p e d u s ng i mo n o c l o n a l a n t i b o d y( Mh b ) nd a p u r i i f e d p o l y c l o n a l nt a i b o d y a g a ns i t v i r a l N
抗猪PABPC1蛋白单克隆抗体的制备与鉴定
抗猪PABPC1蛋白单克隆抗体的制备与鉴定焦亚娟;王桦;孔宁;孙大格;董苏洁;陈晓勇;翟焕杰;童武;郑浩;于海;虞凌雪;童光志;单同领【期刊名称】《中国动物传染病学报》【年(卷),期】2022(30)5【摘要】细胞质聚腺苷酸结合蛋白1(PABPC1)是一种mRNA poly A结合蛋白,在维持mRNA稳定和蛋白翻译方面起着重要作用。
本研究中将猪源PABPC1基因克隆并插入原核表达载体pCold-Ⅰ中,构建重组表达质粒pCold-pPABPC1。
将其转化至大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞并经过IPTG诱导表达重组猪PABPC1蛋白。
然后,用纯化的rpPABPC1蛋白免疫BALB/c小鼠以制备PABPC1的单克隆抗体。
Western blot结果表明,PABPC1单克隆抗体与PK1细胞和HEK293T细胞中的PABPC1蛋白发生了特异性反应。
猪PABPC1特异性单克隆抗体为进一步研究PABPC1的功能提供了有价值的工具。
【总页数】5页(P135-139)【作者】焦亚娟;王桦;孔宁;孙大格;董苏洁;陈晓勇;翟焕杰;童武;郑浩;于海;虞凌雪;童光志;单同领【作者单位】中国农业科学院上海兽医研究所;江苏高校动物重要疫病与人兽共患病防控协同创新中心【正文语种】中文【中图分类】Q753【相关文献】1.抗猪流行性腹泻病毒N蛋白单克隆抗体的制备与鉴定2.抗猪传染性胃肠炎病毒N蛋白单克隆抗体的制备及抗原表位的鉴定3.抗猪输血传播病毒1型Cap蛋白单克隆抗体的制备及鉴定4.抗猪圆环病毒2型Cap蛋白中和性单克隆抗体的制备及鉴定5.1株抗猪流行性腹泻病毒N蛋白单克隆抗体的制备及其抗原表位的鉴定因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
猪传染性胃肠炎病毒猪流行性腹泻病毒猪轮状病毒多重荧光RT-PCR检测方法的建立
中P兽医科学 2020,50(12): 1500-1508Chinese Veterinary Science网络首发时间:2020-L0-15 DOI:l0.16656/iissal673-46962020.0206 中图分类号:S852.659.6:S852£59.4 文献标志码:A文章编号:1673-4696(2020)12_ 1500-09猪传染性胃肠炎病毒猪流行性腹泻病毒猪轮状病毒 多重荧光RT-PCR检测方法的建立许梦怡U,王彦红i,2*,薛峰〇(1•扬州大学兽医学院,江苏扬州225009;2.江苏省动物重要疫病与人兽共患病防控协同创新中心,江苏扬州225009;3•江苏省淮安生物T.程高等职业学校,江苏淮安223200;4.南京农业大学动物医学院,江苏南京210095)摘要:根据T G E V的M基因、P E D V的M基因和P o R V的V P2基因序列,通过优化引物、探针浓度和退火温度,确定了最佳的反应体系和扩增程序,成功建立了这3种病毒的T a q M a n探针单重荧光定量P C R 方法。
在此基础上,经过进一步的条件优化,建立了检测T G E V、P E D V、P o R V的三重实时荧光定量P C R方法,该方法对 T G E V、P E D V、P o R V 的检测灵敏度分别为 2.49copies/M L、4.36copies/fiL、4.96copies/n L, T G E V、P E D V、P o R V的组内重复试验的C V最大值分别为2.5%、3.8%、4.3%,组间重复性试验的C V最大 值分别为3.7%、3.4%、3.2%,均不超过5%,表明建立的方法重复性好;用此方法对?!^\?(:¥1、?1^^乂病 毒样本进行检测,均没有交叉反应,表明该方法特异性好;用建立的方法对临床4 0份病料样品进行了检测,结果显示,T G E V、P E D V、P o R V的阳性检出率分别为5%、30%、12.5%;其中T G E V与P E D V混合感染率为2.5%;P E D V与P o R V混合感染率为5%;多重荧光定量P C R方法与单一荧光R T-P C R方法的检测结果均一致,表明建立的方法具有很好的临床应用价值:关键词:猪传染性胃肠炎病毒;猪流行性腹泻病毒;猪轮状病毒;T a q M a n荧光定量P C REstablishment and application of multiplex RT-PCR procedure fordetection of three virus from swineXU Meng-yil 3,WANG Yan-hong1'2* ,XUE Feng4*(1. College of Veterinary Medicine,Yangzhou University,Yangzhou 225009, China;2.Jia/igsu Co-lnnovaiion Center f or Important Animal Infectious Diseases (uid Zoonoses,Yangzlwu 225009, China;3.Huaian Higher Vocational School of B iological Engineering, Jiangsu Province Munian 223200, China ;4.College of Veterinary Medicine ,Nanjing A griculturaJ University ,l\anjing 2\0095 ,China)Abstract:Based on the M gene sequence of TGEV and PEDV and VP2 gene sequence of PoRV,the optimal reaction system and amplification procedure were established by optimizing primer,probe concentration and annealing temperature,and the Quantitative PCR method of TaqMan probes for three viruses is successfully established.On this basis,after further optimization of conditions,a triple real-time fluorescent quantitative PCR method for detecting TGEV,PEDV,and PoRV was established.The detection sensitivity of this method for TGEV,PEDV,and PoRV were 2.49 copies/ fiL,4. 36 copies/M L,and 4.96收稿日期:2020-08-05;修回日期:2020-10-09基金项目:江苏高校优势学科建设工程资助项目(PAPD);江苏高校品牌々•业建设工程资助项目(PPZY2015B158);国家重点 研发计划项目(2017YFF0208600)作者简介:许梦怡(1990-),女,江苏淮安人,硕士生,研究方向为兽眹学,E-mail :*****************通讯作者:王彦红(1974-),女,讲师,博士,研究方向为临床兽医学,E-mail :wyh7405@163. com;薛峰,教授,博士,研究方向为人兽共患病病原学、致病机制、检测诊断新技术,E-mai 1:xuefeng @njau. edu. cn :第12期许梦怡等:猪传染性胃肠炎病毒玷流行性腹泻病毒猪轮状病毒多重荧光RT-PCR检测方法的建£1501copies/respectively.The maximum value of CV in repeated trials detected by TGEV, PEDV and PoRV were 2.5%,3.8%,4. 3%,and the maximum value of CV in repeated trials between groups were 3.7%,3.4%,3.2% , which are no more than 5%. indicating that the established method has good ing this method to detect P R V,PCVl,and PRRSV virus samples,there is no cross-reaction,indicating that the me thod is specific. Using the established method to detect 40 clinical diseases,the samples were tested,and the positive rates of TGEV,PEDV,and PoRV were 5%, 30%,and 12. 5% respectively.The mixed infection rate of TGEV and PEDV was 2.5% ,the mixed infection rate of PEDV and PoRV was 5%.The results of the multiple fluorescence quantitative PCR method are consistent with those of the detection of a single fluorescent RT-PCR method,indicating that the established method has good clinical application value.Key words:T G E V;PE D V;PoRV;TaqMan quantitative RT-PCR* C orresponding authors:W A N G Y a n-hon g,E-mail:w y h**********o m;X U E F e n g,E-mail :xuefeng@ 猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)、猪流性腹泻病毒(PEDV)以及猪轮状病毒(PoRV)是3种主要引起猪腹泻病的病毒病原13:,这3种病毒性腹泻造成猪场仔猪死亡、成年猪吃而不长,最终导致畜主财产损失,其不仅在我国广泛流行,在欧洲、美洲等地也广泛存在,是一种世界性的疾病。
猪传染性胃肠炎病毒、猪流行性腹泻病毒和猪博卡病毒多重PCR检测方法的建立
泻疫 情相 关 , 为 了评 估 P B o V 与 TG E V 以及 P E D V 的流行是 否 有混 合感 染 的现 象 , 对 这 3种 病 毒 进行
了检测 。由于临 床诊 断 非 常 困难 , 因 此 必 须 依靠 实 验 室检测 技术 进行鉴 别诊 断 。 以往 的血 清学 诊 断准
异、 易 于操 作 的优点 , 可用 一个 样 品 同时 检测 多种 病
原体 , 达 到对 多种 疾 病 的 同步 诊 断 , 缩短检测时 间, 减少 试剂 消耗 。 因此 , 本文开展 了多重 P C R 检 测
泻 。2 0 1 0年 , S h a n T Leabharlann 等 。 在 无 临 床 症 状 的猪
猪 传染 性 胃肠 炎 病 毒 ( T r a n s mi s s i b l e g a s t r o e n —
t e r i t i s v i r u s , T GE V)、 猪流行性 腹泻病毒 ( P o r c i n e
相 似 的症 状 , 经常会 发 生混合 感 染 , 而 P B o V 又 与腹
e p i d e mi c d i a r r h e a , P E DV) 和猪 博 卡 病毒 ( P o r c i n e b o c a v i r u s , P B 0 V) 都 是与 猪腹泻 相关 的肠 道病毒 。
其中由 P E DV 和 TG E V 引起 的 高度 接 触 性 腹 泻性
法可 以应 用 于临床检 测 。
关 键词 : 猪 传 染性 胃肠 炎病毒 ; 猪 流行 性腹 泻病 毒 ; 猪 博卡 病毒 ; 多重 P C R; 检 测
中 图分 类 号 : ¥ 8 5 8 . 2 8 ; Q7 8 9 文献标识码 : A 文章编号 : 1 0 0 7 — 5 0 3 8 ( 2 0 1 3 ) 0 8 — 0 0 7 1 — 0 5
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第37卷第3期 2015年3月 中国预防兽医学报
Chinese Journal of Preventive Veterinary Medicine Vo1.37.No.3
Mar.20l5
doi:10.39698.issn.1008-0589.2015.03.14 猪传染性胃肠炎病毒NS P5蛋白单克隆抗体的制备 及抗原表位鉴定
董 慧·,张 鑫 ,陈建飞 ,时洪艳 ,石 达 ,常铁城。, 徐天 ,王智琴 ,冯 力。’ 谷凤丽 .-,
(1.沈阳农业大学畜牧兽医学院,辽宁沈阳110161;2.中国农业科学院哈尔滨兽医研究所兽医生物技术国家重点实验室/ 猪传染病研究室,黑龙江哈尔滨150001;3.黑龙江八一农垦大学动物科技学院,黑龙江大庆163319; 4.东北农业大学生命科学学院,黑龙江哈尔滨150030;5.首都医科大学基础医学院,北京100069)
摘要:为制备猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)NSP5蛋白的单抗隆抗体(MAb)TL鉴定其抗原表位,本研究以原 核表达并纯化的重组NSP5蛋白(rNSP5.GST)免疫BALB/c小鼠,取其脾淋巴细胞与SP2/0细胞进行融合,通过间 接ELISA方法筛出一株稳定分泌抗TGEV NSP5蛋白的MAb杂交瘤细胞株(5c3)。MAb亚类鉴定结果显示其抗体 亚类为IgG1/K链。杂交瘤细胞培养上清液和腹水的效价分别为1:6 400和1:10 。Westem blot鉴定表明该MAb能 够识别原核及真核表达的NSP5重组蛋白。利用肽扫描法鉴定显示,该MAb识别的抗原表位为 FTPTEvIR QMYGVN 。本研究制备的MAb及其抗原表位的鉴定,为TGEvNSP5蛋白结构和功能的研究奠定了基础。 关键词:猪传染性胃肠炎病毒;nsp5基因;单克隆抗体;抗原表位 中图分类号:¥852.65 文献标识码:A 文章编号:1008.0589(2015)03-0220.05
Antigenic epitope identification of NSP5 protein in TGEV DONG Hui ,ZHANG Xin2,CHEN Jian—fei ,SHI Hong-yan ,SHI Da。,CHANG Tie—cheng3, GU Feng—li ,.,XU Tian ,WANG Zhi.qin ,FENG Li (1.College of Animal Science and Veterinary Medicine,Shenyang Agricultural University,Shenyang 1 10161,China; 2.Division of Swine Infectious Disease,State Key Laboratory of Veterinary Biotechnology,Harbin Veterinary Research Institute,Chinese Academy of Agricultural Sciences,Harbin 150001,China;3.College of Animal Science and Technology,Heilongjiang Bayi Agricultural University,Daqing 1633 19,China;4.College of Life Science,Northeast Agricultural Univercity,Harbin 150030,China; 5.College of Basic Medical,Capital Medical University,Beijing 100069,China)
Abstract:To prepare the monoclonal antibodie(MAb)against non—structure protein 5(NSP5)of porcine transmissible gastroenteritis virus(TGEV)and identify the epitope of NSP5,SP2/0 myeloma cells were fused with spleen cells from 6 week—old BALB/c mice immunized with purified recombinant NSP5 of TGEV expressed in E.coli.One hybidoma cell lines stably secreting MAb against NSP5 of TGEV was identified by indirect ELISA.The MAb belonged to IgG1 subtype with K chain.The titers in cell culture medium of the hybidomas and ascites were 1:6 400 and 1:1 0 ,respectively.Western blot assay showed that the MAb was able to recognize the recombinant NSP5.Furthermore,epitope on NSP5 was identified by pepscan technique and the linear epitope of FTPTEVIROMYGVN was identified by western blot and ELISA with the MAb.These results demonstrated that preparation of the MAb and identification of the epitope would facilitate the further study on the structure and function of TGEV NSP5. Key words:porcine transmissible gastroenteritis virus;nsp5 gene;monoclonal antibody;antigenic epitope *Corresponding author 收稿Et期:2014.09—26 基金项目:黑龙江省高等学校科技创新团队项目(2011TDO01) 作者简介:董慧(1989.),女,黑龙江哈尔滨人,硕士研究生,主要从事兽医药理学与毒理学研究 通信作者:E-mail:wzq7626@126.tom;fenglih@163.com 第3期 董慧,等.猪传染性胃肠炎病毒NSP5蛋白单克隆抗体的制备及抗原表位鉴定 221 猪传染性胃肠炎病毒(Transmissible gastroenteritis virus of swine,TGEV)属于套式病毒目,冠状病毒 科,仪.冠状病毒属,为引起仔猪病毒性腹泻的病原 之一川,由其引起的猪传染性胃肠炎(TGE)以呕吐、 严重腹泻和对2周龄以内仔猪的高度致死为特征。 冠状病毒的非结构蛋白具有多种功能,其中包括参 与RNA转录、翻译和蛋白合成、加工和修饰以及 病毒复制、感染宿主等功能。TGEV NSP5蛋白为蛋 白水解酶,大小为27 ku ̄34 ku,因其与微小RNA 病毒3C蛋白酶具有相似的识别位点而被称为3C样 蛋白酶(3c.1ike proteinase,3CLpro)。3CLpro可以结 合ORFlab上的1 1个保守的Q.S二肽位点从而水解 产生12个成熟的非结构蛋白(NSP5 ̄NSP16)。研究 表明,不同亚群病毒的3CLpro底物结合部位具有很 高的保守性,如SARS.CoV的3CLpro可以裂解 TGEV的底物 。 本实验通过制备TGEV NSP5蛋白单克隆抗体 (MAb)并对其抗原表位进行鉴定,为TGEV NSP5蛋 白结构及其相关功能的研究奠定了基础。 1材料和方法 1.1 病毒核酸、细胞及实验动物TGEV cDNA、 SP2/0骨髓瘤细胞和sT细胞由本实验室保存;大肠 杆菌Trans5a和BL21(DE3)感受态细胞购自北京全 式金生物技术有限公司;6周龄~8周龄BALB ̄小 鼠购自中国农业科学院哈尔滨兽医研究所实验动物 中心。 1.2主要试剂pGEX.6P.1和pEGFP.C2载体由本 实验室保存;质粒DNA小量试剂盒购自Axyprep公 司;EndoFree Plasmid Maxi Kit和Attractene Transfec. tion Reagent购自QIAGEN公司;Anti.GFP antibody 购自Abcam公司;弗式完全佐剂、弗式不完全佐 剂、PEG1450、HAT和HT购自SIGMA公司;HRP 标记山羊抗鼠IgG(IgG.HRP)购自北京中杉金桥生物 技术有限公司;TMB购自AMRESCO公司;MAb 亚类鉴定试剂盒SBA ClonotypingTM System/HRP购自 Southern Biotech公司;IRDye700DX@兔抗猪IgG、 IRDye700DX@绵羊抗兔IgG和IRDye700DX⑧山羊 抗鼠IgG购自本研究所;蛋白质Marker购自Thermo 公司。 1.3 TGEV NSP5蛋白的表达及纯化 根据Gen. Bank中EU074218.2序列设计并合成2对扩增 TGEV nsp5基因的引物,引物序列分别为:上游引 物1: 5'-GT △! TcAGGTTTACGGAAAATGGc 3’(BamH I);下游引物1:5'-GAcTcGAGcTGAAG ATTTACACCATAC.3’(Xho I)。上游引物2:5'-GT ! TCAGGTTTACGGA A AATGGC一3’(Xho I); 下游引物2:5'-GAGGATCCCTGAAGATTTACACCA TAC.3’(BamH I),引物由哈尔滨博仕生物技术有限 公司合成。以TGEV cDNA为模板,PCR扩增nsp5 基因,将扩增的TGEV nsp5基因、pGEX.6P.1和 pEGFP.C2分别用BamH I和Xho I双酶切,用T4 DNA连接酶16℃过夜连接,构建重组质粒pGEX. NSP5和pEGFP—NSP5。 将构建的重组质粒pGEX-NSP5转化BL21(DE3) 感受态细胞,经IPTG诱导表达,离心,超声破碎, 分离上清液和沉淀。通过SDS.PAGE分析重组蛋白 (rNSP5.GST)的表达。利用谷胱甘肽树脂对rNSP5. GST进行纯化,通过SDS.PAGE分析其纯度,超微 量分光光度计测定蛋白浓度。 将构建的重组质粒pEGFP.NSP5转化Trans5oL感 受态细胞,用EndoFree Plasmid Maxi Kit提取重组质 粒pEGFP-NSP5,按照Attractene Transfection Reagent 说明书方法将重组质粒pEGFP-NSP5转染sT细胞以 表达rNSP5.GFP蛋白。 1.4重组蛋白的western blot鉴定 以纯化的rN. SP5.GST为抗原,抗TGEV猪阳性血清为一抗, IRDye700DX@兔抗猪IgG(1:5 ooo)为二抗,进行 western blot鉴定rNSP5.GST的抗原性。收集并裂解 转染后24 h的sT细胞作为抗原,以抗GFP标签的 多抗为一抗,IRDye700DX@绵羊抗兔IgG(1:5 000) 为二抗,进行western blot鉴定检测rNSP5.GFP的表 达。 1.5动物免疫将纯化的rNSP5.GST蛋白与等体 积的弗式不完全佐剂乳化后,按50 只的剂量腹 部皮下注射免疫6周龄~8周龄BALB ̄小鼠。间隔 2周免疫一次,共免疫3次,第2次和第3次免疫 时用rNSP5.GST蛋白与等体积的弗式完全佐剂进行 乳化,50 只。第3次免疫一周后,断尾采血, 间接ELISA方法检测小鼠抗体水平,选择抗体水平 最高的小鼠腹腔注射rNSP5.GST蛋白50 只加强 免疫 ,3 d后取脾脏进行细胞融合。 1.6细胞融合、MAb的制备以及MAb亚类鉴定