给鸡静脉注射操作方法
三级护士
-0三级护士一、生理知识体温：成年犬的正常体温为37.5～39℃猫的正常体温为38～39.5℃脉搏：成年犬的脉搏数为70～160次/分钟猫的正常脉搏数为140～220次/分钟手术过程中可接受的心率上线大型犬180/分钟，小犬200/分钟，猫220/分钟手术过程中可接受的心率下线大型犬50/分钟，小型犬70/分钟，猫100/分钟呼吸：犬的正常呼数为10～30次/分钟猫的正常呼吸数为20～24次/分钟年龄与齿式犬猫齿式乳齿式恒齿式猫I3 C1 PM3 M0I3 C1 PM2 M0 I3 C1 PM3 M1 I3 C1 PM2 M1犬I3 C1 PM4 M0I3 C1 PM4M0 I3 C1 PM4 M2 I3 C1 PM4 M3犬18-22天乳切齿生出3-5周龄乳犬齿生出3-7周龄乳臼齿生出2月龄乳切齿全部长齐 (呈白色，细而尖)3-4月龄更换第1乳切齿，即第1恒切齿开始长出5-6月龄更换第2，第3乳切齿及乳犬齿8月龄全部乳齿脱落，换上恒齿1岁恒齿长齐，洁白光亮，切齿的上尖端均未磨损1.5岁下颌第1切齿的尖端有磨损2,5岁下颌第2切齿的尖端有磨损3.5岁上颌第1切齿的尖端有磨损4.5岁上颌第2切齿的尖端有磨损5岁上颌第3切齿的尖端稍有磨损，下颌第1，第2切齿的磨损面呈钜型，犬齿稍有磨损6岁下颌第3切齿的尖端有磨损，犬齿钝型7岁下颌第1切齿磨损至根部，磨损面呈纵椭圆型8岁下颌第1切齿的磨损面向前倾斜10岁下颌第2切齿及上颌第1切齿的磨损面呈纵椭圆型16岁切齿脱落，犬齿不全20岁犬齿脱落猫14天左右开始长牙2-3周龄乳门牙长齐。
近两月龄时，乳牙全部长齐，呈白色，細而尖3-4月龄更换第一乳门牙5-6月龄换第二三乳门齿及乳犬牙6月龄以后全部换上恒齿8月龄恒齿长齐，洁白光亮，門齿上部有尖凸1岁下颌第二门齿大尖峰，磨损至小尖峰平齐，此现象称为尖峰磨灭2岁下颌第二门齿尖峰磨灭3岁上颌第一门齿尖峰磨灭4岁上颌第二门齿尖峰磨灭5岁下颌第三门齿尖峰稍磨损，下颌第一二门齿磨损面为矩形5.5岁下颌第三齿尖磨灭，犬齿钝圆6.5岁下颌第一门齿磨损至齿根部，磨损面为纵椭圆形7.5岁下颌第一门齿磨损面向前方倾斜8.5岁下颌第二及上颌第一门齿磨损面呈纵椭圆形9-16岁门齿脱落犬齿不齐以上是根据牙齿变化情况来判定犬猫的年龄但由于所喂饲料的性质颗粒饲料（专业的狗粮）、杂食（跟随人吃饭）、生活环境（如圈养的犬就比散养的犬缺少啃咬砖头，木棒的机会）等因素，牙齿磨损的程度也有所不同，因此给判定带来一定的误差此外，也可根据犬的外貌变化来估计犬的年龄6个月的幼犬开始换毛；1-5岁的青年犬被毛光滑，富有光泽，行动敏捷，充满活力，眼睛有神；6-7岁的犬，嘴周围开始出现白毛；10岁以上的老龄犬被毛无光泽，粗糙，行动迟缓，两眼无神，灵活性差，毛色浅(褪色)，在其头部，背部开始长出白毛。
畜禽血液样品的采集制备及保存方法
畜禽血液样品的采集制备及保存方法随着畜禽养殖业的不断发展，畜禽血液样品的采集制备及保存方法也成为了养殖业者们必须掌握的一项技能。
详细了解畜禽血液样品的采集制备及保存方法，有助于提高样品质量，并为科学研究和诊断提供可靠的样品来源，同时也能够保护养殖动物的健康与安全。
本文将介绍畜禽血液样品的采集、制备和保存方法，以供畜禽养殖业者参考使用。
采集畜禽血液样品一般采用静脉采血法或心前穿刺法。
静脉采血法: 静脉采血法通常使用的是畜禽肘窝静脉，其采血位置比较固定，采血方法也较为简便。
具体操作步骤如下：1.畜禽肘窝部位消毒。
将畜禽肘窝处的毛发剪短，用消毒液对采血部位进行消毒。
2.固定畜禽。
将畜禽固定在操作台上，需保持畜禽的舒适度和安静，以免造成不必要的压力，影响采血结果。
3.采血。
对于鸡类，需要插入采血针到肘窝静脉处，将血样采集到血常规管中；对于猪、牛、羊等家畜，需要将静脉环扣住，采血针从环的上方插入到静脉内，当动脉血液随针头进入时，需放开环的上口，等到血液快流时，将容器连续地放入血流中收集血样。
心前穿刺法: 心前穿刺法是体内采血法的一种，常用于人工饲养的野生动物、家禽等比较特殊的畜禽样品的采集。
操作方法如下：1.消毒。
消毒的效果要严格掌握，可用二色油酸乙酯及碘酒。
2.盘腿或麻醉。
畜禽采集时，可将其置于实验操作盘中并盘腿或使其睡眠状态下进行操作，以降低手术风险。
3.确定穿刺位置。
在胸部左右位置寻找心跳位置，并确定穿刺位置。
4.穿刺采血。
在穿刺位置穿刺采用20ml注射器和针头采血，并将血液转入专用试管中。
制备畜禽血液样品的制备分为离心血和诱导血凝固两种方式。
离心血: 离心血是将采集到的畜禽血液试样离心，分离血浆和红细胞。
一般用于生物学、免疫学等科研工作。
操作步骤如下：1.离心。
接收新鲜采集的血样，放入10ml离心管中，管盖拧紧放入离心机中离心，将血浆分离出来并转入新离心管中。
2.保存。
将离心好的血浆避光下保存，用于后续实验工作。
禽类的给药方法及注意事项
用 药 剂 量 要 准 确 ，操 作 技 术
要熟 练 。 物用量小无 刺激性 ， 药 适
影 响 药 效 的 铜 、 、 等 离 子 ； 适 铁 锌 合 的饮 水量 ， 以满 足 其 需 要 。
３ 气 雾 法 用 气 雾 发 生 器 将 溶 于 水 的 药 物 或 稀 释 好 的 疫 苗 以 气 雾 的 形 式 喷 出 ， 成 雾 化 粒 子 均 匀 地 漂 浮 在 形
病 。 注 意 砂 浴 时 要 充 分 搅 拌 均 匀 。 止 家 禽 啄 食 药 物 中 毒 ； 用 防 禁
对 禽 类 敏 感 药 物 ， 敌百 虫 等 。 如 ６ 口 服 给药
一
般 的 片 剂 、 剂 、 剂 等 都 水 丸
可 采用 。此 法 在 禽 类 紧 急 治 疗 时
采用 ； 药时禽 类保定 要确实 ， 投 剂 量适 中 ， 作方 法熟练 。 操
用 于 皮 下 注 射 ；油 类 药 物 及 有 刺 激 性 药 物 宜 肌 肉注 射 ；对 于要 求
作 用 快 、 救 、 射 量 大 或 有 刺 激 急 注
性 药 宜 静脉 注 射 ：呼 吸道 寄 生 虫 的抗 寄生虫 药 多采 用 气管 注 射 ；
空 气 中 ，随 家 禽 呼 吸 而 进 入 体 内 。 多 用 于 群 体 免 疫 给 药 。该 方 法 给 药
应 注 意 喷 出 的 雾 粒 要 大 小 适 中 而
各种注 射要求用 具和注射部 位严
格 消毒 。 防感染 。 以
８ 滴 鼻点眼绐药
多 用 于 禽 体 的免 疫 接 种 。操 作 时 必 须 使 疫 苗 滴 入 眼 内 或 鼻 孔
均 匀 ， 般 要 求 在 喷 雾 中有 ７ ％ 以 一 ０
动物实验技术2
小鼠的皮内注射
4.肌肉注射 (i.m)
因小鼠肌肉较少，一般不作肌肉注 射。如实验必须作肌肉注射时，由助手 抓住小鼠两耳和头部皮肤，并提起。操 作者用左手抓住小鼠一侧后肢，右手取 连有 6 号针头的注射器，将针头刺入大 腿外侧肌肉，将药液注入。 小鼠一侧后肢的用药量不超过 0.1mL。
5.腹腔注射 (i.p)
小 鼠 的 尾 静 脉 注 射
7.脑内注射 常用于微生物学动物实验，将病原体等接种于被检动物脑内， 观察接种后的各种变化。 8.涂布给药 小鼠常采用浸尾方式经尾皮给药，用以定性地判定药物或毒物 经皮肤的吸收作用。 9.呼吸道给药 呈粉尘、气体、蒸气或雾等状态存在的药物或毒气，均需通过 呼吸道给药。 10.脚掌注射法 小鼠脚掌注射时一般取后脚掌，一次最大注射量为 0.25mL。
3.皮内注射 (i.d)
常用于观察皮肤血管的通透性变化及观察皮 内反应，多用于接种、致敏实验等。皮内注射通常 选用背部脊柱两侧的皮肤。先将注射部位及其周围 的被毛剪去，酒精棉球消毒局部。然后用左手将皮 肤捏成皱襞，右手持有 5 号针头的注射器，使针 头与皮肤呈 30 °角刺入皮下，然后将针头向上挑 起并稍刺入，即可注射。注射后，可见皮肤表面鼓 起一小丘。注射后5分钟再拔出针头、否则药液会 从针孔漏出。通常小鼠皮内一次注射量不超过 0.05mL。
麻醉时
静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张性、角膜反射和对皮 肤疼痛的反应，当这些活动明显减弱或消失时，要立即停止注射， 并进行抢救。 ① 采取保温措施。在麻醉期间，动物的体温调节机能受 到抑制，会出现体温下降，影响实验结果。 ② 必须保持动物气道的通畅和组织(眼球、舌、肠等器 官)的营养。 ③ 出现麻醉过深情况后，应立刻采取抢救措施。
小 鼠 的 灌 胃 方 法
常用实验动物的给药途径和方法
常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。
由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。
一经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。
1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。
灌胃量0.2～0.5ml/10g。
胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。
注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。
2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。
灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。
灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。
灌胃量10～20ml/kg3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。
先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。
插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。
可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。
此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。
4、猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10－12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。
具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。
此种操作较为简便。
5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。
实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。
技能点21鸡的采血
技能点21 鸡的采血
二、翅静脉采血
针头在静脉血管一侧倾斜刺 入皮肤，再与血管平行进针后刺 入血管，见有少量回血即可采集 血液，采血完成后马上用手压迫 止血。
技能点21 鸡的采血
三、心脏采血
鸡右侧卧保定，上腿 自然踡曲，在上腿膝关节 稍前下方约1cm处（心脏 搏动最明显的部位）垂直 地面进针采血。
技能点21 鸡的采血
技能点21 鸡的采血
鸡的采血
一、鸡冠采血 二、翅静脉采血 三、心脏采血 四、颈静脉采血
技能点21 鸡的采血
一、鸡冠采血
用于需血量较少的采血。采血时用针刺破鸡冠 并用手挤压，然后用吸管或微量移液器采集血液。 此法操作简便，但采血量少。采血时应注意固定好 鸡的头部，防止鸡甩头。
技能点21 鸡的采血
四、颈静脉采血
常采用右侧颈静脉采血。 左手以食指和中指夹住家禽头部，并使头偏向一
侧，无名指、小指和手掌握住躯干，拇指轻压颈用于15～45日龄的雏鸡，成年鸡较难。
技能点21 鸡的采血
注意事项
采血场所最好光线充足。 所用器具必须清洁干燥。 注意自身安全，防止抓伤或啄伤。 翅静脉采血时，应自远心端向近心端采血，
以免影响整条静脉。
《畜禽给药法[推荐5篇]》
![《畜禽给药法[推荐5篇]》](https://img.taocdn.com/s3/m/1bdad8893c1ec5da51e270b5.png)
《畜禽给药法[推荐5篇]》第一篇：畜禽给药法实验二畜禽给药法一实验目的：掌握畜禽的常用药剂的给药方法。
了解畜禽常用给药方法的应用原则和注意事项二实验材料动物山羊、兔器材灌药瓶输液管、注射器、针头，剪毛剪等药物生理盐水三实验内容1.灌药法：左手抓住羊的头部，将头上提，右手持盛有药液的灌药瓶，从右口角进行灌药；注意事项。
（1）灌药时切勿操之过急，每次灌药量不宜过多；（2）灌药过程中，当病畜发生强烈咳嗽，鸣叫时应暂停灌药，并将头部放低，以防药液误入气管或肺中。
2.片剂、丸剂、舔剂的投药法。
给羊投药时，术者一手从一侧口角打开口腔，另一手持药片或药丸投入舌根部，使其自行咽下。
3.胃管投药法：马属动物胃管投药，将动物牵至六柱栏内，确实保定好动物头部，投药者抓住大动物的鼻翼，另一只手持涂上滑润油的胃导管，将胃导管端沿动物下鼻道缓缓插入，当管端到达咽部时感觉有抵抗，此时不要强行推进，待动物有吞咽动作时，趁机向食管内插入。
当动物无吞咽动作时，可揉捏咽部或用胃导管端轻轻刺激咽部而诱发吞咽动作。
当胃导管进入食管后要判断是否正确插入。
其判断方法有。
向胃导管内打气，在打气的同时可观察到左侧颈静脉沟处出现波动；将球压扁后不再鼓起来。
上述二种判断方法，都证明胃导管已正确地插入食管内。
胃导管端连接漏斗把药液倒入漏斗内，举高漏斗超过动物头部将药液灌入胃内。
药液灌完后去掉漏斗，用橡皮球再向胃导管内打气，以排净残留在胃管内的药液，然后将胃导管端折叠，缓缓抽出胃导管。
牛的胃管投药，与马属动物胃管投药相似，但牛的鼻镜十分敏感，可让助手抓住鼻钳，胃导管经鼻道插入食管内，其判断方法同马属动物。
犬的胃管投药，对犬、猫先进行安全保定后装上开口器。
用较细的投药管经舌背面缓缓向咽腔插入，然后继续向深部插入即可顺利进入食管内，用连接胃导管的气球打气，可观察到颈部的波动，压扁气球后气球不会鼓起即可证明插入正确。
连接漏斗灌入药液。
猪的胃管投药猪侧卧保定，先给猪装上开口器，胃导管经口腔插入，经舌背部向咽腔插入食管内15～20cm，其判定方法同犬的判定方法，插入正确后灌入药液。
实验动物的接种,采血以及剖检的方法
实验动物的接种，采血以及剖检的方法一、实验目的学习实验动物的接种，采血以及剖检的方法。
二、实验材料一次性注射器、鸡、酒精棉，剪刀、镊子、酒精灯、火柴等三、实验步骤(一)实验动物接种法1．皮下接种：(1)家兔皮下接种：由助手把家兔伏卧或仰卧保定，于其背侧或腹侧皮下结缔组织疏松部分剪毛消毒，术者右手持注射器，以左手拇指、食指和中指捏起皮肤使成一个三角形皱褶，于其底部进针，感到针头可随意拨动即表示插入皮下。
当压入注射物时感到流利畅通也表示在皮下。
拔出注射针头时用消毒棉球按住针孔并稍加按摩。
(2)豚鼠皮下接种：保定和术式同家兔。
(3)小白鼠皮下注射：作小白鼠皮下注射接种无须助手帮助保定。
术者在做好接种准备后，以右手捏取鼠尾，此时鼠头会向前挣扎而可以紧牵其尾，然后用左手的拇指和食指捏住其两耳及其头颈部皮肤使其翻转，背部皮肤固定于左手中指、无名指及拇指基部之间，以小指压住其尾根，小自鼠即仰卧保定于左手上。
右手操作局部消毒，把持注射器，以针头稍微挑起皮肤插入皮下，注入时见有水泡微微鼓起即表示注入皮下。
拔出针头后，同家兔皮下注射时一样处理。
2．皮内接种：作家兔、豚鼠及小白鼠的皮内接种时，均需助手保定动物，其保定方法与皮下接种相同。
接种时术者以左手拇指及食指夹起皮肤，右手持注射器，针头要很细，针头插入拇指与食指之间的皮肤内，针头插入不宜过深，同时针头插入角度要小，即与夹起的皮肤平行，注射时感到有阻力且注射完毕后皮肤上有小硬疱即为注入皮内的表现。
皮内接种要慢．否则容易使皮肤胀裂或自针孔流出注射物而散播传染。
3．腹腔内接种：在家兔、豚鼠及小白鼠作腹腔接种，宜采取仰卧保定。
接种时其后躯应稍抬高使其内脏倾向前腔，接种部位在腹后侧面，针头先插入皮下，后进入腹腔，注射时应无阻力．注射后皮肤应无疱隆起。
其余术式同于皮下接种法。
4．静脉注射：(1)家兔的静脉注射：将家兔纳入保定器内或由助手保定兔体露出其头。
选一侧耳边缘静脉，助手以拇指及食指紧压耳根部，使静脉努张，术者剪去静脉管上皮肤的毛，消毒局部，若需对同一动物作多次接种时，应自接近耳尖处开始刺入接种，以后逐次接近耳根。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
给鸡静脉注射操作方法
鸡的静脉注射是一项常见的操作，用于给鸡类动物进行药物注射。
正确的操作方法可以保证注射的效果和安全性。
下面将详细介绍鸡的静脉注射操作方法。
1. 准备工具和药品：
- 注射器：选择合适大小的注射器，通常使用1ml或3ml的注射器。
- 针头：选择合适长度和规格的针头，通常使用22G或23G的针头。
- 药品：根据需要选择适当的药品，准备药液。
2. 鸡的准备：
- 安静环境：将鸡置于一个安静的环境中，可以使用适当的固定装置来使鸡保持稳定。
- 脖子暴露：轻轻推开鸡的羽毛，将注射部位（静脉血管）暴露出来。
3. 注射操作：
- 消毒：使用酒精棉球或消毒剂清洁注射部位，避免感染。
- 穿刺：将针头在静脉位置上45度角进入皮肤，然后缓慢推进到静脉内。
推进时需保持注射器呈适角度，并避免将针头刺过深。
4. 检测位置:
- 检查鸡的静脉反应，即观察是否有血液进入注射器内。
如果注射器内出现一滴鲜红色液体，说明针头已进入静脉。
- 注射速度：缓慢注射药液，避免过快注射造成静脉破裂。
5. 激发点：
- 如果需要激发鸡的静脉，可以轻轻按压注射部位的上方，以增加静脉的容量和显示效果。
- 注意力度：需要轻柔地按压，避免造成鸡的疼痛或静脉损伤。
6. 拔针：
- 缓慢拔出针头，避免药液外溢或造成出血。
7. 观察：
- 注射完成后，可将一只手放在注射部位上进行轻揉，以帮助药液更好地分布。
- 观察鸡的反应，确保没有异常症状。
8. 重点注意事项：
- 注射部位的选择尽量在鸡的颈部，因为大部分鸡的颈部静脉较为明显，易于操作。
- 在开始注射前要确保注射器和针头已经清洁并且无损。
- 操作时要准确把握注射的深度和速度，尽量减少对鸡的刺激和伤害。
总结：
通过以上的解释，我们了解到鸡的静脉注射是一项需要谨慎进行的操作，确保鸡的安全和注射的效果是至关重要的。
正确的操作步骤包括准备工具和药品、鸡的准备、注射操作、检测位置、激发点、拔针以及观察。
同时还需要注意选择合适的注射部位、保持工具和针头的清洁无损、控制注射的深度和速度等关键要点。
这些操作方法可以帮助养殖人员正确地给鸡进行静脉注射，提高养殖效益。